מיפוי מבוסס AFM של תכונות אלסטיות של קירות תא: ברקמות, נייד, והחלטות subcellular

Abstract

אנו מתארים שיטה שפותחה לאחרונה למדידת תכונות מכאניות של פני השטח של רקמות צמח באמצעות מיקרוסקופ כוח אטומי (AFM) מיקרו / ננו חריצים, לAFM JPK. באופן ספציפי, בפרוטוקול זה אנו מודדים את מודול יאנג לכאורה של קירות תא ברזולוציות subcellular על פני אזורים של עד 100 מיקרומטר x 100 מיקרומטר בmeristems הפרחוני, hypocotyls, ושורשים. זה דורש הכנה מדוקדקת של המדגם, הבחירה הנכונה של מיקרו indenters ועומק כניסה. כדי להסביר את דופן תא אך ורק נכסים, מדידות מתבצעות בתמיסות מרוכזות מאוד של מניטול כדי plasmolyze תאים ובכך להסיר את תרומתו של לחץ turgor התא.

בניגוד לטכניקות קיימות אחרות, באמצעות indenters שונה ועומקי כניסה, שיטה זו מאפשרת מדידות multiscale בו זמנית,

עם זאת, מספר מגבלות יישארו: השיטה יכולה לשמש רק על דגימות קטנות למדי (כ -100 מיקרומטר קוטר) ורק ברקמות חיצוניות; השיטה היא רגישה לטופוגרפית רקמות; הוא מודד רק היבטים מסוימים של תכונות מכאניות המורכבת של הרקמות. הטכניקה מפותחת במהירות וסביר להניח כי רוב המגבלות האלה ייפתרו בעתיד הקרוב.

Introduction

צמיחה בצמחים מושגת על ידי ההרחבה מתואמת של קירות תא הנוקשה המקיפים כל תא ותא של האורגניזם. צבירת ראיות מצביעה על כך שזאת היא באמצעות השינוי של דופן תא כימיה שצמחים מקומיים לשלוט התרחבות זו. הוא חשב ההתרחבות שמונעת בעיקר על ידי לחץ על דפנות תאים, הנגרמות על ידי לחץ turgor הגבוה של התא; תגובת זן זה ללחץ turgor נשלטת על ידי התכונות מכאניות של קירות תא ^1. מעט ידוע על התכונות מכאניות הללו וכיצד הם משתנים במהלך התפתחות. יתר על כן מעט מאוד ידוע על איך התכונות מכאניות האלה נשלטות והאם פידבקים לתרום לשנות דופן תא כימיה באופן שמתואם, ככל הנראה, על פני רקמה. אם אנו רוצים להבין את הקשר בין שינויים כימיים ומכאניים בקירות תא צמח במהלך פיתוח, וסופו של דבר איך האינטראקציות מיקרוסקופיות האלה למשול צמחצמיחה מקרוסקופית של, שיטה שיכולה לפקח על תכונות מכאניות של קירות תא בפיתוח איברים בקנה המידה התאי או רקמות נדרשת.

שיטת מיקרוסקופ כוח האטומי (AFM) שתוארה כאן, המבוססת על לחיצות רקמת מיקרומטר או ננומטר או חריצים, פותח בדיוק כדי למדוד את התכונות מכאניות של קירות תא בפיתוח איברים בו זמנית ברזולוציות subcellular ועל פני אזורים שלמים של רקמות. יש שיטות אחרות או ברזולוציה שהיא נמוך מדי או גבוהה מדי: extensometer היא רק מסוגלת למדוד את התכונות מכאניות הממוצעת של כל רקמה בקנה מידת מילימטר ^2-4, בקנה מידה שהיא למשל גדול מדי כדי למדוד את האירועים בתחילת organogenesis; microindenter יכול לקחת מדידות ברזולוציה subcellular בקנה המידה ננומטרי, אבל זה מוגבל למדידת תאים מבודדים ולא קבוצות של תאים או איברים ^5-7. עם AFM, דורשרקמת ד, סלולרית, והחלטות subcellular יכולים להיות מושגת על ^8-10. לאחרונה כמה פרוטוקולים פותחו במיוחד כדי למדוד את המכניקה של רקמות צמחים שיכולים לשמש גם ^{11, 12.}

אנו נציג כאן כיצד להעריך את האלסטיות של הרקמות באמצעות מדידה של מודול יאנג לכאורה ^13.

