Abstract
심근염 심근의 염증이지만, 질병의 그러한 영향 쇼 임상 증상 만 ~ 10 %. 심근 손상의 면역 이벤트를 연구하기 위해, 심근염의 다양한 마우스 모델이 널리 사용되어왔다. 이 연구는 심장 마이 오신 중쇄 (Myhc)-α A / J 생쥐에서 334-352로 유발 된 면역 심근염 (EAM)를 포함; 영향을받는 동물은 림프 구성 심근염을 개발하지만 뚜렷한 임상 증상과 함께. 이 모델에서, 비 침습 양상으로 자기 공명 현미경 (MRM)의 유틸리티가 표시됩니다 Myhc-α 334-352으로 예방 접종을 동물의 심장 구조 및 기능 변화를 확인합니다. EAM 건강한 마우스는 9.4 T (400 메가 헤르츠) 4cm 노래기 무선 주파수 이미징 프로브와 100 G / cm 트리플 축 그라데이션을 갖춘 89mm 수직 코어 구멍 스캐너를 사용하여 몇 군데 있었다. 심장 이미지는 애니보기 구배 에코 기반 시네 펄스 시퀀스를 사용하여 마취 된 동물로부터 취득하고 있었다LS는 호흡과 맥박 산소 측정기에 의해 감시했다. 분석은 건강한 쥐에 비해 심실의 내부 직경에 상응하는 감소로, EAM 마우스의 심실 벽의 두께 증가를 공개했다. 데이터는 염증이 마음에 형태 학적 및 기능적 변화는 살아있는 동물에서 비 침습적 모니터링 MRM으로 할 수있는 것이 좋습니다. 결론적으로, MRM은 진행과 회귀 병원체에 의한 질병에 심근 부상뿐만 아니라 치료에 반응을 평가하는 이점을 제공한다.
Introduction
심장 마비가 사망의 주요 원인이며, 심근염 젊은 청소년 1 심장 마비의 하나의 주된 원인이다. 심근염으로 영향을받는 대부분의 환자는 증상이 남아 있고 질병은 저절로 2 해결됩니다. 그러나, 영향을받는 사람들의 10 ~ 20 %는 확장 성 심근증 (DCM) 3로 이어지는, 만성 질환을 개발할 수 있습니다. 다양한 동물 모델은 심근염의 면역 기전을 연구하기 위해 개발되었다. 질병은 심장 마이 오신 중쇄 (Myhc)-α 또는 immunodominant 펩티드 조각 또는 콕 사키 바이러스의 B3 4-9와 같은 병원체 감염에 의해 동물을 면역에 의해 심근염에 민감한 A / J와의 Balb / C 마우스에서 유도 할 수있다. 이 연구는 A / J 생쥐 334-352 유도 심근염을 Myhc가-α 포함한다. 심근 침입을 보여주는에도 불구하고, 심근염 영향을받는 동물은 임상 적으로 정상 표시; 진단은 염증 7에 대한 마음의 조직 학적 평가를 기반으로ND 심 초음파 10.
자기 공명 현미경 (MRM)을 분 혈관의 레벨 (최대 10 μm의 직경)에 기능적 세부의 평가를 허용하는, 고해상도 입체 평면 심혈관 이미징을 얻기 위해 일반적으로 사용되는 방법이지만, 해상력이 수준은 해상도는 일반적으로 1mm 11-14까지 수득되는 루틴 자기 공명 영상 (MRI) 스캔 절차로 달성하지. 이 질병 과정 (14)의 초기 시점에 성능 파라미터를 도출하는 것도 고해상도 이미지의 획득을 허용하는 상태로 MRM는 이점을 제공한다. 임상 적으로, MRM 영상은 광범위하게 병에 걸린 심장, 폐, 뇌 15-17의 기능 매개 변수를 연구에 적용하고있다. 본 연구에서는 면역 심근염으로 영향을받는 A / J 생쥐의 심장 이상을 확인할 수있는 비 침습적 인 도구로 MRM 기술의 사용이 표시됩니다. 특히, T그는 MRM 영상은 허용 등 합리적인 정확도 (18)와 좌심실 이완 기말 용적 및 박출계수 (EF) 등의 기능 매개 변수의 정량화. 각 파라미터의 정의는 : LV 단부 이완기 볼륨 이완기 사이클의 끝에서 좌심실에서 혈액의 양 및 박출계수, 행정 용적 / 이완 기말 볼륨. 데이터 분석은 자기 공명 스캐너 (19)에 의해 취득 처리 DICOM 호환 심장 혈관 이미지를 위해 개발 된 자유롭게 사용할 세그먼트 소프트웨어를 사용하여 수행됩니다. 데이터는 건강한 쥐에서 이러한 기능 매개 변수와 비교하여, 좌심실 이완 기말 용적, 뇌졸중 볼륨과 구혈률의 감소에 해당하는 myocarditic 동물의 좌심실 벽의 두께 증가를 공개했다.
