Introduction
Dysfonction olfactive est lié à un certain nombre de maladies neurodégénératives, y compris la maladie de Parkinson (PD), la maladie d'Alzheimer et la maladie de Huntington 1. En PD, troubles olfactifs incluent des déficits d'identification des odeurs, de la détection et de la discrimination et se retrouvent dans un maximum de 70-95% des patients 2-5. Ces déficits peuvent précéder les symptômes moteurs de la maladie de Parkinson cardinal jusqu'à 4 ans, ce qui indique que la dysfonction olfactive peut signaler les premiers stades de la MP 6-10. L'apparition précoce des déficits olfactifs dans la MP a conduit à un vif intérêt pour la dysfonction olfactive et les mécanismes sous-jacents impliqués. Dans les études précliniques chez les rongeurs, la dysfonction olfactive pourrait être une mesure de résultat sensible pour prédire le potentiel thérapeutique de nouvelles stratégies thérapeutiques.
De nombreux tests ont été conçus et largement utilisée pour caractériser les déficiences sensori-motrices dans des modèles rongeurs de PD et de test le potentiel thérapeutique de nouveaux traitements de 11 à 15. Même si les déficits olfactifs sont bien documentées dans la MP, la fonction olfactive n'a pas été systématiquement mesurée dans de nombreux modèles. Ce point de vue est en train de changer mais avec la découverte de formes génétiques de la maladie de Parkinson et la notion plus acceptée que PD est une maladie systémique qui touche plus que juste la fonction sensori-motrice. Actuellement, il existe de nombreuses études sur des modèles génétiques de souris de PD et d'autres maladies neurodégénératives qui incluent maintenant l'analyse de l'olfaction dans la caractérisation 16-24. Compte tenu de l'intérêt croissant de la dysfonction olfactive dans les maladies neurodégénératives, nous avons cherché à réunir une batterie de tests olfactifs qui peuvent être utilisés pour caractériser de nouveaux modèles de neurodégénérescence ainsi que tests potentiels traitements modificateurs de la maladie dans les études précliniques. Les essais décrits dans la présente étude ont été utilisés à la fois dans la caractérisation et études précliniques 18,25.
Les essais highlighted dans cette étude se sont avérés être sensibles à la détection de dysfonctionnement olfactif dans un modèle de souris surexprimant fréquemment utilisé alpha-synucléine de la maladie de Parkinson 18. Ils comprennent le test enterré à granulés 26,27, une version adaptée du test de bloc 23,24,28,29, et le test habituation / déshabituation 30. Il est important de noter qu'il existe plusieurs adaptations des essais décrits dans cette étude qui sont des mesures sensibles de la fonction olfactive chez la souris, ceux mis en évidence dans cette étude sont les tests de notre laboratoire a le plus d'expérience et utilise régulièrement.
Protocol
Toutes les étapes du protocole suivent le soin des animaux et utilisent des lignes directrices et des règlements établis par le IACUC de l'Université de Cincinnati.
1. Considérations générales
- Si possible, l'essai des souris au cours de leur phase active dans le cycle d'obscurité. En règle générale, effectuer des tests sous un faible éclairage et au moins 1 heure dans le cycle d'obscurité. Cependant, si les tests dans le cycle d'obscurité n'est pas possible, effectuer les trois tests pendant le cycle de lumière. Gardez à l'esprit que les temps renifler peut diminuer lorsque les souris sont testés au cours de leur cycle de sommeil. NOTE: Bien que les tests peuvent être effectués pendant le cycle de sommeil des souris peuvent présenter moins d'intérêt dans le culot enterré, blocs, ou cartouche parfumée.
- Afin de réduire l'effet de l'extérieur signaux olfactifs, porter une paire de gants de base à tout moment de chaque essai, puis placez une paire de gants propres au cours de la paire de base pour chaque souris et chaque essai. En règle générale, en cas de doute, mis sur un ensemble de gants propres. Avoir une boîte de gants lireily disponibles, car ils seront changés fréquemment. NOTE: Nous utilisons des gants en nitrile pour toute manipulation des animaux.
- Matériel de nettoyage et cages entre les sujets avec un désinfectant essais / agent de stérilisation est également une étape importante dans cette batterie de tests afin de réduire le risque de propagation de la maladie ainsi que de retirer les signaux olfactifs indésirables.
2. Pellet test Buried
- Au moins deux jours avant le test, enregistrer le poids de chaque souris et ensuite l'alimentation de limiter à 90% du poids du corps. Avant les essais et pendant la restriction alimentaire, donner à chaque souris 1-2 morceaux de pastilles à utiliser lors de l'essai (par exemple, un morceau de céréales sucrées). Ne sautez pas cette étape parce que les souris sont néophobique avec de la nourriture et peuvent ne pas rechercher le culot pendant le test si ils n'ont pas mangé les boulettes auparavant.
- Tous les jours de test, habituer les souris pendant 1 heure avant le test en plaçant leur cage dans la salle d'examen sans bouteille d'eau ou d'alimentation ben. abritera dans leur cage avec juste un couvercle supérieur du filtre.
- Au cours de l'accoutumance, remplir une cage de la souris propre ~ 3 cm de haut avec des draps propres en s'assurant que la literie est répartie uniformément dans la cage. Réglez une minuterie pour 5 min.
- Après 1 heure d'accoutumance, enterrer 1 sucrées céréales culot de 0,5 cm en dessous de la literie de sorte qu'il n'est pas visible.
- Débranchez la souris de test de sa cage, le placer dans le centre de la cage de test, placez le couvercle supérieur du filtre sur la cage et lancer le chronomètre.
- Arrêter le chronomètre lorsque la souris découvre le culot et commence à manger il. Noter le temps de découvrir le culot enterré.