מודול יאנג משמש בדרך כלל כדי לתאר את הקשיחות של חומר. במהלך עיוות קטנה את הכוח הדרוש כדי לעוות חומר הוא יחסי לאזור של כניסה. מודול יאנג הוא מקדם זה. במקרה של חומר הומוגני רציף אותו מקדם יימדד ללא קשר לסוג הכניסה (גודל וצורה), אבל ישתנה עם המהירות של המדידה. במקרה של המבנה המורכב של רקמת צמחים, ראה עד כה כי הכוח הוא פרופורציונאלי לעיוות המאפשרת הקביעהמקדם של מידתיות שאנחנו שם "מודול הצעיר לכאורה". בניגוד לכך מבמדיות מתמשכת בצמחים, מודול הצעיר לכאורה זו הוא רגיש לגודל של הכניסה. זה לא מתאימות לmoduli הצעיר של דופן תא טהורה. זה הכי טוב מתאר את האלסטיות של הפיגומים של תא הקיר של הרקמה.

Protocol

1. הכן זכוכית שקופיות להרכבה לדוגמא

1. הכן imbedding תקשורת agarose: 0.7% agarose התכה הנמוך במניטול 10% (במים).
2. באמצעות מכשיר מתכת חזק (טיפ לדוגמא: תרגיל, סיד), לחרוט את אזור סנטימטר 0.5 x 0.5 במרכז שקופית זכוכית מיקרוסקופית. או במקום, להדביק חתיכה קטנה של lamella זכוכית (כ -20 x 200 מיקרומטר) לשקופית הזכוכית באמצעות דבק Araldite. הערה: זה לחספוס פני השטח על מנת להקל את ההדבקה של agarose כדי להבטיח כי מקלות agarose תקשורת או תיקונים לשקופית. ניתן לעשות שימוש חוזר שקופית זו.
3. מקם טיפה של כ -20 μl של imbedding תקשורת agarose על האזור הצרוב של שקופית הזכוכית. זה נותן שכבה דקה של agarose.
4. אחסן את שקופיות הזכוכית בקופסא לחה ולחכות לתקשורת agarose כדי לחזק.

2. ביתור והרכבת דוגמאות meristem

1. meristems Microdissect לImagi confocalng: להסיר את ניצני פרחים אחד אחד מהגזע על ידי משיכת אותם עם פינצטה העדינה במיוחד. חשוב להסיר את כל ניצני הפרחים עד הניצנים שאינו מציגים עלי גביע (כלומר primordia P1 ^14).
2. באמצעות סכין גילוח או הקצה של פינצטה, חתך את meristem מהגזע. החתך צריך להיות מקביל לאזור של פני השטח meristem שיימדד עם AFM. השיא שהושג צריך להיות בין 300 מיקרומטר ומיקרומטר 600 גבוה להתאים מתחת לקצה AFM.
3. דחוף את הקודקוד לסרט של מדיה agarose מוכנה בשלב 1.1.4. בחר מיקום בשקופית זכוכית / agarose ולדחוף בעדינות כך שmeristem הוא גם ישירות במגע עם שקופיות הזכוכית ובולט החוצה מן agarose. זה חיוני כדי למקם את meristem בagarose בתוך כמה שניות שאחרי החתך שלה מהגזע. הערה: זו על מנת למנוע meristem מייבוש. בשלב זה, meristem יעמוד בCRACk כי agarose שבר על הפעלת לחץ.
4. הכן כמה meristems דרך זו להדמיה אצווה, ובלבד שהם באותו הגובה וממוקמים פחות מ -500 מיקרומטר זה מזה בשקופית. שמור meristems הכין בתיבה הלחה בזמן לנתח דגימות נוספות.
   הערה: הוא מגביל את הווריאציה המגיעה מהכיול. באופן אידיאלי 2 דוגמאות של כל תנאי יכולה להיות מוכנות ונמדדו באופן אקראי. עד כה אין השפעה נצפית של הדמיה אצווה על המדידה (תגובת לחץ מושרה). זה יכול להיות הודות לדילול של מולקולות איתות מתח באגר ו / או הפתרון הגובר. לחלופין תגובת הלחץ היא זהה, ללא קשר לכמות המדגם מוכן.
5. לפני שעברתי לשלב הבא, ודא שהגבול בין meristem וניצני פרחים יבש. אם לא, להסיר בעדינות את המים העודפים באמצעות נייר סינון. זה צריך למנוע בשלב הבא שנמסagarose מציף המדגם בשל כוחות נימיות.
6. עם טפטפת 20 μl, להוסיף מספיק נמס ההרכבה agarose כדי למלא את הסדק שנוצר בשלב 1.2.3. ולהקיף את כל meristem. Agarose צריך להגיע לרמה של הצלקת של הניצן שהוסר הפרח (primordium). כדי להשיג זאת, ייתכן שיהיה צורך להוסיף agarose בכל קצה של הסדק.
7. כאשר agarose הוא הוסיף, זה יציף במהירות לתוך הסדק; באמצעות פיפטה, למצוץ את חלק מומס ההרכבה agarose כדי להבטיח שmeristem הוא הנקודה הגבוהה ביותר בשקופית. זה מתקן את meristem כך שהוא לא יכול לזוז במהלך הדמיה.

