Summary
从成年鼠龄的单神经元的活性可以通过从特定脑区域的神经元解离，并使用荧光膜电位染料成像进行研究。通过测试响应变化的葡萄糖，这种技术可以用来研究成年腹内侧下丘脑神经元的葡萄糖敏感性。
Abstract
往往是由于随着结缔组织相关的技术难题进行神经元活动的研究利用老鼠不到2个月的婴儿神经元和下降随着年龄的增长出现的神经元生存力。在这里，我们描述了一种方法从成年小鼠岁健康丘脑神经元的解离。从成人 - 老年小鼠的神经元学习能力允许使用的疾病模型，体现在以后的年龄和可能更准确发育的某些研究。分离神经元的荧光成像可以用来研究神经元群体的活动，而不是使用电来研究单个神经元。当研究一种异构神经元群中的所需的神经元类型是罕见的，如用于下丘脑葡萄糖感受神经元，这是特别有用的。我们利用成人腹内侧下丘脑神经元的膜电位染料成像技术来研究他们的反应，茶民营企业在胞外葡萄糖。葡萄糖传感神经元被认为在能量平衡的中枢调节中发挥作用。研究葡萄糖传感成年啮齿类动物的能力，是因为涉及到不正常的能量平衡（ 例如 ，肥胖），随着年龄的增长疾病的优势是特别有用的。
Introduction
大脑通过神经内分泌和自主神经系统调节能量平衡。腹内侧下丘脑（VMH），由腹内侧核（VMN）和弓状核（ARC）的，是对能量平衡的中枢调节的重要。专门的葡萄糖传感神经元，在VMH内，连接神经元的活动和周边葡萄糖稳 态1。有两种类型的葡萄糖传感神经元;葡萄糖激发（GE）的神经元的增加，而葡萄糖抑制（GI）的神经元活动减少细胞外葡萄糖增加。 VMH葡萄糖感受神经元使用电或钙/膜电位敏感染料成像一般研究。
电生理膜片钳技术被认为是在体外神经元活动的研究的黄金标准。在该技术中，玻璃微电极通过高电阻连接到细胞膜（GΩ）封。膜片钳电极允许在单个神经元动作电位的频率（电流钳）或离子电导（电压钳）实时记录改变。而膜片钳技术提供了关于修改某些离子通道电导的详细信息，一个主要的缺点是只有一个神经元可以在同一时间观测到。这大约需要30-45分钟的记录来验证，一个是记录从葡萄糖传感神经元甚至开始一个具体的实验治疗。此外，GI和GE神经元组成<总VMH神经元群的20％。除了这种问题是缺乏对这些神经元的识别细胞标记的，在许多情况下，。因此，很清楚的是，尽管提供了宝贵的电信息的其它技术不能，膜片钳分析是费力，费时且产量低。
采用分离VMH神经元的荧光成像允许对胡的研究神经元的同时ndreds。钙敏感的染料可以被用于测量细胞内游离钙的变化，从而间接的关联，改变神经细胞的活动。膜电位敏感的染料被用于监控膜电位的变化。测量细胞膜电位是神经元活性相比的变化，细胞内钙水平的更直接的指标。此外，膜电位染料（MPD）成像检测潜在的膜电位变化较小，其中动作电位发放不改变，细胞内钙水平可能不会改变。这两种荧光成像技术已被用于研究VMH葡萄糖传感神经元从幼年小鼠2-7。虽然结果比那些与膜片钳电获得的不太详细，成像实验的实力，他们同时评估一个人口众多的细胞不可避免地包括一个显著的葡萄糖传感神经元的。 MPD成像我S对于研究胃肠神经元这是更均匀地分布在整个VMH本地化特别有用，从而提供足够的人口中分离VMH（〜15％GI）的研究。与此相反，而GE神经元密集地定位于腹外-VMN和ARC和VMN之间细胞贫穷地区，但并不代表一个显著数目的VMH内神经元的（<1％GE）。此外，通过研究分离出神经元，星形胶质细胞和突触前效应被消除。这可能是因为生理连接和过程都将丢失在研究一阶神经元的影响的优点，还有一个缺点。
在这两个膜片钳电生理和MPD /钙染料成像的一个限制因素是需要使用年轻的动物（ 例如 ，小鼠或大鼠<8周龄）。这主要是由于在发生随着年龄减少神经元生存力的组合增加结缔组织。在脑切片电螺柱IES，增加的结缔组织使之更难以以可视化的神经元。增加结缔组织也使得它更难分解大量健康的神经细胞的成像研究。此外，从年轻的动物的神经元或者膜片钳记录或在成像过程中存活时间更长。然而，使用年轻小鼠可以是一个重大的限制。神经元的活动和/或反应性神经递质或循环的营养物质变化与年龄。例如，由于能量平衡是紧密联系在一起的生殖状态，下丘脑神经元调节能量平衡可能在前期与postpubescent的动物有不同的反应。此外，许多疾病需要长期治疗或不表现，直到成年。这类疾病的最好的例子是饮食或肥胖2型糖尿病。由于葡萄糖传感神经元被认为在这些疾病中发挥作用，我们开发了一种方法，成功地培养健康成人VMH神经元用于MPD成像EXPeriments。
