Introduction
监测神经元活动中积极从事一个行为的任务的警报动物对理解神经系统的功能和组织的关键。从单个神经元单位电活动的细胞外记录一直是神经系统的主食工具，仍然是广泛使用在目前。各种电极类型和配置都可以根据具体实验的科学和技术要求。长期植入微型硬盘或电极阵列通常在自由活动的动物，包括鸟类，啮齿类动物，非人灵长类动物1-4使用。可替代地，通过外部显微急性穿透与金属或玻璃微电极通常用于从麻醉或头部限制动物来记录。玻璃微电极具有它们可以被用在juxtacellular或“细胞附着”的优势构明确地隔离单个神经元无事后秒杀分拣5的并发症的活性。这些电极从标题解剖的细胞或位置进一步允许记录，因为它们可以被用于注入的染料或神经解剖学示踪剂小存款，或甚至填充单个记录单元。这种配置已经在老鼠和鸟类6-10得到成功应用。目前所描述的技术，专注于juxtacellular监测和细胞外染料存款警报，头克制老鼠。注意juxtacellular罢了，这些染料存款不提供有关细胞形态和轴突的突起11的信息，不像单个细胞，但它们能精确解剖定位到约50微米，关键的是，有显著产量较高的警觉动物。对于单细胞juxtacellular填充仍然是作为用于解剖标签替代战略的信息。
简言之，在协议包括三个主要阶段。在第一阶段，将大鼠驯化身体约束在一个布袜子（ 图1）历时6天。在第二阶段中，头枕装置（ 图2）和记录室被手术植入，使得老鼠可以在多个后续的记录会话（ 图3）被保持在立体平面上;这个程序可以使实验者基于标准的参考坐标12为目标的大脑的特定子皮层区域的电生理研究。第三阶段涉及将大鼠在适当的夹具用于进行行为和电生理实验（ 图4），从一个石英毛细管构成电极（ 图5），使得juxtacellular神经元的录音是明确分离单个单元6-9，和标志着解剖LOCATI在记录现场与芝加哥天蓝染料（ 图6和7）组成。在录音同声行为进行监督;然而，该行为的技术细节将取决于每个实验的科学目标，因而超出了单个协议的范围。的实验程序，它可以被重复多天完成后，将动物安乐死。大脑是根据使用或者明场或荧光显微镜标准神经解剖技术开采和加工。
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Protocol
实验方案进行了对女龙Evans大鼠（250 - 350克），根据联邦规定的动物护理和使用指南，并在加州大学圣地亚哥分校获得批准的机构动物护理和使用委员会。
1.在驯化老鼠身体约束
注意：将大鼠在限制饮食。每日处理会话之后立即喂养的大鼠每天一次驯化大鼠的约束（以下描述）。提供足够的饲料，以保持动物在80％的初始重量。这一数额是大约6克每一天饲料250克重的雌龙埃文斯大鼠。
- 适应的老鼠被人类正在处理。轻轻抑制大鼠用手为约5秒，每30秒周期。做到这一点的15日连续2天分钟。每天监测大鼠应激训练期间的迹象。症状包括我挣扎ñ回应克制，发声，和齿抖动。
- 在第3天，将大鼠在一身体约束布袜子（ 图1），用于在连续两天，每天15分钟。
- 在第 5天，将老鼠的袜子内，并放置在袜子的刚性管上的试验夹具（ 图4）的内部。离开老鼠在管15日连续2天分钟。
- 每次训练后立即喂老鼠。在上届会议（ 第 6天）结束给予不受限制地进入食物。选择植入只老鼠不表现出过度紧张的最后一个训练日的迹象。
注意：虽然选择大鼠植入是主观的，在我们手中大鼠的90％以上的被认为是响应于习惯和能够经历着床。
2.植入的录音室和头部约束机制
- 做一个重新ference丝通过焊接裸不锈钢丝以一个针连接器。剪断钢丝，使3-5毫米的遗体被发现的脚。高压灭菌的基准线，以及所有外科手术工具。
- 管理氯胺酮/甲苯噻嗪麻醉。施用95毫克/千克氯胺酮与5mg / kg的甲苯噻嗪腹膜内混合。初始剂量持续1.5至2小时。补充麻醉以后每隔30-45分钟，视需要。润滑动物的眼睛的眼用软膏。
- 检查脚趾撤退反射来确定麻醉平面，并维持麻醉是必要的。
- 将老鼠耳酒吧立体保持框 （ 图3A）。剃的头部的毛发和消毒伤口部位与聚维酮碘（10％溶液）。照顾到插入耳棒适当地使它们不会损坏耳膜。耳棒用钝头为佳。
