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Medicine

Phantoms simulant un tissu pour l'évaluation du potentiel proche infrarouge Applications d'imagerie de fluorescence en chirurgie du cancer du sein

Published: September 19, 2014 doi: 10.3791/51776

Abstract

Inexactitudes dans la localisation de la tumeur peropératoire et l'évaluation des résultats de la marge chirurgicale dans le résultat sous-optimal de la chirurgie mammaire conservatrice (CMC). L'imagerie optique, en particulier d'imagerie par fluorescence dans le proche infrarouge (NIRF), peut réduire la fréquence des marges chirurgicales positives suivant BCS en fournissant au chirurgien un outil de localisation de la tumeur avant et peropératoire en temps réel. Dans l'étude actuelle, le potentiel de BCS NIRF-guidée est évaluée en utilisant des fantômes de tissu mammaire simulant pour des raisons de fins de normalisation et de formation.

fantômes de sein avec des caractéristiques optiques comparables à celles du tissu mammaire normal ont été utilisés pour simuler la chirurgie mammaire conservatrice. Tumeur simulant inclusions contenant le colorant fluorescent vert d'indocyanine (ICG) ont été incorporés dans les fantômes à des endroits prédéfinis et imagé pour la localisation de la tumeur avant et peropératoire, la résection de la tumeur en temps réel NIRF-guidée, NIRF-guidéeévaluation de l'étendue de la chirurgie, et l'évaluation des marges chirurgicales post-opératoires. Une caméra NIRF mesure a été utilisée comme un prototype clinique à des fins d'imagerie.

fantômes mammaires contenant des inclusions de tumeurs simulation offrent un outil simple, peu coûteux et polyvalent pour simuler et évaluer l'imagerie peropératoire de la tumeur. Les fantômes gélatineux ont des propriétés élastiques semblables au tissu humain et peuvent être coupés à l'aide d'instruments chirurgicaux classiques. De plus, les fantômes et contiennent de l'hémoglobine pour l'intralipide imitant absorption et la diffusion de photons, respectivement, ce qui crée des propriétés optiques uniformes semblables à un tissu de sein humain. Le principal inconvénient de l'imagerie NIRF est la profondeur de pénétration limitée de photons lors de la propagation à travers le tissu, ce qui empêche (non invasif) imagerie de tumeurs profondes avec les stratégies épi-illumination.

Introduction

chirurgie mammaire conservatrice (BCS) suivie d'une radiothérapie est le traitement standard pour les patients atteints de cancer du sein avec T 1-T 2 carcinome du sein 1,2. Inexactitudes dans l'évaluation peropératoire de la mesure de résultat de la chirurgie des marges chirurgicales positives dans 20 à 40% des patients qui ont subi BCS, nécessitant une intervention chirurgicale supplémentaire ou une radiothérapie 3,4,5. Bien résection étendue des tissus sains adjacents du sein pourrait réduire la fréquence des marges chirurgicales positives, ce sera aussi entraver le résultat esthétique et augmenter comorbidité 6,7. De nouvelles techniques sont donc nécessaires que de fournir une rétroaction sur la position peropératoire de la tumeur primaire et l'étendue de la chirurgie. L'imagerie optique, en particulier la fluorescence dans le proche infrarouge (NIRF) d'imagerie, peut réduire la fréquence des marges chirurgicales positives suivantes BCS en fournissant au chirurgien un outil de localisation de la tumeur avant et en per-opératoire rEAL-temps. Récemment, notre groupe a rapporté sur le premier essai chez l'humain de l'imagerie de fluorescence de la tumeur ciblée chez les patients atteints de cancer de l'ovaire, montrant la faisabilité de cette technique pour détecter des tumeurs primaires et des métastases par voie intrapéritonéale avec une sensibilité élevée 8. Avant de procéder à des études cliniques chez des patients atteints de cancer du sein, toutefois, la possibilité d'NIRF différentes applications d'imagerie de tumeurs ciblées dans BCS peut déjà être évaluée en utilisant des fantômes préclinique.

