Summary
C. elegans usualmente se cultivan en placas de agar sólido o en cultivos líquidos sembradas con E. coli. Para evitar subproductos bacterianos de confusión estudios toxicológicos y nutricionales, se utilizó un medio líquido axénicos, CEHR, para crecer y sincronizar un gran número de gusanos para una gama de aplicaciones posteriores.
Abstract
En este protocolo, se presentan los materiales necesarios y el procedimiento para las C modificado. Correos Legans habituación y reproducción de medios (mCeHR). Además, los pasos para exponer y aclimatación C. elegans cultivadas en E. coli para axénicos medios líquidos se describen. Finalmente, los experimentos posteriores que utilizan axénicos C. elegans ilustran los beneficios de este procedimiento. La capacidad de analizar y determinar C. requerimiento de nutrientes elegans fue ilustrado por la creciente N2 gusanos de tipo salvaje en medios líquidos axénicos con concentraciones variables hemo. Este procedimiento puede ser replicado con otros nutrientes para determinar la concentración óptima para el crecimiento y el desarrollo gusano o, para determinar los efectos toxicológicos de los tratamientos farmacológicos. Los efectos de las concentraciones de hemo variadas en el crecimiento de los gusanos de tipo salvaje se determinaron a través de la observación microscópica cualitativa y cuantificando tl número de gusanos que crecieron en cada concentración de hemo. Además, el efecto de las concentraciones de nutrientes variadas puede ensayarse mediante la utilización de gusanos que expresan sensores fluorescentes que responden a los cambios en el nutriente de interés. Además, un gran número de gusanos fueron producidos fácilmente para la generación de transgénicos C. elegans utilizando bombardeo con micropartículas.
Introduction
El nematodo del suelo, el Caenorhabditis elegans, un organismo modelo de gran alcance usada en numerosos estudios de la genética a la toxicología. Como resultado de su tamaño de 1 mm, tiempo de generación rápida de cuatro días facilidad de cultivo, y un gran número de progenie, estos nematodos se han utilizado en un número de genéticos y farmacológicos pantallas 1, 2. Los investigadores se aprovechan de este gusano para identificar moléculas y vías conservadas en sistemas de vertebrados. Estas vías incluyen señales de muerte celular, vías de envejecimiento y el metabolismo, y el sistema nervioso 3-6. Además, la transparencia de C. elegans permite la generación de líneas transgénicas utilizando los reporteros de proteínas fluorescentes, que se pueden visualizar directamente para analizar los patrones de expresión de genes y localización de la proteína.
En muchos estudios de este nematodo se cultiva en una superficie a base de agar sólido utilizando un medio de crecimiento de nematodos (NGM) placas o en lculturas iquid sembraron con Escherichia coli como una fuente de alimento 7,8. Estas fuentes alimenticias bacterianas pueden confundir a los estudios bioquímicos y toxicológicos con la interferencia de subproductos bacterianos que afectan a la interpretación de los resultados. Con el fin de evitar estos efectos combinados, C. elegans pueden ser cultivadas en un axénicos medios líquidos que está desprovisto de bacterias como una fuente de alimento. El uso de este medio de comunicación, cultivadas con éxito a millones de gusanos altamente sincronizados para muchos estándar C. protocolos elegans, incluyendo el análisis de microarrays de genes regulados diferencialmente en C. elegans expuesto a diferentes concentraciones de hemo, y la producción de gusanos transgénicos utilizando bombardeo de genes. Este medio se define y se modifica a partir de una receta original formulado por el Dr. Eric Clegg 9 químicamente. El uso de este medio de comunicación mCeHR, hemos logrado identificar genes implicados en la homeostasis del heme, referido a los genes como hemo sensibles (hrg s) 10, lo que haríano habría sido posible en condiciones de crecimiento normales que utilizan placas de agar NGM sembradas con E. coli.
En este protocolo se describe el procedimiento para la introducción y el mantenimiento de C. elegans cultivadas en E. coli para la axénicos mCeHR y utilizar este método para obtener un gran número de gusanos para la producción de transgénicos C. líneas elegans utilizando bombardeo con micropartículas. Nosotros también presentan estudios que muestran la utilidad de usar medios axénicos para determinar las necesidades nutricionales de C. elegans usando hemo como un ejemplo. Estos estudios muestran que el uso de los medios de comunicación mCeHR permite para el crecimiento rápido de un gran número de C. elegans para muchas aplicaciones posteriores utilizados por los investigadores del gusano.
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Protocol
1. Las cepas de gusano
- Obtener C. elegans de tipo salvaje cepas Bristol N2 desde el Centro de Genética Caenorhabditis (CGC) (http://www.cbs.umn.edu/cgc) y mantenerlos en NGM placas sembradas con E. coli cepa OP50 7. Nota: gusano transgénico cepas IQ6011 (Phrg-1 :: GFP) utilizados fueron generados a lo descrito previamente 11. IQ6011 puede ser solicitado al autor correspondiente.