- 做一个切口，用手术刀approxi三方共同沿从眼睛的rostro - 尾级的耳朵后面的头盖骨的中线。用剪刀剪下并除去皮肤的2-3毫米长条上的切口的任一侧。
- 刮掉骨膜到颅骨的表面上暴露出来的横向脊。覆盖外露的头盖骨有薄薄的一层强力胶的。
- 钻一小孔，用直径略小于0-80螺丝，采用了半厘米直径的钻孔毛刺（见材料部分）。钻孔立即后侧到前囟门缝合满足横向脊，和在一30-45°角插入颅骨，以便螺杆可以在与顶部比底部更外侧。
- 拧在0-80平底机螺丝孔（大约3个圈），在30-45°角。要小心，不要拧得太深，以免损坏底层的脑组织。
- 重复此过程所示配置6个额外的螺丝
- 将注射器针头在stereotax操纵。从囟缝合测量，并在与邻近针头的头盖骨的凹痕，但外面的所需开颅位置的，作为一个基准标记。
注：在本演示中，该商标的立体坐标3毫米后1毫米横向到前囟门缝合。 - 标志着一个永久性标记的凹痕。注意商标的立体坐标，因为它会成为一个立体的参考点 （ 图3B）。
- 使集中于所希望的坐标（3毫米后部和3mm的横向在这个例子中，以前囟）开颅手术。离开硬膜保持完整。覆盖改进的人工脑脊髓液的开颅（125 mM氯化钠，10mM葡萄糖，10mM的HEPES，3.1毫摩尔氯化钙 ，1.3毫的MgCl 2，pH7.4）中13（ 图3C）。 切0.2毫升离心管中，以4 - 5毫米长度，并切断帽。将管的头盖骨和居中在开颅手术。
- 申请围绕管的底部牙科用粘固剂，以密封所述管到头盖骨的底部。要小心，不要漏水泥进入开颅暴露（ 图3D）。
- 另一个钻小孔（约半毫米直径）对侧颅板，并小心将参考线。通过焊接的销，与记录放大器向所述导线的端部对接构造的基准线（见设备部分）。不要移动参考线，一旦它在大脑中，因为这可能会造成的损害。
- 应用强力胶的丝被插入的孔。这将封针和线的地方暂时的。
- 混合硅凝胶试剂盒的两部分（参见材料节）在大约相等的部分。等待两分钟，混合和FIL升离心管大约⅓充满凝胶。
- 附加直角钳后（见材料部分）的头枕杆。以45°倾斜角连接头板（ 图2A）的固定条（ 图2B），使得板的底部是朝动物的鼻子。是有帮助的使用倾斜计来设定倾斜角以匹配实验夹具（ 图4）的。
- 附加的固定条的stereotax操纵臂，使杆平行于耳棒。降低杆和板，使该板是在lambda缝合和前向尾最螺杆后部。
- 抓住前头螺栓（8-32螺柱或螺钉，参见材料节）在约45°角与帮助手臂和夹紧，从而使螺钉的头部朝下，朝向动物的尾巴。降低螺丝，这样倒是蚂蚁erior 0-80螺丝 （ 图3F，G）。
- 固定到位的螺钉和钢板与牙科丙烯酸。申请围绕骨螺钉头上的牙科丙烯酸，基准销，和周围的离心管的两侧。等待大约10分钟的牙科丙烯酸干 （ 图3H）。
- 敷一层牙科水泥周围牙科丙烯酸的边缘，固井皮肤给植入物。等待水泥干。
- 戳几个洞，在离心管的盖子，并放置在管帽。
- 取下援助之手钳。然后小心地取出从stereotax头控股栏，然后在酒吧（ 图3I）去除头板。
- 从stereotax取出的动物和管理术后护理和监测符合所有适用的法规，规章和法律（ 如丁丙诺啡0.02毫克/公斤，每8-12小时最少24小时）。如果炎症围绕所述植入物的边缘的开发，应用一薄层抗生素软膏到患部每日直至解决。
神经元的单位3. Juxtacellular监控
- 拉动一个二氧化碳激光微量拉马石英毛细管（见设备部分）具有小于1微米（ 图5A）尖端直径。
注：在加热参数将根据特定仪器而变化，并且，依赖于所关心的大脑结构所需的颈部直径会有所不同。对于录音大鼠丘脑，有微量的脖子，从5-7毫米。 - 固定到位的吸管微分干涉对比（DIC）显微镜配有长工作距离的目标之下。用橡皮泥举行吸管的地方在显微镜的阶段。
- 缓慢移动的玻璃块（0.5 - 1厘米厚;用于MAK一块玻璃荷兰国际集团超薄切片机刀是方便）进入视用吸管尖端的领域。使用阶段显微，轻轻触摸枪头玻璃，使其打破。直到枪头外径为1-3微米之间根据需要重复 （ 图5B，C）。确保这些微量介于约5-15MΩ阻抗。