3. דוגמאות שורש או hypocotyl הרכבה

1. לשורשים וhypocotyls, לא לנתיחה היא הכרחית. בשכבה הדקה של agarose בשקופית הזכוכית מוכנה, לעשות חריץ באופן ישיר מעל לחרוט בזכוכית או יחד lamella זכוכית. מקם את השורש או hypocotyl בחריץ זה להבטיח כי היא נמצאת בקשר עםזכוכית לכל אורכו.
2. לפני שעברתי לשלב הבא, לוודא כי המדגם הוא יבש על פני השטח שלה. אם לא, בעדינות להסיר את עודפי מים באמצעות נייר סינון.
3. הוספה נמס הרכבה agarose סביב המדגם כמו בשלב 1.2.6.

4. AFM הכנה ורגישות כיול (לJPK Nanowizard AFM)

1. הר שלוחה על AFM. שלוחה צריכה להיות מותקנת עם indenter בצורה עגולה. הרדיוס יקבע את x, y, z ברזולוציה ועומק הכניסה שבמדידה מדויקת יכולה להיות בארכיון.
   1. לקחת מידות טווינה-ננו על פני השטח של האפידרמיס, השתמש indenter עגול 50 רדיוס ננומטר; לקחת מידות mesoscale, השתמש indenter עגול מיקרומטר רדיוס 0.5; לקחת מידות microscale (מול 2-3 תאים), השתמש indenter עגול 2.5 מיקרומטר רדיוס.
2. מקם את הלייזר בקצה שלוחה. יישר את הלייזר לאמצעשל השובה באמצעות המראה.
3. מקם כוס נקייה מתחת AFM.
   הערה: את הפעולות הבאות מוגדרת להפוך את האות של עמדת הלייזר על קולט AFM לעיוות של שלוחה, ועל ידי הערכת קבוע הקפיץ של שלוחה, לתרגם אותה לכוח.
4. גישה עם "נקודה להגדיר" כוח היעד של V. 1
5. בחר "ספקטרוסקופיה כוח". האם כניסה על ידי קביעת "הנקודה להגדיר יחסי" המקסימלי ל2 V, "להרחיב את המהירות" ל40 מיקרומטר / שנייה, ואת "אורך z" עד 5 מיקרומטר.
6. מתפריט "כיול מנהל", בחר את החלק הליניארי של העקומה קדימה כדי להתאים את הרגישות באמצעות הכפתור "בחר טווח בכושר". "הנקודה להגדיר יחסי" צריכה להפוך מ" וולט "ל" מטר ".
7. מתפריט "מנהל כיול", בחר "קבוע קפיץ" כדי להעריך את אלasticity של שלוחה באמצעות תנודות תרמיות. לחץ על "הפעל" כדי להשיג את עלילת הצפיפות ספקטרלית של שלוחה. מצא את שיא התהודה עם התדר הנמוך ביותר. להתאים אותו באמצעות הכפתור "בחר טווח בכושר".
   הערה 1: לפרטים נוספים על כוונון תנודות תרמיות, לקרוא קוק ואח' ^15.
   הערה 2: עדיף להשתמש בשיטה ישירה כדי להעריך את האלסטיות של שלוחה באמצעות שלוחה התייחסות (או חומר עם קשיחות ידועה). אחד משמש כאן נתרם באדיבות על ידי עאטף Asnacios ^16.
8. הוסף 200 μl של 10% פתרון מניטול תחת קצה שלוחה. ליישר מחדש את הלייזר לאמצע השובה באמצעות המראה.
9. לכייל מחדש את הרגישות: מתפריט "כיול מנהל", לחץ על הכפתור "לא ידוע"; חזור על שלבים 2.3 דרך ל2.5.