2. Preparación de modificación C. elegans Habitation y Reproducción Medio (mCeHR)
Preparar medios líquidos mCeHR como se describe a continuación 12. Este medio líquido axénico permite que los gusanos crecen sin fuentes de alimentos adicionales. Llevar a cabo todas las manipulaciones de los medios líquidos axénicos y axénicos gusanos utilizando condiciones estrictamente estériles tales como una campana de flujo laminar.
- Obtener la leche ultra-pasteurizada descremada en una tienda de comestibles. Utilice el pro refrigeradaconducto y no el producto temperatura ambiente. Antes del uso en mCeHR medio, veta la leche en infusión cerebro corazón (BHI) placas de agar y se incuban durante 3 días a 30 ° C y 37 ° C para comprobar la esterilidad. Transferir la leche a 50 ml tubos estériles y se almacena a -80 ° C
- Preparar cada uno de los siguientes componentes y se combinan en el orden y cantidades dadas para preparar 1 l de mCeHR (Tabla 1A): 10 ml de 2 mM de colina, citrato diácido 10 ml de vitamina y mezcla del factor de crecimiento (véase la receta en la Tabla 1B), 10 ml de 2,4 mM de myo-inositol, 10 ml de cloruro de hemina 2 mM, 250 ml de agua desionizada. Aplicar y filtro de succión a través de una unidad de filtro de 0,22 micras.
- Añadir 20 ml de la mezcla de ácido nucleico (receta en la Tabla 1C), 100 ml de mezcla de minerales (receta en la Tabla 1D), 20 ml de 170 mg / ml de hidrolizado de lactoalbúmina, 20 ml de aminoácidos esenciales, 10 ml de aminoácidos no esenciales ácidos, 20 ml de 450 mM KH 2 PO 4,50 ml de 1,45 M de D-glucosa, 10 ml de 1 M de HEPES, sal de sodio, 250 ml de agua desionizada.
- Aplicar el vacío para filtrar esterilizar los componentes. Quite el filtro y añadir 1 ml de 5 mg / ml de colesterol. Asegúrese de que el pH de los medios de comunicación es de aproximadamente 6-6,5. Nota: Esta solución puede ser almacenada a -80 ° C durante hasta un año.
- Añadir 20% (v / v) de ultra pasteurizada leche descremada orgánica al medio de mCeHR antes de su uso. Utilice una técnica escrupulosamente estéril (por ejemplo en una campana de flujo laminar) al abrir y alícuotas de la leche. Almacene el papel a 4 ° C.
3. Preparar C. elegans para la Cultura en axénico mCeHR Liquid Media
- Crecer gusanos en diez de 60 mm NGM placas hasta que no haya muchos gusanos grávidas y una cantidad mínima de OP50 E. coli en las placas.
- Eliminar los gusanos de cada placa por lavado con 5 ml de tampón M9 (receta en la Tabla 1F), y combinar en un tubo cónico de 50 ml.
- Permitir a los gusanos a settle dejando el tubo en reposo durante 5 a 10 minutos y luego retirar con cuidado el sobrenadante que contiene la E. coli.
- Repita los pasos 3.2 y 3.3 2x para eliminar la mayor cantidad de las bacterias residuales como sea posible antes de continuar el procedimiento.
- Resuspender los gusanos en 0,1 N de NaCl en un volumen que es un múltiplo de tres, por ejemplo en el que los gusanos individuales pueden verse 1,5 ml, 3 ml o 6 ml en el tubo.
- Lejía los gusanos mediante la adición de NaOH 5 N y 5% de hipoclorito de sodio solución (lejía) en una relación de 01:02:06 a la suspensión gusano. Por ejemplo, 1 ml de NaOH 5 N: 2 ml de 5% de hipoclorito de sodio: 6 ml de la suspensión gusano. Mezclar el NaOH y lejía antes de añadir a la suspensión gusano.
- Vortex la solución vigorosamente hasta que los gusanos grávidas se disuelven y sólo los huevos son visibles dentro de la suspensión (aproximadamente 5 a 10 minutos). Supervisar el proceso utilizando un microscopio de contraste de fases con un objetivo de 10X.
- Después de que los gusanos se han disuelto completamente, pellets de inmediato lahuevos a 800 xg durante 45 segundos a 4 ° C. Eliminar el sobrenadante y lavar el pellet dos veces con 10 ml de agua estéril centrifugando el pellet a 800 xg durante 45 segundos a 4 ° C.
- Después del blanqueo, transferir el sedimento de huevo a un matraz de cultivo de tejido de 25 cm 2 que contiene 10 ml de medio mCeHR suplementadas con 100 g / ml de tetraciclina. Estas operaciones se realizarán utilizando técnicas estériles. Si lo desea, agregue los antibióticos adicionales, incluyendo 250 ácido nalidíxico mg / ml, para prevenir el crecimiento bacteriano en los cultivos líquidos axénicos.
- Incubar los cultivos líquidos a 20 ° C en una incubadora de agitación a aproximadamente 70 rpm.
- Compruebe los gusanos todos los días para observar el grado de desarrollo y la tasa de crecimiento.
