Summary
Nöronal membran kaçakçılığı dinamik plazma membran proteini kullanılabilirliği ve önemli ölçüde etkiler sinir iletimini kontrol eder. Bugüne kadar, yetişkin nöronlar nöronal endositik ticaretini ölçmek için zor olmuştur. Burada, akut beyin dilimleri yüzey protein ifade ex vivo hızlı değişiklikleri ölçmek için son derece etkili, nicel bir yöntem açıklanmaktadır.
Abstract
Düzenlenmiş endositik kaçakçılığı dinamik bir dakika zaman ölçeğinde reseptör, iyon kanalı, ve taşıyıcı hücre yüzey sunum kontrol ederek, nöromodülasyonundaki etkinlikleri kolaylaştırmak merkezi mekanizmadır. Tek tek proteinlerin endositik kaçakçılığı kontrol eden mekanizmalarla geniş bir çeşitlilik bulunmaktadır. Ticareti moleküler temellerini araştıran çalışmalar öncelikle niceliksel dışsal uyaranlara ve gen manipülasyonu yanıt membran protein yüzey ifadesindeki değişiklikleri ölçmek için yüzey biyotinlasyonu dayanmıştır. Bununla birlikte, bu yaklaşım esas olarak aynen yetişkin nöronların oynayan fizyolojik olarak ilgili mekanizmaları yansıtmayabilir kültürlenmiş hücreler, sınırlayıcı edilmiştir. Ayrıca, kültürlü hücre yaklaşımlar ticareti mekanizmaları bölgeye özgü farklılıkları hafife olabilir. Burada, biz akut beyin dilim hazırlanması için hücre yüzey biyotinilasyonunu uzanan bir yaklaşım açıklar. BizBu yöntem, yetişkin nöronların yüzey zar proteini seviyelerindeki hızlı değişiklikleri ölçmek için bir yüksek kalitede bir yaklaşım sağladığını gösterir. Bu yaklaşım nöronal endositik ticareti alanında geniş bir kullanım olması muhtemeldir.
Introduction
Endositik ticareti bütün zar proteinlerinin çeşitli plazma zarı tanıtımı ince ayar her yerde bulunan bir hücresel mekanizmadır. Endositozdan sonra hücre içi ortamı 1 için çok önemlidir besin sağlar ve reseptör aktivasyonu 2 tepki olarak reseptör sinyallemesini desensitizes. Geri plazma zarına dönüşüm endositik ek olarak hücre yüzeyinde de 3 protein ekspresyon seviyelerini arttırarak hücre sinyali artırabilir. Ayrıca, membran kaçakçılığı tedirginlikler protein endositik ticaretini yöneten moleküler mekanizmalarının araştırılması gerektiğini vurgulayarak, çok sayıda hastalık ve patolojik koşullarda 4,5 sorumlu tutulmaktadır. Çok protein, son birkaç yıl içinde kanıt montaj klasik klatrin bağımlı içselleştirme mekanizmaları kullanmak da çok klatrin bağımsız endositik mekanizmalar giderek artan bir dizi potansiyel endositik yöneten gösteriyorproteinler 6,7. Böylece, fizyolojik, ilgili sistemlerin ticareti kolaylaştırıcı endositik mekanizmaları araştırmak için ihtiyacı önemli ölçüde büyüdü.