. 5 קליטים נתונים: מודול מיפוי של יאנג לכאורה

מקם את הדגימות הרכובים תחת AFM ולהוסיף טיפת 500 μl של 10% פתרון מניטול על המדגם. פתרון מניטול plasmolyzes התאים בתוך דקות.

גישה עם כוח יעד ("להגדיר נקודה") של 20 ננ ("נקודה מוגדרת" לא צריכה להיות יותר מ 3 V)

כניסה עם "נקודת מערכת יחסי" של 200 NN, "להרחיב את המהירות" של 40 מיקרומטר / sec, ו" אורך z "של 5 מיקרומטר.

התאם את "נקודה להגדיר יחסי" על מנת לקבל כניסה של 100 ננומטר ל200 ננומטר רכובים שלוחה או 0.5 מיקרומטר לשלוחה רכוב 1 מיקרומטר / 5 מיקרומטר.

במצב "כוח מיפוי", בחר אזור לסריקה: לmeristems, 70 מיקרומטר x מיקרומטר 70 עם רזולוציה ("פיקסלים") של 64 x 64; לhypocotyls ושורשים, עם רזולוציה של 64 x 64 100 מיקרומטר x 100 מיקרומטר.

העיתונות לסרוק להשיק את הניסויים. שמור את הפלט.

. 6 ניתוח נתונים: חישובי מודול יאנג לכאורה

1. פתח את קובץ הנתונים בתוכנה לניתוח נתונים.
2. בחר "עיבוד אצווה" כדי להחיל את אותו ניתוח לכל העקומות של מפה אחת.
3. בחר באפשרות "לתקן את הגובה עבור הכיפוף של שלוחה" כך כדי לחלץ את עומק הכניסה.
4. בחר "הפונקציה של יאנג מודולוס כושר" שתניח הכוח הוא פרופורציונאלי לאזור של כניסה. הגדר את "צורת הקצה" לParabolic להניח שצורת הכניסה היא parabolic.
5. ציין את הרדיוס של הקצה.
6. בחר מעדיף את העקומה "לסגת" לניתוח משום שהוא פחות רגיש לטופוגרפיה מאשר עקום "להאריך". עם זאת, אם יש דבק משמעותי של החללית במהלך "לסגת", להשתמש בעקומה "להאריך", שאינה רגיש לדבק.
7. ערכהיחס פואסון ל0.5. לחץ על לנתח ולשמור את הפלט.

