Summary
복수의 가벼운 손상 프로토콜은 손상 광수를 설명하고 결과적으로 성인 zebrafish에있는 망막 재생 반응을 유도하고 있습니다. 이 프로토콜은 안료 동물에서 사용할 수있는 개선 된 방법을 설명하고 그로드하고 전체 망막에 걸쳐 콘 광수의 대부분을 손상.
Abstract
빛에 의한 망막 변성 (LIRD)는 일반적으로 설치류 피해로드와 콘 광수에 제브라 피쉬 모두에 사용됩니다. 성인 제브라 피쉬에서 시세포 변성 뮐러 아교 세포를 다시 입력 세포주기에 트리거 및 과도 증폭 조상을 생산하고 있습니다. 이 조상은 그들이 궁극적으로 새로운 광 수용체를 야기 손상된 영역에 마이그레이션으로 증식을 계속합니다. 현재, 두 널리 사용되는 LIRD 패러다임, 각각의 재생 반응 광수 손실 및 해당 차이의 정도를 변화 결과.가있다 더 많은 유전자와 약물 도구를 재생하는 동안 관심의 개별 유전자의 역할을 테스트 할 수있는만큼, 강력한 LIRD 패러다임을 개발할 필요가있다. 여기에서 우리는 LIRD 프로토콜을 설명하는 우리는 두 가지 이전에 설립 LIRD 기술의 사용을 결합했다하는로드와 콘 광수 모두의 광범위하고 일관된 손실됩니다. 게다가이 프로토콜은 LIRD 연구에 대한 흰둥이 배경에 관심 유전자 변형 라인을 유지하기 위해 필요가 없습니다 색소 동물에 사용하기 위해 확장 할 수 있습니다.
Introduction
빛에 의한 망막 변성 (LIRD)는 일반적으로 설치류 피해로드와 콘 광수에 제브라 피쉬 모두에 사용됩니다. 성인 제브라 피쉬에서 시세포 변성 뮐러 아교 세포를 다시 입력 세포주기에 트리거 및 과도 증폭 조상을 생산하고 있습니다. 이 조상은 그들이 궁극적으로 새로운 광 수용체를 야기 손상된 영역에 마이그레이션으로 증식을 계속합니다. 현재, 두 널리 사용되는 LIRD 패러다임, 각각의 재생 반응 광수 손실 및 해당 차이의 정도를 변화 결과.가있다 더 많은 유전자와 약물 도구를 재생하는 동안 관심의 개별 유전자의 역할을 테스트 할 수있는만큼, 강력한 LIRD 패러다임을 개발할 필요가있다. 여기에서 우리는 LIRD 프로토콜을 설명하는 우리는 두 가지 이전에 설립 LIRD 기술의 사용을 결합했다하는로드와 콘 광수 모두의 광범위하고 일관된 손실됩니다. 게다가이 프로토콜은 LIRD 연구에 대한 흰둥이 배경에 관심 유전자 변형 라인을 유지하기 위해 필요가 없습니다 색소 동물에 사용하기 위해 확장 할 수 있습니다.
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Protocol
이 프로토콜에 설명 된 모든 절차는 의학의 웨인 주립 대학 대학원에서 동물 사용위원회에 의해 승인되었습니다.
1. 어두운 적응
- 전송 어두운 인클로저에 일반 주택 시스템에서 10 성인 흰둥이 나 색소 물고기를 ~. 가능한 경우, 탱크를 통해 정상적인 물 흐름을 허용 zebrafish의 주택 모듈에 내장되어 어두운 인클로저를 사용합니다. (이러한 시스템을 사용할 수없는 경우, 산소와 생선을 공기에 쐬다을 확인하고, 완전히 어두운 인클로저에 물고기 탱크를 배치).
- 10 일 동안 어둠 속에서 물고기를 유지합니다. 동물을 먹이거나 어두운 상자에 새로운 물고기를 추가 할 때, 빛의 긴 기간에 물고기를 노출 피하기 위해 가능한 한 빨리 이동해야합니다.
