Summary
高分辨率的活体成像具有增强对比度高达120微米的深度在成年小鼠的淋巴结被空间调制多焦点双光子显微镜的激励模式来实现。在100微米的深度，我们测量了487 nm的分辨率（横向）和551纳米（轴向），从而绕过散射和衍射极限。
Abstract
监测蜂窝通信由活体深层组织的多光子显微镜的关键是理解厚组织标本和器官在健康和疾病中的免疫细胞的命运。通过控制多光子显微镜扫描模式和运用恰当的数值算法，我们开发了一个条纹的照明方式，使我们能够实现3倍更好的轴向分辨率和改进的信号噪声比， 即相反，在超过100μm的组织深度内高散射淋巴器官组织的标准相比，多光子显微镜。采集速度以及光漂白和光损伤作用类似于标准的光电倍增管为基础的技术，而成像深度是由于使用领域探测器略低。通过使用条带照明的方法，我们能够观察到的二次滤泡树突状细胞的免疫复合物沉积动力学̵1;上的几个蛋白质分子在生发中心的水平。
Introduction
双光子激光扫描显微镜（TPLSM），其优点为深层组织成像与红外超短脉冲激发1，已通过揭示各种运动和交互模式彻底改变了我们的看法在单细胞水平的生命过程细胞亚群在活体动物2-5。然而，目前的技术仍不足以澄清器官的功能和功能障碍的机制，作为开发新的治疗策略的先决条件，因为它使得大约只有在健康和疾病组织中的细胞反应的分子基础稀疏信息。当前技术使由于散射几百微米只有一个空间窗口和波上的空间分辨率和信号噪声比6，这是特别明显的成年动物的高度紧凑的组织面前的失真效应。这些散射和波前畸变的影响是由于高度异质的的折射率在组织三维各向异性分布，导致在第一步骤中，以三维空间分辨率的深度依赖性恶化，最后到信号从弹道激发光子， 即损失的信号-噪声比始发的总损耗。在生物科学和生物医学深层组织的应用程序而言，这意味着目前的技术是无法明确地揭示蜂窝通信，因为分辨率差，会导致假阳性的相互作用，而信号噪声比的减少将导致系统忽略了一些暗淡的结构之间的相互作用。
为了清楚地检测以动态方式的细胞相互作用，一个高度改善的空间分辨率，需要深的组织内。基于特殊的数值算法， 如结构照明方式，对第一激发态损耗， 如目前推出了功能强大的纳米显微技术例如 dSTORM，PALM，已经发现许多应用中固定的细胞，以及在活细胞培养7。然而，为了这些应用程序扩展到组织切片，活组织和有机体，我们仍然需要克服严重的技术困难。双光子激发的受激发射损耗具有不同波长，以及与单个波长（sw2PE-STED），用于激励和受激发射已被应用，以提高横向分辨率在大脑切片8或人工基质与包埋细胞9，分别在同一轴向分辨率为标准TPLSM。利用单光子受激发射损耗，树突棘的动态可以在大脑皮质（长达10-15微米的深度）的表面活Thy1系EGFP小鼠在67纳米10的分辨率成像。一个多功能的工具，用于发育生物学是由多灶性结构照明显微镜，它提供了两方面的改进二维提供分辨率。然而，这种技术可用于仅在与光散射如斑马鱼胚胎11倾向低的生物。不过，没有这些技术可以在成年动物的高散射组织被应用在数百微米，这是至关重要的模型与发病的疾病在出生后的生物医学和临床研究。
独立用于计算衍射限制的波前的形状， 即该点扩散函数（PSF）的近似值，聚焦通过透镜后，沿着光轴（轴向分辨率）的PSF的宽度大于至少3倍PSF的宽度在垂直于光轴（横向分辨率）12。波不同的订单面前的扭曲泽尔尼克的量化系数大大修改深层组织成像聚焦电磁波导致更大的PSF，特别是沿光纤的波前形状人轴13-15。因此，这两个衍射法和波前畸变效应指向沿着光轴在深层组织成像的限制因素的分辨率。而纳米显微技术专注于抵消衍射的极限只有一个技术，提高了轴向分辨率和通过抵消两个衍射和波前畸变效应的对比度是需要高分辨率的活体成像。理想情况下，这种技术应该也足够快，以便监测细胞动力学的。