Beyinde, reseptörler, iyon kanalları ve nörotransmitter nakliyecilerin endositik kaçakçılığı sinaptik plastisite 8-11 ve sonuçta nöronal heyecanlanabilirliğini ve sinaptik yanıtları etkileyen kötüye 12-15 ilaçlara yanıt kurulmasında başlıca role sahiptir. Nöronal kaçakçılığı çalışmaların çoğunluğu heterolog ekspresyon sistemleri veya kültür birincil nöronlar ya güveniyor Bugüne kadar, ikisi de güvenilir bir yetişkin nöronların oynayan mekanizmaları yansıtıyor olabilir. Burada, sayısal olarak yetişkin kemirgenlerden türetilen akut beyin dilimleri yüzey proteini seviyelerini ölçmek için yüzey biyotinilasyonunu kullanan bir yaklaşım sunulmuştur. Bu yaklaşımı kullanarak, fare striatal dopamin taşıyıcısı hızla re içselleştirilmesini göstermek veri mevcutforbol ester-kaynaklı protein kinaz C (PKC) aktivasyonu için tepkisi uyarma.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Tüm hayvan taşıma ve doku hasat onaylanan protokol # A1506 (Melikian, PI) ardından, Massachusetts Medical School Kurumsal Hayvan Bakım Kullanım Komitesi Üniversitesi (IACUC) esaslarına uygun olarak gerçekleştirilmiştir.
Gerekli çözümleri
Yapay beyin omurilik sıvısı (ACSF) - günlük taze olun
125 mM NaCl, 2.5 mM KCI, 1.2 mM NaH 2 PO 4, 1.2 mM MgCl2, 2.4 mM CaCl2, 26 mM NaHCO 3, ve 11 mM glükoz
Not: 10x stok solüsyonu olarak ACSF hazırlayın, NaHCO 3 ve glikoz hariç. Taze NaHCO 3 ve glukoz ile tamamlayan, 10x stok günlük 1x çalışan çözümler olun.
Sükroz takviye ACSF (SACSF) - günlük taze olun
250 mM suc, 2.5 mM KCI, 1.2 mM NaH 2 PO 4, 1.2 mM MgCl2, 2.4 mM CaCl2, 26 mM NaHCO 3 ve 11, mM glukoz gül
Not: 10x stok solüsyonu olarak SACSF hazırlayın, NaHCO 3 ve glikoz hariç. Taze NaHCO 3 ve glukoz ile tamamlayan, 10x stok günlük 1x çalışan çözümler olun.
Sülfo-N-hidroksisukkinil-SS-Biotin (sülfo-NHS-SS-biyotin, Pierce Chemical Company)
Stok çözeltileri, DMSO içinde 200 mg / ml olabilir ve birden fazla donma / erime döngüsüne karşı dayanıklı olan gerekir. Alikotlar -20 ° C'de saklanır Sukkinil ester hızla sulu çözelti içinde hidrolize edilir, böylece çalışma çözeltiler önce dilimlerine uygulamadan hemen hazırlanmalıdır.
Dilim Quench Çözüm
ACSF 100 mM glisin ile desteklenmiş
RIPA Liziz Buffer
10 mM Tris, pH 7.4, 150 mM NaCl, 1.0 mM EDTA,% 1 Triton-X-100,% 0.1 SDS,% 1 Na deoksikolat
Proteaz inhibitörleri ile RIPA (RIPA / PI) - günlük taze olun
RIPA 1 uM löpeptin, 1 uM pepstatin, 1 uM aprotinin ve 1 mM fenilmetil sülfonil fluorür ile takviye edilmiştir.
1.. Beyin Dilimleri hazırlayın
- Taze 1x SACSF ve 1x ACSF olun
- Küçük bir beher buz üzerinde SACSF Chill. Bu durum, taze hasat edilmiş fare beyin tutmak için kullanılacaktır.
- % 95 /% 5 O 2 / CO 2, buz üzerinde 20 dakika ile köpüren tarafından oksijen ile ACSF ve SACSF doyurun.
- P30-38 farenin en uygun doku yaşam için kullanılmalıdır. Servikal dislokasyon ve başları kesilerek hayvanların Kurban ve hızla önceden soğutulmuş, oksijenli SACSF içine beyinleri kaldırın.
- Bir titreşimli mikrotom kullanılarak, ilgi bölgesinde 300 mikron beyin bölümleri yapmak.
- Eğer istenirse, dilimleri başka özel beyin bölgeleri veya ayrı sağa sırasıyla, kontrol ve deney dilimleri olarak kullanmak için sol hemisfer zenginleştirmek için önce toparlanmaya disseke edilebilir.