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Protocol
1。动物
- 所有的程序获得批准的机构动物护理和使用委员会新泽西医学院大学和牙科。
- 集团内部雄性C57BL / 6小鼠在12小时light/12小时黑暗的时间表，并允许自由采食获得水和食物。牺牲在4-5个月之久。使用麻醉的手术平面和安乐死的次要形式（ 即通过隔膜穿透切口进入胸腔）进行小鼠安乐死。这是关于安乐死的AVMA准则是一致的。
2。灌注液，盖玻片，玻璃滴管，与媒体的制备
- 使由2.5mM的氯化钾，7毫摩尔MgCl 2，1.25毫的NaH 2 PO 4，28 mM的的NaHCO 3，0.5mM的氯化钙的1L灌注溶液，7毫摩尔葡萄糖，1mM的抗坏血酸盐，并在蒸馏水DH 2 O 3 mM的丙酮酸调节渗透压〜300毫渗量使用约80g / L蔗糖。含氧化合物通过鼓泡用95％O 2/5％CO 2和pH值调节到7.4。每个实验将需要大约200毫升灌注液。等分试样可被储存在-20℃下长达2个月。
- 使含有的Neurobasal媒体不含葡萄糖，2.5毫米的葡萄糖，和100 U / ml青霉素链霉素250毫升的Neurobasal股票。用蔗糖调整的Neurobasal股票的渗透压摩尔浓度为280毫渗量。让500毫升休眠含Hibernate的一个媒体没有葡萄糖，2.5毫米的葡萄糖，和100 U / ml青霉素链霉素股票。
- 使用Stericup真空过滤单元挑起两只股票好，过滤灭菌。要小心，不要透过玻璃或搅拌棒采用葡萄糖或其他污染物。包装瓶的贴膜，保护媒体的光，并在4℃下保存长达2个月。
- 火焰4蒸压玻璃吸液管（9）的提示，这样的提示是没有卤味NGER尖锐和开口直径大的（〜0.9毫米），中大（约0.7mm）上，介质（〜0.5mm）的，和小（〜0.3mm）上。最大的应该勉强抛光和最小的应该是关于直径的三分之一。
- 在收获的神经元，用70％的乙醇，并通过在本生灯火焰干净425毫米盖玻片的前一天。将每个盖玻片在无菌35毫米培养皿中，加2毫升无菌1％多聚-D-赖氨酸在DH 2 O。能把碗碟放进培养箱（37℃）过夜。第二天，洗用无菌DH 2 O 3倍，并允许盖玻片充分干燥。
- 设为1M的乳酸和GlutaMAX的200微升等分75微升等分;储存于-20°C。使用前充分解冻乳酸和GlutaMAX的等分，以确保均匀性。
- 采伐神经元的日子，让加入30ml新鲜培养基组成的休眠-A含有1mM乳酸传输，0.5mm的GlutaMAX，和2％B27的无胰岛素股票。 VORTEX并用1N的NaOH调节pH值至7.4。
- 放入冰60毫米的玻璃培养皿10毫升培养基，放2毫升15毫升锥形管上的冰，并保持剩余介质在室温下。
- 上收获的神经元的天，使加入25ml新鲜的生长培养基包括含有1mM乳酸，0.5毫米的GlutaMAX，和2％B27无胰岛素的Neurobasal股票。涡旋并用1N的NaOH调节pH值至7.4。让新鲜的生长培养基中，以在培养箱中（37℃，5％CO 2）的平衡至少30分钟。
3。心脏灌注
- 充分解冻200毫升灌注溶液和含氧化合物用95％O 2/5％CO 2在冰上至少15分钟。
- 用丙酮，70％乙醇和DH 2 O洗vibratome刀片放置在vibratome刀片。
- 冲洗vibratome冷却室和灌注管，带DH 2 O。填补冷却室（4℃）与灌注溶液，并继续充氧。
- 麻醉小鼠用戊巴比妥钠50毫克/毫升，1:1稀释，用无菌水，腹膜内注射。验证鼠标完全被捏的尾巴，观察无反应麻醉。
- 倒入冷灌注液注入灌流水库和管道之前，为了清扫术。除20-30毫升的大脑解剖，并继续氧合冰上。从提升的60毫升注射器通过管道自流和20号针头提供足够的流量。让解决方案来运行，直到气泡被冲了出去。继续充氧。