2. 자외선 노출
- UV 소스의 전원이 꺼져 있는지 확인합니다. 형광 입체 현미경에서 UV 빛의 필라멘트를 제거합니다.
- 반전을 사용UV 필라멘트를위한 대와 같은 15cm 직경의 유리 페트리 접시 (또는 유사한 2cm 높이의 것). 실험실 벤치 페트리 접시 테이프.
- 테이프 UV 라이트 필라멘트 반전 페트리 접시의 상단입니다. 정렬되도록 페트리 접시 필라멘트 돌출의 끝 ~ 2mm.
- 250 ML 유리 비커를 구합니다. 바닥의 ½, 측면, 다시 알루미늄 호일로 비커, 호일의 "반짝"면이 비커의 내부를 직면해야하는 커버. 비커를 졸업 한 경우, 노출 된 비커의 명확한 절반을 남겨 호일로 비이커의 말로 절반을 커버.
- 물고기 설비 시스템 물 100 ㎖와 250 비이커를 입력합니다.
- 4 L 비이커에 250 ML의 비커를 놓습니다. 수위도 250 ML의 비커 100 ML 물 줄 때까지 물 4 L 비이커를 입력합니다.
- 250 비이커에 10 어두운 치료 동물의 최대를 추가합니다. 알루미늄 작은 조각에 250 ML의 비커 커버호일.
- UV 필라멘트 바로 옆에 전체 비커 장치를 놓습니다. 필라멘트 4 L 비커의 외부를 만지고 250 비이커의 노출 부분을 직면해야한다. 250 비이커는 4 L 비커의 바닥 중앙에 있는지 확인합니다.
- 노출되는 동물을 허용하지만, UV 필라멘트의 끝을 보는 모든 실험실 인력을 방지 4L 비커 뒤에 큰, 불투명 한 화면에 배치합니다. 경고 :이 장벽 UV 소스에 전원을 켜기 전에 위치에 있는지 확인하십시오.
- UV 전원을 켭니다. 30 분 타이머를 설정합니다. 어떤 필요에 경고 라벨이 의심 실험실 직원이 실수로 UV 방사선에 자신을 노출하지 않도록 배치합니다.
- 30 분 후, UV 전원을 차단합니다. 물고기와 250 비이커를 제거합니다. 참고 : UV 노출의 여러 라운드가 필요한 경우, 노출 프로토콜을 반복하기 전에 (~ 20 분) 아래로 전원을 식히십시오. t를 교체해야합니다그는 각각의 노출 신선한 시스템 물 물 100ml. 4 L 비이커에 물을 교체 할 필요가 없습니다.
3. 할로겐 램프 빛 노출
- 1.8 L 명확한 아크릴 수조로 250 비이커에서 물고기를 전송합니다. 오버 플로우 표시로 탱크를 채우십시오.
- 할로겐 램프 빛 치료 영역을 설정합니다. 철물점에서 네 개의 250 W의 할로겐 유틸리티 램프를 얻습니다. 같은 방향에있는 두 개의 램프를 직면하고, 중앙에 떨어져 29cm를 정렬합니다. 비슷한 방식으로 다른 두 개의 램프를 정렬합니다.
- 그들은 램프의 두 세트 사이에 ~ 73cm를 떠나, 램프의 첫 번째 집합을 직면되도록 램프의 두 번째 세트를 놓습니다. 이 29 X 73cm의 직사각형 모양의 조명 치료 영역을 만듭니다.
- 철물점에서 작은 팬을 구하십시오. 그냥 가벼운 치료 영역의 외부 램프의 두 집합 사이의 등거리 팬을 놓습니다.
- 의 중앙에 물이 가득 두 개의 1.8 L 탱크를 배치램프의 두 집합 사이의 등거리 빛 치료 영역. 램프와 탱크의 외부 벽 사이의 거리 ~ 29cm이어야한다. 참고 : 하나의 1.8 L의 탱크에 10 물고기를 치료하는 경우에도이 배열을 사용합니다. 두 탱크는 적절한 범위 내에서 각 탱크의 물 온도를 유지하기 위해 필요합니다.