- Bir ateş cilalı Pastör pipeti kullanarak, 24-yuvalı plakalar içine yerleştirilmiş odaları tabanlı bir örgü dilimleri aktarın.
- Dilimleri sürekli, yumuşak kabarcıklarla, oksijenli ACSF, 40 dakika boyunca 31 ° C geri izin verin.
2. İlaç Tedavisi (uygunsa) ve Dilim Biyotinilasyonu
- Düzelmesinin ardından, önceden ısıtılmış (37 ° C), oksijenli ACSF köpüren sürekli% 95 /% 5 O 2 / CO 2 dilim yıkayın 3x.
- Test bileşikleri ekleyin ve sürekli oksijenasyonu ile kuluçkaya yatmaktadır.
- Kolaylık sağlamak için, 10x konsantre ilacın 1/10 th ses eklemek, ve hafifçe ters çevirerek karıştırın.
- Yavaşça istenen sıcaklıkta bir su banyosu içinde plakalar çalkalayın.
- Ardından ilaç tedavisi, hızlabuz soğuk ACSF 3x yıkayarak soğuk dilimleri.
3. Biotinylate Yüzey Proteinleri
- Hemen önce etiketlenmesi için buz gibi soğuk ACSF hazırlanması 1.0 mg / ml sülfo-NHS-biyotin-SS.
- Dilimlerine sülfo-NHS-SS-biotin 0.75 ml ekleyin ve buz, 45 dakika dilimleri kuluçkaya yatmaktadır.
- Buz üzerinde buz soğuk ACSF 10 dakika boyunca inkübe edilir, daha sonra buz soğukluğunda ACSF ile hızlı bir şekilde dilimleri üç kez yıkayın.
- Buz dilim söndürme tamponu ile dilimleri üç kez yıkayın ve ücretsiz sülfo-NHS-SS-biotin gidermek için 0.75 ml dilim söndürme tamponu ile buz üzerinde iki kez, 25 dakika, kuluçkaya yatmaktadır.
4. Doku hazırlanması lizatları
- Buz soğuk ACSF dilimleri üç kez yıkayın ve bir yangın cilalı Pasteur pipeti kullanarak bir mikro tüp her dilim aktarmak.
- Yavaşça 200 xg, 1 dakika ve dikkatle aspire kalan ACSF santrifüj edilerek pelet dilim.
- 400 ul buz gibi soğuk RIPA / PI ekleyin ve yukarı pipetleme dokusu kırmak ve aşağı bir kez P200 pip aracılığıylaette.
- Aktarım, yeni bir tüpe dilim / RIPA liziz ayrılmış ve tamamlamak için, döndürme, 30 dak, 4 ° C inkübe edin.
- Santrifüj ile hücre yıkıntıları pelet haline, 18,000 xg, 15 dakika, 4 ° C
- , Bir standart olarak sığır serum albümini (BSA) ile BCA protein deneyi kullanılarak lisatı, protein konsantrasyonları belirler.
5. Biyotinilat Proteinler izole
- Boncuk / total protein oranını optimize.
Not: Bireysel protein ekspresyon düzeyleri farklı beyin bölgeleri arasında yaygın olarak değişebilir. Doku lisat belirli bir miktarda biyotinile protein her yakalanır sürece, doğru bir yüzeyi ifade herhangi bir potansiyel değişiklikleri tespit etmek mümkün değildir. Bu nedenle, ampirik önce yeni bir dilim biotinilasyon çalışmaya girişmeden belirli bir protein / beyin bölge için en uygun boncuk / total protein oranını tespit etmek zorunludur.- Artan miktar 25 ul streptavidin agaroz boncuklar inkübe, yıkama ve elüsyon adımları bağlanma için, aşağıda tarif edildiği gibi doku lisatı (yaklaşık 25-200 ug) ve bir s devam edin.