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Protocol
윤리 선언문 :
모든 동물의 절차는 실험 동물의 관리 및 사용에 대한 지침에 따라 실시 및 네브래스카 링컨, 링컨, 네브래스카의 대학에 의해 승인되었습니다.
실험자가 면역 심근염 1. 유도
- 이 mg/1.5 ml의 최종 농도 1X 인산 완충 식염수에 Myhc-α 334-352 용해시켜 펩티드 용액을 준비한다.
- 50 NG / μL의 스톡 농도를 구하는 동결 건조 PT 50 μg을 함유하는 바이알에 무균 1X PBS 1 ㎖를 첨가하여, 백일해 독소 (PT)을 준비한다. 멸균 1.5 ML 튜브에 주식의 20 μl를 타고 1 NG / μL의 작업 농도를 얻기 위해 멸균 1X PBS 980 μl를 추가합니다.
- 결핵균 H37Rv 40 밀리그램을 추가하여 완전한 프로 인트 보조제 (CFA)를 준비 (MTB)의 최종 농도를 얻기 위해 CFA 10 ㎖로 추출5 ㎎ / ㎖.
- 펩티드-CFA 에멀젼을 준비합니다. 참고 : EAM 유도를 들어, 펩티드 CFA 에멀젼 Myhc-α 동물 당 334-352의 100 μg을 함유하는 150 ㎕를 투여했다. 예를 들어, 열 마우스 Myhc-α 334-352 1 ㎎을 함유하는 펩티드-CFA 에멀젼의 1.5 ML를 사용하여 면역합니다.
- 에멀젼의 1.5 ML를 준비하려면, 나누어지는 750 개의 1.5 ML 튜브에 334-352 펩타이드 솔루션을 Myhc가-α의 μL 및 CFA는 또 다른 1.5 ML 튜브에 MTB 보충. 3 ㎖의 루어-LOK 주사기를 사용하여, CFA / MTB 엑기스이어서 제 펩티드 용액을 그린다.
- 3 방향 꼭지에 주사기를 연결하고 빈 3 ML의 주사기에 꼭지의 다른 콘센트에 연결합니다. 그래서 펩타이드 CFA 혼합물을 합리적으로 좋은 저항과 다른 하나의 주사기에서 흘러 크레인의 개통을 조정합니다.
- ~ 1 분 동안 반복하여 다른 하나의 주사기에서 내용을 추진 한 다음 2 ~ 3 분 동안 얼음에 전체 어셈블리를 배치하여 혼합. 이 과정을 반복합니다10 배의 절차에 최소.
- 주의 깊게 100 ㎖ 유리 비커에 아직도 물에 작은 방울을 배치하여 에멀젼의 일관성을 확인합니다. 방울은 물에 분산 할 것으로 예상되지 않습니다. 만약 그렇다면, 원하는 농도가 달성 될 때까지 계속 혼합한다.
- 1 mL의 주사기와 마개에 부착 된 두 개의 3-ML 주사기 중 하나를 교체하여 1 ㎖ 루어 코리아 주사기로 3 ㎖ 주사기에서 에멀젼의 내용을 전송하고 1 ML의 주사기에 27 ½ G 바늘을 연결합니다.
- 6 년에서 8 주 된 여성 A / J 마우스 (~ 75 μL 각)의 두 사타구니 지역에 분할 복용 피하에있는 펩티드-CFA 에멀젼 150 μl를 주입한다.
- 0 일 및 2 일 postimmunization에 복강 내 각 동물에 PT 서스펜션 (100 NG)의 100 μl를 관리 할 수 있습니다.