- 制备的细胞外液（135 mM氯化钠，5.4 mM的氯化钾，1.8mM的氯化钙 ，1mM的MgCl 2的，5mM的HEPES，pH值7.2，用NaOH）8，并添加2％（重量/体积）芝加哥天蓝。使用注射器与地下30针或更小的，填充的溶液的吸液管的后端。可替代地，对于单细胞juxtacellular标记添加2％（重量/体积）Neurobiotin或生物素化葡聚糖胺（BDA-3000或BDA-10000），以代替芝加哥天蓝的盐溶液。
- 放置在刚性管内的布袜子内的老鼠在适当的实验夹具 （
- 连接头压紧板对大鼠上的夹具的相应部件。要做到这一点，第一脚头克制板的地方，然后用4-40螺丝将其固定。一定要等到动物是平静，以避免施加过大的扭矩头部。下一步，放置8-32螺母被植入大鼠头部约束螺栓。再拧在带螺纹的不锈钢棒的头部的螺栓。贴上所述杆的实验夹具以这样一种方式，它可以在适当位置紧固（ 图4）。
注：保护与头螺栓的动物以及头部约束板分imizes装置的弯曲，提高了记录的稳定性。在大多数情况下，记录可以在第一天开始，动物是头抑制。但是，如果过分动物坐立不安或大谈，在开始任何录音之前提供一天头部约束习惯的培训。在这种情况下，留在夹具的动物为15分钟，然后将它放回其笼子。重复此步骤，次日并继续协议。- 打开录音室，取出硅胶。用干净细镊子，如果组织已重新种植在开颅开颅手术。
- 附上吸管电动显微，并插上探头前置放大器。
注意：在本示范，在探头小型继电器电路用于放大器引线和外部电流源以高顺应性（ 图6A-C）之间切换。请注意，某些放大器内置适当的依从性高源（见讨论和材料的部分）。- 使用电动显微到移液管的尖端移动到立体定位识别标记的录音室中。注意此位置的坐标。要小心，不要打破颅骨的吸管尖。
- 移动的吸移管向期望的记录位置，在前后和内 - 外轴。然后前进移液器腹侧通过硬脑膜，直到它是约500微米背侧到预定记录位置。
- 一边听的枪头和参考线之间的记录放大电压的音频监视器扣球事件慢慢推进吸管。一旦扣球事件被确定，继续往前移液管0-100微米，直到正向电压偏差大于约500μV观察。
注：电极电阻将约为1.5-10 WH因素增加恩发生这种情况。- 开始一次一个单元已被分离为根据步骤3.11，连同所有感兴趣的其它行为和生理措施记录。在本示范，自生触须动作都与高速摄像（参见材料节）进行监测。
- 标记记录站点，切换电极引线连接到电流源。有几种方法可以做到这一点，使用一个继电器电路（ 图6A - C）中，一个内置的电流源上的放大器，或手动（ 图6D，参见步骤3.8和讨论 ）。传递-4μA与2秒的脉冲，在50％的占空比为4分钟，通过吸液管以离子电渗注入芝加哥天蓝。
- 杀死并根据标准的做法几经标签的程序灌注动物。部分根据需要大脑和染液以识别记录的解剖位置坐即染液组织细胞色素氧化酶的活性按14。另外，确定使用荧光显微镜的芝加哥天空蓝存款。
注：为不同的标记单元之间的准确区分是很重要的，所有的标签都是用在同一天同一个吸管，无需松开标签之间的吸管。在这种情况下，记录的站点可以通过它们的相对位置在事后组织学以及每个站点的注意操纵器的坐标来区分（参见步骤3.9）。对于明确标识，从彼此，没有每个大脑区域超过3-5标签标注的标签，至少200微米分开。 - 连接头压紧板对大鼠上的夹具的相应部件。要做到这一点，第一脚头克制板的地方，然后用4-40螺丝将其固定。一定要等到动物是平静，以避免施加过大的扭矩头部。下一步，放置8-32螺母被植入大鼠头部约束螺栓。再拧在带螺纹的不锈钢棒的头部的螺栓。贴上所述杆的实验夹具以这样一种方式，它可以在适当位置紧固（ 图4）。
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Representative Results
神经元单元中腹后内侧（VPM）丘脑编码触须移动的相位时自生搅打15,16。 图7A示出一个VPM丘脑单元的样品尖峰活性大鼠正在积极地搅拌。 图7B示出穗的直方图次对齐触须运动17的瞬时相位。有在搅打的缩回阶段更尖峰。在记录之后，本机的位置是通过芝加哥天蓝染料离子导入标记， 如图7C所示 。该组织counterstained细胞色素氧化酶的活性，揭示VPM丘脑的神经解剖学的边界。类似的版本，这个协议的最近应用于监测搅打相关的多组神经元活动（10-20微米直径的枪头）在特定的脑干核18。