PSF畸变和使用TPLSM自适应光学对比度损失的实时校正已被广泛研究，并在过去十年13,14,16-18改善，因此它是目前市面上最好的选择，从而更好地管理弹道导弹激励14的光子。不过，由于大部分波前校正方法在自适应光学系统中使用的其实是迭代和他们公顷已经被重复为小区域（数10×10微米2）由于在组织中的折射率的高异质性，采集速度比所需的成像细胞运动和通信显著更低。此外，在自适应光学的物理极限提高TPLSM仍然由衍射确定。
照明（SPIN）和检测侧（铲）时间调制的空间调制已经从理论上提出了要施加到激光扫描显微镜来提高分辨率。在活体成像的实际应用还有待证明19。
综上所述，对于技术，有效地提高了分辨率为深层组织成像在活成年动物发展的高需求。在这项工作中，我们实现了激励模式的，通过控制在多波束条带照明的多光子激光 - S的扫描过程空间调制罐头镜（MB-SI-MPLSM）20。相反，以结构化的照明方法，其中，所述激发光束的横截面进行空间调制，我们只使用扫描过程来实现激发的空间调制。通过扩大激发到更长的波长，我们是独立的光能够提高在高散射组织（ 如淋巴结，自由散射路径47微米6）深层组织双方的空间分辨率和信号噪声比，我们检测到的非线性信号， 例如荧光，产生二次谐波或其它混频现象。使用这种方法在激发波长为900毫微米，我们能够动态图像的细胞的蛋白质结构上的几个分子在小鼠淋巴结生发中心的规模。因此，我们可以更好地可视化在探测反过程滤泡树突细胞和B细胞的表面上的抗原携带单元之间的相互作用期间在次级淋巴器官的免疫应答根。
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Protocol
多波束设置的条纹照明TPLSM
这里所使用的安装程序是一个专门的多波束双光子激光扫描显微镜，如先前所描述的6,20。该系统示于图1，本方法可以应用到其它的双光子激光扫描显微镜，其能够与本galvoscanner反射镜的运动同步相机采集，即使它们只能够执行单光束扫描。在这种情况下，缺点将是较低的采集速度，但是类似于标准的PMT基于TPLSM采集速度。为了达到最佳的品质，只要分辨率和对比度而言，以最低的光漂白和光损伤和最快的收购，但是建议考虑以下调整步骤设置的：
- 检查蒂萨激光器的激光功率：检查达到100％，与原厂的价值观和PREVIO比较我们自己的读数，并使用它，因为它是，如果在范围700-1,000 nm的激发波长是必要的。
- 测试远程控制指示为钛：萨光束分离器， 即检查为0％和100％的设定值。如果有剩余TISA束100％，然后检查并重新设置步进电机零位。在Ti：萨分束器包括一个低阶λ/ 2板和偏振片，这样会将在垂直于电子束路径的垂直偏振的激光束：一种被引导到显微镜激发，另一种是用于泵浦光参量振荡器（OPO）。自动旋转的λ/ 2板，在Ti的连续调节：Sa和OPO功率，分别实现。
- 调节OPO到所需的波长，并测量输出功率。如果功率太低（与4 W钛宝石激光器在800 nm处，应该能够得到0.8-1 OPO光束W在大约1,050-1,100 nm）的优化泵波长和检查日的设置E镜的扇形水晶和。选择他们推荐的最佳值，通常可作为图表或曲线图，然后进行微调，直到OPO的共鸣在所需的波长和输出功率的增加。
- 如果电源仍然偏低，调节OPO的两个入口后视镜带四个访问镜面调节旋钮。做到这一步非常缓慢，在非常小的移动，前部和端部的镜子之间交替。
- 检查的Ti：Sa和/或OPO光束打在进入镜子在适当的中央位置。
- 用一张白纸（不是很有光泽或反射！）和一个红外查看器观察OPO梁和较高的波长的Ti：萨横梁。
- 用近红外钛时请戴上防护眼镜：萨梁（一般可达720-750 nm的可见对于一般人）。
