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Medicine

Erkennen von Fehlbildungen in Aderhautgefäßsystem in einem Maus-Modell der Altersbedingte Makuladegeneration durch Zeitverlauf Indocyaningrün-Angiographie

Published: February 19, 2014 doi: 10.3791/51061

Summary

Indocyaningrün-Angiographie (ICGA oder) durch Schwanzveneninjektion durchgeführt, bietet hochwertige ICGA Zeitverlauf Bilder, Anomalien in der Maus Aderhaut zu charakterisieren.

Abstract

Indocyaningrün-Angiographie (oder ICGA) ist eine Technik, die von Augenärzten durchgeführt, um Anomalien der Aderhaut und Netzhautgefäß verschiedener Augenkrankheiten, wie altersbedingte Makula-Degeneration (AMD) zu diagnostizieren. ICGA ist besonders nützlich, um das hintere Bild choroidalen Gefäßsystem des Auges aufgrund ihrer Eignung zur Durchdringung durch die pigmentierte Schicht mit Infrarotspektrum. ICGA Zeitverlauf kann in frühe, mittlere und späte Phasen unterteilt werden. Die drei Phasen liefern wertvolle Informationen über die Pathologie von Augenproblemen. Obwohl der Zeitverlauf ICGA durch intravenöse (IV)-Injektion ist weit verbreitet in der Klinik für die Diagnose und Behandlung von Aderhautproblemen eingesetzt, ICGA durch intraperitoneale Injektion (IP) wird häufig in Tierversuchen eingesetzt. Hier zeigten wir die Technik, um hochauflösende ICGA Zeitverlauf Bilder in Mäusen durch Schwanzveneninjektion und konfokale Scanning-Laser-Ophthalmoskopie erhalten. Wir nutzten diese Technik, um das Bild choroidalen legen in einem Mausmodell der altersbedingten Makuladegeneration. Obwohl es viel einfacher, ICG zur Maus Vaskulatur von IP einzuführen, zeigen unsere Daten, dass es schwierig ist, reproduzierbare ICGA Zeitverlaufsbildern von IP-ICGA erhalten. Im Gegensatz dazu ICGA über Schwanzveneninjektion bietet hochwertige ICGA Zeitverlauf Bilder vergleichbar mit Studien am Menschen. Darüber hinaus haben wir gezeigt, dass ICGA geführt auf Albinomäuse gibt klarere Bilder von choroidalen Gefäßen als pigmentierter Mäuse durchgeführt. Wir schlagen vor, dass die Zeit-Gänge-IV-ICGA sollte eine gängige Praxis in AMD Forschung auf der Grundlage von Tiermodellen zu werden.

Introduction

Indocyaningrün-Angiographie (ICGA) ist ein diagnostischer Test zur Imageprobleme, die Blutgefäße in den Augen stehen. Das Absorptionsspektrum der ICG Bereiche 790-805 nm, während das Emissionsspektrum im Bereich von 770 bis 880 nm mit der Peakemission bei 835 nm 1. Dies unterscheidet sich von den anderen bekannten Farbstoff Fluorescein-Natrium, dessen Spektrum liegt im sichtbaren Bereich. Das Infrarotspektrum ermöglicht ICG durch retinale Pigmentepithel (RPE), serosanguineous Flüssigkeit und Fettausscheidungen, die alle leicht zu blockieren Visualisierung durch Natrium-Fluorescein-basierte Fluoreszenzangiographie (FA) zu durchdringen. ICG ist zu 98% an Proteine ​​gebunden im Gefäßsystem, was zu weniger Extravasation, so dass verbesserte Bildgebung von Aderhautgefäße und choroidalen Läsionen 1,2. ICGA ist fast die einzige Wahl, um choroidalen Gefäßsystem, die hinter RPE visualisieren. Abbildung 1 zeigt den Vergleich der ICGA und FA in bildgebenden Gefäßsystem in der Maus die Augen. FA kann be zur Abbildung der Netzhautgefäßsystem gut, aber nicht der choroidalen Gefäßsystem. Im Gegensatz dazu können die Bild ICGA sowohl retinalen und choroidalen Gefäßsystem verwendet werden. ICGA ist mit hochauflösenden Digital-Imaging-Systeme oder Scanning-Laser-Ophthalmoskop (SLO) zusammen mit infrarotempfindlichen Videokameras, die wir in dieser Studie verwenden durchgeführt.