- Ortaya çıkan immünoreaktif bantlar sayısal olarak ve artan ya da protein ya da azalmış yüzey ifadesi de doğru olarak izin verecek bağlayıcı doğrusal aralığı içinde bir boncuk / lizat oranını seçmek.
- Streptavidin-agaroz taneleri hazırlanması
- Bütün numuneler için gerekli toplam boncuk hacim belirler. 25 ul / numune = 100 ul boncuk + ekstra = 125 ul boncuk bir miktarı için yeterli bir boncuk hacmi artı bir ilave (yani 4 örnekleri hazırlayın.
- Vortex Streptavidin boncuk stok ve pipet dışarı hacmi istenen. P200 pipet kullanarak ederse, tıkanıklık veya boncuk zarar görmesini önlemek için ucu ucuna kesti.
- Oda bir öfke, 18.000 xg, 1 dakika santrifüj edilerek koruyucu, her RIPA eklenmesinden sonra vorteks ve yıkamalar arasında toplama boncuk kaldırmak için 0.5-1.0 ml RIPA / PI boncuk 3 kere yıkayınfaktöörlere.
- Bir vakum şişeye bağlı bir cam Pasteur pipet kullanılarak yıkamalar arasında tampon aspire. Aspire cam Pasteur pipet ucuna takılı plastik P200 ucu ince kontrol sağlar. Bu pipet içine aspirasyon boncuk risk gibi, ilk iki yıkama için kesinlikle bütün tampon kaldırmak için gerekli değildir. Son yıkamadan sonra, boncuklar aspire olmadan mümkün olduğu kadar fazla tamponunu çıkarın.
- Ve tekrar süspansiyon aşağı yukarı pipetleme, geri orijinal hacmi boncuk getirmek RIPA / PI ekleyin. Boncuklar boru duvarına sopa gibi, bu noktada vorteks kaçının.
- Ucu ile bir P200 kullanarak mikrosantrifüj tüpler içine kısım boncuk kesti. Boncuk eşit askıya ve tüpler arasında dağınık kalmasını sağlamak için aşağı örnekleme arasında birkaç kez yukarı pipet ve.
- Streptavidin boncuk Bağlama biyotinile edilmiş proteinler
- Agaroz boncuklar içeren tüplere hücre lizatları dağıtın. Deneyleri için whe Birden çok numune karşılaştırılan yeniden doğru karşılaştırmalar için, her numune için protein aynı miktarda kullanmak için emin olun.
- 200 ul minimum hacme örnekleri getirmek ilave RIPA / PI ekleyin. Bu örnekler inkübasyon sırasında yeterince karıştırmak ve aynı zamanda örnekleri arasında, protein konsantrasyonları birleştiren garanti eder.
- Bir boru rotator tüpler koyun ve 4 ° C'de gece boyunca karıştırın
- Ayrı tüpler içinde, her bir numune için kullanılan toplam lizat hacmi bir eşdeğerine dağıtmak. Numune hacimleri yüksek, alternatif olarak, toplam lizat hacmi bir kısmı SDS-PAGE jelleri üzerinde maksimum yük birimleri yerleştirmek için, bunun yerine ayrılmış olabilir. Bunlar toplam protein miktarı yüzey ekspresyonunu normalize etmek için kullanılacaktır.
- Eşit 2X hacim veya 6x, SDS-PAGE örnek tamponu içinde 1/5 hacim ve ya örnekleri analiz edilinceye kadar -20 ° C'de boncuk numuneleri ya da mağaza paralel olarak, 4 ° C de inkübe ya ekleyin.
- Oda sıcaklığında, 18,000 xg, 2 dakika santrifüjleme ile boncuk Pelet.
- Aspire yüzenler ve yıkama boncuk 0.75 ml RIPA'da ile üç kez. Boncuk kaybını en aza indirmek için, yıkamalar arasında boncuk yukarıdaki tampon küçük bir baş hacmini bırakın. Son yıkamadan sonra, boncuk pelet bozmadan, mümkün olduğunca RIPA çıkarın.