Nota: Worms inicialmente crecen lentamente y requieren de 7 a 10 días en estar grávido. Sin embargo, como los gusanos aclimatan al medio líquido el tiempo de generación se reducirá a aproximadamente 4 días de tipo salvaje (N2) gusanos. - Después de que los gusanos tienen devellado a la etapa grávido en medios líquidos, transferir la cultura gusano a un tubo cónico y sedimentar los gusanos a 800 xg durante 5 min a 4 ° C usando un rotor de cubeta oscilante.
- Eliminar el sobrenadante y resuspender el sedimento suavemente gusano en un volumen igual de 0,1 M de NaCl. Por ejemplo, utilizar 10 ml de NaCl 0,1 M para los gusanos cultivadas en 10 ml de mCeHR. Permita que los gusanos se asienten durante 5 minutos en hielo.
- Llevar a cabo el procedimiento de blanqueamiento como se describió anteriormente en los pasos 3.5 a 3.8, y permitir que los gusanos crezcan para una segunda generación en los medios líquidos axénicos. Si es necesario, añadir el antibiótico de nuevo para inhibir el crecimiento bacteriano.
- Una vez más permiten a los gusanos a continuación, se convierten en grávido sedimentar y resuspender los gusanos en NaCl 0,1 M como se describe en los pasos 3,12 y 3,13, a continuación, blanquear de nuevo como se describe en los pasos 3.5 a 3.8, para producir una población sincronizada. Crecer a los gusanos de larva L1 en medios líquidos sin antibióticos a partir de ahora.
4. Sincronización de Worms de líquidoCultura
- Pellets y resuspender los gusanos en NaCl 0,1 M como se describe anteriormente en las etapas 3.12 y 3.13. Bleach como se describe anteriormente en las etapas 3.5 a 3.8.
- Resuspender el precipitado huevo en 10 ml de tampón M9 y permitir que las larvas eclosionan O / N a 20 ° C en un agitador de plataforma giratoria. Nota: Los huevos eclosionan en larvas L1, pero no van a desarrollar aún más, la sincronización de los gusanos en la fase L1.
- Mantener y gusanos subcultura, pellet L1 larvas a 800 xg durante 5 min, y luego volver a suspender las larvas en 10 ml de mCeHR y la transferencia a un matraz de 25 cm 2. Permita que los gusanos crecer a 20 ° C en una plataforma giratoria. Mantener una densidad máxima de 3.000 gusanos / ml / cm 2 para asegurar una nutrición adecuada para los gusanos.
Nota: En esta etapa, los antibióticos no son necesarios para mantener las condiciones axénicas cuando los procedimientos se llevaron a cabo utilizando técnicas estériles en una campana de flujo laminar. Worms se inspeccionarán diariamente para controlar el crecimiento.
5. Gratuitozing y descongelación Worms para cultivos axénicos mediano
- Congele culturas gusano asíncronos axénicos o larvas L1 sincronizada en nitrógeno líquido. Gusanos de pellets a 800 xg durante 5 min y después se resuspenden en tampón de S (6,45 mM KHPO 4, 43,55 mM KHPO 4, NaCl 146,25 mM) utilizando 0,5 ml para cada vial. Añadir un volumen igual de tampón de S con 30% v / v de glicerol a cada vial y transferir los gusanos a -80 ° C antes del almacenamiento a largo plazo en N2 líquido. Congele aproximadamente 1 x 10 6 gusanos por ml en cada vial.
- Descongele gusanos incubando los viales a 37 º C durante aproximadamente 2 minutos hasta que casi todo el hielo se derrita. En una campana de flujo laminar, la transferencia de los gusanos a un frasco estéril que contiene mCeHR y colocarlos a 20 ° C.
6. Determinar el efecto de Hemin La concentración en el crecimiento y la reproducción mCeHR
- Utilice los medios mCeHR axénicos para ensayar crecimiento dependiente de nutrientes de C. elegans. Para determinar el efecto Oconcentración hemina f en el crecimiento y el desarrollo del gusano, utilice sincronizado gusanos N2 axénicos u otras cepas de interés. Sincronizar larvas L1 como se describió anteriormente en la sección 4.
- Al día siguiente, pellet y contar las larvas L1 sincronizada y diluir a 1 lombriz al l de medios axénicos. Hacer cloruro de hemina 10 mM en 0,3 M de NH 4 OH y ajustar el pH a 8 usando HCl concentrado.
- Añadir 800 l de los medios de comunicación mCeHR a una placa de 24 pocillos. Añadir 100 gusanos a cada pocillo en 100 l de medios de comunicación. Añadir cloruro de hemina a cada pocillo en concentraciones que van desde 0 M, 1,5 M a 1,000 M en triplicado. Asegúrese de que todos los pozos contienen la misma concentración de 0,3 M NH 4 OH. Resuspendió suavemente los gusanos antes de pipetear para asegurar que 100 larvas L1 se añaden a cada pocillo.