Representative Results

באיור 1 אנו מציגים מפות טיפוסיות יאנג moduli של meristems הפרחוני (איורים 1 א ו-1B) hypocotyls, צעיר ומבוגרת (דמויות 1C-F), וmeristem שורש (איור 1G ו1H). בכל הניסויים indenter הוא חצי כדור, אבל הרדיוס שלו שונה, כך שיכולות להיות מושגת על החלטות מרחביות שונות דמויות 1C ו1D להראות תוצאות אופייניות לindenters טווינה-ננומטרי (50 רדיוס ננומטר) עם חריצים טווינה-ננומטרי (ננומטר 50 עומק).; . Cartographs לחשוף heterogeneities microscale בקירות תא פני השטח של תאי אפידרמיס hypocotyl איורים 1 א ', 1E, ו1G להראות תוצאות אופייניות לindenters mesoscale (500 רדיוס ננומטר) עם חריצים mesoscale (500 עומק ננומטר) לmeristem הפרחוני, hypocotyl, ושורש; שים לב שבגלל הרדיוס indenter עולה על הקוטר של דופן תא מעריך טווינה-כניסה זוmoduli 'לכאורה' הצעיר של קירות תא anticlinal (ראה Peaucelle et al. ^9,17 וBraybrook et al. ¹⁰ לפרטים נוספים). לבסוף, 1B איור מראה cartograph לindenters microscale (2.5 מיקרומטר רדיוס) עם חריצים mesoscale (500 עומק ננומטר); באופן מעניין, הדמיה ברזולוציה זו חשפה ריכוך רקמות במהלך החניכה איבר שקדם כל צמיחה גלויה ^9.

כעת אנו מדגישים ולהציע פתרונות חלקיים לארבעה קשיים טכניים שבדרך כלל מתעוררים כאשר באמצעות AFM כדי למדוד את התכונות של פיתוח איברי צמח. ראשית, דוגמאות ניתן שנעוצים בצורה לא נכונה בagarose: אזורים שמכוסים בagarose לא ניתן למדוד כמו שצריך (ראה קצוות של חץ 1E איור). כדי לפתור בעיה זו, נסה לחזור על הצעד 1.2.6. שנית, דגימות שלא כדין קבוע לשקופית הזכוכית עשויות לעבור במהלך הניסוי; אז פסים חריגים מופיעים בתמונות חיבלdecorrelation בין השמאל והסריקות תקין קידום (איור 1F). כדי לפתור זאת, נסה בזהירות חזרה לדוגמא ההכנה. שלישית, Z-מגוון של הגובה של המדגם חייב להיות מתחת לסף מסוים. אין הגבלה על הגובה הממוצע של המדגם בZ-הכיוון האנכי, אבל מגוון בגובה בכיוון-z (המרחק בין הנקודות הגבוהות ביותר והנמוכות ביותר) חייב להיות פחות מ 15 מיקרומטר, אחרת הסריקה תהיה בוטלה (ראה איור 1; הגדרות נמצאות בNanoWizard AFM). סיבה לכך הוא, במהלך הסריקה, AFM באופן אוטומטי מתאים את הגובה של שלוחה כדי להתאים את הגובה של המדגם, אך בסריקה בודדת הגובה של שלוחה יכול להשתנות על ידי רק 15 מיקרומטר. כדי לפתור בעיה זו, השתמש במודול CellHesion JPK, דבר המגדיל את Z-מגוון 100 מיקרומטר, כפי שמודגם באיור 1E-G. רביעית, השיטה היא רגישה לטופוגרפיות פני השטח: יותר מדגם השטח הוא Orienteבמקביל ד לכיוון הכניסה, פחות אמין המדידות. במדגם השורש מוצג באיור 1G-H, את קירות התא במקביל לציר של השורש הארוך אינם גלויים בקצוות העליונים ותחתונים של הסריקה: כאן את פני השטח השורש הוא רחוק מלהיות בניצב לכניסה. בmeristem, באופן דומה, קירות תא בקצוות של ניצני פריחה לא נמדדו כראוי (איור 1 א). לחריצים טווינה-ננומטרי (איור 1 ג), שוב אפקט טופוגרפי זה הוא ציין: הקצוות של התאים נמדדים באופן שגוי כמו להיות דווקא רך שבו עקומת התאים מהמטוס של שלוחה. כלי לניתוח נתונים שיכול להסביר את תופעות טופוגרפיות אלה יכול לפתור את חפץ זה בעתיד, אבל כלי כזה אינו זמין עדיין.