- 피하 t의 양쪽에 분할 복용 펩타이드 CFA 에멀젼 150 μl를 투여하여 7 일째에 예방 접종 절차를 반복그는 흉골 (~ 75 μL 각). 신선한 등의 이상이 에멀젼을 준비합니다. 그 후, 21 일에, MRM 영상에 동물을 대상 3 단계를 참조하십시오.
2. 동물 취급
- 따뜻함을 유지하기 위해 아래에 배치 된 가열 패드 2 % 이소 플루 란 - 공기 혼합물을 포함하는 마취 유도 챔버 각 마우스를 배치하고 특별히 디자인 된 동물 홀더 (그림 1)에 동물을 전송합니다.
- 동물 홀더에 발생하기 쉬운 위치에 동물을 무력화 그래서 주둥이는 마취 (그림 1)를 유지하기 위해 코 콘에 맞는. 마우스의 앞니에 부착 된 물린 바로 마우스의 머리를 고정합니다.
- 실험 기간 동안 동물의 체온을 유지하기 위해 스캐너의 수직 구멍에 삽입의 출구 호스에 공기를 불어 히터의 전원을 켭니다.
- 촬상 전체 세션 동안 2 ㎖ / 분의 유속으로 0.5 내지 2 %의 이소 플루 란으로 마취를 유지한다. 확인발가락 핀치 방법을 사용하여 마취, 아무 움직임이 예상.
- 압축 공기를 넣은 베개 센서, 마우스 꼬리 / 발목 광섬유 맥박 산소 센서, 각각 호흡, 심장 박동과 체온, (그림 1)를 모니터링하는 직장 온도 프로브를 설정합니다. 참고 : 심장 게이팅이 동맥혈 산소 포화도의 비 침습적 모니터링을 허용 맥박 산소 측정기를 통해 수행된다. 산소 포화도 센서는 좌측 발목에 부착되어야하고, 다리 실 루프로 고정하고 센서의 발목을 유지하기 위해 녹화한다. MRM 촬상 어떤 조영제를 사용하지 않고 호흡과 심장 신호를 게이팅함으로써 달성된다.
3. 이미지 획득
- 동물 (도 1)를 제조 한 후, 자기장의 균질성이 최대가 시야 (FOV)의 중앙에 위치 마음 MRM 스캐너의 중심에 마우스를 배치. 참고 : 와이드 보어(89mm) 트리플 100 G / cm의 축 그라디언트 및 4cm의 무선 주파수 (RF) 촬상 코일 탑재 9.4 T 수직 보어 자석 고해상도 3 차원 (3D) 이미지를 얻기 위해 사용한다. 주 : MRI 스캐너를 사용하는 경우 비자로 제공해야합니다.
- 영상 인터페이스를 실행하고 "연구 옵션"메뉴에서 "새로운 연구"를 선택합니다. 명령 줄에서 "mtune"를 입력하고 "조정 GUI"를 끌어 실행합니다. "시작 프로브 조정"을 선택하고 "자동 스케일"버튼을 클릭합니다. 조정 GUI는 RFsignal를 표시하도록 변경됩니다. 튜닝 프로톤 공명 주파수 RF 코일 (400 MHz 이상)에서 코일의 단부에서 원격 튜닝 / 매치 노브를 사용. "시작"탭에서 관련 버튼을 클릭하여 주파수 및 전력 보정을 실행하려면 "설치 전"페이지로 이동합니다. shimming 페이지를 끌어 탭 '연구 심 "탭"'에 XYZ (빠른) 버튼을 누르십시오., 심 페이지로 이동 모든 반복을 선택하고 자동 shimming을 수행하기 위해 심 버튼을 누르십시오.
- 마우스 마음을 집중하는 영상 인터페이스의 "연구"탭에서 스카우트 순서를 선택합니다. "획득"탭에서 35mm 2 FOV를 변경하고 컴퓨터의 기본 설정을 유지합니다. 순서를 실행하려면 시작을 클릭하고 심장은 FOV의 중심에 있지 않은 경우, 동물 홀더의 위치를 조정할 RF 코일 리튠 다시 정찰 이미지를 얻는다.