Le protocole de recherche suivant décrit l'utilisation de l'imagerie NIRF dans des fantômes de simulation de tissus mammaires contenant des inclusions de tumeurs fluorescentes simulant 9. Les fantômes constituent un outil peu coûteux et polyvalent pour simuler la résection localisation de la tumeur avant et peropératoire, en temps réel NIRF-guidé tumeur, l'évaluation de l'état de la marge chirurgicale, et la détection de la maladie résiduelle. Les fantômes gélatineux ont des propriétés élastiques semblables au tissu humain et peuvent être coupés à l'aide de classiqueinstruments urgical. Au cours de la procédure chirurgicale simulé, le chirurgien est guidé par l'information tactile (dans le cas d'inclusions palpables) et l'inspection visuelle de la zone opératoire. En outre, l'imagerie NIRF est appliquée pour fournir au chirurgien un retour d'information en temps réel sur la mesure per-opératoire de chirurgie.

Il convient de souligner que l'imagerie NIRF nécessite l'utilisation de colorants fluorescents. Idéalement, les colorants fluorescents doivent être utilisés qui émettent des photons dans la plage spectrale de l'infrarouge proche (650-900 nm) afin de minimiser l'absorption et la diffusion des photons par des molécules physiologiquement abondantes dans les tissus (par exemple, l'hémoglobine, les lipides, l'élastine, le collagène, et de l'eau) 10,11. En outre, autofluorescence (c.-à-, l'activité de fluorescence intrinsèque dans les tissus en raison de réactions biochimiques dans les cellules vivantes) est minimisé dans le domaine du proche infrarouge du spectre, ce qui entraîne des ratios optimaux 11 tumeur à-fond. En conjuguant NIRF teint de tumeur targeted fragments (par exemple, des anticorps monoclonaux), l'administration ciblée de colorants fluorescents peuvent être obtenus pour des applications d'imagerie per-opératoires.

Comme l'oeil humain est insensible à la lumière dans la plage spectrale de l'infrarouge proche, un dispositif de caméra très sensible est nécessaire pour l'imagerie NIRF. Plusieurs systèmes d'imagerie NIRF pour l'utilisation peropératoire ont été développés jusqu'à présent 12. Dans la présente étude, nous avons utilisé une coutume construire NIRF système d'imagerie qui a été développé pour une application peropératoire en collaboration avec l'Université technique de Munich. Le système permet l'acquisition simultanée des images en couleurs et des images de fluorescence. Pour améliorer la précision des images de fluorescence, un système de correction est mis en œuvre pour des variations d'intensité de lumière dans le tissu. Une description détaillée est fournie par Themelis et al 13.

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Protocol

1. créer des moules en silicone pour Inclusions tumorales simulant

  1. Ramassez les objets solides de la forme désirée et la taille qui peuvent servir de modèles pour des inclusions de tumeur simulant, par exemple, des perles ou des billes.
  2. Nettoyer soigneusement les modèles de tumeurs. Afin d'assurer un enlèvement facile du moule de silicone, les modèles de tumeurs peuvent être pulvérisées avec un anti-adhérent par pulvérisation ou recouverts d'une mince couche de vaseline ou la cire d'abeille.
  3. Placez chaque modèle dans un carré paroi mince boîtier séparé (plastique) avec une surface lisse. Si nécessaire, fixer le modèle de la partie inférieure de la boîte pour le maintenir en position. Utilisation d'une boîte qui est légèrement plus grand que le modèle de la tumeur elle-même pour éviter de perdre des quantités excessives de silicone.
  4. Verser la quantité requise de composant silicone A dans un bol à mélanger et ajouter le composant B de silicone dans un rapport de 10: 1 en poids. Bien mélanger les deux composants. Eventuellement, une pompe à vide peut être utilisé pour éliminer les bulles d'air du mélange de silicone.
  5. Doucement pour le mélange de silicone dans la boîte en plastique pour éviter la formation de bulles. Le mélange de silicone doit être traité dans les 45 minutes pour obtenir des résultats optimaux.
  6. Laisser le mélange de silicone pour solidifier au moins 6 heures avant de le couper et de retirer le moule du modèle de tumeur. Eventuellement, le moule en silicone peut être découpé selon un motif en zigzag pour lui permettre de s'adapter ensemble arrière proprement. La force maximale de la silicone est obtenu au bout de 3 jours.