thaliana ארבידופסיס. (A, B) meristem פרחוני, hypocotyl הכהה גדל (CF), meristem שורש (G, H). (A, E, F, G, H ) הדמיה באמצעות שלוחה עם קצה כדורי 0.5 מיקרומטר רדיוס אשר מודד moduli הצעיר של קירות תא anticlinal בmesoscale. (B) meristem פרחוני נמדד באמצעות שלוחה עם קצה כדורי 2.5 מיקרומטר רדיוס, מגלה ירידה של 'לכאורה' tissular moduli הצעיר בעמדותיהם של איברים בעתיד, ראה חץ. (C, D) ברזולוציה subcellular של moduli צעיר דופן תא השטח בhypocotyls-גדל כהה נמדד באמצעות שלוחה עם קצה כדורי 50 רדיוס ננומטר. (ב) הפלות סריקה בשל מגוון בגובה העולה על מדגם Z-הטווח המרבי של AFM. סריקה מטושטשת (F), וכתוצאה מתנועת המדגם במהלךהניסוי בשל קיבוע לא תקין. (ה) סריקה כאשר שכבה דקה של agarose היא בחלק העליון של המדגם (חץ). סרגל קנה מידה (AC, EH) 10 מיקרומטר, (ד ') 1 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Discussion

בצמחים, תכונות מכאניות משתנות לשחק תפקיד מרכזי בהכוונת צמיחה והמורפוגנזה. נכון להיום חלה התקדמות רבה בהתרת הרשתות הגנטיות וכימיות השולטות בגידול צמחים, אבל הידע של איך רשתות אלה תורמות ל, ומושפע משינויים בתכונות מכאניות שלנו הוא מתוצרת מקומית. שיטה זו אמורה לאפשר לנו למלא את הפער הזה, וכך זה צריך להיות אינטרס חזק למדענים ללמוד כל היבט של גידול צמחים או המורפוגנזה. כעת אנו מסכמים את האתגרים ומגבלות של השיטה, והתחזית לעתיד.

הצעד המאתגר ביותר בפרוטוקול הוא הכנת מדגם. המדגם חייב להיות קבוע בחוזקה לשקופית הזכוכית עם agarose אבל agarose זה לא חייב לכסות את כל אזורים של המדגם שיימדדו. יתר על כן, יש ההכנה להסתיים מספיק מהר (תוך דקות), כדי למנוע התייבשות ובעדינות כדי למנוע נזק לרקמות: פצעnd הבצורת הם חזו להוביל לשינויים בלתי הפיכים בתכונות מכאניות של דופן תא ^18. עוד צעד מאתגר הוא לבחור את הגדרות מייקר הכניסה הנכונות AFM: תלוי בשאלה המדעית, רקמות, תאים, או ברזולוציה subcellular ניתן להשיג עם indenters שונה ועומקי כניסה. לקבלת מידע נוסף, ראה ^9,10.

יש השיטה מספר מגבלות. ראשית, השיטה מוגבלת למדידת תכונות מכאניות במשטחים של איברים; ניסיון לפתח פרוטוקול למדידת אזורים פנימיים של איברי resected מתנהל במעבדה שלנו. שנית, רקמות הבדיל עם טופוגרפיה משתנה מאוד מאוד קשות למדוד; לדוגמא, trichomes לחסום את הגישה של קצה AFM להאפידרמיס של עלים וגבעולים, ובאופן דומה, שערות שורש לחסום את הגישה של קצה AFM להאפידרמיס שורש. שלישית, השיטה מיושמת הטובה ביותר דגימות של אורך 100 מיקרומטר או less; זה יכול להיות בשימוש על דגימות גדולות יותר של עד 1 מ"מ, אבל זה דורש מדידות קרטוגרפיה רציפה זמן רב (כפי שמוצג באיור 1D ו 1E). לבסוף, צעדי AFM רק חלק מהמורכבות מכאנית של דופן התא: הוא מוגבל לניסויי כניסת דחיסה, ואילו קירות תא הם ג'לי מורכב שעשויים להראות תכונות מכאניות שונות, תלוי בסוג של עיוות (למשל המתח לעומת דחיסה). בהתחלה, נראה ששיטה זו מוגבלת לדחיסה להיות בלתי או מרחוק מסוגל להלשין על צמיחה, שהיא דופן תא נגזרה turgor מתיחת תהליך. עם זאת, למדידה יגדיל בשקל התשעים שלנו על meristem ^{9, 19} או על hypocotyl (נתונים שלא פורסמו) מצביע על קורלציה מדהימה בין הגמישות נמדדה באמצעות מודול הצעיר לכאורה והצמיחה. אנו מקווים כי בעתיד, פיתוח של טכניקה זו יסייע להבנת חידה זו.

