Summary
Hücre yüzey proteinleri biyolojik olarak önemli ve yaygın olarak glikosile bulunmaktadır. Biz kolay LC-MS tabanlı Proteomik analizler için bu proteinleri, çözünür hale zenginleştirmek ve deglycosylate burada bir glikopeptid-yakalama yaklaşımını tanıtmak.
Abstract
Hücre-dışı matris proteinleri de dahil olmak üzere hücre yüzeyi proteinleri, örneğin büyümesi, farklılaşması ve proliferasyonu gibi tüm önemli hücresel süreçleri ve fonksiyonlar, katılabilir. Bu proteinlerin kapsamlı bir karakterizasyonu biomarker keşif, hücre tipi belirlenmesi ve ilaç-hedef seçimi yanı sıra, hücre biyolojisi ve fizyolojisi anlayışımızı ilerletmek için yardımcı olmak için zengin bilgi sağlar. Yüzey proteinleri Ancak nedeniyle doğal olarak düşük yoğunlukta, yüksek hidrofobik ve ağır post-translasyonel modifikasyonlar, önemli analitik zorluklar oluşturmaktadır. Yüzey proteinleri üzerinde yaygın glikolizasyon yararlanarak, biz burada birkaç mevcut N-Glycoproteomics araçlarının avantajlarını entegre bir yüksek verimli glikopeptit yakalama yaklaşımını tanıtmak. Bizim yöntem yüzey proteinleri elde glıkopeptıtlerı zenginleştirmek ve LC-MS kullanılarak uyduruk Proteomikte için kendi glikanları kaldırabilirsiniz. Çözülmüş N-glycoproteome inf içerirprotein kimlik ve miktarı gibi glycoslasyonun sitelerinin ormation. Bu yöntem, kanser, kök hücreler ve ilaç zehirlenmesi gibi alanlarda bir dizi çalışma uygulanmıştır. Bu yöntemin örnekleri sınırlama nispeten büyük bir miktarı, sitosolik proteinler merkezli çalışmalara göre bu analiz için gerekli olan şekilde, bir yüzey zar proteinleri, en düşük yoğunlukta yer alır.
Introduction
Hücre yüzey proteinleri, hücre dışı çevre ile etkileşim ve bir hücrenin içine dışarıdan gelen sinyalleri iletir. Bu nedenle, hücre dışı matris proteinleri de dahil olmak üzere, bu proteinler, hücre biyolojisi ve çoğalma, büyüme, göç, farklılaşmadan benzeri yaşlanma ve fizyoloji kadar tüm yönleriyle kritik roller oynar. Yüzey proteinleri diğer hücrelerin, proteinler ve küçük moleküller 1-3 etkileşerek çalışır. Ilaçların fazla% 60 hücre yüzeyi proteinleri 4 hedeflenir gibi hücre yüzeyi proteinlerinin moleküler karakterizasyonu, biyologlar için değil, aynı zamanda farmasötik şirketler için sadece büyük bir ilgi çekmektedir.
Üstün duyarlılık, ve protein ve peptitlerin tanımlanması için verim ile tandem kütle spektrometrisi (MS), küresel, proteomik 5,6 çalışmalar için güçlü bir araç olmuştur. Oysa, yüzey proteinleri gibi, MS tabanlı Proteomikte için önemli sorunlar teşkilÇoğu yüzey proteinleri düşük miktarlarda ve ağır değişiklikler ile mevcut. Yüzey proteinleri membran-yayılan bölgeleri bunları hidrofobik hale getirmek; Bu, özellikle çok pasolu zar proteinleri için geçerlidir. Bir deterjan yardımı olmadan, sulu çözeltiler içinde zar proteinleri çözmek için olan, böylece zordur; Bununla birlikte deterjanların kullanımı genellikle protein tanımlama HPLC ve MS 1,7,8 performansını engeller. Bu nedenle, membran proteinleri zayıf doğrudan LC-MS tabanlı proteomik karakterize edilmiştir.