- 设置激光功率（S）尽可能低的对准过程，以便宓nimize潜在的眼损伤。
- 始终保持室内的环境灯，让眼睛的瞳孔收缩。
- 请记住，激光功率是精细控制的衰减器组成了一个λ/ 2板和偏光板，这是不是在尚未生效时钛：萨光束进入扫描头！
- 用一张白纸（不是很有光泽或反射！）和一个红外查看器观察OPO梁和较高的波长的Ti：萨横梁。
- 检查入口点隔膜是由钛砸在了中间：Sa和/或OPO光束;如果不是，请调整最后两个反射镜将激光束进入扫描头之前。
- 使用IR观众和一小片白色的（但没有光泽/反光！）的纸张。
- 总是在进入显微镜关闭隔膜，使得激光束的位置可以更精确地判断。重要提示：不要忘记进行步骤6之前，重新打开隔膜！
- 调整反射的激光束的光路进入显微镜相应。做到这一点的小片段，并执行迭代梁娃lking。
- 检查整个光路如果从物镜的光输出是不足够的。
- 始终使用该系统的第一次很长的空闲周期，大修，更换任何光学元件，后当检查光路或者如果问题被怀疑与输出存在。
- 确保所有的主动光学表面的清洁，尤其是，他们是免费的灰尘！如果该表面覆盖有一层灰尘，波前被连之前进入物镜畸变和所产生的激光束将不会提供样品的鲜明的图像！
- 如有必要，请清洁后视镜带一张叠起来的镜头纸，蘸有乙醇或异丙醇。
- 检查光束到达背面到位于正上方的条目镜的棱镜型脉冲压缩器的端部，光路被设定后的镜子。从这里，该光束被反射的我NTO光束多路器（BM）。
- 检查，如果激光束击中了位于所述光束多路器的入口，直接在λ/ 2板之前，改变激光束的偏振，以适应一个宽频带的50％透射和50％的反射的要求隔膜内BM。
- 首先，关闭光圈，以使光束位置可以更精确地判断和执行波束行走的两个膜片之间， 即 ，一个在进入显微镜和其他在BM条目。对于其他的单光束扫描显微镜隔膜应设在进入XY扫描器。
- 如果光束不会碰到已关闭的孔的中心，调整上述反射镜，直接对BM条目隔膜之前放置。重要提示：不要忘记进行到第10步之前，重新打开隔膜。
- 与隔膜重新打开时，检查激光束击中BM镜子他们的中间点。用一张狭长地带，以免堵塞的BM的复杂的光路另一部分！
- 检查，如果光束照射的出射反射镜的中间：顶镜，用于平行极化“P”，底部反射镜为垂直偏振的“S”。如果不是，在BM之前调整入镜。
- 检查，如果“S”和“P”极化光束让组输入偏振器立方体和重叠适当地在进入XY扫描器。跳过的情况下，这些步骤的单光束扫描显微镜使用。
- 检查该激光通过集中扫描和管透镜，并得到通过物镜的回焦平面的中间。重要的是：这个步骤必须用激光束在中心位置进行，而不是在一个停车位置！
- 与瞄准工具（“靶心”）更换物镜，检查激光束击中目标的中间，以及是否照度均匀。
- 如果这看起来是这样，关闭光圈兽王之前，检查是否一个圆形的干涉图案出现时，用黑色圆圈中间（干扰最小）。
- 调整进入镜子，如果有一个显著转变相对靶心的中心。
- 现在，随着物镜， 例如用20倍水浸泡镜片更换靶心。
- 检查输出光场用一张白纸。这应该是明亮，均匀，位置居中。
- 测量输出功率：100％OPO 100％抽钛萨（4瓦），一个应该得到约在1100 nm处的透镜（在这里所使用的显微镜）后100-150毫瓦。较低的激光功率并不足以用于执行多波束SI-TPLSM。对于单束扫描SI-TPLSM 5-10毫瓦就足够了。激光束必须保持在中心位置而不被scanneD！
- 如果执行MB-SI-TPLSM，对准镜子中的BM如下：
- 放置一个均匀荧光样品， 例如红色荧光幻灯片，在舞台上和焦点内的样品，但附近的顶面（ 即靠近物镜'前）的激光束。
- 显微镜设置为多光束模式和选择波束的数目，在一开始，优选只有一个光束，而极化， 例如 “P”。