- Disülfid bağı azaltarak streptavidin biyotinile edilmiş proteinler boncuklardan Zehir. Örnek tampon, vorteks de azaltarak 25 ul 2x SDS-PAGE ekleyin ve numuneleri 30 dakika, oda sıcaklığını döndürün.
Not: Birçok zar proteinleri ciddi şekilde zarar elektroforetik hareketlilik, SDS-PAGE numune tampon maddesi içinde kaynatılmış zaman toplamak için bir yüksek eğilimi vardır. Bu araştırılmaktadır protein için durum ise, ısıtma örnekleri engellemek ve bunun yerine, oda sıcaklığında yavaşça elute. Kaynar (paralel değerlendirilen bir başka protein kaynamasını gerektiriyorsa örneğin) kesinlikle gerekli ise, SAMPLe tampon toplanmasını en aza indirmek için 2 M üre (nihai konsantrasyon) ile takviye edilebilir. Bazı durumlarda toplama azaltılmasında etkili olsa da, üre genellikle grup görünüşe uzlaşma. - Immunoblot'da örnekleri analiz.
- Toplam lizat örnekleri çözülme ve boncuk numuneleri, 30 dakika, oda sıcaklığı ile paralel olarak döner.
- SDS-PAGE jelleri üzerinde ayrı proteinler.
- Immünolojik işaretleme ile ilgilenilen protein (ler) belirlenmesi.
- Bantları uygun miktar tespiti için lineer aralığında tespit emin olun.
- Biyotinilasyon reaktif hasarlı / tehlikeye hücreler yoluyla hücre içi proteinlerin erişim elde olmadığını temin etmek. Bu en iyi araştırılan hücre tipine özel bir hücre içi protein için paralel olarak immünolojik işaretleme ile gerçekleştirilir.
- Bant yoğunluğu ölçmek, toplam protein ekspresyon seviyesinin bir yüzdesi olarak görece protein yüzey yoğunluğunu hesaplamak.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Nöronal dopamin taşıyıcı hücre hatları 16-20 PKC aktivasyonuna karşılık olarak yerleştirilebilir. Hücre dizileri ve ifade sistemlerinin çeşitli kaynaklı PKC DAT yüzey kayıp gösteren çok sayıda raporlara rağmen, bu kültüre, dopaminerjik nöronların 21-23, bu bulguyu teyit etmek zor olmuştur. Biz doğrudan DAT yetişkin dopaminerjik nöronlarda PKC aktivasyonuna karşılık olarak içselleştiren olup olmadığını test etmek için fare striatal dilimleri kullanılır. Dilim hazırlandıktan sonra, dilimler aynı düzlemde olan orta hatta ve dilimler boyunca hemisected 37 ° C'de, 30 dakika boyunca 1 uM forbol miristat 13-asetat (PMA) ± tedavi edildi Dilimler hızla soğutulmuş ve yüzey proteini, biyotinile edilmiş ve Protokol tarif edildiği gibi izole edilmiştir. Muafiyet benekleri DAT için sondalandı ve aynı zamanda tirosin hidroksilaz (TH) için olan, paralel olarak, biyotinilasyon reaktif dopaminerjik nöronların herhangi bir hücre içi erişim elde olmadığını ölçmek için. Görüldüğü gibiŞekil 1 (en iyi), biz hücre yüzeyinde toplam DAT 81.4 ±% 5.8 ile, bazal (araçla tedavi edilmiş) koşullar altında fare striatumunda sağlam DAT yüzey ekspresyonunu tespit edildi. 1 uM PMA, 30 dakika, 37 ° C ile PKC aktivasyonu önemli ölçüde plazma zarından DAT% 30 kayıp ~ karşılık 60,8 ± 5,2%, toplam DAT, DAT yüzey ekspresyonunu azalmıştır. Aksine, toplam TH sadece 1.6 ±% 0.4, hücre içi lokalizasyonu ve biyotinilasyon reaktif dopaminerjik nöronların hücre içi dışında olduğunu teyit ile tutarlıdır (Şekil 1, alt), biyotinile edildi.