- "연구"탭에서 "GEMS"순서 버튼을 클릭 한 후 단축과 마음 (20, 21)의 긴 축을 따라 두 개의 직교 평면을 얻기 위해 해당 "획득"탭을 획득 매개 변수를 입력합니다. 참고 : 그라데이션 에코 검사에 대한 일반적인 인수 매개 변수는 다음과 같습니다 슬라이스 두께 1 ㎜, 반복 시간 (TR), 200 밀리 초; 에코 시간 (TE), 2.67 밀리 초 (최소); 플립 각도 25 °; 면내 매트릭스 크기 128 x 128의; FOV, 22mm2; 인수의 수, 4; 1 분 30 초 대략 획득 시간.
- "전진"탭에서 LV 해부학 및 기능 매개 변수를 측정하기 위해 맥박 산소 측정기 - 게이트 짧은 축 시네 MR 이미지를 수집하기 위해 "CINE"순서를 선택합니다. 마우스를 가져 가면 및 드래그하여 심장의 긴 축보기를 기반으로 영상 조각의 위치와 각도를 조정합니다. 그라데이션 에코 시네 순서 얻기 위해 "획득"탭에서 다음과 같은 이미지 매개 변수를 입력 : TR, 500 밀리 초; TE, 5 밀리 초; FOV, 22mm 2; 인수 매트릭스, 256 X 256; 슬라이스 두께 1mm; 인수의 수, 8; 프레임 수, 10; 17 분 ~의 획득 시간. 획득을 시작하려면 시작을 클릭합니다.
- 이미징 소프트웨어의 "I / O"탭을 사용 DICOM 형식으로 획득 된 영상을 변환하고 처리를 위해 데이터 센터에 대응하는 파일을 전송.
- 촬상 과정의 끝에서, 모든오우 마우스는 필터 탑 케이지 내에서 마취에서 복구 할 수 있습니다. 그들은 흉골 드러 누움을 유지하고 필요에 따라 추가 연구를 위해 그들을 유지하기 위해 충분한 의식을 되 찾을 때까지 무인 쥐를 두지 마십시오.
심장 자기 공명 현미경 이미징의 4. 데이터 분석
- LV (19)의 해부학 적 및 기능적 매개 변수를 분석하는 세그먼트의 소프트웨어를 사용합니다. "열기 이미지 파일 (들)" "파일"메뉴의 하위 메뉴를 사용하여 소프트웨어에 DICOM 형식 시네 이미지를로드하여. GUI의 이미지 타입과 이미지 뷰 평면으로 '짧은 축 중반 심실'와 영상 기술, '씨네'로 'MRGE'를 선택합니다.
- 를 통해 최종 심장 확장 및 최종 수축기에 사용되는 시간 프레임을 지정하는 "다이 애스 털리을 끝으로 현재 기간을 설정"을 각각 "편집"메뉴의 하위 메뉴 "수축기을 끝으로 현재 기간을 설정합니다."
- 먼저 "LV"명령 단추를 클릭 한 다음 "엔도"과 오른쪽 하단 패널에 "EPI"명령 버튼을 수동으로 각각 좌심실 내막과 외막을 그립니다. 계산의 정확도를 증가시키기 위해 대응하는 커맨드 버튼을 눌렀을하여 유두근을 제거한다.
- 이러한 이완기 볼륨, 수축기 볼륨, 뇌졸중 볼륨, 그리고 오른쪽 상단 패널의 방출 분율로 정량화 된 LV 매개 변수를 참조하십시오. 같은 두께, 및 심실 직경 22로 LV 매개 변수를 측정하는 "기타"명령 버튼을 누른 다음, "측정 캘리퍼스"명령 단추를 클릭하십시오.
- 필요에 따라 이미지를 재 처리 '. 매트'형식의 세분화를 포함하여 이미지를 저장하기 위해 "파일"메뉴의 "이미지 스택 및 분할 모두 저장"메뉴를 클릭합니다.