- Examine los gusanos diario y anote el crecimiento de cada concentración en cada pocillo. Cuente el número de gusanos después de 9 días de incubación y trazar el número de gusanos / ml correspondientes a cada grupo hemoconcentración (Figura 1).
7. Efecto de la Concentración La hemina en hemo gusanos de sensores
- Incubar gusanos sensor heme L1 sincronizados (Phrg-1 :: GFP) en mCeHR contienen 4 M, 8 M, 10 M y 20 M hemina.
- Imagen de los gusanos mediante microscopía confocal de fluorescencia, 48 h después de la incubación (Figura 2).
8. Utilizando mCeHR para generar transgénico C. elegans Uso de bombardeo de micropartículas
Nota: El procedimiento para la generación y ejecución de bombardeo con micropartículas utilizando gusanos crecen en mCeHR UNC-119 (ed3) se indica en la figura 3 13.
- Preparación Worm
- Transferir aproximadamente 1 x 10 6 UNC-119 (ed3) gusanos asíncronos en 90 ml de medio mCeHR en un 175 cm 2 frasco de una semana antes de los bombardeos. Permita que los gusanos crecer a 20 ° C ona plataforma de agitación a ~ 70 rpm (Figura 3-1).
Nota: Una semana más tarde, la densidad gusano debe ser significativamente mayor con muchos gusanos adultos grávidas. Se requerirán aproximadamente 3 x 10 7 gusanos de bombardeo con micropartículas. - Chill JM109 E. coli sembró 10 cm NGM placas de hielo.
- Transfiera los gusanos axénicos de dos tubos de 50 ml cónicos y centrifugar los gusanos a 800 xg durante 2 min. Aspirar el sobrenadante y resuspender los gusanos en cada tubo en 50 ml de tampón M9 (Figura 3-2).
- Permita que los gusanos adultos para sedimentar por gravedad durante 10 a 15 min en hielo.
Nota: El pellet 2 ml debe contener ahora> 90% gusanos adultos. Este pellet 2 ml debe tener aproximadamente 5 x 10 6 gusanos y es suficiente para un bombardeo de micropartículas. - Escudo toda la superficie de la placa refrigerada JM109 sembró NGM con el sedimento de 2 ml de gusanos. Deje que el líquido se absorba completamente a continuación, dejar la placadurante 30 min en hielo antes de proceder (Figura 3-3).
- Transferir aproximadamente 1 x 10 6 UNC-119 (ed3) gusanos asíncronos en 90 ml de medio mCeHR en un 175 cm 2 frasco de una semana antes de los bombardeos. Permita que los gusanos crecer a 20 ° C ona plataforma de agitación a ~ 70 rpm (Figura 3-1).
- Preparación de partículas de oro
- Pesar 30 mg de partículas de oro en un tubo de microcentrífuga siliconado. Añadir 1 ml de 70% de etanol y agitar el tubo durante 5 min.
- Deje que el tubo repose durante 15 min y centrifugar a 6000 xg durante 10 segundos para que sedimenten las partículas de oro. Eliminar el sobrenadante usando una punta de pipeta tocando cuidadosamente la punta al lado del tubo opuesta a las partículas de oro.
- Se lavan las partículas de oro con 1 ml de agua estéril, de vórtice durante 1 min y centrifugar brevemente el tubo a 6000 xg durante 10 seg. Repetir la etapa de lavado dos veces, a continuación, volver a suspender las partículas de oro en 0,5 ml de 50% de glicerol estéril.
Nota: La concentración final de las partículas de oro será de 60 mg / ml y se puede almacenar durante 1 a 2 meses a 4 ° C.
- Preparar la mezcla de partículas de ADN-oro
- Combinar 10 g del ADN del plásmido deseado con 10 y# 956; g del plásmido de rescate unc-119 en un tubo de silicona de 1.5 ml. Añadir 50 l de agua DI y 100 l de solución de partículas de oro bien resuspendido a continuación vórtice durante 1 min.
- Añadir 150 l de CaCl2 2,5 M y agitar de nuevo la solución durante 1 min. A esta solución, añadir 60 l de espermidina 0,1 M y agitar durante 3 a 5 min.
- Pulso centrifugar la solución a 6.000 xg durante 10 segundos, retire el sobrenadante y añadir 300 l de etanol al 70%. Así Vortex durante 1 min, centrifugar pulso a 6.000 xg, eliminar el sobrenadante y resuspender en 170 l de etanol al 100%. Vigorosamente agite la solución durante 5 a 10 min y después se pulso de centrífuga y separar el sobrenadante.
- Bombardeo (Figura 3-3)
Nota: Este protocolo se realiza con el sistema de suministro de partícula especificado en la Tabla de Materiales / Equipos. Siga las instrucciones para el instrumento de administración de partículas disponible.- <li> Coloque una hoja de papel de seda en una placa de 15 cm. Usando las pinzas, sumerja siete macrotransportadores individualmente en etanol al 100% y las ponen sobre el tejido se seque.
- Limpiar a fondo la cámara biolistic, titular macroportador y placa objetivo con etanol al 70%. Limpie y esterilice en autoclave las pantallas de parada antes de cada procedimiento de bombardeo.