- 각 탱크에 산소 통풍 장치를 놓습니다.
- 팬에 가장 가까운 끝 부분에 1 ~ 2 센티미터 간격을두고 명확한 아크릴 뚜껑 각 탱크를 포함한다. 는이 틈새에 공기를 불어되도록 팬을 정렬합니다. 탱크 중 하나 또는 둘 모두에 온도계를 놓습니다.
- 빛, 팬 및 에어 레이터의 전원을 켭니다. 최대 4 일을위한 가벼운 치료를 유지합니다. 이 동물에 더 많은 스트레스 수질과 결과에 영향을 미치기 때문에 물고기, 빛 치료 기간 동안 공급 할 수 없습니다.
- 매일 온도와 수위를 모니터링합니다. 30-33의 온도를 유지 ° C. 필요한 경우, 팬 속도 및 / 또는 탱크와 리 사이의 거리를 조정ghts.
- 필요에 따라, 일반적으로 일상적인 시스템 물 각 탱크 떨어져 꼭대기.
- 항상 거의 100 %의 생존율을 유지하기 위해 건강한 성인 zebrafish의를 (연령 일반적으로 6-9개월)를 사용합니다. 물고기 탱크에서 시체로 발견되는 경우, 즉시 제거하고 전체 탱크에 물을 교체합니다.
4. 조직 컬렉션
- 할로겐 빛 치료의 발병 후 48 시간이 치료 영역에서 물고기를 제거합니다.
- 신선한 에탄올 포름 알데히드 정착액 (1 일부로 37 % 포름 알데히드, 9 부품 100 % 에탄올)을 준비합니다.
- 2 페녹시 에탄올 (0.4 ㎎ / L)의 마취제 과다 복용으로 제브라 피쉬를 안락사.
- 종이 타월로 안락사 제브라 피쉬를 전송합니다. 곡선 집게를 사용하여 눈을 명백히.
- 4 ° C.에 정착하고 저장 O / N에 탈핵의 눈을 배치
- 눈을 Cryoprotect.
- 실온에서 30 분 동안 5 % 자당 1X PBS에 눈을 씻고, 다음으로 대체2 시간 동안 신선한 5 % 자당 1X PBS. 다음, 4 ℃에서 30 % 자당 1X PBS O / N에 눈을 씻어 4 ° C.에서 조직의 냉동 중간 30 % 자당 1X PBS O / N의 1:1 (등분)로 눈을 씻어
- -80에서 100 % 조직 동결 중간 저장소에 눈을 포함 ° C. 동양의 눈 있도록 조직의 cryosectioning 것은 지느러미 / 복부 축에서 수행됩니다.
- 유리 슬라이드에 동결 절단 (Cryosections) 조직과 장소. 55 ℃에서 2 시간 동안 따뜻한 슬라이드 -80 매장 슬라이드 ° C 또는 즉시 표준 면역을 수행합니다.
- 형광 현미경 40,51와 단면 조직 및 이미지의 표준 면역을 수행합니다.
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Representative Results
지금까지 설명한 가벼운 치료 프로토콜은 LIRD의 각 방법을 비교 하였다. 어두운 처리 성인 흰둥이 동물 (그림 3-5)에서 개별 가벼운 치료는 크게로드의 손실 (그림 3)와 콘 (그림 4) 광수습니다. 그러나 두 개별 치료는 주로 비교적 가벼운 치료 (그림 3과 4)에서 보호 복부 망막을 떠나, 망막 등의 반 광수 손상. 또한, 할로겐 라이트 치료에 비해 자외선 치료는 망막의 지느러미 절반 (각각 C와 4B 그림을 비교) 더 콘 광수를 손상. 주로 N을 제거, 망막에 걸쳐로드와 콘 광수 모두에게 상당히 큰 손실을 초래 UV 할로겐 빛 치료를 결합망막의 복부 반 (그림 3과 4)의 europrotection. 결합 된 가벼운 치료 프로토콜을 사용했을 때 각각의 LIRD 방법과 비교하여, 확산에 상응하는 증가는 복부 망막에서 관찰되었다 (그림 5).