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图1：布袜子抑制大鼠袜子与束带和束带搭扣的（A）照片。该小端部紧贴地周围放置胸骨，并围绕尾部大端。 （B）设计模式在面板1A的袜子。尺寸为英寸。
图2：头枕设备的机械设计（A）精密头枕板老鼠的机械设计。尺寸为英寸。 （B）与平板面板2A使用头枕杆的机械设计。该协议需要两个这些部件，安装使用直角交夹具在相同桨距角。_blank“>点击此处查看该图的放大版本。
图3：手术过程（A）的立体保持框鼠（协议的步骤2.4）。 （二）手术部位植入螺钉和颅标记（协议的步骤2.10）。 （C）外科手术部位用开颅手术（协议的步骤2.12）。 （ 四）外科手术部位与录音室（协议的步骤2.14）。 （E）外科手术部位与基准线和硅凝胶（协议的步骤2.17）。 （F，G），外科手术部位与头枕板和棒就位（协议的步骤2.20）。 （H）与板和棒手术部位巩固到位（协议的步骤2.21）。 （I）终头部约束和录音室实现了一套蚂蚁（协议的步骤2.24）。 请点击此处查看该图的放大版本。
图4：大鼠中的机械夹具用于电生理和行为监测实验的实验夹具图（协议步骤3.5-3.6）。夹具利用图2中的杆和板。
图5：微管电极构造一个完整的微管（协议步3.1）（A）显微照片。比例尺是如在不间断的微量移液器和玻璃块在显微镜下（协议步骤3.2）的面板C.（B）的显微照片。尖端的反射可以看出，在玻璃中。比例尺是如在破碎微量（协议步骤3.3）的面板C.（C）的显微照片。 （D）面板A.比例尺的盒装地区完整的微管尖端的显微照片在面板破碎微量的面板C.的盒装地区尖E.（E）的显微照片请点击这里查看该图的放大版本。
图6：设备用于放大器和电流源之间切换 （A） 的设置，以从放大器经由磁继电器（可选）切换导致的电流源。包含电压控制继电器开关的印刷电路板是ATTAC建置到放大器头阶段。 （B）的布局中面板6A的印刷电路板。所述板连接在放大器导线和电流源导致继电器的输入引脚，并且电极引出的输出管脚。该电极是通过将0或5伏到中继控制引脚连接到任何电流源或放大器。仰视图。尺寸为英寸。 （C）的面板6B的电路板布局顶视图。 （D）的设置，以从放大器切换导致电流源手动（可选）需要一个开放吸管保持器和柔性引线像所示（也可参见：设备部分）中的那些。这种方法是一种替代继电器电路板6A-C。 请点击此处查看该图的放大版本。
图7：实验装置和代表性的结果（A）尖峰和触须运动从一个单位（协议的步骤3.12）。 （B1）归触须位置与相拂周期。每个拂规格化，使得拂期间最尾端的位置被定义为零点和最延髓位置定义为一个。轨迹代表了标准化位置与在拂周期17瞬时相位。所有鉴定拂叠加。 （B2）的拂尘周期在此尖峰发生相位光栅。在纵轴上每个试验表示单个拂。穗率（B3）直方图与同一单位的尊重拂周期阶段。芝加哥天空蓝染料与细胞色素氧化酶复染（C1）的位置（协议步骤3.13-3.14）。 （C2 请点击此处查看该图的放大版本。
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Discussion
试验夹具的建设
用于构建实验夹具（ 图4）的机械部件的描述从协议中省略，因为它可以以各种方式来构造。在此示范标准光学机械部件和支撑夹具用于安装头枕杆和身体约束管（参见材料节）。类似光学机械零件可以被用来在电极保持器安装到机动显微。重要的是在夹具的头部约束杆被安装在相同的螺距角所用外科手术期间植入头部约束板横梁。如果电极是沿着所述标准立体轴被移动，则电极的x轴应该移动平行于头部约束杆，和z轴垂直于包含拉姆达和前囟并且平行于地平面（ 适当的放大器和电流源型 有多种商业放大器和电流源，可以被用于本实验。大多数的细胞外和细胞内的电放大器，电流钳模式达到1,000倍的总增益是合适的。对于芝加哥天空蓝色的离子导入与1-3微米的移液器，一个电流源，可提供高达10μA至少为1μA的分辨率和至少100伏的合规建议。需要注意的是一些商业放大器具有适当的内置电流源（见材料部分替代的部分）。然而，为了规避适当组合放大器/电流源的要求，磁继电器电路可以连接到放大器探头的前端（ 图6A - C）。