- Cargue los macrocarrriers en el soporte utilizando pinzas y pulse en el soporte con la función de estar.
- Esparza de forma uniforme 20 l de las partículas de oro recubiertas de ADN en el centro de cada macroportador y luego dejar que la solución se seque por completo.
- Limpiar las dos partes del divisor de presión con etanol y montar con discos de ruptura de etanol limpiado. Atornille el divisor de presión montado y discos de ruptura en la cámara de bombardeo.
- Montar una pantalla de detención en autoclave con el titular macroportador y colocar el aparato en el estante de metal requerida y de bloqueo en su lugar.
- Inserte la macr ensambladoocarrier aparato en la cámara de biolística en la ranura asignada por debajo del divisor de presión y alinearse con el divisor de presión.
- Pegue la placa de NGM abierto con los gusanos en el estante de placa de puntería y cierre la puerta de la cámara.
- Para bombardear gusanos, ajustar la presión a la que se necesita para romper los discos de ruptura. Encienda el vacío a 28 pulgadas de Hg de presión, a continuación, pulse el botón de disparo hasta que los discos de ruptura.
- Cortar el vacío y retire la placa de NGM del aparato. Lavar los gusanos de la placa y redistribuir en veinte placas de 10 cm NGM sembradas con E. JM109 coli (Figura 3-4).
- Permita que los gusanos crezcan durante 10 a 14 días a 25 ° C y se mueren de hambre los platos. Worms rescatadas del defecto unc-119 tendrán un movimiento normal y pueden ser identificados en este momento. Elija al menos 10 gusanos "de tipo salvaje" de platos separados para su posterior análisis ya que representan las líneas transgénicas independientes (Figure 3-5).
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Representative Results
El cultivo de C. elegans en axénicos ayudas medio líquido en la determinación de los nutrientes que son requeridos por los gusanos, sin la interferencia de los metabolitos secundarios producidos por E. coli. Gusanos Wildtype N2 aclimatarse a los medios mCeHR plazo de tres generaciones y muestran un crecimiento similar a los gusanos que crecen en placas bacterianas NGM. De hecho, estos gusanos se convierten en hembras grávidas dentro de 4 días, en comparación con 3,5 días para los gusanos crecen en bacterias OP50.
Una ventaja de usar mCeHR se observó en los estudios que examinaron al requisito exacto de nutrientes de estos gusanos 14. En la Figura 1 gusanos fueron cultivadas en mCeHR complementadas con cantidades crecientes de hemo, hasta 1 mM. Las observaciones de estos gusanos mostraron un retraso distinto en el crecimiento a concentraciones de hemo menores de 4 M, con gusanos en desarrollo a la etapa larval L4, pero incapaz de pasar a la fase grávida después de nueve días en mCeHR. A concentraciones de 10 mM y 2056; M hemo que los gusanos desarrollar a la etapa grávido en 4 días y producen gran número de descendientes. Un número máximo de progenie se observó cuando los gusanos fueron cultivadas en mCeHR que contiene 20 mM hemo. Worms siguieron para desarrollar y producir la progenie a 100 M y 500 M hemo. Sin embargo, el número de la progenie de las larvas se redujo significativamente en comparación con gusanos cultivados a la concentración óptima de hemo 20 M hemo. Concentraciones de hemo iguales o superiores a 800 M dio lugar, gusanos enfermos raquíticos en la etapa larval L3, lo que indica que estas concentraciones de hemo eran tóxicos para los gusanos.
Además de determinar la concentración óptima de hemo y el efecto de la privación de hemo y la toxicidad hemo en C. crecimiento elegans, reportero cepas hemo podría ser utilizada para evaluar indirectamente el estado hemo del gusano dentro de un intervalo de concentración más pequeña. El gusano es un gusano IQ6011 transgénico que expresa una hemo sensible reportero transcripcional, P hrg-1 la Figura 2. La expresión de GFP se reprime a 20 M hemo y aumenta a medida que la concentración de hemo se disminuye. Los cambios incrementales en la concentración de hemo se pueden correlacionar con precisión con la respuesta de genes y la expresión en los medios de comunicación mCeHR.
Además de ser capaz de controlar cuidadosamente las concentraciones de nutrientes proporcionados al gusano, mCeHR medios axénicos permite el crecimiento eficiente de un gran número de gusanos sincronizados. Esta característica puede ser explotada por bombardeo de micropartículas (Figura 3). El uso de este procedimiento al menos una línea integrada se han desarrollado a partir de cada bombardeo de micropartículas realizado (Tabla 2).
Figura 1. C. elegans curva de crecimiento hemo. gusanos fueron cultivadas en un intervalo de concentraciones de hemo de 0 M a 1,000 M en mCeHR durante 9 días. El número de gusanos en cada concentración se contó y se representa. A 1,5 micras hemo concentraciones gusanos fueron L4 e incapaz de desarrollar aún más. A 800 M hemo que los gusanos se atrofian en fases L2-L3 y efectos de la toxicidad mostró hemo.