2. Créez solution saline tamponnée au Tris

  1. Créer une solution saline tamponnée au Tris (TBS) en ajoutant une solution de 6,1 g (50 mM) de Tris et 8,8 g (150 mM) de NaCl à 800 ml d'eau désionisée.
  2. Ajouter 1,0 g (15 mmol) de NaN3 pour bloquer l'oxygénation de l'hémoglobine (étape 3.3 et 4.4) et à inhiber la croissance bactérienne. ATTENTION: NaN 3 est un poison grave. Il peut être mortel en contact avec la peau ou ingestion. La toxicité de ce composé est comparable à celle des cyanures alcalins solubles et la dose mortelle pour un être humain adulteest d'environ 0,7 g. Toujours suivre les consignes de sécurité fournies par le fabricant.
  3. Ajuster le pH à 7,4 et porter le volume à 1000 ml avec de l'eau désionisée.

3 Créer fluorescentes Inclusions

  1. Ajouter 2 g d'agarose à 50 ml de TBS à partir de l'étape 2 Le point de fusion plus élevé par rapport à de l'agarose gélatine (étape 4.2) empêche les inclusions de se dissoudre et de fuite de colorant fluorescent lorsqu'il est placé dans de la gélatine fondue. En option, la quantité d'agarose ajouté peut être modifiée pour une ou 3 g d'obtenir des inclusions plus tendres ou palpables tumorales, respectivement.
  2. Chauffer la suspension d'agarose en utilisant un four micro-ondes jusqu'à ce que le point d'ébullition est atteint. Mélangez soigneusement jusqu'à ce que l'agarose est complètement dissous.
  3. Ajouter 1,1 g (17 mol) et de l'hémoglobine 5 ml d'Intralipid à 20% dissous dans 50 ml de TBS au mélange sous agitation constante agarose à ressembler à des caractéristiques optiques du tissu mammaire environnant fantôme (étape 4).
  4. Ajouter 20,0 mg (250,8 pmoles) du colorant fluorescent vert d'indocyanine à 83,8 ml d'eau désionisée. Assurez-vous que le colorant soit complètement dissous.
  5. Pipette 5,0 ml de cette solution et l'ajouter au mélange d'agarose pour obtenir une concentration finale de 14 uM. Eventuellement, d'autres colorants fluorescents que l'ICG peuvent être utilisés si on le désire avec leur concentration optimale.
  6. Remplir délicatement les moules en silicone créés à l'étape 1 avec le mélange agarose chaude à l'aide d'une seringue (figure 1A). Répétez ce processus jusqu'à ce que toutes les moules sont remplis.
  7. Laissez les inclusions fluorescentes se solidifient à la température ambiante pendant environ une heure. Protéger les inclusions de la lumière en couvrant l'ensemble du moule de papier d'aluminium.
  8. Après solidification, ouvrez délicatement le moule et appuyez sur l'inclusion (figure 1B). En option, utilisez la pointe de la seringue pour appliquer de petites gouttes de mélange agarose fondu sur la surface de l'inclusion. En répétant ce processus plusieurs fois sur le même emplacement, petit tuéperons mor peuvent être créés pour simuler des tumeurs infiltrantes.
  9. Protéger les inclusions d'agarose de la lumière et de la déshydratation en les enveloppant dans du papier d'aluminium et les stocker dans un réservoir de stockage humide à 4 ° C.
    REMARQUE: L'utilisation de concentrations de colorant fluorescent inférieures ou supérieures à l'optimum de concentration connue sera à la fois résultat en diminution de l'intensité du signal fluorescent. La réduction apparemment paradoxal de l'intensité du signal avec l'augmentation des concentrations de colorant supérieures à la concentration optimale de colorant fluorescent est due à un phénomène connu sous le nom de trempe. Lors de l'évaluation de la profondeur de pénétration maximale d'un colorant fluorescent dans des fantômes, en utilisant la concentration optimale est obligatoire.