In der Klinik hat ICGA bei der Diagnose eine Reihe von chorioretinale Störungen mit Beteiligung des Aderhautgefäßsystem einschließlich polypoidale choroidalen Vaskulopathie (PCV), Netzhaut angiomatöse Proliferation (RAP), angioiden Streifen, vitelliformen Makuladystrophie, Zentral serosa, choroidalen Hämangiom, Blutungen der Netzhaut empfohlen arteriolar Makroaneurysmen, choroidale Tumoren und bestimmte Formen von Uveitis posterior 1,3. Die Kombination von ICGA mit FA und Optische Kohärenztomographie (OCT) bieten leistungsstarke Tools für die Ärzte in der Diagnose und Behandlung der exsudativen altersbedingten Makula-Degeneration (AMD) 10.04. ICGA ist besonders nützlich für die Diagnose von Bedingungen, die die Aderhaut. In der Tat ist ICGA als der Goldstandard für die Diagnose von PCV, eine Variante der exsudativen AMD 11-13. PCV wird von einem Netzwerk von verzweigenden Gefäßen mit endständigen polypoidal Streckungen in der choroidalen Gefäß 11-13 gekennzeichnet. PCV wird häufig mit rezidivierenden serosanguineous Abteilungen der RPE und Netzhaut mit Leck und Blutungen aus den Komponenten polypoidal 11,14,15 verbunden. Vor kurzem berichteten wir die Erzeugung des ersten PCV Tiermodell durch menschliche HTRA1, ein multifunktionales Serinprotease transgen exprimiert, in Maus retinalen Pigmentepithel (RPE) 16. Wir haben gezeigt, dass eine erhöhte HTRA1 induzierten charakteristischen Merkmale der PCV, z. B. polypoidal Läsionen.

Hier zeigten wir den Einsatz von Zeitverlauf ICGA durch Schwanzveneninjektion in die Forschung mit unserem AMD HTRA1 Mausmodell. Unsere Daten legen nahe, dassIV-ICGA überlegen ist IP (oder subkutan (SC))-ICGA, die derzeit im Bereich 17,18 für die Charakterisierung von Läsionen in der Aderhaut verwendet werden.

Erklärung zum Tierforschung

Tierversuche wurden nach den Protokollen, die von Institutional Animal Care und Verwenden Committee (IACUC) genehmigt durchgeführt und wurden in Übereinstimmung mit der ARVO Erklärung für die Nutzung von Tieren in Ophthalmic und Vision Research durchgeführt.

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Protocol

1. Vorbereitung der Instrumente

  1. Das Verfahren wird in einem Behandlungsraum in einer Tiereinrichtung durchgeführt wird.
  2. Tragen Gesichtsmasken, Haarhauben, OP-Kittel, sterile Abdeckungen Fuß-und Handschuhe vor dem Beginn des Experiments.
  3. Hitze Wasser in einem Becher auf ~ 40 ° C auf einer Heizplatte.
  4. Legen Sie eine sterile blauen Pad auf einem Heizkissen, die später verwendet werden, um die Körpertemperatur der Maus während der Bildgebung halten wird. Schalten Sie das Heizkissen.
  5. Bereiten Sie die Imaging-System:
    1. Entfernen Sie die Staubschutzabdeckung und schalten Sie den Laser.
    2. Nehmen Sie die 55 °-Objektiv und montieren sie auf die Maschine.
    3. Öffnen Sie die Imaging-Software aus dem Computer und geben Sie die Daten von der Maus für die Bildgebung unter Blatt eines neuen Patienten (zB Genotyp, Alter, etc.). Unter "Gerätetyp", wählen Sie Infrarot (IR)-Modus.

Anmerkung: Es wurde berichtet, dass die Verwendung of eine externe Doppel asphärische Linse können die Bildqualität zu verbessern 17-20 obwohl wir haben kein Problem bei der Beschaffung von qualitativ hochwertigen Bildern von IV-ICGA ohne externe Linsen (siehe repräsentative Ergebnisse, Abbildungen 1-4).