색칠 한 동물은 빛을 흡수하고 광독성에서 광 수용체를 보호하는 망막 색소 상피로 인해 LIRD에 대한 저항력이다. 예상대로, 어두운 적응 색칠 한 동물은 혼자 할로겐 빛 치료 (그림 6B, J, 그리고 N) 거의 완전하게 저항했다. 우리는 48 시간 빛을 개시 한 후,로드 광수는 등의 망막에서 감소 된 것을 발견,하지만 복부 망막 (그림 6E, F, 및 Q). 콘 photoreceptor의 핵은 정상 숫자 (그림 6R)에 참석했다. 치료 망막, 할로겐 조명에 비해혼자 치료는 가벼운 증상 (그림의 7B 및 F) 후 뮐러 아교 세포의 증식에게 48 시간을 증가시키지 않았다. 흰둥이 동물, 단독으로 자외선 치료 등의 망막 (그림 3I 및 4I)의로드와 콘 광수 모두에 약간 큰 손상을 초래. 그러나 색소 동물, 단독으로 자외선 치료는 크게로드 또는 원뿔 세포 수를 (그림 6C, G, K, O, Q 및 R) 감소하지 않았다. 또한, 혼자 UV 치료는 색소 동물의 망막 등의 반 (그림 77)에 약한 재생 반응을 이끌어. 개인 LIRD 결과와는 대조적으로, UV 할로겐 라이트 치료를 결합하면 상당히 큰 시세포의 손상과 색소 동물의 재생 반응의 결과. 중요한 것은, 막대와 원뿔 모두 상당한 손실이 dorsa 모두에서 관찰되었다 L과 복부 망막 (그림 6D, H, L, P, Q 및 R). 결합 된 가벼운 치료 프로토콜은 (그림 5) 사용했을 때 치료 개별 LIRD 방법에 비해, 확산에 상응하는 증가는 망막의 지느러미와 복부 두 반쪽에서 관찰되었다.
그림 1. 사진은 할로겐 빛 치료 설정을 묘사 한 그림입니다. 개의 250 W의 할로겐 램프 두 세트의 두 분명 1.8 L 아크릴 탱크의 양쪽에 29cm를 간격 하였다. 빛을 방해하지로 통풍 및 튜브 그렇게 배치했다. 탱크의 뚜껑은 팬의 공기 흐름을 허용하는 2cm를 금 하였다. 온도계 모니터링 할 온도 탱크 중 하나에 배치되었다.arget = "_blank"> 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2. 사진은 자외선 치료 설정을 묘사. 형광 입체 현미경에서 UV 광원 안전하게 ~ 2cm 벤치 탑 오프 유리 페트리 접시에 고정되었다. 부분적으로 호일에 싸서 250 ML 유리 비커는, 채워진 된 시스템 물 100 mL 것입니다. 물고기 250 비이커 내부에 배치되었다. 250 ML의 비커 250 밀리리터 비이커에 물 수준으로 시스템 물이 가득했다 4 L 비커, 내부 중심에 있었다. 4 L 비이커는 250 비이커를 중심으로 빛의 필라멘트에 인접 배치했다. 대형 불투명 방패는 전체 설치 주위에 배치되었다. 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
그림 3. 다양한 빛을 손상 패러다임에 따라 흰둥이 zebrafish에있는 막대 광수 손실 성인 전이 (NRD : EGFP)에서 망막 섹션을 참조하십시오. / ALB는로드 광수 지느러미의 밀도 (녹색) (AD)와 복부를 보여 GFP와 immunolabeled (EH) 망막의 절반 가벼운 증상 (0 시간), EGFP 양성 막대 광수 핵 (ONL) 및 외부 세그먼트 (ROS)에 앞서. A, E)는 시각이 될 수 있습니다. B, F) 48 시간 다음과 같은 할로겐 발병 (HLT), 절단 ROS에 크게 적은로드 핵은 (I) 지느러미에 존재하지만 복부 망막. CG) 48 시간에서 자외선 노출 (hpUV) 30 분 후, 훨씬 적은로드 핵은 0 시간에 비해 지느러미와 복부 