Şekil 1. Akut PKC aktivasyonu yetişkin striatal nöronlar, dopamin taşıyıcı yüzey düzeylerini azaltır. Fare Striatal Dilim Biotinylation. Akut fare striatal dilim Protokolü de tarif edildiği gibi hazırlandı ve ± 1 uM PMA, 30 dak, 37 ° C'yi tedavi edildi Yüzey proteinleri, kovalent olarak biyotin ile birleştiirlebilir ve toplu streptavidin kromatografi ile izole edilmiştir. Örnekler, anti-sıçan DAT ve fare anti-TH antikorları ile SDS-PAGE ve immunoblotting uygulandı. Reaktif bantlar nonsaturating gruplardan bir VersaDoc CCD kamera görüntüleme istasyonu ve yoğunlukları ile yakalanan Miktar Bir yazılımı kullanılarak ölçüldü. Top: belirtilen tedavilerin aşağıdaki biyotinilatlı ve toplam DAT ve TH görüntüleme Temsilcisi immünoblot. Bottom: Ortalama veri. Biyotinilat protein sinyal% toplam kontrolden önemli derecede farklı SEM * ± protein, Student t testi, p <0.03, n = 6 olarak ifade edilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Beyinde kritik etkileri sinaptik sinyal endositik kaçakçılığı, kantitatif yetişkin nöronlarda protein yüzey ifade değişikliklerini ölçmek için zor kanıtlamıştır uzun zamandır bilgimiz rağmen. Bu çalışmada, akut beyin dilimleri yüzey proteini ex vivo etiketlemek için güvenilir bir yaklaşım rapor. Sinaptik bağlantıları ve bunların hazırlanması saat sonra hücre canlılığı muhafaza edilmesi gibi beyin dilim hazırlıkları, elektrofizyolojik kayıtlar için yarar bir süredir devam eden bir geçmişi var. Ayrıca, dilimleme stratejileri ilgi çeşitli beyin bölgeleri arasında belirli sinaptik bağlantıları korumak için optimize edilebilir.
Beyin-türevli hazırlıklarına nöronal protein trafiğini araştıran önceki çalışmaların çok öncelikli Sinaptozomlarda ve primer kültür nöronları bağlıydı gelmiştir. Akut dilim biotinilasyon yaklaşım metodu inci birinin üzerinde çeşitli avantajlar sunuyorese: sinaptozomlar fiziksel akson çıkarılır ve sadakatle sağlam nöronal protein trafiğini özetlemek için gerekli moleküler faktörleri içeremez. Ayrıca, sinaptozomal hazırlıkları genellikle deneysel sonuçlar çarpık olabilir zar parçaları ile kirlendi. Ve primer nöron kültürlerinden tipik olarak uygun bir hücreye spesifik eksprese kaçakçılığı mekanizmaları da olgun nöronal fenotipleri ayrışmıştır olmayabilir gelişimsel olarak olgunlaşmamış nöronlar türetilmiştir. Bunun aksine, akut dilimleri, hücre canlılığının yüksek dereceli ve yetişkin hayvanlardan türetilmiştir. Ayrıca, yüzey ticareti gibi gen verici / demonte, optogenetic nöronal uyarım / engellenmesi, ya da in vivo ilaç tedavileri veya davranış uyarlamaları aşağıdaki gibi in vivo moleküler manipülasyonlar, aşağıdaki karşılaştırılabilir.