2. Schwanzveneninjektion von ICGA

  1. Dilate Maus Augen mit 1% Tropicamide Augenlösung und warten 5 Minuten.
  2. Wiegen Sie die Maus, um die Menge der Narkose (Ketamin / Xylazin / Acepromazine 65-100/10-20/1-3 mg / kg) benötigt bestimmen.
  3. Abrufen einer sterilen 1-ml-Spritze mit einer 32 G-Nadel. Spritzen Sie die Maus intraperitoneal mit Anästhetika (13 mg / ml Ketamin, 2,6 mg / ml Xylazin, 0,3 mg / ml Acepromazine in sterilem PBS). Warten Sie, bis die Maus vollständig betäubt wird (~ 5 min).
  4. Platzieren Sie die Maus Schwanz in 40 ° C warmem Wasser, um Vasodilatation der Vene führen.
  5. Abrufen einer 1 ml-Spritze mit einer 32 G-Nadel. Ziehen Sie die gewünschte Menge an ICG, typischerweise 50 &mgr; l 1 mg / ml ICG, die steril mit einem 0,2 &mgr; m-Spritzenfilter filtriert, in ein steriles Röhrchen, für eine 25 g-Maus (2 mg / kg) ist. Achten Sie darauf, um die Luft in die Spritze einzuführen.
  6. Wischen Sie den Schwanz mit einem Alkoholtupfer, um den Bereich injiziert werden sterilisieren.
  7. Halten den Schwanz mit einer Hand, so daß die laterale Schwanzvene steigend. Mit der Abschrägung der Nadel nach oben, die Nadel zu injizieren ~ 2 mm in die Vene zu einem minimalen Winkel. Achten Sie darauf, um die Vene zu perforieren. Zeichnen Sie wieder auf die Spritze leicht und suchen nach Spuren des Blutflusses in die Nadel-Hub, der anzeigt, dass die Nadel wurde erfolgreich in die Vene eingeführt.
  8. Langsam spritzen ICG in die Vene. Es sollte minimal sein Widerstand bei der Injektion. Entfernen Sie die Nadel und wenden Sie einen Alkoholtupfer direkt auf die Injektionsstelle für ca. 5-10 Sekunden, um Blutungen zu stoppen. Die Maus ist dann bereit für die Bildgebung. Um die Frühphase (0-4 min nach der Injektion) zu fangen, ist es essential für Bild mit der Maus schnell.

Hinweis: Mouse Augen können leicht trocken und kann Katarakt unter Narkose zu entwickeln. Es ist wichtig, das Auge feucht indem sterile PBS während des Verfahrens zu halten. Wischen Sie überschüssiges PBS mit einem sterilen Wattestäbchen, bevor ICGA Aufnahme. Andere Labors haben eine Kontaktlinse eingesetzt, um Austrocknung der Hornhaut 17-20 vermeiden.

3. ICG-Angiographie

  1. Start, um Bilder aufzunehmen 30-40 sec nach ICG-Injektion, die die Erfassung der frühen Phase der Aderhautfüllung ermöglicht, bis Netzhaut-und Aderhautkreisläufe sind bei maximaler Helligkeit (0-4 min). Die Netzhautgefäßsystem wird am besten bei Fokus ~ 35-45 Dioptrien und Aderhautgefäßsystem wird bei 10-15 Dioptrien sichtbar visualisiert.

    Hinweis: Während der ersten Untersuchung eines Tiermodells, wird empfohlen, um Bilder aus allen Winkeln (nasal, temporal, dorsalen und ventralen) zu erfassen, um alle möglichen abno identifizierenrmalities in das Gefäßsystem. Während der frühen Phase sind die beiden mittleren und großen choroidalen Arterien und Venen gut visualisiert. Im Tiermodell in diesem Protokoll verwendet wird, kann choroidalen Läsionen (zB polypoidal Streckungen) beginnen, 1 min in der frühen Phase angezeigt.
  2. Stellen Sie die Bildschärfe über das Gefäßsystem. Steuerung für Helligkeit und Fokus mit dem Steuermodul und Fokusknopf auf. Diese Werte sind digital einstellbar und leicht konstant gehalten. Den Abstand von der Maus Auge des Kameraobjektivs konstant mit der hier beschriebenen Technik die Bildqualität zu gewährleisten, ist reproduzierbar.