망막에 존재 (C, G < / strong>을),하지만 48 HLT먼트 (G, I). DH) 결합 된 가벼운 치료의 48 시간 다음과 같은 증상 (할로겐 처리 한 다음 30 분 UV 노출,로드 photoreceptor의 핵의 상당한 손실뿐만 아니라 UV +48 HLT), 거의 ROS는 지느러미 또는 복부 망막에 존재 없었다 (I) 중앙 지느러미 또는 복부 망막의 300 μm의를 통해로드 광수 핵의. I) 정량화. "48"HLT 48 hpUV 다른 용 "C"다른 0 시간, "B"와 다른 점 : 인원이 많은 그룹 사이에 유의 한 차이 (p ≤ 0.05)로 묘사된다. 패널의 스케일 바는 50 μm의를 나타냅니다 및 패널 AH에 적용됩니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
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그림 4. 다양한 빛을 손상 패러다임에 따라 흰둥이 zebrafish에있는 더블 콘의 손실. 망막 섹션은 성인 흰둥이 제브라 피쉬에서의 빛의 각에 따라 지느러미 더블 콘 (금) (AD)와 망막의 복부 (EH) 반쪽을 보여 ZPR-1 immunolabeled 손상 패러다임 (48 HLT, 48 hpUV 및 UV +48 HLT). A, E) 0 인사, 더블 콘 핵에서는 지느러미와 복부 망막에 존재했다. B, F) 48 HLT에서 훨씬 적은 수의 두 배 콘에 참석했다 복부 망막 전용 (F, I). 변경이 복부 망막 (G)에서 관찰 동안 48 hpUV, 훨씬 적은 수의 두 배 콘 (I)와 파편의 큰 금액 CG는) 만 등의 망막 (C)에 존재했다. UV +48 HLT, 훨씬 적은 더블 콘에서 DH)S (I)와 아주 작은 파편 지느러미와 복부 망막에 존재했다. I 중앙 지느러미 또는 복부 망막의 300 μm의를 통해 두 배 콘)의 정량화. 그룹 사이에 유의 한 차이 (p ≤ 0.05) "을"48 HLT 48 hpUV 다른 용 "C"다른 0 시간, "B"는 다른 용으로 그려져있다. 패널의 스케일 바는 100 μm의를 나타냅니다 및 패널 AH에 적용됩니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
그림 5. 변화는 다양한 빛을 손상 패러다임에 따라 증식 반응이다. PCNA와 immunolabeled 성인 흰둥이 제브라 피쉬에서 망막 섹션에서 세포의 증식 (빨간색)을 보여지느러미 (AD)와 복부가 (EH) 0 시간에서 가벼운 손상 패러다임의 각 (48 HLT, 48 hpUV 및 UV +48 HLT). AE)에 따라 망막의 반쪽 확산은 내부 핵 계층 (결석 INL). B, F) 48 HLT에서 하나의 전구 세포 등의 망막에 걸쳐 INL과 복부 망막의 작은 부분에 존재했다. CG) 48 hpUV에서 전구 세포의 열, 등의 망막에 존재 단 하나의 전구 세포가 복부 망막의 작은 부분에 존재하는 동안. D, H) UV +48 HLT에서 전구 세포의 큰 열은 지느러미와 복부 망막에 걸쳐 존재했다. 패널의 스케일 바는 100 μm의를 나타냅니다 및 패널 AH에 적용됩니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