4 Créer Phantoms mammaires

  1. Obtenir un moule en forme de coupe afin de créer des fantômes mammaires de la taille désirée et le volume, par exemple, un bol en verre ou en plastique. Le moule doit avoir une surface lisse pour éviter la gélatine sous forme d'adhérer au moule. Un volum moulee de 500 ml permettra de créer des fantômes du sein de taille suffisante.
  2. Pour créer un fantôme du sein avec un volume de 500 ml, ajouter 50 g de gélatine 250 fleurs pour 500 ml de TBS (étape 2). Chauffer la suspension de la gélatine à 50 ° C sous agitation constante.
  3. Une fois que la gélatine soit complètement dissoute, que le mélange de gélatine et refroidir progressivement le maintenir à une température constante de 35 ° C en utilisant un bain d'eau chaude.
  4. Sous agitation constante, ajouter 5,5 g (85 mmol) de l'hémoglobine bovine et 25 ml d'Intralipid à 20% pour simuler l'absorption et la diffusion des photons dans le tissu, respectivement.
  5. Prérefroidissement du moule en forme de coupelle à 4 ° C pendant au moins 1 heure. Verser ensuite le mélange de gélatine dans le moule à un niveau qui correspond à la profondeur prédéterminée de l'insertion de la tumeur simulant agarose (figure 1C). Laisser le mélange de gélatine se solidifier à 4 ° C pendant 30 minutes à une heure.
  6. Après solidification, positionner une inclusion agarose fluorescent simulant une tumeur à la surface de le fantôme et temporairement rivent l'inclusion avec une petite aiguille. Jusqu'à un maximum de trois inclusions fluorescentes simulant une tumeur peuvent être incorporés dans un seul fantôme du sein. Un espace suffisant (au moins 5 cm) doit être maintenue entre inclusions tumorales simulant individuels (Figure 1D).
  7. Verser le reste du mélange de gélatine à chaud dans le volume restant du moule, ce qui permet l'adhérence de ces deux couches, sans créer d'artefacts de réfraction. Marquer l'emplacement des inclusions de tumeurs fluorescentes simuler sur le moule. Laissez le fantôme solidifier O / N à 4 ° C.
  8. Une fois solidifié, enlever les aiguilles utilisées pour la fixation temporaire des inclusions et retirez délicatement le fantôme du sein de son moule (figure 1E). Protéger le fantôme du sein de la lumière et de la déshydratation en l'enveloppant dans une feuille d'aluminium et le stocker dans un réservoir de stockage humide à 4 ° C.

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Figure 1: les étapes séquentielles consistant à créer des fantômes mammaires tumorales contenant des inclusions simulant fluorescents. Après la création des moules en silicone de la forme et de la taille désirée, les moules sont remplis avec le mélange fondu d'agarose à l'aide d'une seringue (A). inclusions de tumeur simulant de taille et de forme différentes ont été produites dans la présente étude (B). Ensuite, une mince couche de mélange de gélatine fondue est coulée dans un moule revêtu de mesure du sein en bois (C). Après solidification, les inclusions de tumeurs simulant sont positionnés, obsédés temporairement, et recouverts d'une couche de mélange de gélatine fondue (D). Après solidification, le fantôme du sein est doucement retiré de son moule (E). Le spectre peut alors être appliquée pour simuler diverses applications d'imagerie NIRF (F).ref = "/ files / ftp_upload / 51776 / 51776fig1highres.jpg" target = "_blank"> S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

5 Réglez le système de caméra NIRF

  1. Système d'appareil photographique pour une application intra-opératoire NIRF est nécessaire pour simuler l'imagerie par NIRF ciblée dans la chirurgie du cancer du sein. Plusieurs systèmes d'imagerie pour NIRF en temps réel NIRF peropératoire imagerie sont actuellement disponibles pour utilisation expérimentale. Bien qu'il existe certaines différences entre ces dispositifs, ils contiennent tous une source de lumière d'excitation (l'excitation des inclusions de tumeurs fluorescentes) et un dispositif d'imagerie hautement sensible pour la détection des photons émis.
  2. Assurez-vous d'utiliser une source de longueur d'onde suffisante de lumière d'excitation. Pour les inclusions simulant une tumeur contenant l'ICG, utiliser une source de lumière d'excitation (par exemple laser) qui émet des photons entre 750 et 800 nm. Si un colorant fluorescent alternative est utilisée, la longueur d'onde d'excitation doit être ajustée conforme la ma les instructions du fabricant concerné.
  3. Dans le cas où le système de caméra NIRF contient un filtre d'émission pour filtrer les bruits de fond indésirables, assurez-vous que le bon filtre est utilisé. Pour inclusions tumorales simulant contenant ICG, utiliser un filtre d'émission entre 800 et 850 nm. Colorants fluorescents alternatifs peuvent nécessiter filtres d'émission différentes, selon les instructions du fabricant.
    REMARQUE: Assurez-vous qu'il existe un chevauchement nul entre l'excitation et la longueur d'onde d'émission pour éviter les images trop saturées. En outre, le temps d'acquisition d'image peut être ajustée pour obtenir des images fluorescentes optimales. Dans le cas des inclusions fluorescentes profondément enracinés ou des signaux fluorescents faibles, l'image du temps d'acquisition peut être augmentée jusqu'à plusieurs secondes à min. Dans le cas d'inclusions superficielles ou des signaux fluorescents solides, le temps d'acquisition peut être réduit à quelques millisecondes pour tenir compte du taux vidéo imagerie de fluorescence en temps réel.
e "> 6. Simulation des demandes NIRF imagerie en chirurgie du cancer du sein