Figura 2. Respuesta del sensor de hemo (Phrg-1 :: GFP) cepa a diferentes concentraciones de hemo en mCeHR. Sincronizado transgénico C. elegans que expresa HRG-1 :: GFP se cultivaron en los medios de comunicación mCeHR suplementado con 4, 8, 10, o 20 hemo M durante 48 h. Las imágenes fueron tomadas con una confoca Zeiss LSM 710l microscopio. La barra de escala es de 100 micras. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3. Esquema de bombardeo de micropartículas en C. elegans utilizando UNC-119 gusanos crecen en mCeHR. (1) Aproximadamente 3 x 10 7 UNC-119 (ed3) gusanos crecen en 90 ml mCeHR medios. (2) Gravids se dejaron sedimentar en hielo durante 10 a 15 min en 50 ml tubos cónicos. (3) Un pelet de 2 ml de aproximadamente 5 x 10 6 gusanos grávidas se extendió uniformemente sobre una placa de NGM cabeza de serie. Los gusanos fueron bombardeados con 12 g de plásmido de interés y 6 g de plásmido de rescate unc-119 complejado con partículas de oro. (4) Tbombardeó gusanos fueron divididos en veinte placas de 10 cm sembradas con la E. JM109 coli cepa. (5) Después de 2 semanas de incubación a 25 ° C, se seleccionaron las placas con los gusanos de tipo salvaje para el análisis de la fuerza de expresión del transgén y las tasas de segregación.
| Cuadro 1A | |
| CEHR, 1 L | |
| Utilizando una técnica estéril y un 1 L (0,22 m) unidad de filtro de vacío, filtrar los siguientes volúmenes de soluciones madre y del agua en el orden descrito. | |
| Citrato diácido de colina | 10 ml |
| Vitamina y factor de crecimiento mezcla | 10 ml |
| myo-inositol | 10 ml |
| Cloruro de hemina | 10 ml |
| Agua desionizada | 250 ml |
| Mezcla de ácidos nucleicos | 20 ml |
| Mineral Mix | 100 ml |
| Hidrolizado de lactoalbúmina | 20 ml |
| Esencial Aminoácidos Mix | 20 ml |
| No esenciales Aminoácidos Mix | 10 ml |
| KH 2 PO 4 | 20 ml |
| D-glucosa | 50 ml |
| HEPES, sal de sodio | 10 ml |
| Agua desionizada | 250 ml |
| Volumen será de 800 ml en este punto Retire la unidad de filtro de vacío a continuación, añadir: | |
| Colesterol | 1 ml |
| Leche descremada ultra pasteurizada | 200 ml |
| Cuadro 1B | |
| Vitamina y factor de crecimiento de la mezcla, 100 ml | |
| Solución 1: para 60 ml de agua de complemento: | |
| N-acetil-α-D-glucosamina | 0,15 g |
| DL-alanina | 0,15 g |
| La nicotinamida | 0,075 g |
| D-pantethine | 0,0375 g |
| DL-ácido pantoténico, la sal de calcio hemi | 0,075 g |
| El ácido fólico | 0,075 g |
| Piridoxamina 2HCl | 0,0375 g |
| Piridoxina HCl | 0,075 g |
| Mononucleótido de flavina, sal sódica | 0,075 g |
| Clorhidrato de tiamina | 0,075 g |
| Solución 2: Preparar las siguientes sustancias químicas en 5 ml de KOH 1 N: | |
| ácido p-aminobenzoico | 0,075 g |
| D-biotina | 0,0375 g |
| La cianocobalamina (B12) | 0,0375 g |
| El ácido folínico, sal de calcio | 0,0375 g |
| Ácido nicotínico | 0,075 g |
| El piridoxal 5-fosfato | 0,0375 g |
| Solución 3: 0,0375 g (±)-α-L-lipoico ácido, forma oxidada en 1 ml de etanol: | |
| Combinar las soluciones 1, 2, y 3 y llevar el volumen final a 100 ml. Almacenar en oscuridad a 4 ° C o congelar alícuotas a -20 ° C. Hacer pequeños volúmenes de stocks de este mix lo que se utiliza de forma rápida. | |
| Cuadro 1C | |
| Mezcla de ácidos nucleicos, 100 ml | |
| A 60 ml de agua de complemento: | |
| La adenosina 5 '-monofosfato, sal sódica | 1,74 g |
| Citidina 5'-fosfato | 1,84 g |
| Guanosina 2 '- y 3'-monofosfato | 1,82 g |
| Oregón | |
| Guanosina 5'-fosfato | 2,04 g |
| Uridina 5 '-fosfato, sal disódica | 1,84 g |
| Timina (añadir última) | 0,63 g |
| Traiga solución a 100 ml y se guarda en la oscuridad a 4 ° C o congelar alícuotas a -20 ° C. Hacer pequeños volúmenes de stocks de este mix lo que se utiliza de forma rápida. | |
| Mezcla mineral, 1 L | |
| MgCl 2 • 6H 2 O | 4,1 g |
| El citrato de sodio | 2,9 g |
| El citrato de potasio monohidrato | 4,9 g |
| CuCl 2 • 2H 2 O | 0,07 g |
| MnCl2 • 4H 2 O | 0,2 g |
| ZnCl2 | 0,1 g |
| Fe (NH4) 2 (SO4) 2 • 6H 2 O | 0,6 g |
| CaCl2 • 2H 2 O (siempre agregar última) | 0,2 g |
| Hacer pequeños volúmenes de stocks de este mix lo que se utiliza de forma rápida. | |
| Otros Componentes | |
| KH 2 PO 4 | 450 mM |
| Colina Citrato diácido | 2 mM |
| myo-inositol | 2,4 mM |
| D-glucosa | 1,45 M |
| Cloruro de hemina | 2 mM en 0,1 N de NaOH de pH 8,0 |
| HEPES, sal de sodio | 1 M solución madre |
| Colesterol | 5 mg / ml en etanol |
| Hidrolizado de lactoalbúmina enzimática | 170 mg / ml |
| Tabla 1F | |
| M9 Buffer, 1 L | |
| KH 2 PO 4 | 3 g |
| Na 2 HPO 4 | 6 g |
| NaCl | 5 g |
| H 2 O | 1 L |
| Autoclave 30 min | |
| 1 M MgSO4 (estéril) | 1 ml |
Tabla 1. Recetas para los componentes de mCeHR y mCeHR.