그림 6. 로드 및 다양한 빛을 손상 패러다임에 따라 색소 제브라 피쉬 콘 광수 손실 성인 야생형 (AB) 제브라 피쉬에서 망막 섹션에서는 모든 핵 (AP, 파란색)을 보여 TO-PRO-3로 염색.와 막대를 표시 할 ZPR-3와 immunolabeled 외부 세그먼트 (AH, 마젠타 색) 또는 더블 콘 (IP; 금)까지 ZPR-1 등의 (AD, IJ)와 복부 (EH, MP)에서의 가벼운 손상 패러다임의 다음 각 망막 (48 HLT, 48의 절반 hpUV 및 UV +48 HLT). AH)로드 photoreceptor의 핵에있는 중요한 감소는 UV +48 HLT (D, H, Q) 48 HLT (B, Q)에서와 지느러미와 복부 망막 등의 망막에 존재 . IP) 콘 핵은 비대했지만 난 N 48 hpUV (K), 더블 콘 핵 유의 한 감소의 지느러미 망막는 48 HLT 또는 48 hpUV (JK, NO, R)에 참석했다. 콘 핵에 상당한 감소는 UV +48 HLT (L, P, R)에서 지느러미와 복부 망막에 존재했다. QR)로드 광수의 정량화와 중앙 지느러미 또는 복부 망막의 300 μm의를 통해 더블 콘 핵. 그룹 사이에 유의 한 차이 (p ≤ 0.05) "을"48 HLT 48 hpUV 다른 용 "C"다른 0 시간, "B"는 다른 용으로 그려져있다. 패널의 스케일 바는 200 μm의를 나타냅니다 및 패널 AH에 적용됩니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
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그림 7. 지느러미 (AD)와 복부 (EH)에서 세포 증식 (적색)를 보여 PCNA와 immunolabeled 성인 야생형 (AB) 제브라 피쉬의 다양한 빛을 손상 패러다임. 망막 섹션에 따라 색소 제브라 피쉬의 증식 반응은 각각 다음과 망막의 절반 가벼운 손상 패러다임 (48 HLT, 48 hpUV 및 UV +48 HLT). AD) 등의 망막에서, 몇 단일 전구 세포는 48 HLT 48 hpUV (B, C)의 INL에 존재하는 동안 열 전구 세포의 UV +48 HLT (D)에 참석했다. EH) 복부 망막에서 증식 변경이 전구 세포의 실시간 열이 존재하는 UV +48 HLT (H)를 제외 관찰되지 않았다. 패널의 스케일 바는 100 μm의를 나타냅니다 및 패널 AH에 적용됩니다.7/51017fig7highres.jpg "대상 ="_blank "> 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
여기에서 우리는 광범위한 광수 손실과 강력한 재생 반응의 지속적인 밝은 빛에 노출 결과로 짧은 UV 노출을 결합하는 것을 보여줍니다. 개인 LIRD 방법에 비해이 결합 된 방법은 또한 망막의 두 반쪽 막대와 원뿔 모두에 손상을 입힐 수있는 가장 효과적인 프로토콜입니다. 중요한 것은,이 치료는 색소 동물뿐만 아니라 흰둥이 동물 효과적입니다.
우리는 더 광범위하고 일관된 손상 결합 된 프로토콜 결과는 개별 LIRD 방법에 비해 증거를 제공하지만, 과학적 고려 LIRD 패러다임을 선택하기 전에 논의해야합니다. 우리의 데이터는 전체 망막 조직이 (즉, 단백질 체학, 실시간 PCR) 분석을 위해 수집 될 때 결합 방법을 이용해야하는 것이 좋습니다. 우리는 결합 방법은 할로겐 노출 뒤에 큰 병변의 크기, 그리고 마지막으로 UV 노출이 있었다는 것을 것을을 발견했습니다. 우리는 제안차동 막대와 원뿔 재생에 영향을 미칠 수있는 유전자 또는 경로를 조사 할 때 결합 방법도 사용합니다. 이 실용적인 이유로 할 수없는 경우에, 우리의 데이터 분석은 중앙 지느러미 망막에 국한되어있는 경우 UV 노출, 이러한 연구의 다음 가장 좋은 방법입니다하는 것이 좋습니다.