    Hinweis: Da das Gerät nur Bild ein Teil des hinteren Augen, versuchen wir, den Fokus, Helligkeit und den Abstand zwischen Linse und Auge der Maus konstant zu halten, da wir das gesamte Bild hinteren Augen aus verschiedenen Blickwinkeln. Der Schlüssel dazu ist, um die kreisförmige Lumineszenz durch die ICG durch das Auge mit dem Feld auszurichten vie emittiertenw der Kamera. Dies wird durch das von links nach rechts durchgeführt, oben und unten, und in-und aus Einstellungen der Kameraposition, bis das gesamte Bild hat keine dunklen Stellen. Wenn die Lumineszenz und das Sichtfeld der Kamera aufgereiht sind, wird der Abstand vom Auge auf die Linse reproduzierbar sein für den nächsten Satz von Bildern als auch in einem optimalen Abstand zur Bildqualität.
  3. Sobald das Gefäßsystem im Fokus ist, erfassen die Bildrahmen durch Drücken der runden schwarzen Knopf auf der Erfassungsmodul. Die runde schwarze Taste kann auch verwendet werden, zu reduzieren oder zu verbessern das Signal des ICG für beste Bildqualität werden.
  4. Bestimmen Sie den optimalen Blickwinkel und Fokussierung Tiefe Bild choroidalen Läsionen. Es ist wichtig, die Position des Auges, die Fokussierungstiefe und andere Geräteeinstellungen für den gesamten Zeitverlauf ICGA fixiert zu halten. Die Bilder werden durch Drücken erwerben Taste auf dem Touch-Screen-Panel des Erfassungsmodul gespeichert.
  5. Erwerben Sie Bilder in der mittleren Phase bei 15.06 min achternäh Injektion.

    Hinweis: Sowohl die Aderhaut und Netzhautgefäße werden weniger deutlich. Aderhautgefäßsystem erscheint als diffuse Fluoreszenz. Aderhautläsionen aufweisen Hyper entstehen im Gegensatz zu den Fading umgebenden normalen Hintergrundfluoreszenz.
  6. Erwerben Sie Bilder in der Spätphase bei 17-25 Minuten nach der Injektion.

    Hinweis: Hyperfluoreszenz verblasst. Beide Aderhaut-und Netzhautgefäße sind nicht mehr sichtbar. Der Sehnervenkopf wird schwarz. Hyperfluoreszente choroidalen Läsionen maximale Kontrast mit dem Verblassen Hintergrund.
  7. Nach Abschluss der Übernahme von Bildern, gelten eine klare Schmiermittel Augen-Gel auf Maus Augen und lassen Sie die Maus auf einem Heizkissen für die Verwertung.
  8. Zurück Mäuse in ihre Käfige und Haltebereich. Export Bilder als Tiff oder JPEG-Dateien zur weiteren Analyse.

Anmerkung: Der Zeitpunkt für jede Phase ist nicht absolut. Wir fanden, dass der Zeitpunkt der each Phase kann je nach der Menge des eingespritzten ICG ändern. Mehr ICG neigt dazu, jede Phase zu verlängern. Der beste Weg, um eine Phase zu definieren, ist nach den wichtigsten Funktionen der einzelnen oben aufgeführten Phase.

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Representative Results

Wir führten ICGA Zeitverlauf in HTRA1 transgenen Mäusen und Kontroll WT Wurfgeschwistern, die beide auf der CD1 Hintergrund. Der Albino CD1 Hintergrund wurde ausgewählt, um Indocyaningrün-Angiographie (ICGA)-Bildgebung (siehe Diskussion) zu erleichtern. Einige Aneurysma wie Streckungen begann in der frühen Phase in der HTRA1 Maus erscheinen (Abbildung 2, eine rote Pfeil zeigt die Erweiterung an der Spitze eines Schiffes und ein roter Kreis zeigt eine Läsion polypoidal Cluster-Typ). Aderhautgefäße sind deutlich sichtbar sowohl in WT-und HTRA1 Mäusen während dieser frühen Fill-in-Phase des ICG-Farbstoff. In der mittleren Phase, die Hyperfluoreszenzen in der frühen Phase wurde klarer und Läsionen in Erscheinung zu treten, während die Aderhautgefäße begonnen, in der HTRA1 Maus verblassen (gelbe Kreise zeigen das Aussehen von mehr Läsionen). In der Spätphase, choroidalen Läsionen der HTRA1 Maus wurde mehr "distinct", wie alle Schiffe verschwand in den Hintergrund. Der Sehnerv Kopf war sowohl in WT-und HTRA1 Mäuse (grüne Pfeile) dunkel. Die wichtigsten Merkmale der drei Phasen sind ähnlich wie die ICGA Zeitverlauf in der menschlichen AMD-Patienten (Frühphase, 0-3 min; mittleren Phase, 5-15 min; Spätphase, 18-22 min) ein.

Figur 1
Fig. 1 ist. Vergleich von FA und ICGA in bildgebenden Maus Netzhaut-und Aderhautgefäßsystem. CD1 WT-Mäuse wurden durch IV und IV-FA-ICGA mit einem Multi-Modalität Imaging System abgebildet. Netzhautgefäße können sowohl in FA und ICGA gesehen werden. Aderhautgefäße kann nur in ICGA gesehen werden. Klicken Sie hier für eine größere Ansicht .