这种电路是邻ptional但它允许实验者到放大器和一个单独的电流源来提供离子电渗脉冲而不物理扰动电极之间切换。另一种方法是与那些连接到电流源手动更换电极导线。在这种情况下，最好使用吸液管保持器不封闭吸管的顶端（不间断端），以及使用柔性导线（ 图6D）。 可能需要反复练习的步骤 有几个步骤，可能需要实践来掌握。需要最灵巧的步骤是打破吸管尖。是有帮助的涂料在玻璃块的边缘的可视化在玻璃尖端的反射。那么可以慢慢推进块和吸管直至尖端勉强满足其反射。推进吸管或块太快会打破微量，使尖端直径过LARGe或不均匀。我们建议使用石英制成的微量，如在该协议描述。夸脱微量有效地渗透在长期准备开颅手术完整的大鼠硬脑膜没有弯曲或断裂。这消除了对硬脑膜切除，这会导致额外的复杂性。硼硅酸盐微量短锥度（<5毫米）的也穿透硬脑膜，但它们的使用仅限于从像大脑皮层或纹状体浅表结构记录。从更深的结构，特别是在丘脑或脑干记录，需要长的锥形，最好是石英微量。这需要实践的第二个步骤是定位吸管在juxtacellular配置。移动所述吸移管的速度太快时，接近小区可破裂的膜。因此，它是有帮助的监视吸管的电阻知道何时尖端接近推定的细胞。变化中的至少2倍的膜电阻表明，电极可以是网元Ar或触摸细胞膜。 常见的陷阱 有几种常见的陷阱要牢记。首先，因为枪头必然是非常接近的细胞，也能够以“输”的小区，如果吸移管漂移远离该膜。另外，也可以为一个小区变得激动或通过记录破裂中途。如果这样做，尖峰宽度和击发率可能增加，并且尖峰幅度可能降低。这些迹象表明，该细胞可以是不健康的。动物运动势必造成这些事件发生在录音的一定比例，但可通过使动物习惯于井并通过避免使不必要的，突然的大的噪音或造成该惊吓的动物的振动最小化。 潜在修改的协议 因此能够使用该记录和标记技术的上下文中，动物是执行各种行为任务。训练为特定行为的任务就可以进行下面的手术，但开始录制之前。神经元的活动可以记录至少1-2周准备开颅后，与离子导入点可以持续至少2-3天。这段时间内允许的各种实验操作，包括在不同的录音会议从多个脑区记录的。 该技术也可以被修改，以填充从该记录内容都采用单独的神经元。单个神经元的juxtacellular标签的这种替代策略要求的机械稳定性时，动物是静止的或麻醉的是仅实现。对于这个标记策略，利用BDA的建议在Neurobiotin。 BDA不受蛋白酶，其中显著增加成功超过Neurobiotin的速率降解。标签应最后记录会话期间灌流前尝试动物。请注意juxtacellular议定书的详细描述之前已经描述6,19。而已经在警报大鼠8成功地采用的技术中，在我们的经验离子电渗注射芝加哥天蓝的具有相当高的产率。注意，这两种芝加哥天蓝和Neurobiotin或BDA标记可以在相同的动物来进行。 这种技术可能是适合于各种物种。需要注意的是juxtacellular录音已在警报小鼠9的皮层区域，例如。而训练，处理，和头部约束是特定物种，在该协议描述了用于监控和标识所述特定的技术应保持不变。最后，简单地通过改变枪头和电流脉冲这种技术可以用于离子电渗注射的各种分子，包括药剂20,21的参数的大小。因此，该技术也可以用于神经药理学研究中涉及的行为的动物是有用的。 结论 通常的情况是这是极其接近的大脑区域可具有显着不同的性质和/或功能22的情况。在这种情况下，与单个神经元的活动，从解剖学上定义的区域到有机体的行为对于理解神经回路和计算的关键。本品显示出一个协议使用的标准技术的组合来实现这一点，并描述在VPM丘脑神经元的感官编码作为例子。该技术可能是相关的和可行的在不同动物模型中的各种脑区域和行为范式。它有一个相当高的成功率比警戒动物6,8单细胞juxtacellular标签，并具有较好的解剖分辨率的优势是利用多ELE技术ctrode阵列或微型硬盘。
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Disclosures
作者宣称，他们有没有竞争的财务权益。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ketaset (Ketamine HCl) | Fort Dodge | N/A | |