적절한 LIRD 방법을 선택할 때 실제적인 고려도 보증됩니다. 첫 번째 문제는 필요한 장비의 비용이다. 모든 프로토콜은 암순응 (데이터 표시되지 않음)의 장기간을 필요로합니다. 제브라 피쉬의 주택 모듈에 내장되어 독립적 인 다크 인클로저가 필요 매우 편리하지만,하지 않습니다. 주의를 테이프로 이동하거나 솔기를 밀봉하는 경우에도 판지 상자, 사용할 수, 그리고 물 매개 변수가 모니터링됩니다. 할로겐 계 LIRD 방법은 매우 경제적이고 편리하다. 모든 항목은 로컬 하드웨어 상점에서 $ 100 이하 미국 구입, 단지 몇 분 정도 걸립니다 설정할 수 있습니다. 티그는이 방법의 유일한 실질적인 단점은 빛을 치료 같은 방에서 작업의 불편 함이다. 사일 동안 지속적으로 실행하는 경우 등은 열을 좋은 금액을 생성하고 빛의 강도는 혼란과 인간의 비전 잠재적으로 손상을 둘 수 있습니다. UV와 결합 된 방법은 모든 실험실 사용할 수없는 UV 소스를 필요로합니다. 또한, 큰 관심은 자외선 치료를 수행 할 때 실험실 구성원의 안전을 보장하기 위해주의해야한다. 그것은 격리 된 공간에서 할로겐 조명기구를 가지고하는 것이 더 편리 동안 따라서, UV 치료의 안전에 대한 우려는 공간을 필요로. 빛을 치료에 사용되는 UV 소스는 일반적으로 "현미경 실"또는 이미징 코어에 보관 형광 현미경에 사용 된 경우에는 추가로 불편이됩니다. 제어 및 동물 실험 그룹 UV 치료의 여러 라운드를 수행하면 내선에 대한 현미경 실을 종료 할거 것이다시간 ensive 길이입니다.
아마도 결합 된 방법을 사용하는 가장 큰 장점은 색소 동물 망막 재생 연구를 수행 할 수있는 능력이다. 우리는 표시하는 막대와 지느러미와 복부 망막에있는 원추의 상당한 손실도 각 방법의 결과. 반면, 광범위한로드와 색칠 흰둥이 동물 모두에서 콘의 손실과 비슷한 수준의 결합 LIRD 패러다임 결과. 그것은 망막 재생 연구에 흰둥이 배경에 관심 유전자 변형 라인을 생성하고 유지 관리 할 필요가 없습니다으로 색칠 한 동물이 LIRD 방법을 적용 할 수있는 능력, 연구원 중요한 공간, 시간, 일당 동물 관리 비용 (있는 경우)를 저장 . 함께, 우리는 과학적이고 실용적인 장점이 개선 LIRD 방법의 잠재적 인 불편을 능가 느낀다.
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Disclosures
저자는 공개 아무것도 없어.
Acknowledgments
저자는 훌륭한 물고기 사육 및 기술 지원 시샤 루오에게 감사의 말씀을 전합니다. 이 작품은 건강 보조금 R21EY019401 (RT)와 P30EY04068 (RT)의 국립 연구소에 의해 자금 지원, 그리고 웨인 주립 대학 안과학 교실에 실명을 방지하는 연구에서 제한 교부금 등, RT에 기금을 시작했습니다. JT는 웨인 주립 대학 대학원에서 제공하는 토마스 C. 럼블 원정대에 의해 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| UV light source | Leica | EL600 | |
| Glass Petri dish (150 x 20 mm) | Sigma-Aldrich/Pyrex | CLS3160152BO | |
| 250 ml glass beaker | Sigma-Aldrich/Pyrex | CLS1000250 | |
| 4 L glass beaker | Sigma-Aldrich/Pyrex | CLS10004L | |
| Aluminum foil | Fisher | 01-213-105 | |
| 250 W halogen lamps | Workforce | 265-669 | |
| 1.8 L clear acrylic tanks | Aquaneering | ZT180T | |
| 1.8 L clear acrylic tank lids | Aquaneering | ZT180LCL | |
| Fan | Honeywell | HT-900 | |
| Aerator | Tetra | 77853-900 | |
| Thermometer | Cole-Parmer | YO-08008-58 | |
| Bent forceps (5/45) | World Precision Instruments | 504155 |
References
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