Pek çok avantajı ex vivo s olmasına rağmenyaklaşım bitleri, çeşitli sınırlamalar da vardır. Akut (noncultured) Beyin dilimleri sınırlı canlılığı ve bu nedenle de kronik ilaç tedavileri için uygun değildir. Ayrıca, biz onlar dilimleri hızla soğutulmuş ve rewarmed olan sıcaklık kaydırma deneyler sırasında canlı kalmaz görülmektedir. Potansiyel in vivo tedaviler öncesinde deneyler için üstlenilen olabilir süreyi sınırlayan, P21-P35 farelerde hazırlanan Bundan başka, dilim en geçerli bulunmaktadır. Nitekim, yüksek sukroz kesim çözüm kullanarak, biz DAT kaçakçılığı az tekrarlanabilir P35-P42 farelerde (Cebrail ve Melikian, yayınlanmamış veri) hazırlanan dilimler gözlenen olduğunu bulmak. Ancak, bu yaklaşım, metodolojik parametreleri yaşlı hayvanları (yani kullanarak gerektiren mükemmel bir alternatif Zhao ve ark. 24 tarafından açıklandığı gibi modifiye dilim hazırlık kullanarak yaşlı hayvanlarda belirgin bir iyileşme dilim canlılığı görüyoruz. Aşağıdaki eitOnun viral aracılı protein / RNA ekspresyonu, kurulması davranışlar ya da in vivo ilaç tedavileri kronik).
Deney sonucunu etkileyebilecek çeşitli ek teknik faktörler vardır. Bu deneysel önce sayısal deneyler teşebbüs Toplam lizat proteini, belirli bir miktarda, biyotinile edilmiş proteinin tüm yakalamak için gerekli olan en uygun boncuk / total protein oranını tespit etmek şarttır. Bu sorun sık sık gözden kaçan, ancak protein yüzey ifade değişikliklerini tespit edememek belirleyici faktör olabilir. Biyotinile edilmiş proteinin tüm kantitatif olarak tekrar elde değilse, yüzey düzeylerindeki değişiklikler tespit edilemeyen ya da yanlış ölçülür ya da olacaktır. Sonuçlarını etkileyebilecek diğer değişken doku dilimleri ayırmak için kullanılan liziz tamponu hacmidir. Kullanılan mutlak doku kitlesi faiz araştırılmaktadır bölgede bağlıdır, ve likel olacaky, tam doku çözünürlüğünü elde etmek için daha fazla veya daha az liziz tampon gerektirir. Bu nedenle, son lisatı, protein konsantrasyonları da beyin bölgeleri arasında değişebilir. Bu nedenle, parçalama koşullar ampirik olarak, belirli bir beyin bölgesi için belirlenen ve bağımsız deneyler arasında sabit tutulmalıdır.
Özet olarak, ex vivo akut beyin dilimleri kullanılarak yetişkin nöronların nöronal protein kaçakçılığı ölçmek için ayrıntılı bir protokol sağlamaktır. Bu yaklaşımın kullanılması nöronal fonksiyonu altında yatan endositik ticareti mekanizmaları daha derinlemesine anlaşılmasına yol açması muhtemeldir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar finansal ilgilendiriyor bu çalışma ile bu çatışma var.
Acknowledgments
Bu çalışma HEM NIH hibe DA15169 ve DA035224 tarafından finanse edildi
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| sulfo NHS-SS-biotin | Pierce | 21331 | |
| Streptavidin agarose | Pierce | 20347 | |
| IgG-free, Protease-free bovine serum albumin | Sigma | A3059 | |
| Vibrating microtome sectioner | various | ||
| Shaking water bath | various | ||
| Millicell mesh-bottomed inserts (8 µm pore size) | Millipore | PI8P 012 50 | These can be washed by hand and reused |
References
- Conner, S. D., Schmid, S. L. Regulated portals of entry into the cell. Nature. 422, 37-44 (2003).
- Zastrow, M., Williams, J. T. Modulating neuromodulation by receptor membrane traffic in the endocytic pathway. Neuron. 76, 22-32 (2012).
- Leto, D., Saltiel, A. R. Regulation of glucose transport by insulin: traffic control of GLUT4. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 13, 383-396 (2012).
- Liu, Y. W., Lukiyanchuk, V., Schmid, S. L. Common membrane trafficking defects of disease-associated dynamin 2 mutations. Traffic. 12, 1620-1633 (2011).