- 切开背部皮肤鼠标的胸腔以上。提起肋骨，并通过膜片仔细做一个横向切。使两侧切口，通过胸腔向上朝手臂，露出心脏。使用镊子忍住胸腔。
- 做小了2 mm切割在右心房提供一个退出点血被淘汰的vascu的拉尔系统。
- 穿刺左心室灌注针头，就足以插入针开幕。保持针就位，用一只手，开始灌注溶液用另一只手的流动。经过10〜15毫升灌注液，血液应该被淘汰，出水将清除。
4。脑切片和解剖
- 心脏灌注后，转移充氧冷灌注液在冰上用前一个培养皿。
- 快速斩首，从头骨取出大脑，并将大脑进入灌注液。为了消除大脑：皮肤拉向前，做一个中线切向眼窝头骨，使2向每只眼睛外侧切口，用血管钳拉回来头骨的每一侧，使眼窝之间的冠状切口，并用刮刀轻轻哄大脑伸到灌注液。用剪刀在必要时切断视神经束。不要触摸下丘脑c区和不拉视束，因为这使在正中隆起及相关丘脑组织中的压力太大了。
- 用剃刀刀片和针横向修整脑组织大约3mm后壁和前壁至下丘脑而组织浸入（囟-3.52毫米）。对于前侧切口为电平使大脑将直坐于vibratome夹头它是特别重要的。
- 从溶液中取出剩余的脑组织，用滤纸吸走的解决方案从安装的大脑部分。
- 将强力胶民建联在vibratome夹头和传播胶水到大脑的大小。把脑组织上胶的顶部与前侧朝下，下丘脑面向叶片。威克走多余的胶水，然后将吸盘到vibratome冷却室。谨慎使用，因为它会冒泡周围脑时，放入溶液中不留下太多胶水。
- 用振动磨机的E设置为慢速（2级）和高振幅（9级），使300-500微米的切片，直到到达下丘脑区域。现在做薄100微米片切割从后到前。视觉提示是如下。后路下丘脑第三脑室将是非常小的（前囟-2.70至-2.30毫米）。于前囟-2.30毫米，第三脑室分为背，腹部分的冠状切片上。
- 一旦第三脑室保险丝的部分，使两台500微米的切片，其中将包含VMH的正确的区域（前囟-2.18至-1.22毫米）。前向VMH，第三脑室不再延伸到脑的腹侧地板8（-1.06至-0.82囟）。
- 转移这些切片在含冰培养基的培养皿中。解剖VMH（VMN + ARC）， 如图1。用吸管轻轻转让VMH片在2毫升培养基上冰。
5。解离和文化
- 从冰中取出VMH并放置在室温下。加入20 U / ml的木瓜蛋白酶〜4毫升培养基。颠倒混合并置于34℃水浴。检查并颠倒混匀每分钟，直到消化媒体不再浑浊。过滤（0.22微米）到无菌烧瓶中，并在组织转移到消化介质。
- 在100转摇在34℃30分钟消化的组织。
- 制备1ml含在消化期间8％牛血清白蛋白（BSA）的介质。溶解80毫克BSA的1ml培养基和过滤器（0.22微米）到锥形管中。
- 通过转移到5ml培养基在锥形管，慢慢地倒洗一次组织。
- 加入30微升的DNA酶酶至6 ml培养介质和混合，使研磨介质。吸出冲洗介质和，加入3 mL研磨介质。
- 用玻璃吸管交运集团的以磨碎argest到最小。轻轻磨碎10倍，然后等待4分钟的大块来解决。使用第二个吸管转移前2毫升含一个分离的细胞悬液，以一个新的锥形管。加入2ml研磨介质，磨碎10倍，并等待3分钟。使用第三个移液管顶端2毫升转移到细胞悬浮液。加入1 ml的研磨介质，磨碎5倍，并等待2分钟。使用第四个移液管顶端2毫升转移到细胞悬浮液。
- 层上的8％BSA的顶部分离的细胞悬液，小心不要混用。离心机在1,000 rpm离心5分钟。
- 将蒸压6毫米毫米x 8毫米克隆在每个盖玻片的中央圆柱体。盖玻片必须完全干燥。吸和悬浮颗粒在440微升温暖的生长介质。填克隆缸与神经元悬浮液并置于培养箱中20分钟。
- 取出克隆缸和轻轻洗去杂物。填写每道菜的Wi日2毫升生长介质。让细胞恢复至少1小时的任何实验都进行前。
6。对于MPD成像准备
- 使由121 mM氯化钠，4.7毫米氯化钾，2毫米氯化钙 ，0.1毫米MgCl 2，1.2毫米硫酸镁4，0.97毫米的K 2 HPO 4，0.23毫米KH 2 PO 4，5毫米碳酸氢钠3，和25 mM的录音解决方案HEPES。将pH调节至7.4。