  1. Prendre le sein fantôme simulant un tissu de son récipient et placez-le sur une surface plane non fluorescent. Ensuite, placer le dispositif de formation d'image au-dessus de la NIRF fantôme du sein, en laissant une distance de travail suffisant pour l'excision des inclusions de tumeurs simuler.
  2. Localiser l'inclusion fluorescent tumeur simulant NIRF utilisant l'imagerie et / ou la palpation du sein fantôme. Dans le cas où aucun signal de fluorescence peut être détectée, l'inclusion est soit placé trop profondément dans le fantôme pour la détection ou le temps d'acquisition d'image doit être augmentée.
  3. Une fois que l'inclusion est localisée, inciser le fantôme du sein et enlever l'inclusion de la tumeur simulant sous en temps réel NIRF d'orientation à l'aide d'instruments chirurgicaux classiques. Alternativement, l'inclusion peut être excisé guidé uniquement par inspection visuelle et palpation du fantôme du sein pour simuler la norme des soins.
  4. Directement après l'enlèvementde l'inclusion de la tumeur simulant, l'image de la cavité chirurgicale pour toute activité fluorescent restant indiquant excision insuffisante.
  5. Dans le cas d'une activité fluorescente restant, exciser le reste de l'inclusion, sous la direction de NIRF directe jusqu'à aucun signal fluorescent est à gauche.
  6. L'image des fragments de fantômes excisées pour simuler macroscopique évaluation de l'état de la marge NIRF guidée. Présentes, coupez le tissu fantôme en 3 - 5 plaques mm et l'image des plaques en conséquence. Le signal de fluorescence atteint dans les marges chirurgicales indique l'existence de marges chirurgicales positives.

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Representative Results

Les résultats de cette étude ont été rapportés ailleurs 9.

Nos données montrent que l'imagerie NIRF peut être appliquée pour détecter les inclusions de tumeurs fluorescentes en simulant des fantômes de tissu mammaire simulant, en simulant une chirurgie mammaire conservatrice NIRF guidée chez les patients atteints de cancer du sein. L'utilisation de notre modèle fantôme, nous avons trouvé localisation peropératoire de la tumeur, la résection de la tumeur NIRF guidée, l'évaluation peropératoire des bords de la cavité chirurgicale, et la détection d'une maladie résiduelle réalisable (figure 2). En bref, un total de quatre seins fantômes ont été produites, contenant tous deux inclusions fluorescentes avec des dimensions et / ou de la morphologie (tableau 1) distinctes.

Inclusions de tumeurs simulant fluorescentes ont été retirés par voie chirurgicale à partir de la première et deuxième fantôme du sein en utilisant des instruments chirurgicaux classiques. L'excision des inclusions a été guidée par la palpation et l'inspection visuelle de la opératdomaine ive. On a demandé au chirurgien d'opérer sur la poitrine fantôme jusqu'à ce que les inclusions de tumeurs simulant ont été complètement enlevés. Ensuite, l'appareil de mesure de fluorescence a été appliqué pour balayer la cavité chirurgicale pour des signaux fluorescents restants. Dans le cas d'une exérèse incomplète, indiqué par une forte signal de fluorescence reste, le chirurgien a été invité à exciser le reste de l'inclusion dans en temps réel NIRF d'orientation. Dans les deux fantôme # 1 et # 2, l'excision des inclusions sur deux simulant une tumeur était incomplète, comme en témoigne un signal restant solide de fluorescence provenant de la cavité chirurgicale. Dans le cas d'excision incomplète après la première tentative chirurgicale, le chirurgien détecté excisé et l'inclusion reste sous contrôle au cours de la même NIRF (dite théranostic) procédure. Reexcision sous la direction de NIRF directe a entraîné une élimination complète du reste de l'inclusion à la deuxième tentative chirurgicale dans tous les cas, alors qu'il n'était pas nécessaire d'exciser grand volumes fantôme de tissu.