Glikozilasyon hücre yüzey proteinleri 9 içinde yer alan en önemli ve bol post-translasyonel modifikasyonlar biridir. Glikanların muazzam karmaşıklığı ve heterojenite peptidin MS sinyali 10 engelleyebilir. Bununla birlikte, pek çok yöntem proteomik yüzey proteinlerini zenginleştirmek ve önceki LC-MS analizi için proteinlerden şeker bölümlerine kaldırmak için bu tek değişiklik kullandık. Bu yöntems lektin bazlı afinite yakalama 11 ve hidrazid bazlı ya da borik asit bazlı kimyasal yakalama 12 hem de hidrofilik kromatografisi ayrımı 8,13 içerir. Glikanların kaldırılması normal proteinlere dönüştüren zar proteinleri ve büyük ölçüde MS karakterizasyonu kolaylaştırır. Glikosilasyon da zar proteinleri aksine, yüksek çözünürlüğe sahip olan salgılanmış proteinler yer alır, çünkü birçok glycoproteomic yöntem çözünür proteinler için optimize edilmiş, ve daha düşük seçicilik ve glikopeptid proteinleri 8,14 zar konuşlandırılmış olan duyarlılığı sahip olma eğilimi vardır. Başka yöntemler de ettirecek vardır, özellikle de, bu tür ultrasantrifüjleme 15 ve markalama stratejileri 16 kullananlar gibi hücre yüzeyi proteinleri. Membran proteinleri karakterize bizim yöntem ve diğer mevcut yöntemler arasında ayrıntılı bir karşılaştırma son zamanlarda 17 yürütülen ve sonuçları bizim yöntem eşit derecede iyi gerçekleştirebilirsiniz belirtti, eğer değildiTüm karşılaştırıldığında membran proteomiks yöntemlere göre daha iyi, ancak daha yüksek sadeliği ile.
Araştırmacılar bu yöntemi kullanmak yardımcı olmak için, burada detay genel bir protokol. Bu yöntem, mevcut Glycoproteomics stratejileri çeşitli avantajları entegre ve zar glikoproteinlerinin için özel olarak tasarlanmış olan, ancak yöntem salgılanan proteinler için de aynı derecede iyi çalışır. Bu yöntemin özellikleri şunlardır: 1) zar proteinlerinin tam bir çözünmesi, 2) kullanılarak bir katı madde yakalama alt katmanını kullanırken, potansiyel sterik engellemeyi ortadan kaldırmak için glikoproteinlerin glıkopeptıtlerın bir zenginleştirme, 3) hidrazid kimyası kullanımı ile kovalent bağlar oluşturmak için glikopeptidler ve yakalama alt-tabaka, bağlı glikopeptitler yüksek glycoselectivity için sıkı yıkama tolere edebilir, ve 4) yeteneği azalır örnek kaybı ve daha kısa işlem süresi için, bir tüp içinde tüm yakalama işlemi yapmak için bu gibi. Bir değişken okuyan için bu yöntemi uyguladıktan sonrahücreler ve dokular dahil olmak üzere, biyolojik örneklerin ety biz glikoproteinler 8,17,18 için yüksek seçicilik (> 90%) gözlenmiştir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1.. Hasat Membranlar
- Bir hücre peleti (~ 10 8 hücreleri) üzerine proteaz inhibitör kokteyli ile, hipotonik tampon maddesi (10 mM Tris-HCI, 10 mM KCI, 1.5 mM MgCl2, pH 8.0) ilave edilir ve buz üzerinde 15-30 dakika boyunca inkübe edin. Lyse şırınga iğneleri (5-10 geçiş) ile örnek geçen ya da bir Dounce homojenleştirici (15-30 vuruş) ile homojenize ile hücreler. Lisisin verimliliğini kontrol etmek Hemasitometre ve tripan mavi boya kullanın.
- 3000 gx 15 dk lizatının bir diferansiyel santrifüjleme ile mikrozomal fraksiyonu elde edilir ve daha sonra da 100,000 gx 2 hr. İlk santrifüj nükleer fraksiyonu olan bir pelet alır ve süpernatan daha sonra santrifüj plazma membranı hem de zara bağlı organelleri 8 içerir, mikrozom kısmı olan bir ikinci pelet, oluşturur. Nihai süpernatan, sitosolik fraksiyonu. Daha fazla analizana için -80 ° C dondurucu içinde mikrozomal fraksiyonlar saklayınaşağıda gösterildiği gibidir.