| Anased (Xylazine solution) | Lloyd Laboratories | N/A | |
| Betadyne (Povidone-Iodine) | CVS Pharmacy | 269281 | |
| Loctite 495 | Grainger Industrial Supply | 4KL86 | 20 - 40 cp cyanoacrylate |
| Vetbond | 3M | 1469SB | |
| Grip cement powder | Dentsply Intl | 675571 | For the base of the recording chamber |
| Grip cement liquid | Dentsply Intl | 675572 | For the base of the recording chamber |
| Silicone gel | Dow Corning | 3-4680 | |
| Jet denture repair acrylic powder | Lang Dental Manufacturing Co. | N/A | For securing the head restraint apparatus to the cranium |
| Ortho-Jet Fast curing orthodontic acrylic resin liquid | Lang Dental Manufacturing Co. | N/A | For securing the head restraint apparatus to the cranium |
| Chicago sky blue | Sigma | C8679 | |
| Paraformaldehyde | Sigma | 158127 | For perfusion and tissue fixation |
| Phosphate-buffered saline | Sigma | P3813 | For perfusion and tissue fixation |
| Cytochrome C | Sigma | C2506 | For cytochrome-oxidase staining, Figure 7 |
| Diaminobenzidine | Sigma | D5905 | For cytochrome-oxidase staining, Figure 7 |
| Rat sock | Sew Elegant (San Diego, CA) | N/A | Custom made, Figures 1, 4 |
| PVC tube 2 ½” | U.S. Plastic Co. | 34108 | Figure 4 |
| Subminiature D pins & sockets | TE Connectivity | 205089-1 | Figure 3 |
| Stainless steel music wire 0.010” diameter | Precision Brand Products, Inc. | 21010 | Figure 3 |
| Stereotaxic holding frame | Kopf Instruments | Model 900 | Figure 3 |
| Stereotaxic ear bars | Kopf Instruments | Model 957 | Figure 3 |
| Stereotaxic manipulator | Kopf Instruments | Model 960 | Figure 3 |
| ½ mm drill burr | Henry Schein | 100-3995 | |
| Quiet-Air dental drill | Midwest Dental | 393-1600 | |
| Stainless steel 0-80 ⅛” screw | Fastener superstore | 247438 | Figure 3 |