- 发现激光束成像的荧光幻灯片：设置“P”快门打开并持续而聚焦光束运行的CCD相机。
- 确保光束是在中锋位置上，并且扫描仪是关闭的。确保束未扫描！
- 通过查找附近的摄像头芯片的中心亮点查找横梁。
- 聚焦光束，直到光斑最亮和最清晰的， 即图像平面显微镜对应于相机芯片的位置;降低激光功率，以使光点不饱和。具有良好的对齐系统，这意味着激光功率在一个光束模式（大约0.6毫瓦的激光功率应该工作）工作时，靠近最低限度。
- 如果点是显著偏离中心，将其移动接近中心通过调节反射镜前面的BM（或扫描仪的单束扫描）。
- 当也对准其他两极分化， 即 “S”梁，现在切换到2束模式下，打开“S”快门和检查光束的位置（只有一个光束，如果只有“S”快门打开可见）。
- 完成后，切换到4束模式，并使用“P”极化模式（“P”快门打开）。现在，2个子束就会出现。
- 安排两个子束被完全平行于相机的视图的底部边缘，并将它们设置为2.8微米分开。
- 如果它们没有被正确对齐，调节BM的第一反射镜。
- 从未对准螺钉在中间，而不是使用2周螺丝来移动反射镜，直到两个光束是2.8微米分开和完全水平地布置。
- 现在切换到8束模式中的“P”偏振，并调整第二反射镜BM（也无红点），直到4子束是等距于2.8微米，并且平行于图像的下边缘。
- 重复16 - 和32 - 束模式，调整第三和第四BS镜，分别。为子束，因为SI-算法，最简单的最小 - 最大（希洛）算法，是基于这样的假设是等距离是很重要的。
- 去激发光束的停车位置，瓦特HICH通常放置在扫描仪坐标， 如 （10,000; 10,000）的较大值。
- 扫描（多波束）的图像与CCD摄像头。检查图像清晰，均匀，平直。
- 调整相机如果出现图像旋转：用手扭动机身轴向绕垂直轴（温柔！），直到图像拉直。
- 在多光束扫描的情况下，移动的Y扫描镜， 即得 。垂直于该子束线，以这样的方式来生成一个二次条纹图像。
- 如果视场中生成如在步骤17.1中描述。太小时，通过移动与x扫描镜的位置确保该光束松懈线加倍和子束是沿着整个线等距离延伸的扫描程序。重复的精确运动的Y扫描镜后的X扫描镜被移动，以产生较大的条纹图像。
- 在单光束扫描的情况下，反复交替用X扫描镜运动的Y扫描镜运动在等距离的位置 - 由科学家确定 - 来生成所需的有条纹的图像。
- 确保使用用于Y扫描镜的命令为恒定速度（降低加速度/减速度）的运动和用于X扫描反射镜1在最大速度（最大加速度/减速度）。
- 选择足够的重复步骤，并与相应的步长随后的两个条纹图像，以覆盖两个连续的子束（在本例2.8微米，扫描仪反射镜1步等于25纳米）之间的距离;它可能是可取的，可以有少量的重叠， 即一个附加0.3-0.4微米。
- 设置x移位到一个值，该值相匹配的横向分辨率限制在给定的波长。作为一个例子，使用10个步骤，每个移位和12或13的位移的X扫描反射镜的引导，以最好的轴向和横向分辨率的结果在本系统中。请与结构化幻灯片， 如铃兰根幻灯片，这数字在正在使用的系统效果最好。
- 优化这两个值，直到铃兰图像变得最清晰：使用线轮廓工具所计算的SI图像和比较的谱线轮廓（它是从铃兰细胞壁的荧光信号）的宽度。
- 收购与扫描仪的运动同步的每个条纹的图像并将其单独保存， 如
小鼠免疫和准备活体成像
动物实验已获动物福利（LAGeSo，Landesamt献给Gesundheit UND Soziales，柏林）适当的状态委员会，并根据目前的指导方针和法规（动物实验许可证G0153/08）被执行。
- 如4之前所述进行中的腘淋巴结和制剂的摄像视场的生发中心反应的诱导。纯化的B细胞免疫磁性从脾脏B1-8 + / +Jκ - / -和B1-8 + / +Jκ的B细胞- / -的GFP +小鼠。