2.., Çözülür denatüre ve Digest Membran Proteinleri
- Denatürasyon tampon maddesi (40 mM Tris, 10 mM EDTA, 10 mM TCEP,% 0.5 Rapigest, pH 8) 'de mikrozomal fraksiyonu çözündürülür ve daha sonra 10 dakika boyunca 100 ° C'de çözelti inkübe edin.
- , Oda sıcaklığına kadar ısıtılmış çözeltisini 8 M nihai konsantrasyona kadar çözelti içinde çok yüksek saflıkta üre toz ekleyin ve 30 dakika boyunca 37 ° C'de inkübe örnek.
- 15 mM nihai konsantrasyona kadar numuneye iyodoasetamid stok solüsyonu ekleyin ve numune içinde serbest tioller alkillemek için oda sıcaklığında 30 dakika boyunca karanlıkta inkübe çözeltisi. 10 mM nihai konsantrasyona kadar numuneye DTT stok solüsyonu ilave edin ve aşırı iodoasetamid söndürmek için oda sıcaklığında diğer bir 10 dakika için çözelti inkübe edin.
- PH 8 40 mM Tris tampon maddesi ile elde edilen çözelti 10x seyreltilir, ve daha sonra trypsi bir 01:20 oranında numuneye tripsin eklemektoplam proteine n. Reaksiyon tamamlandıktan emin olmak için bir 37 ° C fırın içinde gece boyunca reaksiyonu sindirim koruyun.
- Yani Rapigest HCI, aynı zamanda deterjan bozulduğu bir durum ile pH 1'e numune solüsyonu asitleştirilerek sindirim iptal eder. 1 saat boyunca 37 ° C'de Rapigest düşürebilir ve santrifüjleme ile geliştirilen çökelmesini çıkarın.
- Bir C-18 katı faz ekstraksiyonu (SPE) kartuşlardan örnek peptidleri içeren ve hızlı vakumla ile elde edilen numunenin kuru süpernatantı temizlemek.
- Önce ve sindirim etkinliğini doğrulamak için ise tripsin hazmından sonra numune SDS-PAGE analizi yapın.
3.. Glikopeptid Yakalama
- Bağlama tamponu (100 mM sodyum asetat, pH 5.5) 'de temizlenmiş peptidler çözülür. Oda sıcaklığında, karanlıkta, 30 dakika için bir 10 mM nihai konsantrasyonda en peptit çözeltisi içine sodyum periodat ekleyin. Bu aldehitlere glikanlarında cis-diol grubu oksitlenir, Burada hidrazid kimya aracılığıyla reçineye bağlanması için glikanlar izin verir. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca, 20 mM nihai konsantrasyona ve pH 5 sodyum sülfit ile aşırı periodat söndürülür.
- Reçineye çift glikopeptidlere 01:04 (çözeltiye reçine) bir oranda peptit çözeltisi içine hidrazid türevlendirilmemiş reçine tanıtılması. , Tam bağlanma için uç uca rotasyon ile 1-2 gün boyunca 37 ° C'de reaksiyonu inkübe edin.
- Aşağıdaki her bir kez 1 ml reçine yıkanarak bağlanmamış peptidleri kaldırın: DI su, 1.5 M NaCl, metanol ve% 80 asetonitril. Son olarak, 100 mM NH4 HCO 3 sistemin tampon alışverişi için pH 8, 100 mM NH4 HCO 3 1 ml reçine, 3 kez yıkayın.
- (Isteğe bağlı) bağlı olmayan peptidlerin analizi için supernatant toplamak ve yıkar.
- Bir 37 ° C 'de bir gece boyunca inkübasyona PNGase F ile reçineden N-peptidi bırakınn sonuna kadar uç dönme. Santrifüj ve% 80 asetonitril yıkama tarafından yayımlanan peptidler toplayın. LC-MS analizi için hızlı vakumla elde edilen çözelti kurutun.