- 添加葡萄糖，使所需的低血糖测试解决方案（0.1-2.0毫米的葡萄糖）。调匀和预定400毫升低血糖录音解决方案。添加葡萄糖其余600毫升使2.5毫米的葡萄糖录音解决方案调匀。
- 从光尽可能地保护染料。加4毫升室温下缓冲液至蓝MPD小瓶中。调匀，加入每毫升录音解决方案5微升染料。保持均匀的溶液用移液管的解决方案之间的混合。染料含有荧光米olecules，它进入细胞去极化，和猝灭剂分子，从而不能穿过细胞膜。等分部分可被存储在-20℃下和在4天内使用。不冻融一次以上。
- 孵育2毫升2.5毫米葡萄糖录音解决方案，加上染料在34℃，30分钟的细胞。干式加热块都可以使用。避光。
- 制备的注射泵和灌注系统以2.5毫米和0.1毫米记录解决方案，加上染料。从60毫升注射器管应连接到一个歧管。
- 停止所有泵后，等待〜在歧管交换解决方案前10秒，以防止压力积聚在注射器中。压力的变化改变流体输送到含有神经元的封闭腔室，图像的实验和失真中的变化引起在显微镜焦点。
- 歧管输出管应连接到一个嵌入式加热器，然后聚乙烯管，它连接到一个封闭的腔室。气泡应该被清除和灌注速度应设定为0.5ml /分钟。避光。
- 转让25毫米盖玻片贴壁神经元的封闭腔，小心不要让盖玻片干，不要引入气泡。滑移是在底部件的凹槽对准，记录溶液几个滴置于沿着侧面和顶片轻轻地嵌合到保持盖玻片到位。
- 使用滴管以填充该腔室与记录溶液中，然后放置一个18毫米盖玻片上顶。轻轻适合白环入腔以保持较小的盖玻片到位。压下速度非常慢，轻轻防止气泡被引入到密封室。
- 启动注射泵为2.5毫米的葡萄糖录音解决方案，摁倒在白色的环，并连接到封闭室。慢慢地从白环释放压力，并连接到管道通往废物容器。
- 使用低亮场光中心的神经元。尽量减少时间的细胞被暴露于光的量。
- 允许灌注系统运行10分钟，以允许温度时，聚焦的稳定化，以及染料的平衡。
- 而吸，打开的MetaMorph程序，并采取神经元的明场图像（10X）。使用自动对焦功能拍摄3栈的荧光图像（150毫秒，窄的Cy3过滤器，10X），并确定在5微米的焦点。在10分钟灌注期间结束，检查对焦一次。
- 开始40分钟记录荧光图像，每30秒。建立基准为2.5毫米的葡萄糖10分钟，然后降低葡萄糖15分钟，最后返回到2.5毫米的葡萄糖15分钟。解决方案是通过停止注射泵，等待10秒，打开一个端口上的歧管，并开始另一个注射泵改变。变化应该发生提前期望的时间点巴在歧管和细胞之间的滞后sed的。
- 记录所有荧光图像后，将神经元的明场图像。
8。 MPD影像学分析
- 使用的MetaMorph到在实验结束时拍摄的明场图像创建的每个单元格周围的椭圆形区域。区域应该比每个神经稍大，可制成1个像素的单元格的暗边的外侧。不要选择细胞是不健康的，重叠的，或接近碎片。不健康的细胞往往显得较暗。最后，在没有细胞或碎片为背景测量领域建立5个大型的椭圆形区域。
- 区域传送到所有荧光图像，并检查以确认没有发生移动/班。使用测量功能来记录每个区域的荧光强度在一个Excel文件中的所有图像。中的Metamorph使用期刊的建议。
- 在Excel中，为每个fluoresc平均5个背景区域的耳鼻喉科的形象。这表示在每个时间点的平均背景值。对于每一个图像/时间点，减去所有区域测量背景。在扣除背景的荧光强度将被称为强度以下。
- 对于每一个单元格，在计算分钟的录音2-8的平均强度。这表示在2.5毫摩尔葡萄糖单元的基线。在每次治疗的两端只需两分钟的缓冲，以尽量减少噪音。
- 对于每一个细胞，计算从基线的变化百分比：（强度基线）/基线
- 从基线的百分比变化与时间创建的线图。
- 计算从基线时18-23分钟的平均百分比变化。计算从基线时35-40分钟的平均百分比变化。不使用时，图像处理，噪声是通过强度的每个单元区域内的平均化，背景扣除和区域的强度在5分钟ø平均降低ř更长。
- 其中2.5毫摩尔葡萄糖录音解决方案交换与2.5毫米的葡萄糖录音解决方案的对照实验必须执行，以确定噪声阈值。计算从基线时至少6菜肴和3只小鼠18-23分钟的平均百分比变化。确定这些值的平均值和标准偏差。