Dans les troisième et quatrième fantôme du sein, de la localisation et de l'ablation chirurgicale des inclusions fluorescentes NIRF guidée a été effectuée lors de la première tentative chirurgicale. En approchant les inclusions fluorescentes simulant une tumeur, le chirurgien a un moniteur à sa disposition sur laquelle le signal de fluorescence a été projetée en temps réel. Dans la quatrième fantôme du sein, une tumeur de l'inclusion simulant positionné à 3,0 cm de profondeur n'est détectable après l'incision du tissu fantôme environ 1 cm. Dans le troisième fantôme du sein, les inclusions de tumeurs ont été simulant radicalement éliminés lors de la première tentative chirurgicale, tandis que la suppression d'un infiltrant inclusion dans la quatrième fantôme a été jugée incomplète. Reexcision sous NIRF-conseils directs a entraîné une élimination complète du reste de la tumeur dans ce fantôme.

Après l'opération, des fragments de tissus fantômes excisées ont été découpées en 3 toboggans mm et imagées par les sys caméra NIRFsystème pour simuler ex vivo évaluation macroscopique de l'état de la marge chirurgicale. Dans tous les cas, l'imagerie de NIRF postopératoire clairement représenté les frontières des inclusions de tumeurs simulation et d'indiquer si la tumeur reste était présent aux marges chirurgicales (figure 2C).

Figure 2
Figure 2 NIRF simulation de formation d'image dans des fantômes mammaires. Des fantômes mammaires simulant un tissu contenant des inclusions de tumeurs simulant fluorescentes ont été appliquées pour la simulation de la localisation de la tumeur intra-opératoire (A), l'élimination NIRF guidée tumeur (B), et l'évaluation de la marge chirurgicale NIRF-guidé l'état (C). Modifié à partir de:.. Pleijhuis et al, EJSO (2011) Plfaciliter cliquez ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Tableau 1 Présentation de la composition de fantôme. Tableau 1
Un total de 4 fantômes ont été produites, contenant deux inclusions chaque de taille et de forme différentes fluorescentes tumeurs simulation.

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Discussion

Nous avons simulé des applications cliniques potentielles de BCS NIRF guidées par l'utilisation de fantômes en forme de sein avec des inclusions de tumeurs simulation intégrés. Localisation peropératoire de la tumeur, la résection de la tumeur NIRF guidée, l'évaluation de l'étendue de la chirurgie, et l'évaluation des marges chirurgicales post-opératoires ont été trouvées tout réalisable en utilisant un système de caméra NIRF construire sur mesure. Détection non invasive de la tumeur inclusions simulant fluorescentes n'est possible pour les inclusions positionnées dans le tissu de fantôme, à une profondeur de 2 cm ou moins. Pendant l'opération, toutefois, la profondeur de pénétration limitée de signal a été en grande partie résolu par la nature de la chirurgie BCS, dans laquelle le chirurgien amener le tissu d'intérêt proche de la surface de l'incision du tissu recouvrant.

Imagerie peropératoire NIRF comporte certains avantages, notamment l'absence de rayonnements ionisants, la sécurité générale de la technique, et une haute résolution de 9,14. En outre, la technique offre des informations en temps réel pour le chirurgien qui concerne l'étendue de la chirurgie et permet une intégration immédiate des images fluorescentes avec des images en couleur du champ opératoire pour une localisation plus précise du signal fluorescent 13.

Comme indiqué précédemment, un inconvénient important de l'imagerie NIRF est la profondeur limitée de signaux optiques de pénétration tissulaire due à l'absorption et la diffusion de photons par certains constituants tissulaires 10,11. Pour faire correspondre les caractéristiques optiques du tissu normal du sein, de l'hémoglobine et intralipide ont été ajoutés à nos fantômes pour l'absorption et la diffusion de photons, respectivement 10,15. Un second inconvénient de l'imagerie per-opératoire NIRF est l'incapacité à quantifier des signaux fluorescents lors de l'exécution d'imagerie en deux dimensions en raison d'une relation non linéaire entre l'intensité du signal et la concentration du colorant fluorescent 10.