4.. Ayrıca Fraksiyonu (İsteğe bağlı)
Daha fazla örnek karmaşıklığını basitleştirmek için, elde edilen N-glıkopeptıtlerı ayırımlamak. Örneğin, 10 mM amonyak format,% 20 asetonitril ile pH 3'e kurutuldu peptidler içinde yeniden çözülür ve peptidleri fraksiyonlanması güçlü katyon alışveriş (SCX) kromatografisi kullanır. Elde edilen yıkama sıvısı kurutun ve daha sonra, ters fazlı LC-MS ile 8,17,18 Elde edilen peptid fraksiyonları analiz.
Çıkış N-glıkopeptıtlerın 5. Temizleme (İsteğe bağlı)
Endişeler peptidlerin potansiyel kirlenme artış ise,% 0.1 formik asit içine kurutuldu peptidleri yeniden çözünmesine ve daha fazla ters fazlı LC-MS analizi, önceki peptidleri temizlemek için bir MCX SPE kolon.
Reçine N-glıkopeptıtlerın seçici olarak ayrılması sırasında, PNGase F bir aspartik asit N-glikan bağlantılı asparagin dönüştürür. Bu nedenle, serbest N-glıkopeptıtlerın bir 0,9840 Da kütle kayma yoktur. Doğru bu peptidleri belirlemek için, bu değişiklik bu metionin ve sistein oksidasyon karbamido gibi ortak değişikliklerle birlikte, arama parametre ilave edilmesi gerekmektedir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Deneysel prosedür temsili bir akış şeması Şekil 1 'de özetlenmiştir. Etiketleme ve daha fazla fraksinasyon adımlar isteğe bağlıdır ve bilgilerini yeni yayın 18 tarif edilmiştir. Başka bir seçenek reçine ile reaksiyona girmeyen, değiştirilmemiş peptidleri, analiz etmektir. Değiştirilmemiş peptidleri analiz avantajları bu sıkı birleşme bölgesindeki klaudin gibi glikosile edilmemiş peptidler ve proteinler, potansiyel belirlemek; Ek bir avantaj daha doğru kantitatif olduğunu. Bu avantajlara dayanarak, biz olarak adlandırılan bu yöntem, g lycocapture-bir ssisted-g Lobal q uantitative p roteomics (gagQP), ve son yayınlarda 18 detaylı analizi.
Zenginleştirme yöntem sonra alınan tipik bir glikopeptid spektrumu, Şekil 2 'de gösterilmiştir. Elde edilen glikopeptid olarak, N-glikan-bağlı glikan asparagin (N) w uzaklaştırıldı vePNGase F, bir aspartik asit (D) dönüştürülür gibidir; Bu nedenle, spektrum kolayca ortak protein dizisi veritabanları karşı herhangi bir proteomiks arama motorunu kullanarak aranabilir.
Yakalama yöntemi önceki karmaşık ve değerli biyolojik örnekler ile uygulama için ticari olarak temin edilebilen bir model glikoproteinler ile değerlendirilebilir. Bazı sık kullanılan bir model glikoproteinleri avidin (tavuk), ovalbümin (tavuk), invertaz (maya), α-1 antitripsin (insan), konalbümin (tavuk) ve ribonükleaz B (büyükbaş hayvan) (bütün Sigma'dan temin edilebilir) içerir. Bu proteinlerden sık sık tespit glikopeptidler önceki bir yayında 8 bulunabilir. Bu model proteinlerden üretilen LC-MS sonuçlarının otomatik arama için uygun özelleştirilmiş bir protein dizisi FASTA'dır veritabanı aşağıdaki linke (http://www.sfu.ca/chemistry/groups/bingyun_sun/tools.html indirilebilir ), yukarıda listelenen proteinlerin modeli hem de bir devir içerir ersed maya-sekansı veri tabanı, ortak kirletici maddeler ve F. PNGase
Çekilen N-glikopeptid tipik bir LC-MS sonucu 100'den glikoproteinler bir hücrenin bir mikrozomal fraksiyon bir tek LC-MS çalıştırmak tespit edilebilir ki, Şekil 3'te gösterilmiştir. Glikoproteinler ve glikopeptid hem de zenginleştirme seçicilik genellikle% 90'dan fazla değildir. Başarılı bir analizi,% 95 olan bir zenginleşme seçiciliğe sahip olabilir. Ayrıca örnekleri ayırımlamak için bir SCX sütun ve basamak degrade kullanarak önce LC-MS genellikle glikoprotein özdeşleşmelerin 17 sayısını iki katına çıkacak analizleri. Elde edilen glikopeptid miktarı düşük olduğunda Bazı durumlarda, şişeler biriken yabancı madde son numunede gözlemlenebilir. Bu kirletici maddeler adım 5'te verilen yöntemle uzaklaştırılabilir.