- 对于正的去极化响应平均值加上2个标准差设定的阈值。平均值加上2个标准差对应的差以p <0.05。我们的控制实验显示，从基线的10％变动为相应的阈值。
- 对于每个小区，评估基于2标准的可逆去极化响应。首先，从基线时18-23分钟的平均百分比变化必须大于10％时，在先前步骤中所确定的阈值。第二，从基线时35-40分钟的平均百分比变化必须小于从平均百分比变化的半在18-23分钟基线。第二准则被选择，因为它被认为是比刺激谷氨酸盐或氯化钾更加严格。不健康的神经元通常以刺激谷氨酸或氯化钾反应，即使他们的反应，降低血糖是不可逆的。
- 对于每道菜，计算神经元去极化的％。这个值用于量化GI神经元的％不同治疗组之间。
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Representative Results
在VMH远离其他下丘脑区的精确解剖重要的是获得一致的结果。列入的其他领域可能会削弱VMH神经元群，改变计算神经元去极化的％。此外，葡萄糖传感神经元已经在其他丘脑区域，例如下丘脑外侧，这可能与在功能上和机械地从VMH葡萄糖感受神经元识别， 图1示出了用于适当的解剖正确的解剖学位置。按照上述协议，包含正确的VMH区域脑组织可以分离。进一步解剖精确地分离VMN和ARC，同时保持各亚群的全部，可能无法进行。 图2示出的健康，例如，解离VMH神经元。采用免疫组化，我们证实了我们的准备是> 90％的神经元。只健康的神经元应被用于数据ANALYSIS和菜太多不健康的神经元应该被丢弃。神经元是不健康经常有非常暗的边缘，占用的MPD在更大程度上，并具有不规则形状。此外，神经元应该这样，大多数神经元在录制过程中不会触碰对方的密度进行电镀。选择用于分析的神经元不应该被触碰其他细胞或碎片。
从GI神经元和一个nonGI神经元的记录得到的数据示于图3。获得10分钟的基线后，将细胞外葡萄糖是从2.5-0.1毫米减小。胃肠神经元显示了强大的可逆反应大于基线10％变化的预定阈值。荧光的增加反映去极化。同时还检测到GE神经元超极化反应，频率太低（<1％的神经元）就这一亚型的葡萄糖传感神经元成功使用这一技术的。生理glucos的范围E减小了测试和VMH神经元的可逆去极化的百分比计算各培养皿中。 图4示出的葡萄糖降低和去极化神经元的百分比的幅度之间存在正相关关系。这表明成年鼠的神经元成功原代培养物可用于荧光成像结合使用，以允许成年VMH GI神经元的研究。
图1。冠状切面与标记正确VMH解剖的解剖组织包含VMN和ARC与其他下丘脑区域污染最小。对角线剪切应使从〜25％-30％以下的第三脑室的顶部〜其中皮质满足下丘脑区域（蓝色*）的点和第三脑室之间25-30％的（3V）。从囟门-2.8毫米旅游Paxinos和Watson 1998 9，对应于小鼠脑前囟门至1.7mm。适应点此查看大图 。
图2。从成年鼠健康VMH神经元的明场图像，该图像被采取24小时后，离解和已经用于MPD成像。那会（蓝色*）或不会（红色x）用于分析被标记的神经元的几个例子。 点击这里查看大图 。
FIGURE 3。地理标志神经元（绿线）和nonGI神经元（橙色线）代表的MPD荧光痕迹。细胞灌注2.5毫摩尔葡萄糖（G）的录音解决方案为10分钟，其次是减少到0.1毫米下进行15分钟和返回到2.5mm下进行15分钟。在GI神经元，从基线的百分比变化在0.1 cm重量灌注期间（40％平均20-25分钟）提高到10％以上，并降低到低于该增加2.5 cm重量反转周期（15半％从平均35-40分钟）。 点击这里查看大图 。
图4。成人VMH神经元的百分比可逆去极化反应中使用荧光MPD成像检测血糖下降。的葡萄糖减少，神经元去极化的百分比幅度之间存在正相关关系。 点击这里查看大图 。
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Discussion