| Bombardeo | Las líneas con tipo silvestre de rescate | Las líneas con el rescate / transgén | Líneas estables |
| 1 | 2 | 2 | 1 |
| 8 | 5 | 0 | |
| 3 | 4 | 4 | 2 |
| 4 | 5 | 2 | 1 |
| 5 | 5 | 3 | 1 |
| Promedio | 4.8 | 3.2 | 1 |
Tabla 2. Averanúmero de ge transgénico C. elegans generado usando bombardeo de micropartículas.
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Discussion
En este protocolo se presenta un mCeHR modificado axénico medios líquidos que permite un rápido C. generación elegans con la producción de un gran número de gusanos. Este medio presenta diversas ventajas como los gusanos se cultivan sin contaminar E. coli o subproductos bacterianos y pueden ser explotados en los estudios nutricionales y toxicológicos. El uso de E. coli u otras bacterias en estos estudios tiene varios inconvenientes. Por ejemplo, el crecimiento de las bacterias puede cambiar en diversas condiciones y las bacterias pueden metabolizar las moléculas que se está sometiendo a ensayo, confundiendo la interpretación de los resultados. Por lo tanto, el desarrollo de un medio definido para llevar a cabo estos estudios es altamente ventajosa.
Aunque C. elegans se han cultivado en medio líquido en estudios previos 15, gusanos que crecen en el C. medio de mantenimiento elegans (CeMM) muestran un retraso distinto en los tiempos de generación 16, a diferencia de lo que ELOBSERVE en medio mCeHR. Nuestro principal objetivo era explotar C. elegans para estudiar la homeostasis de nutrientes con énfasis específico en hemo y metabolismo de los metales. Con esto en mente, mCeHR y modificaciones generadas por nuestro grupo de lograr este objetivo y han llevado directamente a la identificación de un número de genes necesarios para el mantenimiento de la homeostasis del hemo en el gusano y en última instancia en sistemas de modelos de vertebrados 17, 18. Reformuladas mCeHR-1 medios de comunicación también pueden ser aprovechadas para otras especies de nematodos incluyendo redivivus Panagrellus, Oscheius myriophila y C. remanei. Además formulaciones bajas de metal mCeHR-2 y mCeHR-3 pueden ser explotados en los estudios que examinan la toxicidad y los requisitos de 12 metales pesados.
Antes de la aclimatación, gusanos N2 exhiben un tiempo de generación más larga de aproximadamente 7 a 10 días en los medios de comunicación mCeHR. Como se subcultivan los gusanos, este tiempo de generación se reduce a 4 días, similar a la de los gusanos cultivadas en OP50 bacterias. Sin embargo, el tiempo de generación puede ser más largo para ciertos gusanos mutantes, plausible debido a defectos en la alimentación, el movimiento o las necesidades nutricionales específicas.
Al utilizar medios líquidos axénicos es fundamental que se utilicen técnicas estériles exigentes. Por lo general, el uso de antibióticos se reduce al mínimo y, finalmente, eliminado como los gusanos aclimatan al medio y las bacterias residuales se eliminan. Los antibióticos se requirió la previa para asegurarse de que las culturas son axénico cuando se ha establecido, ya que evita el crecimiento de bacterias residuales que pueden abrumar las culturas del gusano. Después de dos rondas sucesivas de blanqueo, los antibióticos se omiten de las culturas como el uso continuo de antibióticos sólo enmascara malas técnicas asépticas que son esenciales para el crecimiento de los gusanos axénicamente. Uso de estas técnicas en una cabina de flujo laminar, los autores han sido capaces de crecer los gusanos axénicamente sin contaminación. Además, el almacenamiento adecuado de la medicinaia y componentes es esencial para el mantenimiento y el crecimiento sin fin. Los gusanos deben ser revisadas para la tasa de crecimiento de un subcultivo para evitar el hacinamiento, lo que puede conducir a la formación de dauer como nutrientes esenciales se agotan. Esto puede evitarse asegurando que la densidad de gusanos no exceda de 3.000 gusanos / ml / cm 2. Los investigadores que son nuevos a la creciente C. elegans axénicamente puede lograr esto mediante la comprobación de los gusanos todos los días y contando los gusanos semanal.