. Jpg "src =" / files/ftp_upload/51349/51349fig1.jpg "width =" 350 "/>
Şekil 1. Deneysel işlemin akış şeması. Dikdörtgenler gerekli adımlar ve elmas isteğe adımlardır.
Şekilde peptid sırayla kırmızı, vurgulanmış olarak glikopeptid yakalama yöntemi sonra Baker, mayadan AEPIL N ISNAGPWSR Şekil 2.. Çarpışmanın neden olduğu ayırma (CID) spektrumu. Çizili asparagin (N), aspartik asit (D) dönüştürülür .
N-gl of LC-MS sonucu Şekil 3,. 2B arsafare embriyonik kök hücreleri (E14.Tg2a) 'dan elde ycopeptides. nokta tespit edilen peptidler, ve nokta renk istatistiksel olarak elde edilen kimlik güven (yani peptit olasılığı temsil eder).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Burada hücre yüzey proteinleri profil için bir glikopeptid-yakalama stratejisini tanıtmak. Yöntem, bu tür salgılanmış kan gibi proteinler, yanı sıra diğer vücut sıvılarında veya hücre kültür ortamı içinde incelemek için uygulanabilir.
Yöntemin başarısı numunelerin tam sindirim dayanır; bu nedenle, sindirim bir verimlilik SDS-PAGE karakterizasyonu, özellikle numunenin ilk kez analizi için, gereklidir. Tam bir sindirim zar proteinleri için zor olabilir ve sadece membran fraksiyonunun tam çözünme sonra mümkün olabilir. Çözündürme işlemi, deterjan ilave edilir başlar ve ürenin inkübasyondan sonra sona erer. Bulutlu ürenin ilave edilmesinden önce, numunedeki sunulur fakat üre inkübasyondan sonra kaybolur, bu nedenle, çözünme yeterlidir. Membran fraksiyonu çözmek için zor ise, kullanılan deterjan miktarını artırmak. Zara-zengin doku numuneleri içinbeyin ve adipoz dokuları gibi,% 5 Rapigest kullanılabilir. Bazı durumlarda, çökeltme öncesinde daha sık insan serum numuneleri için görülmektedir, tripsinle sindirme, numune seyreltme sırasında görünebilir. Bu yağış nedeni temel olarak, üre ve deterjan azalan konsantrasyonlarda bulunmaktadırlar. Bu tepkime genellikle sindirim sırasında tripsin uzaklaştırılmıştır ve bir sorun değildir olacaktır. Ancak, çökeltme formları, iyi karışmasını sağlamak için sindirim aşaması esnasında numune şişe döndürmek için önemli olduğu. Örneğin N-termini ve bir lisin gelenler gibi peptidler, birincil aminler periodat oksidasyon sonra da yeni oluşturulmuş aldehid ile reaksiyona girer, çünkü glycocapture aşamasının pH değeri önemlidir. Bu nedenle, bu yakalama engellemesini önlemek için, asetat tamponu kullanılarak aşağıdaki 6.0 yakalama çözeltinin pH değerinin ayarlanması ile, bu aminlerin protonlanması için önemlidir.