关键是能够研究神经元的活动从成年小鼠是健康的游离神经元的能力。从成年小鼠的下丘脑神经元的解离更难以在协议几个关键步骤相比，从幼年小鼠的神经元。我们已在许多方面克服了这个问题。制作厚500μm的脑片最大限度地减少机械损伤的神经元相比，用于从年轻小鼠脑组织通常的250-350微米的切片。然而，较厚的切片需要更加重视心脏灌注和脑组织的木瓜蛋白酶消化。如果血液被认为是对脑组织，评价切在右心房和针放置在左心室的精度和位置。流量和灌注液量也可以进行调整。彻底灌注势在必行因为血液是有毒的神经元，并会导致健康的神经元的下屈服。木瓜蛋白酶消化必须是有效的，足以允许对于温柔研磨和易于释放的单细胞脑组织。当VMH组织迅速吸收在消化结束，当较大的组织碎片中存在的第二研磨过程中的低效木瓜蛋白酶消化之嫌。具有良好的消化，组织片几乎肉眼第三研磨过程中检测到。如果研磨的不温柔，神经元的健康会受到影响。如果一个低效率的木瓜蛋白酶消化怀疑，木瓜蛋白酶的浓度可以增加5 U / ml或可用于木瓜蛋白酶的新的小瓶中。但是，木瓜蛋白酶浓度不应高于30 U / ml的增加，因为这会损害神经健康。
暴露于牛血清白蛋白是协议的另一个关键步骤。研磨后，细胞已被离心的BSA梯度，时间的神经元都被暴露到的BSA的量和BSA允许保持与丸剂应最小化的量。将上清液与BSA梯度应立即被吸入后的离心时间。真空抽吸可用于除去大部分上清液，但最后〜100微升应该手动用移液管去除，以使细胞沉淀不被中断。获得健康的神经细胞的另一个重要方面是，以优化细胞密度。镀神经元太稀疏是不是健康的。因为这么少的神经元被从每个鼠脑获得的，这是不实际的电镀前进行计数细胞。在此期间，将花费计算时间，一个显著数量的细胞会粘附到塑料和将丢失。使用4个菜每只小鼠（〜1×10 4细胞/ ml）为起点，经验确定菜肴的数目是最实用的方法，以实现最佳的神经元密度。从老年小鼠VMH神经元的收率可预期大约一半来自年轻小鼠的产量的影响。进一步的故障排除，以提高神经产量涉及神经元的剩余量化在离解协议的每一步骤要找准步伐显得沉重神经元消耗。
用我们的协议，健康的离解能神经元培养可达2-3天生存。然而，使用过滤的星形胶质细胞条件培养基中的神经元能够存活长达2周的文化。生长介质可通过在孵化初级融合一夜之间星形胶质细胞进行调节。从相同的啮齿动物品系，性别和大脑星形细胞区域应该加以利用。而使用星形胶质细胞条件培养基的引入了另一个变量，该变形可能是必要的，需要更多的时间在培养替代实验。此外，其原因尚不清楚，我们已经发现，感测葡萄糖的能力是很容易失去了与次优的神经健康，尽管反应等的刺激，如谷氨酸的维护。因此，额外的，必须小心。观察神经元对葡萄糖的下降，当务之急是要避免contaminati对由细菌，霉菌，盐，皂，和葡萄糖。所有的玻璃制品和未经消毒的塑料应与卫生署2 O彻底清洗除了生活污染物，清洁剂和盐会影响神经细胞的完整性和活性。少量的葡萄糖能够显著改变血糖浓度。这将破坏的结果，因为葡萄糖传感神经元的nonhyperglycemic生理范围的0.1-2.5毫10,11内细胞外葡萄糖的微小变化非常敏感。
当利用治疗组之间的MPD成像，一致性和侧端实验是至关重要的有意义的结果。不同处理组应在同一天，如果有可能，或至少在交替的天数进行测试。这最大限度地减少在文化制剂或MPD等分可能的变化。此外，我们发现，当神经细胞内解离24小时以上提到的原因进行成像时最少的变化。由于结果作为神经元去极化，准确性和一致性VMH解剖和神经编制的百分比进行分析也是必不可少的。整体VMH神经元群收获必须是常量，不能包含来自其他地区的神经元。因此，上述协议应密切和严格遵守。但是，如果替代实验是将要执行和人口的维护是不是一个问题，组织拳，可到隔离VMN或ARC神经元。
这里所描述的方法确定如何从成年小鼠以及如何使用MPD成像来研究葡萄糖感受神经元收获健康VMH神经元。相反，实验可以设计审查VMH神经元对刺激的葡萄糖比其他的变化。可替换地，离解协议可以由其他脑区外推到收割的神经元。利用从成年小鼠的神经元，研究，现在可以使用开发或随着年龄的增长进度小鼠疾病模型进行的。 MoreoveR，健康成人的神经元，可以进一步使用的技术比MPD成像其他如钙成像，电生理学，单细胞PCR，免疫细胞化学或这些技术的组合影响。
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Disclosures