- Li, X., DiFiglia, M. The recycling endosome and its role in neurological disorders. Prog. Neurobiol. , 127-141 (2012).
- Sandvig, K., Pust, S., Skotland, T., van Deurs, B. Clathrin-independent endocytosis: mechanisms and function. Curr. Opin. Cell Biol. 23, 413-420 (2011).
- Kumari, S., Mg, S., Mayor, S. Endocytosis unplugged: multiple ways to enter the cell. Cell Res. 20, 256-275 (2010).
- Barry, M. F., Ziff, E. B. Receptor trafficking and the plasticity of excitatory synapses. Curr. Opin. Neurobiol. 12, 279-286 (2002).
- Bredt, D. S., Nicoll, R. A. AMPA receptor trafficking at excitatory synapses. Neuron. 40, 361-379 (2003).
- Kerchner, G. A., Nicoll, R. A. Silent synapses and the emergence of a postsynaptic mechanism for LTP. Nat. Rev. Neurosci. 9, 813-825 (2008).
- Malinow, R., Malenka, R. C. AMPA receptor trafficking and synaptic plasticity. Annu. Rev. Neurosci. 25, 103-126 (2002).
- Borgland, S. L., Malenka, R. C., Bonci, A. Acute and chronic cocaine-induced potentiation of synaptic strength in the ventral tegmental area: electrophysiological and behavioral correlates in individual rats. J. Neurosci. 24, 7482-7490 (2004).
- Dong, Y., et al. Cocaine-induced potentiation of synaptic strength in dopamine neurons: Behavioral correlates in GluRA(-/-) mice. PNAS. 101, 14282-14287 (2004).
- Hyman, S. E., Malenka, R. C., Nestler, E. J. Neural mechanisms of addiction: the role of reward-related learning and memory. Annu. Rev. Neurosci. 29, 565-598 (2006).
- Thomas, M. J., Malenka, R. C. Synaptic plasticity in the mesolimbic dopamine system. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 358, 815-819 (2003).
- Sorkina, T., Hoover, B. R., Zahniser, N. R., Sorkin, A. Constitutive and protein kinase C-induced internalization of the dopamine transporter is mediated by a clathrin-dependent mechanism. Traffic. 6, 157-170 (2005).
- Holton, K. L., Loder, M. K., Melikian, H. E. Nonclassical, distinct endocytic signals dictate constitutive and PKC-regulated neurotransmitter transporter internalization. Nat. Neurosci. 8, 881-888 (2005).
- Loder, M. K., Melikian, H. E. The dopamine transporter constitutively internalizes and recycles in a protein kinase C-regulated manner in stably transfected PC12 cell lines. J. Biol. Chem. 278, 22168-22174 (2003).
- Melikian, H. E., Buckley, K. M. Membrane trafficking regulates the activity of the human dopamine transporter. J. Neurosci. 19, 7699-7710 (1999).
- Daniels, G. M., Amara, S. G. Regulated trafficking of the human dopamine transporter. Clathrin-mediated internalization and lysosomal degradation in response to phorbol esters. J. Biol. Chem. 274, 35794-35801 (1999).
- Sorkina, T., et al. RNA interference screen reveals an essential role of Nedd4-2 in dopamine transporter ubiquitination and endocytosis. J. Neurosci. 26, 8195-8205 (2006).
- Eriksen, J., et al. Visualization of dopamine transporter trafficking in live neurons by use of fluorescent cocaine analogs. J. Neurosci. 29, 6794-6808 (2009).
- Rao, A., Simmons, D., Sorkin, A. Differential subcellular distribution of endosomal compartments and the dopamine transporter in dopaminergic neurons. Mol. Cell Neurosci. 46, 148-158 (2011).
- Zhao, S., et al. Cell type-specific channelrhodopsin-2 transgenic mice for optogenetic dissection of neural circuitry function. Nat. Methods. 8, 745-752 (2011).