C. elegans investigadores aprovechan sus propiedades de transparencia mediante la generación de gusanos transgénicos que expresan marcadores de fluorescencia de etiquetado que permitan la visualización de la expresión génica y la localización de la proteína. Utilizando bombardeo biolístico permitido para la generación de integrantes baja copia que evitaron los temas de extracromosómicos arrays y elevada expresión de genes observó con transgénicos generan usando la inyección 19. Anteriormente, un inconveniente de los transgénicos de generación que utilicenbombardeo de micropartículas de C. elegans era el requisito para la preparación de la placa de huevo para generar el gran número de unc-119 (ED3) gusanos necesarias para el procedimiento 20. Cada transformación requiere 20 placas de huevo para el número de gusanos necesarios. Usando axénico cultivo líquido mCeHR permite un crecimiento más eficiente y, posteriormente, más gusanos para los bombardeos. Además, los bombardeos se pueden utilizar en conjunción con la selección de medicamentos para evitar el uso de UNC-119 (ED3) gusanos 21.
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Disclosures
Los autores declaran que no hay que compiten intereses financieros o de conflicto de intereses.
Acknowledgments
Este trabajo fue financiado por los Institutos Nacionales de la HealthGrants DK85035 y DK074797 (IH).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| MgCl2•6H2O | Sigma | M-2393 | |
| Sodium citrate | Sigma | S-4641 | |
| Potassium citrate monohydrate | Sigma | P-1722 | |
| CuCl2•2H2O | Fisher | C455-500 | |
| MnCl2•4H2O | Fisher | M87-100 | |
| ZnCl2 | Sigma | Z-0152 | |
| Fe(NH4)2(SO4)2•6H2O | Sigma | F-1018 | |
| CaCl2•2H2O | Fisher | C70-500 | |
| Adenosine 5 -monophosphate, sodium salt | Sigma | A-1752 | |
| Cytidine 5 -phosphate | Sigma | C-1006 | |
| Guanosine 2' - and 3' -monophosphate | Sigma | G-8002 | |
| Uridine 5 -phosphate, disodium salt | Sigma | U-6375 | |
| Thymine | Sigma | T0376 | |
| N-Acetylglucosamine | Sigma | A3286 | |
| DL-Alanine | Fisher | S25648 | |
| p-Aminobenzoic Acid | Sigma | A-9878 | |
| Biotin | Sigma | B-4639 | |
| Cyanocobalamine (B-12) | Sigma | V-2876 | |
| Folinate (Ca) | Sigma | F-7878 | |
| Niacin | Sigma | N-0761 | |
| Niacinamide | Sigma | N-3376 | |
| Pantetheine | Sigma | P-2125 | |
| Pantothenate (Ca) | Sigma | P-6292 | |
| Pteroylglutamic Acid (Folic Acid) | ACRCS | 21663-0100 | |
| Pyridoxal 5'-phosphate | Sigma | P-3657 | |
| Pyridoxamine 2HCl | Sigma | P-9158 | |
| Pyridoxine HCl | Sigma | P-6280 | |
| Riboflavin 5-PO4(Na) | Sigma | R-7774 | |
| Thiamine HCl | Sigma | T-1270 | |
| DL-6,8-Thioctic Acid | Sigma | T-1395 | |
| KH2PO4 | Sigma | P-5379 | |
| Choline di-acid citrate | Sigma | C-2004 | |
| myo-Inositol | Sigma | I-5125 | |
| D-Glucose | Sigma | G-7520 | |
| Lactalbumin enzymatic hydrolysate | Sigma | L-9010 | |
| Brain Heart Infusion | BD | 211065 | |
| Hemin chloride | Frontier Scientific | H651-9 | |
| HEPES, sodium salt | Sigma | H-3784 | |
| Cholesterol | J.T. Baker | F676-05 | |
| MEM Non-Essential Amino Acids | Invitrogen | 11140-076 | |
| MEM Amino Acids Solution | Invitrogen | 11130-051 | |
| Nalidixic acid sodium salt | Sigma | N4382 | |
| Tetracycline Hydrochloride | MP Biomedicals | 2194542 | |
| Biolistic Delivery System | BioRad | 165-2257 | |
| Gold particles (Au Powder) | Ferro Electronic Material Systems | 6420 2504, JZP01010KM | |
| or | |||
| Gold Particles 1.0 μm | BioRad | 165-2263 |
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