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Representative Results
이 보고서에서, EAM으로 영향을받는 동물의 마음의 구조와 기능의 변화를 결정하는 비 침습 양상으로 MRM 기술의 유틸리티가 표시됩니다. 심근염은 CFA 7 Myhc-α 334-352으로 동물을 면역에 의해 A / J 생쥐에서 유도하고, 동물은 21 일 후 예방 접종에 MRM 실험을 실시 하였다. MRM 영상은 트리플 축 기울기 (최대 강도 100 G / cm)가 장착 된 89mm 수직 구멍 자석을 사용하여 9.4 T (양성자 400 메가 헤르츠)에서 이소 플루 란 마취 살아있는 동물에서 수행 하였다. 스카우트의 이미지는 긴 축 4 실보기를 얻기 위해 축 이미지 뒤에 FOV의 중앙에 마우스 마음을 찾아 위치를 획득했다. 마음이 2 실보기 위해 몇 군데되는 각도는 그림 (a)에 표시됩니다. 심장 이미지는 구배 에코 기반 시네 펄스 시퀀스로 4cm 노래기 RF 이미징 프로브를 사용하여 획득 하였다. 심장 기능의 MEASurements (영상 : LV 두께, 출력 : 좌심실 이완 기말 용적 및 방출 분율)은 세그먼트의 소프트웨어를 사용하여 분석 한 다음이었다. EAM의 영향을받는 생쥐의 마음에 구조적 결함은 좌심실 이완 기말 용적 [18.0 ± 4.2 ㎕의 대에 해당 감소와, 약 1.5 배 (P = 0.018) (그림 2B 표 1)에 의해 LV 두께의 증가에 의해 입증되었다 . 37.5 ± 3.5 μL, 그림 2C (I); P = 0.002]과 구혈률 [49.4 ± 2.3 % 대 71.5 ± 6.0 %, p = 0.00066; 그림 2C (II)] 건강한 마우스에 비해. 예상대로 우리가 이전에 7을 보여준 것처럼, myocarditic하지만, 건강하지에서 마음의 조직 학적 평가는, 마우스는 다 초점 림프구 침윤을 보였다, 그림 2D). 데이터는 염증이 마음에 형태 학적 및 기능적 변화는 MRM의 난에 의해 모니터링 비 침습적으로 할 수 있다는 제안N 동물을 살고 있습니다.
마우스 마음에서 MRM 이미지 획득을위한 그림 1. 동물 준비 및 프로브의 위치. 마음에서 이미지를 수집하기 위해, 마취 된 마우스는 특별히 MRM 영상을 위해 설계된 동물 홀더에 배치하고 유지하는 송풍 히터에 연결되어있는 체온. 연속 마취에서 동물이 발생하기 쉬운 위치에 고정된다. 압축 공기를 넣은 베개, 광섬유 산소 측정 센서와 온도 센서는 심장 이미지의 MRM 수집이 완료 될 때까지 각각 호흡, 맥박 및 체온을 모니터하도록 설정되어 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
자가 면역 심근염으로 영향을받는 생쥐의 그림 2. MRM 영상은 심장의 이상을 알 수있다. 심근염이 CFA에 Myhc-α 334-352으로 동물을 면역에 의해 A / J 생쥐에서 유도 하였다. 동물은 심장 이상을 평가하기 위해 21 일 postimmunization에 MRM 이미징을 실시 하였다. MRM 슬라이싱 (A) 위치. 마음이 이미지 수집을 위해 분리되었을 때의 각도가 표시됩니다. (B) MRM 영상. 마음의 짧은 축 슬라이스는 500 밀리의 TR 여덟 시간 프레임에서 에코 기반의 시네 펄스 시퀀스를 사용하여 캡처 한 (TE, 5 밀리 초, 플립 각도 20 °, 인수, 4의 번호, 획득 매트릭스, 256 X 256) .. [화살표 : LV 두께 (C) 심 박출량은 심장 출력 (I) 좌심실 이완 기말 용적과 건강하고 myocarditic 생쥐 (II)의 방출 분율에 따라 측정 한 U세그먼트 소프트웨어 양적 의료 영상 분석을 노래. 생쥐의 그룹에 대한 평균 SEM 값 (N = 2 그룹당 5 행). (D) 조직학 나타낸다. 위의 치료 그룹의 마음을 헤 마톡 실린 및 에오신 염색으로 염증을 평가 하였다. 원 :. 다 초점 림프구 침윤 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
| 동물 | 건강 (N = 3) | EAM (N = 5) |
| 마우스 1 | 1.03 | 1.48 |
| 마우스 2 | 1.3 | 1.59 |
| 마우스 3 | 0.94 | 1.44 |
| 마우스 4 | 2.11 | |
| 마우스 5 | 1.92 | |
| ± SEM에게 의미 | 1.71 ± 0.1 |
표 1. 건강하고 실험자가 면역 심근염 (EAM) 마우스. 21 일 postimmunization 세 건강하고 다섯 EAM 유발 생쥐는 자기 공명 현미경을 실시 하였다 (MRM) 영상 사이의 좌심실 벽 두께의 비교. MRM 의해 심장 영상을 획득 한 후, LV 벽의 두께는 프로토콜에 설명 된대로 세그먼트 소프트웨어를 사용하여 측정 하였다. 표에 표시되는 값은 mm의 좌심실 벽 두께를 나타냅니다.