Çözelti a yakalamak için reçinenin bir oran kullanılarakyuvarlak 1:03-01:04 yakalama aşaması sırasında yeterli karışım sağlar. Reçine 50 ul en az bizim deneyime dayalı gereklidir; daha düşük miktarlarda uygulanması zordur yıkama takip eden dizi verecek nedeniyle reçine kaybına ağır örnek kaybı tanıtacak. Bu, toplam proteinin 0.5-2 mg reçine, 100-300 ul kullanılarak iyi sonuçlar elde edilmiştir. Bununla birlikte, protein ve reçine miktarı arasındaki oran biz size özel örnekleri ve uygulamaları için bu durum optimize tavsiye, bağımlı örnek olabilir.
Hydrazide kimya alt-tabaka hem O-ve N-bağlı peptidi yakalar; nedeniyle tüm O-bağlantılı peptidi serbest bırakmak için etkili bir enzim olmadığı için, sadece N-glikopeptid çalışmaları için 8,12 PNGase F kullanılmıştır. Glıkopeptıtlerın O-tipi okuyan olasılık uygun hidrolazların keşif veya biyoteknik gerekebilir.
Bu yöntem, birkaç p durdurulmuş olabilirde dahil olmak üzere bağları: 1) zar fraksiyonu elde edildikten sonra, 2), tripsinle sindirme ve peptitlerin temizleme, ve 3) N-glikopeptid serbest bırakılmasından sonra sonra. Ek işlemler bu aralarda sokulabilir. Şekil 1 'de gösterildiği gibi Örneğin, sindirilmiş peptidler farklı olarak nicel analiz için, N-isotags ile etiketlenebilir. Son zamanlarda yayınlanan bir 18 de gösterildiği gibi, modifiye edilmemiş peptitler, glikopeptid paralel olarak analiz edildiği gagQP adı verilen bir yöntem kullanarak, miktarının doğruluğu önemli ölçüde geliştirilebilir.
Glikopeptid yakalama kendisi etkili bir örnek karmaşıklığını azaltabilir, ve daha da zenginleştirilmiş N-peptidi fraksiyonlanması genellikle gerekli değildir. İstisnalar kan proteini biyomarkörler keşif veya gibi örnekleri bol ama önemli konsantrasyon dinamikleri ile vardır ve ilgi proteinler düşük bolca olduğu durumlar için geçerlihücre yüzeyi proteinlerinin tam bir diğer detaylar için. Bu şartlar altında daha fazla fraksiyonasyon glycoproteome daha iyi nüfuz etmesini sağlamak için, yakalanan N-glikopeptid için uygulanabilir. Glycoproteome alt kısımlara ayrılması yoluyla ele edilirken, spesifik olmayan bağlanma ile ortaya olmayan glıkopeptıtlerın kimlik artacaktır. Böylece glikopeptid azalma ve (±% 85), tipik olarak glikoprotein seçicilik N-glikopeptid 17 bir başka kısımlara ayırma sonrası gözlenecektir. Bu nedenle, araştırmacılar en uygun prosedürü tasarlarken artılarını ve eksilerini tartmak gerekir.
Bir N-glikopeptit yakalama yöntemi kullandık hiç araştırmacılar için, bir kaç saf N-glikoprotein (ler) ile yöntemini uygulamaya en iyisidir, daha önce 8 olarak listelenen glikosilleşme sitelerinin bilinen sahip. Bu yöntem, sağlamdır ve N-glikopeptidlere seçicilik yüksektir. Bu yöntemin bir dezavantajı, sur doğasında yatmaktadır düşük yoğunluktayüz N-glikoproteinler; Numunenin kapsamlı bir analizi için, daha yüksek bir miktar genellikle sitosolik proteomik daha gereklidir. Kültive hücreleri in vitro olarak genişletilebilir veya ilgi konusu dokular bol miktarda bulunmaktadır, ancak, bu bir dezavantaj ihmal edilebilir düzeydedir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar, hiçbir rakip mali çıkarlarını olmadığını beyan ederim.