- 静脉内注射用的> 95％使用⅛B1-8 + / +Jκ的纯度为3×10 6的NP特异性B细胞- / -的GFP +和⅞非荧光B1-8 + / +Jκ - / -在C57BL / 6的收件人。
- 细胞移植后的一天免疫收件人与10微克NP-CGG（硝基苯鸡ɣ球蛋白），右后的食物垫在乳化完全弗氏佐剂（CFA）的。
- anti-CD21/CD35抗体ATTO590-琥珀酰亚胺基酯的标签Fab片段。
- 以突出滤泡树突状细胞的网络（FDC） 的体内生发中心内，注入10荧光物质标记的Fab片段微克到小鼠12-24小时的右后肢足垫进行活体分析之前。
下面的步骤应conside红色为腘窝淋巴结的活体成像（8-10天免疫后）的准备：
- 通过腹腔注射氯胺酮/赛拉嗪的，这取决于它们的重量的量麻醉小鼠。
- 测试反射来监测麻醉深度在整个摄像期间。
- 刮腿，背部和鼠标严谨的右侧，并用脱毛霜，以彻底去除残留的头发。
- 修复右粗隆重要：找到骨片，用手指，设置一个小的皮肤切口，用剪刀，直到一个白色的小三角形筋膜出现。
- 骨钳芯片这个筋膜与限制器的尖头镊子下方。
- 修复脊椎使用齿镊子腰区。
- 修复右后腿限制器并拧紧螺丝。
- 带尾要保持腿部在正确的位置。
- 在大腿的尾侧，建立在皮肤上的切口，在该区域中的突出腘静脉缓和RS的组织，从用生硬的镊子底层组织中分离皮肤，并按照腘静脉从近端到远端。
- 用钝镊子暴露淋巴结，尽量避免切割，以保护优良的淋巴管（保持淋巴结在PBS中的暴露）。
- 创建真空硅脂周围的淋巴结转了一圈，填补了这一水坑用PBS。
- 把盖玻片在它的位置，然后将温度计探头（温度保持在37℃，否则电池的速度将显着不同）。
- 沿盖玻片的上缘加的真空润滑脂的圆。
- 把加热线圈在其位置上的真空润滑脂，和以前一样以同样的方式建立一个密封，并添加水/ PBS中于玻璃盖玻片蘸入目标。
- 成像后，将小鼠保持在麻醉，同时增加剂量的氯胺酮/赛拉嗪的以致死剂量，随后通过颈脱位。
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Representative Results
在淋巴结空间分辨率
实际点扩展函数（EPSF）的尺寸对应于显微镜12的空间分辨率。我们通过我们的MB-SI-TPLSM获取在淋巴结胶原纤维的二次谐波生成的信号相比，建立了双光子激光扫描显微技术， 即场检测TPLSM（由CCD相机装置）测定该三维函数和点检测TPLSM（由光电倍增管的方式）。
从这些测量结果可以很明显地，在试件的表面，无论是横向和轴向分辨率对应于由衍射理论20所预测的预期值。然而，随着成像深度，从而通过增加介质既激发和发射辐射的光路中具有高度变化的折射率，该空间分辨率的劣化显着，不知疲倦pendently就业的设置（ 图2）。通过MB-SI-TPLSM我们到达，独立成像深度，一个约。更好的20％的横向分辨率和更好的220％轴向分辨率比标准TPLSM方法。
在滤泡树突状细胞在生发中心的免疫复合物的动态
在免疫反应的克隆选择的B细胞，成年小鼠次级淋巴器官内是在他们的方式分化成记忆B细胞或浆细胞4的第一步。在这个过程中，滤泡树突状细胞（FDC）和B细胞的内生发中心的免疫复合物结构（团簇少的蛋白质分子）的水平之间的高度动态的相互作用被认为发挥核心作用。只有使用高度解决活体显微镜技术，可以剖析这个蜂窝通信及其对免疫反应。我们的并购的方式B-SI-TPLSM规定了第一时间的intravitally可视化和量化的免疫复合物沉积的簇的尺寸作为标记的anti-CD21/35-Fab-ATTO590在滤泡树突状细胞，在高达120微米深度的可能性的腘淋巴结（ 图3a和3b），生发中心。