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Discussion
이 연구는자가 면역 심근염으로 영향을받는 생쥐의 심장 이상을 확인할 수있는 비 침습적 인 도구로 MRM 절차 및 유틸리티를 설명합니다. EAM의 조직 학적 특징은 인간의 후 사구체 심근염과 유사하기 때문에, 마우스 모델은 일반적으로 심근 부상 23-25의 면역 메커니즘을 묘사하기 위해 사용된다. 그러나, 심근염 영향 동물은 임상 적으로 정상 나타나고, 진단은 실험 7의 종단에서 조직학을 기반으로 이루어진다. 동물은 일반적으로 21 일 postimmunization에 희생된다. 한 번에 이러한 방식으로 질병 과정을 평가하여 치료에 응답하여 질병의 진행의 모니터링이 중요한 요건이다 한계, 특히 제약 연구에서, 이러한 모델의 사용 포인트.
살아있는 동물에서 심장 이상을 확인하기 위해 MRM과 같은 비 침습 양식의 사용이 도움이됩니다. 여기에 설명 된 MRM 기술조영제를 사용할 필요없이 마음의 구조적 및 기능적 특성을 얻는 장점을 제공한다. 그러나,이 기술은 강한 자기장에서 높은 해상도 3D 해부학 적 영상의 획득을 필요로한다. 이미지가 취득된다 그래도, 일단, 예컨대 LV의 이완 기말 볼륨 및 토출 분획으로서 작용 파라미터는 상기 MRM 장치를 조립할 필요없이, 시판되는 소프트웨어를 이용하여 이후 분석 될 수있다. 도 2에 도시 된 바와 같이, 동물의 MRM 시험은 대응하는 기능 출력의 감소 (LV의 이완 기말 볼륨 및 토출 분획으로, 건강한 마우스 (도 2B)에서보다 더 크도록 334-352 밝혀 LV 벽 두께 Myhc-α 면역화 ; 그림 2C). 예상했던대로, 예방 접종, 그러나 건강하지의 마음, 동물 염증성 침윤 (그림 2D)를했다. 따라서, MRM 기술과 조직학 오호에서의 연구 결과서로 roborate.
그럼에도 불구하고, MRM으로 재현 가능한 결과를 얻기 위해, 다음의 세 가지 요인이 해결 될 필요가있다. 하트는 최대 균질성과 자계에 노출하는 자석의 중앙에 배치되도록 (a) 동물은 MRM 스캐너에 배치되어야한다. (B) 모션 아티팩트 라이브 동물 실험의 관심사입니다. 인해 호흡과 심장의 움직임에 치우침 화상을 줄이기 위해서, 산소 포화도와 respirometry는 호흡기 내의 특정 시점 및 동물 모니터링 시스템의 사용을 필요 심장 - 사이클로 이산 화상 신호를 취득하는 취득, 즉 게이트 MRM 사용되었다 . (C) 고해상도 3D 심장 이미지의 취득은 심장 이상에 대한 자세한 분석을 가능하게하는 중요한 요구 사항입니다. 모든 입체적 이미지를 획득하고, 신호 대 잡음비를 증가시키기 위해, 그것은 정확한 허용 및 COM MRM 특정 민감한 촬상 코일을 설계하는 것이 중요동물 스캐너 내에서 짧은 축 방향으로 강한 자기장의 이미지를 완성 하십 캡처.