| 0.2 ml centrifuge tube | Fisher Scientific | 05-407-8A | Figure 3 |
| Custom head-holding bar | UCSD SIO Machine Shop | N/A | Custom made, Figures 2 - 4 |
| Custom head-holding plate | UCSD SIO Machine Shop | N/A | Custom made, Figures 2 - 4 |
| Right angle post-clamp | Newport | MCA-1 | Figures 3, 4; standard opto-mechanical parts for the experimental jig (Figure 4) are also from Newport Corp. |
| 8-32 ¾” screw | Fastener Superstore | 240181 | For head-restraint, Figure 3 |
| 4-40 ¼” screw | Fastener Superstore | 239958 | For head restraint, Figures 3, 4 |
| Quartz capillary tubing | Sutter Instruments | QF-100-60-10 | Figure 5 |
| Carbon dioxide laser puller | Sutter instruments | P-2000 | |
| Motorized micromanipulator | Sutter Instruments | MP-285 | |
| Microelectrode amplifier | Molecular Devices | Multiclamp 700B | Alternate part: Molecular Devices Axoclamp 900A |
| Microelectrode amplifier head stage | Molecular Devices | CV-7B | Alternate part: HS-9Ax10 with Molecular Devices Axoclamp 900A |
| Isolated pulse stimulator | A-M Systems | Model 2100 | Alternate part: HS-9Ax10 with Molecular Devices Axoclamp 900A |
| Audio monitor | Radio Shack | 32-2040 | |
| Pipette holder | Warner Instruments | #MEW-F10T | Alternate parts: see Discussion, Figure 6A |
| Electrode lead wire | Cooner wire | NEF34-1646 | (optional), Figure 6D |
| Relay for amplifier head-stage | COTO Technology | #2342-05-000 | (optional) Used with a custom-made printed circuit board (UCSD Physics Electronics Shop), Figure 6A-C |
| Digital video camera | Basler | A602fm | (optional) For behavioral monitoring, Figure 7 |
| Puralube vet ointment | Amazon.com, Inc | NC0138063 |
References
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