Dans la présente étude, nous avons utilisé un NIRF personnaliséeCaméra pour usage peropératoire. Le système acquiert les images en couleurs et de fluorescence en deux dimensions du champ opératoire. D'autres dispositifs d'imagerie peropératoire NIRF sont également disponibles avec des stratégies légèrement différentes d'imagerie 12. Malheureusement, dans les essais multicentriques, l'utilisation de différents systèmes d'imagerie et les paramètres peuvent influer sur les résultats obtenus entre les institutions. L'aide de fantômes avec des quantités connues de colorant fluorescent pourrait aider à résoudre ce problème en fournissant un outil pour calibrer le système d'imagerie différente. En outre, les fantômes pourraient être utilisées à des fins de formation et de normalisation des procédures chirurgicales NIRF-guidées.

Comme indiqué précédemment, les colorants fluorescents sont une condition préalable pour l'imagerie NIRF. Nous avons choisi d'utiliser ICG pour nos inclusions tumorales simulant car il est le seul dans le proche infrarouge colorant fluorescent grade clinique actuellement disponibles. Nouveaux fluorophores (par exemple, IRDye 800CW) sont actuellement en cours d'élaboration et devraient gagner Approval pour une utilisation clinique dans un avenir proche. Contrairement à l'ICG, qui ne peut être conjugué sous sa forme cliniquement approuvé, fluorophores tels que 800CW nouveaux, peuvent être facilement conjuguées à des biomolécules. La conjugaison de ces nouveaux ligands fluorophores à une tumeur ciblée ou des anticorps monoclonaux permet une délivrance spécifique du colorant fluorescent dans les cellules cancéreuses. En effet, des études précliniques et cliniques ont déjà montré la faisabilité de NIRF imagerie des tumeurs marqué par un fluorophore et indiqué NIRF chirurgie guidée à améliorer les résultats chirurgicaux 8,13,17,18,19,20.

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Disclosures

Les auteurs n'ont rien à divulguer.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Bovine hemoglobin Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, The Netherlands H2500 Simulates absorption of photons in tissue 
Intralipid 20% Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, The Netherlands I141 Simulates scattering of photons in tissue
Silicone A translucent 40 (2-components poly-addition silicone) NedForm, Geleen, The Netherlands Package consists of components A and B, that should be mixed one on one (A:B=10:1).  Link to manufacturers page: http://tinyurl.com/ncjq7jx
Gelatine 250 Bloom Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, The Netherlands 48724 Construction of breast-shaped phantoms
Agarose Hispanagar, Burgos, Spain Construction of tumor-simulating inclusions
Tris Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, The Netherlands T1503 
HCl Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, The Netherlands 258148
NaCl Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, The Netherlands S9888
NaN3 Merck, Darmstadt, Germany 822335 CAUTION: severe poison. The toxicity of this compound is comparable to that of soluble alkali cyanides and the lethal dose for an adult human is about 0.7 grams.
Examples of NIRF imaging devices for intraoperative application:
T2 NIRF imaging platform  SurgVision BV, Heerenveen, The Netherlands Customized NIRF imaging system used in the current study. More details available at www.surgvision.com
Photodynamic Eye Hamamatsu Photonics Deutschland GmbH, Herrsching am Ammersee, Germany PC6100 www.iht-ltd.com
FLARE imaging system kit The FLARE Foundation Inc, Wayland, MA, USA www.theflarefoundation.org
Fluobeam Fluoptics, Grenoble, France www.fluoptics.com
Artemis handheld camera Quest Medical Imaging BV, Middenmeer, the Netherlands www.quest-mi.com
Examples of NIRF fluorescent dyes for intraoperative application:
Indocyanine green ICG-PULSION,  Feldkirchen, Germany PICG0025DE   Clinical grade fluorescent dye for NIRF imaging used in the current study. More details available at www.pulsion.com
IRDye 800CW NHS Ester LI-COR Biosciences, Lincoln, NE, USA 929-70021 www.licor.com