결론적으로, 살아있는 동물에서 심장 이상을 평가하는 MRM 기술의 개발은 도전이다. 이는 인간의 26에 비해 자신의 작은 심장 크기 (~ 1 / 2, 000 인간의 마음의 질량)와 높은 심박수 (분당 ~ 600 비트)로, 마우스의 경우 특히 그렇습니다. 그럼에도 불구하고, 한 번 개발 및 검증, MRM 기술은 건강하고 아픈 동물 사이의 마음의 해부학 적 및 기능적 변화를 비교하는 데 사용할 수 있습니다. 따라서, MRM 기술은 질병 과정의 양쪽 급성 및 만성 활동과 관련된 염증성 심장 병리의 길이 방향의 진행을 평가하고, 살아있는 동물에서 치료에 대한 반응을 모니터링하기 위해 귀중한, 비 침습 도구의 역할을 할 수 있습니다.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Myhc-a 334-352 (DSAFDVLSFTAEEKAGVYK) | Neopeptide, Cambridge, MA | Store at 4 °C | |
| CFA | Sigma Aldrich, St Louis, MO | 5881 | Store at 4 °C |
| MTB H37Rv extract | Difco Laboratories, Detroit, MI | 231141 | Store at 4 °C |
| PT | List Biologicals Laboratories, Campbell, CA | 181 | Store at 4 °C |
| 1x PBS | Corning, Manassas, VA | 21-040-CV | Store at 4 °C |
| Isoflurane | Piramal Healthcare, Mumbai, India | NDC66794-013-25 | |
| Female A/J mice | Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME | 646 | |
| Luer-lok sterile 1 ml syrringe | BD, Franklin Lakes, NJ | 309628 | |
| Luer-lok sterile 3 ml syrringe | BD, Franklin Lakes, NJ | 309657 | |
| Sterile needle, 18 G | BD, Franklin Lakes, NJ | 305195 | |
| Sterile needle, 27 1/2 G | BD, Franklin Lakes, NJ | 305109 | |
| 3-way stopcock | Smiths Medical ASD, Inc. Dublin, OH | MX5311L | |
| Kerlix gauze bandage rolls | Covidien, Mansfield, MA | 6720 | |
| Kimwipes | Kimberly-Clark Professional, Roswell, GA | 34155 | |
| Protouch Stockinette | Medline Industries, Mundelein, IL | 30-1001 | |
| Sterile surgical scissors and forceps | INOX tool Corporation | ||
| Micro oven | GE Healthcare, | ||
| ThermiPAQ hot and cold therapy system | Theramics Corporation, Springfield, IL | ||
| Reptile heating lamp | Energy Savers Unlimited, Inc. Carson, CA | ||
| 3M Transpore tapes | Target Corporation, MN | ||
| Up and Up Polymyxin B sulfate/Bacitracin/Neomycin sulfate antibiotic ointment | Target Corporation, MN | ||
| North Safety DeciDamp-2PVC foam ear plugs | North Safety Products, Smithfield, RI | ||
| Cotton tipped applicator, 6’’ wooden stem | Jorgensen Laboratories, Inc. Loveland, CO | ||
| Anesthesia induction chamber | Summit Anesthesia Solutions, Ann Harbor, MI | ||
| Summit Anesthesia Support system for regulating flow of anesthesia | Summit Anesthesia Solutions, Ann Harbor, MI | ||
| Specially designed animal holder | Agilent Technologies, Santa Clara, CA | ||
| Bickford Omnicon F/Air anesthesia gas filter unit | A.M. Bickford, Inc. Wales Center, NY | ||
| Pulse-oximeter module, MR compatible small animal monitoring and gating system | Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY | ||
| Oxygen cylinder | Matheson-Tri Gas, North-Central Zone, Lincoln, NE | ||
| Gas regulator | Western Medica, West Lake, OH | ||
| Signal breaking module, MR compatible small animal monitoring and gating system | Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY | ||
| 9.4 T (400 MHz) 89 mm vertical core bore MR scanner | Agilent Technologies, Santa Clara, CA | ||
| 4 cm millipede micro-imaging RF coil | Agilent Technologies, Santa Clara, CA | ||
| SAM PC monitor | Small Animal Instruments, Inc. Stony Brook, NY | ||
| Quantitative Medical Image analysis software | http://segment.heiberg.se; Segment v1.8 R1430, Medviso, Oresunds region, Sweden | ||
| Matlab software | The Mathworks, Inc. Natick, MA | ||
| Computer-Unix operating system |
References
- Heidenreich, P. A., et al. Forecasting the future of cardiovascular disease in the United States: a policy statement from the American Heart Association. Circulation. 123 (8), 933-944 (2011).
- Fujinami, R. S., et al. Molecular mimicry, bystander activation, or viral persistence: infections and autoimmune disease. Clin Microbiol Rev. 19 (1), 80-94 (2006).
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