我们什么都没有透露。
Acknowledgments
美国国立卫生研究院R01 DK55619，美国国立卫生研究院R21 CA139063
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Neurobasal-A Medium (Custom) | Invitrogen | 0050128DJ | custom made glucose free |
| Hibernate-A Medium (Custom) | BrainBits | custom made glucose free | |
| Penicillin streptomycin (20,000 U/ml) | Invitrogen | 15140 | other vendors acceptable |
| Stericup vacuum filter units (0.22 μm) | Millipore | other vendors acceptable | |
| 25 mm Glass coverslips | Warner | #1 25mm round | |
| 18 mm Glass coverslips | Warner | #1 18mm round | |
| GlutaMAX | Invitrogen | 35050 | |
| B27 minus insulin (50x) | Invitrogen | 0050129SA | |
| Razor blade | VWR | 55411 | |
| Vibratome & cooling chamber | Vibratome | Series 1000 Sectioning system | |
| Vibratome blades | Polysciences | 22370 | injector or double edge blades from other vendors acceptable |
| Papain, suspension | Worthington | LS003124 | |
| BSA, suitable for cell culture | Sigma | other vendor acceptable | |
| DNAse, for cell culture | Invitrogen | other vendor acceptable | |
| cloning cylinders, 6 mm x 8 mm | Bellco Glass | 2090-00608 | |
| Membrane Potential Dye (blue) | Molecular Devices | R8042 | |
| In-line heater | Warner | SF-28 | |
| Syringe pumps | WPI | sp100i | other vendor acceptable |
| Closed chamber | Warner | RC-43C | |
| Polyethylene tubing | Warner | PE-90 | |
| Metamorph | Molecular Devices | alternate image analysis software acceptable | |
| Microscope | Olympus | BX61 WI | used with 10X objective |
| Camera | Photometrics | Cool Snap HQ | |
| Narrow Cy3 Filter Set | Chroma | 41007a | |
| Illumination System | Sutter Instruments | Lambda DG-4 |
References
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