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2. ICGA Zeitverlauf der HTRA1 transgenen Mäusen durch IV-Injektion. Ein WT-Steuerung und ein HTRA1 transgenen Maus wurden von ICGA (mit Schwanzveneninjektion) abgebildet. Ein roter Pfeil zeigt die Erweiterung an der Spitze eines Schiffes (Einzel Polypen) und ein roter Kreis zeigt eine Läsion polypoidal Cluster-Typ, der in der erschienen frühen Phase. Gelbe Kreise zeigen mehrere Läsionen, die in der mittleren Phase erschien. Grüne Pfeile zeigen auf die dunkle Sehnervenkopf sowohl in WT-und HTRA1 Mäusen. Beachten Sie, dass polypoidal Läsionen erscheinen in der frühen Phase der ICGA und werden deutlicher in der mittleren Phase, wie in Studien am Menschen 21-24. Diskrete dot Läsionen in der mittleren Phase und werden in den späten Phasen klar (z. B. der größte gelbe Kreis, der drei Punkt Läsionen). Klicken Sie hier für eine größere Ansicht . Fig. 3
3. ICGA Zeitverlauf HTRA1 transgene Mäuse durch ip-Injektion. HTRA1 transgene Mäuse wurden abgebildet 5, 12 und 20 min nach der IP-Injektion von ICG. Die Bilder der zwei Plattenreihen wurden aus zwei verschiedenen HTRA1 transgenen Mäusen entnommen. Beachten Sie, dass die Aderhautgefäßsystem ist meist unsichtbar sogar 5 Minuten nach der Injektion (12 min für die Maus in den unteren Platten). Klicken Sie hier für eine größere Ansicht .

Fig. 4
4. ICGA Zeitverlauf eines Pigmentsed (C57Bl6) und ein Albino (CD1) Maus durch IV-Injektion. Beachten Sie den Unterschied in der Klarheit der choroidalen Gefäßsystem zwischen pigmentierten und Albino-Mäusen. Klicken Sie hier für eine größere Ansicht .

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Discussion

In dieser Studie haben wir gezeigt, die Verwendung von ICGA für Bild choroidalen Läsionen in HTRA1 transgenen Mäusen. Die Eigenschaften der frühen, mittleren und späten Phasen der ICGA in unserem Mausmodell entsprechen den Zeitverlauf auch in Studien am Menschen ein. Dies ist wichtig, um bessere Vergleiche zwischen der menschlichen Pathologie und Tier Phänotypen, die von unschätzbarem Wert für die Erforschung der pathophysiologischen Mechanismen und Behandlungsstrategien von Bedingungen, die der Aderhaut wie AMD Zusammenhang sind zu machen.

Wir zuerst ausgeführt ICGA in Mäusen durch IP-Injektion und festgestellt, dass der Zeitverlauf war sehr unterschiedlich aus Maus-Maus, vermutlich aufgrund der variablen Absorption des Farbstoffes ICG aus der Körperhöhle in das Abdomen (Abbildung 3). Dies macht es schwierig, mit menschlichen Studien durch IV-Injektion durchgeführt vergleichen. Darüber hinaus sind die angiographische Merkmale verschiedener Phasen IV-ICGA sehr nützlich zur Charakterisierung verschiedener Typen von Aderhautläsionen in Tier Modelle. Die meisten Menschen wählen, um IV-Injektion (zB im FA) für Mäuse zu vermeiden, aufgrund der technischen Herausforderung der Durchführung Schwanzveneninjektion (Mausschwanzvenen sind winzig). Allerdings ist der Aufwand gut ausgegeben Berücksichtigung der reproduzierbaren Art dieser Technik und die Menge der erhaltenen Informationen. Sobald wir die Technik der Schwanzveneninjektion beherrschen, sind die anderen Schritte ziemlich ähnlich IP-ICGA. Es lohnt sich zu erwähnen, dass man alles bekommen, was vorher, um die sehr kurze Anfangsphase (0-4 min) zu erfassen bereit (zB die Imaging System) hat. Wir verglichen IP-ICGA vs IV-ICGA für das Studium verschiedener HTRA1 transgenen Mäusen. Wir haben ~ 100 Mäuse für jede Methode. Die Schlussfolgerung ist, dass IV-ICGA überlegen ist IP-ICGA zur Charakterisierung von Läsionen in der Aderhaut. Zeit-Gänge-IV-ICGA hat sich unsere gängige Praxis, AMD Mausmodellen zu untersuchen. Aus dem gleichen Grund, schlagen wir vor, dass Forscher betrachten die Durchführung IV-FA für Tierforschung.