虽然这种结构并不是由标准TPLSM方法可见，我们能够单独区分它们，甚至用我们的方法可视化他们的动态。 图3e和3f支持这种洞察力，呈现在生发中心免疫细胞沉积的三维荧光图像之间的直接比较作为收购的常规TPLSM（PMT为基础）和MB-SI-TPLSM。此外，免疫复合物沉积与生发中心B细胞的相互作用可以被高度解析（ 图3c和3d，电影1和2），现在可以我nvestigated与活体功能探针增殖，分化或凋亡的组合。在下一步中，我们将使用我们的方法也调查生发B细胞与T辅助细胞，认为构成其他决定性现象的B细胞克隆选择在次级淋巴器官的动态沟通。
。可调谐飞秒脉冲的Ti 中的图1的原理和设置多波束条带照明的双光子激光扫描显微镜的光束：萨激光（波长范围690-1,080纳米，140飞秒，80兆赫）被衰减通过由λ/ 2板和薄膜偏振器的一个模块，它的脉冲被预压在棱镜系GVD补偿模块，最终分裂为2，4，8，16，32，或64束形成一个小束线。行内的两个连续的子束具有垂直偏振（在子束线标记的红色和绿色），并且在时间上移位，以避免干扰。连续两个子束之间的时间移位达3皮秒。进行图像采集时，子束线聚焦到样品通过物镜（20X浸水物镜，NA 0.95，WD2毫米）和垂直扫描，从而产生一个明确的周期性图案。这种模式是沿子束线换算。的一系列的图像生成这种方式，通过安装在滤光轮由一个EM-CCD摄像机，最后通过一个最小 - 最大算法计算干扰滤波器进行检测。用相同的显微镜进行基于PMT检测单光束TPLSM。在这种情况下，我们仅使用一个激光束来扫描样本，我们进行分光的荧光信号与相应的分色镜和干涉滤光器之前检测用光电倍增管ing它。另外，代替钛。萨激光，光学参量振荡器的光束可 以连接到显微镜执行长波长MB-SI-TPLSM 请点击此处查看该图的放大版本。
多波束条带照明TPLSM的图2。空间分辨率的标准相比，PMT和基于多焦点基于CCD TPLSM（一 ）代表的轴向剖面以及XY和SHG的胶原纤维XZ突起内淋巴100μm的深度节点。 lexc = 900纳米，检测波长范围447±30纳米，光子通量Φ= 4.75×10
图3通过MB-SI-TPLSM生发中心活体成像 （ 一 ）三维荧光在免疫的小鼠用半抗原标记的CD21/35-Fab-ATTO590（红色）一个生发中心的亮区的图像-鸡γ -GLobulin（NP-CGG）后，B1-8 EGFP + B细胞（绿色）的过继转移。在滤泡树突细胞（FDC）的免疫复合物沉积（CD21/35标签）可以单独进行可视化，如在图像的放大中的（b）（一 ）观察到的，并具有（横向和轴向）尺寸在且具有在高达120微米的深度为400-800纳米。被检测生发中心B细胞中的免疫B1-8 EGFP +小鼠（c）中 ，而触头（ 四）部分负责免疫应答的成熟过程，现在也可以观察到。 λEXC = 850纳米，检测波长范围605±20纳米（ATTO590）和525±25纳米（EGFP），光子通量Φ= 7.05×10 28光子/厘米2·秒。比例尺（ 一 ）为20μm，（B）为10μm，（C）30微米，（D）为10μm。内同一区域的三维荧光图像作为记录的MB-SI-TPLSM（e）和传统（PMT为基础）TPLSM由CD21/35-Fab-ATTO590标有生发中心光区（F），分别。 请点击此处查看这是一个更大的版本图。
电影字幕
电影-1和-2
对次级卵泡树突状细胞的免疫复合物沉积（FDC）和它们所记录的MB-SI-TPLSM与生发中心B细胞相互作用动力学。免疫复合物沉积由CD21/35-Fab-ATTO590（红色）标记，而在生发中心B细胞是B1-8 JK - / - EGFP +细胞（绿色）。