Acknowledgments
Bu araştırma Simon Fraser Üniversitesi başlangıç fonu tarafından desteklenmiştir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DTT | Sigma | 646563 | |
| TCEP | Sigma | 646547 | |
| Iodoacetamide | Sigma | A3221 | |
| Rapigest SF | Waters | 186001860 | |
| Sodium periodate | Sigma | 311448 | |
| PNGase F | New England Biolabs | P0704S | |
| Affi-Gel Hz hydrazide gel | Bio-Rad | 153-6047 | |
| Trypsin | Worthington Biomedical | LS02115 | |
| Sep-Pak C-18 cartridge | Waters | WAT054955 | |
| Oasis MCX cartridge | Waters | 186000252 | |
| Protease inhibitor coctail | Sigma | P8340 | |
| Urea | Amersco | 568 | |
| Sodium sulphite | Caledon | 8360-1 | |
| Invertase | Sigma | I0408 | |
| α-1 trypsin | Sigma | F2006 | |
| Ribonulease B | Sigma | R7884 | |
| Avidin | Sigma | A9275 | |
| Ovalbumin | Sigma | A5503 | |
| Conalbumin | Sigma | C0755 |
References
- Cho, W., Stahelin, R. V. Membrane-protein interactions in cell signaling and membrane trafficking. Annual review of biophysics and biomolecular structure. 34, 119-151 (2005).
- Tadevosyan, A., Vaniotis, G., Allen, B. G., Hebert, T. E., Nattel, S. G. protein-coupled receptor signalling in the cardiac nuclear membrane: evidence and possible roles in physiological and pathophysiological function. The Journal of physiology. 590, 1313-1330 (2012).
- White, S. H. Biophysical dissection of membrane proteins. Nature. 459, 344-346 (2009).
- Heijne, G. Membrane-protein topology. Nature reviews Molecular cell biology. 7, 909-918 (2006).
- Cox, J., Mann, M. Quantitative high-resolution proteomics for data-driven systems biology. Annual review of biochemistry. 80, 273-299 (2011).
- Lamond, A. I., et al. Advancing cell biology through proteomics in space and time (PROSPECTS). Mol Cell Proteomics. 11, (2012).
- Savas, J. N., Stein, B. D., Wu, C. C., Yates 3rd, J. R. Mass spectrometry accelerates membrane protein analysis. Trends in biochemical sciences. 36, 388-396 (2011).
- Sun, B., et al. Shotgun glycopeptide capture approach coupled with mass spectrometry for comprehensive glycoproteomics. Mol Cell Proteomics. 6, 141-149 (2007).
- Lowe, J. B. Glycosylation, immunity, and autoimmunity. Cell. 104, 809-812 (2001).
- Dodds, E. D. Gas-phase dissociation of glycosylated peptide ions. Mass spectrometry reviews. 31, 666-682 (2012).
- Kaji, H., et al. Lectin affinity capture, isotope-coded tagging and mass spectrometry to identify N-linked glycoproteins. Nat Biotechnol. 21, 667-672 (2003).
- Zhang, H., Li, X. J., Martin, D. B., Aebersold, R. Identification and quantification of N-linked glycoproteins using hydrazide chemistry, stable isotope labeling and mass spectrometry. Nat Biotechnol. 21, 660-666 (2003).
- Hagglund, P., Bunkenborg, J., Elortza, F., Jensen, O. N., Roepstorff, P. A new strategy for identification of N-glycosylated proteins and unambiguous assignment of their glycosylation sites using HILIC enrichment and partial deglycosylation. J Proteome Res. 3, 556-566 (2004).
- Bond, M. R., Kohler, J. J. Chemical methods for glycoprotein discovery. Current opinion in chemical biology. 11, 52-58 (2007).
- Pasini, E. M., et al. In-depth analysis of the membrane and cytosolic proteome of red blood cells. Blood. 108, 791-801 (2006).
- Wollscheid, B., et al. Mass-spectrometric identification and relative quantification of N-linked cell surface glycoproteins. Nat Biotechnol. 27, 378-386 (2009).
- Sun, B., et al. N-Glycoproteome of E14.Tg2a mouse embryonic stem cells. PLoS ONE. 8, (2013).
- Sun, B., et al. Glycocapture-assisted global quantitative proteomics (gagQP) reveals multiorgan responses in serum toxicoproteome. J Proteome Res. 12, 2034-2044 (2013).