t "> Andere als die Einspritz Weg, bemerkten wir, dass Pigmentfarbe auch die Qualität der ICGA beeinflusst. Frühere Studien berichteten auch, diese" Pigmentierung Effekt "18,25., ist jedoch keine Informationen über den Einfluss der Fellfarbe auf die verschiedenen Phasen der ICGA. Wir verglichen ICGA zwischen pigmentierten Mäusen (C57Bl6) und Albino-Mäusen (CD1) durch Zeitverlauf IV-ICGA. Big Aderhautgefäße erscheinen unscharf und weniger deutlich, während die kleinen Schiffe sind schwer zu finden in C57Bl6 Mäuse, die in scharfem ist Im Gegensatz zu den viel schärfere Bilder von kleinen und großen Aderhautgefäße in CD1-Mäusen (Abbildung 4). Der größte Unterschied wurde in der Frühphase beobachtet, obwohl die mittlere Phase ist ebenfalls betroffen. Es gibt keinen großen Unterschied in der Spätphase ICGA aufgrund das Verblassen der ICG-Signal in den Aderhautgefäßen. Offenbar ICG-Fluoreszenz kann teilweise durch die RPE und Melanozyten in der Aderhaut in pigmentierten Mäusen blockiert werden. Als Anregung, kann man wollen b betrachtenreeding ihre AMD-Modelle in den CD1 Hintergrund hoher Auflösung ICGA erhalten.

Obwohl FA ist weit über AMD Tiermodellen verwendet wird, ist bei der Aufdeckung ICGA wesentliche Anomalien in der Aderhautgefäßsystem. Die Fähigkeit, Maus choroidalen Gefäßsystem mit hoher Auflösung in Echtzeit zu beobachten kann sehr helfen, Forscher bei der Charakterisierung von AMD Mausmodellen und in Korrelation mit histopathologischen Daten. Die Kombination von ICGA, FA und OCT äußerst nützlich bei der Charakterisierung des Phänotyps der AMD-Modelle, wie in der Diagnose von AMD in menschlichen Patienten. Da die Maus ist derzeit der am häufigsten verwendeten Tiermodell für AMD Forschungs 26-29, kann der Zeitverlauf IV-ICGA eine größere Rolle in der Forschung spielen.

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Disclosures

YF ist Erfinder von zwei Patentanmeldungen, die für die AMD-Mausmodell in dieser Arbeit verwendet werden. SK, ZB, ADJ und haben nichts zu offenbaren.

Acknowledgments

Diese Arbeit wurde vom NIH 1R01EY022901, der Career Development Award von Forschung unterstützt, um Blindheit (RPB) Verhütung, CMReeves & MA Reeves-Stiftung, E. Matilda Ziegler-Stiftung für Blinde, Templer Eye Foundation, und eine nicht zweckgebundene Zuwendung an die Abteilung für Augenheilkunde an der University of Utah aus RPB. Balamurali Ambati Wir danken für die technische Unterstützung auf dem Spectralis Multi-Modalität Imaging System und Tao Zhang für Diskussionen und Kommentare zum Manuskript.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Spectralis Multi-Modality Imaging System Heidelberg Engineering, Germany SPECTRALIS HRA+OCT
Tropicamide ophthalmic solution (1%) Bausch & Lomb NDC 24208-585-64 for dilation of pupils
GenTeal Gel Genteal NDC 58768-791-15  clear lubricant eye gel 
Ketamine Vedco Inc NDC 50989-996-06
Xylazine Lloyd Laboratories NADA 139-236
Acepromazine Vedco Inc NDC 50989-160-11
32-G Needle Steriject PRE-32013
1-ml syringe BD 309659
Indocyanine Green Pfaltz & Bauer I01250

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Kumar, S., Berriochoa, Z., Jones, A. More

Kumar, S., Berriochoa, Z., Jones, A. D., Fu, Y. Detecting Abnormalities in Choroidal Vasculature in a Mouse Model of Age-related Macular Degeneration by Time-course Indocyanine Green Angiography. J. Vis. Exp. (84), e51061, doi:10.3791/51061 (2014).

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