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Discussion
活体光学成像的目的是动态地和功能上可视化细胞运动和相互作用，以了解组织和在健康和疾病5器官功能。最有力的技术来实现这一点，多光子激光扫描显微术，仍然要克服与波前畸变，散射，缓慢采集，光漂白和光损伤，这限制了它的空间分辨率的限制，对比度以及其时间分辨率。
有两种成功的解决方案，以实现更好的激发（和发射）光子管理在深层组织导致更好的空间分辨率，对比度增加（增加的信号 - 噪声比，由于增加的信号），因此，降低了光漂白和光损伤：该自适应光学方法和使用较长的激发波长-可调谐红外激发6。在过去的十年中，波前对应的概念CTION通过自适应光学已经转移至天文，下至生物光学成像，同时也多光子显微镜。虽然第一自适应光学方法对双光子显微镜依靠波前传感和需要subdiffraction参考， 即 “导航星”，类似天文学，当前的系统更适合于深层组织成像12。例如，他们使用的连贯性门控激发辐射的波前传感13,15，或者他们不使用任何外部波前传感可言，但无论是基于对图像的互相关开发适应算法后瞳孔分割或17迭代随机搜索的理想参数，并从以前的迭代步骤为获得后续的干扰与未校正的图像的- 16的影响，或者他们使用光声学表征波前畸变和散射效果20。尽管如此，由于高度不同REFR，自适应光学方法在组织活性指数是相当缓慢的，因为校正步骤必须重复进行相对较小的区域（约10×10微米2）16。此外，无论是波前或散射效应校正，可以达到的最大空间分辨率仍然由衍射极限。
我们的做法是可以部分克服散射的波前像差和负担，也推动超越衍射极限分辨率。使用物镜具有更高的数值孔径，对于轴向分辨率的绝对值可能会提高到约400纳米20。的价格提高分辨率是信号与噪声的比值在深层组织一个陡峭的衰减比传统TPLSM。这是由于使用磁场检测中的MB-SI-TPLSM的必要性。由于前15所示，采用现场检测，而不是点探测器与信噪比杜这个陡峭的衰减相关e来发出的光，仅适用于现场检测相关的强散射。因此，最大成像深度为场检测TPLSM方法是约。 25％，比传统的（ 即基于点检测）TPLSM减少。一个直接的实际解决方案是应用较长的激发波长和检测较长的发射波长。当然，这提高了深度相关的SNR在常规TPLSM到相同的程度，以MB-SI-TPLSM。
据采集速度而言，MB-SI-TPLSM仅由振镜扫描器和/或通过读出该分束的照相机和利润的32个激光束允许的速度的限制。的标准相比，多波束基于相机的TPLSM，MB-SI-TPLSM是由于需要不仅扫描还能同步地获得的每个大约稍微慢一些。 10条纹照亮的图像，以生成最终的高分辨率图像。然而，我们的技术保留了CL耳朵的速度优势比传统TPLSM（基于单光束扫描和检测点）。因此，一个150×150微米2（512×512像素）的采集时间是使用传统的TPLSM（扫描频率800 Hz）和109毫秒使用MB-SI-TPLSM 841毫秒。由此，每束的激励功率和每像素的驻留时间是相同的常规和MB-SI TPLSM，使该信号是比较的两种设置。正如前面展示20，漂白和MB-SI-TPLSM实验光损伤效应低，堪比以及进行常规TPLSM。
在未来这将是可取的自适应光学和条带照明的补充方式结合在红外范围内，进一步提高活体TPLSM，类似于在自适应光学结构化照明21的成就。然而，为了实现这些目标，大大快自适应光学方法必须开发。
对生物科学和生物医学的条带照明方式的预期高冲击在于它能够提高分辨率和提升深部组织的对比度，抵消波前畸变和散射效果，而且还超越激光扫描显微镜的衍射极限，受产能简单地控制扫描过程，并选择适当的敏感领域的探测器。