שיטה המוצגת כאן רק נמדד היבטים מסוימים של התכונות מכאניות האלסטיות של רקמות צמחים, כפי שהוסבר לעיל. אבל רקמות חיות גם להתנהג viscously, ושילוב ההתנהגות ויסקו אלסטי וצפוי להיות חשוב לצמיחה והתפתחות ^16,20. עד כה הוזכר, ראה את תגובות של קירות תא לAFM מיקרו חריצים שהיו תלוי זמן על פני עשרות שניות - תגובה זו אופיינה כviscoelastic. בעבודה הקודמת שלנו שהצגנו שיטת AFM אחד כדי להעריך את תגובת viscoelastic זה ^9. רכוש תיווך צמיחה חשוב נוסף של רקמות הוא לחץ turgor המקומי של תאים. מדידת לחץ turgor אנו עומדים בפני אתגרים דומים: טכניקה אשר מודדת ברזולוציה mesoscale פני רקמות עדיין לא קיימת. Microprobes הלחץ בשימוש בצמחים היו, עד לאחרונה, מוגבל על ידי רדיוס הקצה של כוס, שהיא בגודל של תאי meristematic (מיקרומטר 5) ^{12, 21.} אחרהשדרה מאוד מבטיחה של מחקר היא לפתח שיטת AFM זה לשימוש ברקמות שאינן plasmolyzed; אנו מקווים, בדרך זו, כדי לחשוף את הקשר בין לחץ turgor התא בודד וצמיחת רקמות. שיטה זו בעצם תחול על מדידת turgor AFM כבר פותחה באמצעות כניסה באמצעות מכשירים אחרים ושימוש בתאים בודדים ^22-24.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
AFM	JPK	NanoWizard	All the 3-generation are able to do the work with the same preferment.
AFM stage	JPK	CellHesion	Required for sample with low topography (less than 11 µm between the lowest and the highest point in the area of force scanning).
AFM optics	JPK	Top View Optics	Very important in order to position the sample. Could be replaced by long range binoculars or a microscope.
Stereo microscope	Leica	M125	Any type of stereo microscope could do.
150 nm mounted cantilever	Nanosensors Rue Jaquet-Droz 1Case Postale 216 CH-2002 Neuchatel, Switzerland	R150-NCL-10	To measure only the cell wall at the surface of the epidermis use.
1 µm mounted cantilever	Nanosensors Rue Jaquet-Droz 1Case Postale 216 CH-2002 Neuchatel, Switzerland	SD-Sphere-NCH-S-10	To measure the mechanics of the cell wall orthogonal to the surface of the epidermis.
Tipless cantilever	Nanosensors Rue Jaquet-Droz 1Case Postale 216 CH-2002 Neuchatel, Switzerland	TL-NCH-20	To measure the local mechanics of the tissue (2-3 cell wide) use a 5 µm mounted cantilever. We attached a 5 µm borosilicate bead to a tipless cantilever.
5 µm silicon microspheres	Corpuscular	C-SIO-5
Araldite	Bartik S.A. 77170 Coubet, France		Araldite for fixing the bead to the tipless cantilever.
Low melting agarose	Fisher Scientific Fair Lawn, New Jersey 07410	BP160-100	34-45 °C gelation temperature
D-Mannitol	Sigma-Aldrich, 3050 Spruce Street, St. Louis, MO 63103 USA	M4125-500G
2 Stainless Steel No. 5 Tweezers	Ideal-Tek 6828 Balerna, Switzerland	951199