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bellon, J. R., et al. ACR Appropriateness Criteria® Conservative Surgery and Radiation - Stage I and II Breast Carcinoma. The Breast Journal. 17 (5), 448-455 (2011).
  2. Kaufmann, M., Morrow, M., Von Minckwitz, G., Harris, J. R. The Biedenkopf Expert Panel Members. Locoregional treatment of primary breast cancer. Cancer. 116, 1184-1191 (2010).
  3. Pleijhuis, R. G., et al. Obtaining adequate surgical margins in breast-conserving therapy for patients with early-stage breast cancer: current modalities and future directions. The Annals of Surgical Oncology. 16, 2717-2730 (2009).
  4. Singletary, S. E. Surgical margins in patients with early-stage breast cancer treated with breast conservation therapy. American Journal of Surgery. 184 (5), 383-393 (2002).
  5. Jacobs, L. Positive margins: the challenge continues for breast surgeons. Annals of Surgical Oncology. 15 (5), 1271-1272 (2008).
  6. Krekel, N., et al. Excessive resections in breast-conserving surgery a retrospective multicentre study. The Breast Journal. 17 (6), 602-609 (2011).
  7. Wood, W. C. Close/positive margins after breast-conserving therapy: additional resection or no resection? Breast. 22, 115-117 (2013).
  8. Van Dam, G. M., et al. Intraoperative tumor-specific fluorescence imaging in ovarian cancer by folate receptor-α targeting: first in-human results. Nature Medicine. 17 (10), 1315-1319 (2011).
  9. Pleijhuis, R. G., et al. Near-infrared fluorescence (NIRF) imaging in breast-conserving surgery: assessing intraoperative techniques in tissue-simulating breast phantoms. European Journal of Surgical Oncology. 37 (1), 32-39 (2011).
  10. Baeten, J., Niedre, M., Dunham, J., Ntziachristos, V. Development of fluorescent materials for Diffuse Fluorescence Tomography standards and phantoms. Optics Express. 15 (14), 8681-8694 (2007).
  11. Luker, G. D., Luker, K. E. Optical imaging: current applications and future directions. Journal of Nuclear Medicine. 49 (1), 1-4 (2007).
  12. Keereweer, S., et al. Optical image-guided surgery - Where do we stand? Molecular Imaging Biology. 13 (2), 199-207 (2011).
  13. Themelis, G., Yoo, J. S., Soh, K. S., Shulz, R., Ntziachristos, V. Real-time intraoperative fluorescence imaging system using light-absorption correction. Journal of Biomedical Optics. 14 (6), 064012 (2009).
  14. Themelis, G., et al. Enhancing surgical vision by using real-time imaging of αvβ3-integrin targeted near-infrared fluorescent agent. Annals of Surgical Oncology. 18 (12), 3506-3513 (2011).
  15. De Grand, A. M., et al. Tissue-like phantoms for near-infrared fluorescence imaging system assessment and the training of surgeons. Journal of Biomedical Optics. 11 (1), 014007 (2006).
  16. Intes, X. Time-domain optical mammography SoftScan: initial results. Academic Radiology. 12 (10), 934-947 (2005).
  17. Kirsch, D. G., et al. A spatially and temporally restricted mouse model of soft tissue sarcoma. Nature Medicine. 13 (8), 992-997 (2007).
  18. Tafreshi, N. K., et al. Noninvasive detection of breast cancer lymph node metastasis using carbonic anhydrases IX and XII targeted imaging probes. Clinical Cancer Research. 18 (1), 207-219 (2012).
  19. Nguyen, Q. T., Tsien, R. Y. Fluorescence-guided surgery with live molecular navigation - a new cutting edge. Nature Reviews Cancer. 13 (9), 653-662 (2013).
  20. Orosco, R. K., Tsien, R. Y., Nguyen, Q. T. Fluorescence imaging in surgery. IEEE Reviews in Biomedical Engineering. 6, 178-187 (2013).

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Médecine Numéro 91 le cancer du sein des fantômes de tissu simulant l'imagerie NIRF inclusions tumorales simulant fluorescence l'imagerie peropératoire.
Phantoms simulant un tissu pour l'évaluation du potentiel proche infrarouge Applications d'imagerie de fluorescence en chirurgie du cancer du sein
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Pleijhuis, R., Timmermans, A., DeMore

Pleijhuis, R., Timmermans, A., De Jong, J., De Boer, E., Ntziachristos, V., Van Dam, G. Tissue-simulating Phantoms for Assessing Potential Near-infrared Fluorescence Imaging Applications in Breast Cancer Surgery. J. Vis. Exp. (91), e51776, doi:10.3791/51776 (2014).

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