对生物科学和生物医学的条带照明方式的预期高冲击在于它能够提高分辨率和提升深部组织的对比度，抵消波前畸变和散射效果，而且还超越激光扫描显微镜的衍射极限，受产能简单地控制扫描过程，并选择适当的敏感领域的探测器。
的条带照明的方法可应用于活体深层组织IM在老龄化，有能力进行同步摄像头检测与单光束扫描galvoscanner所有运动的双光子激光扫描显微镜。在这种情况下，激励模式中的单条带，其后，而不是同时在MB-SI-TPLSM产生。在SI-TPLSM使用单光束扫描我们自然期望的荧光图像的略慢的采集速率比常规TPLSM（单光束扫描，点检测器为基础的TPLSM），但是这表现为在空间分辨率和对比度的相同的改进的MB- SI-TPLSM。下部采集速度，连同成像深度的限制，大大减少了单光束SI-TPLSM的应用范围相比，MB-SI-TPLSM。
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Disclosures
沃尔克·安德烈森是LaVision生物技术有限公司，比勒费尔德，德国的股东。其他作者不存在任何利益冲突。
Acknowledgments
我们感谢R. HEINTZMANN的富有成果的讨论的条带照明的方法，K. Rajewsky和A.哈伯曼的发展过程中提供的C57BL / 6 B1-8 GFP转基因小鼠。我们承认在授予NI1167/3-1德意志研究联合会（到RN），HA5354/4-1和SFB633，项目A15（至AEH），下批拉结 - 赫希奖学金的查理特（到RN）的资金支持。我们特别感谢网络JIMI进行富有成效的讨论及基础设施支援
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| ATTO590 – NSH for coupling | ATTO Tec, Germany | AD-590-35 | |
| CD21/35 – Fab fragment – ATTO590 | DRFZ, Berlin | The coupling reaction was performed in the central lab of our institution. | |
| B1-8 Jk-/- EGFP+ | Prof. Anne Habermann, Yale Univ., CA, US | Can be also found at Jackson Laboratories (JAX). | |
| EasySep Negative Selection Mouse B Cell Enrichment | StemmCell Technologies, Germany | 19854 | |
| Polystyren beads (605), 0.2 µm | Life Technologies, Germany | F8803 | |
| Equipment | |||
| TriMScope I | LaVision Biotec, Bielefeld, Germany | ||
| OPO (manual version) | APE, Berlin, Germany | ||
| Ti:Sa Laser Chameleon Ultra II | Coherent, Duisburg, Germany | ||
| Water-immersion objective lens, 20X, NA 0.95, IR, WD 2 mm | Olympus Germany, Hamburg, Germany |
References
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