- Si la souris ne trouve pas le culot dans 5 minutes, mettre fin à l'essai et noter un score de 300 secondes pour que la souris. Déplacez le culot vers le haut de la literie si la souris a accès à elle, et laissez la souris pour manger le culot.
- Après le procès, retourner la souris pour sa cage.
- Vider la literie de la cage de test et nettoyer la câge avec une solution de nettoyage de la chambre de l'animal.
- Répéter les étapes 2.4 à 2.9 pour chaque souris, et changer des gants avant et après chaque souris.
- Après toutes les souris sont testés, leur donner juste assez de nourriture pour les maintenir à 90% du poids corporel.
- Effectuer des tests sur 2-5 jours de la même manière que le jour de l'épreuve 1 avec une exception; enterrer le culot dans un endroit différent dans la cage pour chaque essai.
- Le jour de l'essai 6, effectuer l'essai de granules de surface.
- Pour l'essai de granules de surface, suivez la même procédure pour le jour de l'essai 1, mais au lieu d'enterrer le culot sous la literie placer sur le dessus de la literie. Noter l'heure de la souris pour trouver et commencer à manger le culot.
3 Block Test
- Maison individuelle souris dans des cages propres et placer 5 blocs dans la cage (marqué AE), changer de gants avant la mise en place dans chaque cage.
- Effectuer le test 24 heures plus tard. Déplacez la souris de test de la zone de test, retirez la bouteille d'eau et d'alimentation bin et placez all 5 pâtés de maisons de la cage avec une poignée de literie dans un sac en plastique marqué avec l'identification de l'animal. Placez le sac en plastique scellé sur le dessus de la maison de la cage de la souris.
- Habituer les animaux dans leur cage sans la bouteille d'eau, alimentation bin et les blocs pendant 1 heure avant le test.
- Changer de gants entre chaque cage afin que les parfums ne sont pas échangées entre les animaux / blocs.
- Aligner les cages à souris à côté de l'autre sur une table avec au moins 10 cm entre chaque cage. Placer une caméra vidéo afin que le devant de la cage (pas le côté long de la cage) est bien en vue.
- Réglez la minuterie pour 30 secondes et étiqueter une carte avec les détails importants d'expérimentation (date, identification de la souris, essai, etc). Videotape l'étiquette de 2-3 sec.
- Supprimer les blocs AD dans le sac en plastique avec l'identification de cette souris et les placer dans le milieu de la cage de sorte qu'ils sont clairement visibles sur la caméra vidéo. Assurez-vous qu'il est ~ 1 cm of espace entre chacun des blocs. Placez le haut du filtre de retour sur la cage. Lancez le retardateur et vidéo pendant 30 secondes.
- Après 30 secondes, arrêtez l'enregistrement et retirer les blocs de la cage et de les placer dans le sac en plastique.
- Changer de gants et de passer ensuite à la prochaine souris, répétant la même procédure que pour le premier essai. Pour ce faire, pour un total de 6 essais pour chaque souris s'assurer qu'il ya un intervalle entre les essais de ~ 5 min.
- Le 7 ème essai, suivez la même procédure pour les essais 1-6, sauf au lieu de placer le bloc D de la propre cage de la souris ajouter bloc E de la cage de l'autre la souris pour que la souris est exposé à des blocs A, B, et C à partir de son propre cage de la maison et le bloc E de la cage de l'autre la souris. Remarque dans le cahier de laboratoire dont le bloc E chaque souris est exposé et où alternent bloc E est placé dans la cage de chaque souris (par exemple, ABCE ou AEBC). Prenez bloc E d'une souris du même sexe, mais pas à partir d'un compagnon de cage d'origine. Videotape pendant 30 sec.
- Après les 7 essais, le retour des animaux à une nouvelle cage propre avec leurs compagnons de cage d'origine. Blocs propres utilisés dans le test avec un détergent doux et de l'eau et sécher à l'air pour une utilisation dans des tests ultérieurs.
4. accoutumance / déshabituation
- Effectuer le test habituation / déshabituation d'une manière similaire à l'épreuve de bloc, mais au lieu d'utiliser des blocs qui ont l'odeur d'une souris, utiliser des cartouches de tissus de maintien coton parfumé avec différentes paires d'extraits.
- Suivez les étapes 3.1 à 3.4 en utilisant une seule cartouche, des tissus non parfumé à la place des blocs.
- Habituer souris dans la chambre d'essai.
- Préparez les cartouches de tissus parfumés dans une pièce séparée. Placer une petite boule de coton dans une cartouche propre, puis ajouter 5 ul d'extrait (par exemple, l'extrait d'amande) dans le coton. Enclenchez le haut de la cartouche sur le coton et le placer dans une boîte dédiée ou le sac étiqueté avec ce parfum.
- Faites la même procédure fou un deuxième parfum (par exemple, extrait d'anis). Changer de gants entre la manipulation des parfums différents. Assurez-vous que la boule de coton est complètement enfermé dans la cartouche de tissu. NOTE: Exposé des fibres de la boule de coton peuvent provoquer l'animal ont un intérêt dans la boule de coton à des fins de nidification plutôt que le parfum lui-même.
- Ensuite, suivez les étapes 3.6 à 3.10 en utilisant une cartouche de tissu parfumé pour les six premiers essais, et la seconde cartouche de tissu parfumé pour le septième essai.
5 Analyse des cassettes vidéo
- Pour le bloc et les tests habituation / de déshabituation, ont un aveugle de l'évaluateur de la condition expérimentale mesurer le temps passé en reniflant chaque bloc, avec le sniffing défini comme contact nasal à ce bloc. Si l'on désire mesurer d'autres comportements tels que le temps pour rapprocher le bloc selon l'invention (E) pendant l'essai 7 et de l'activité totale (nombre de mouvements effectués le long de la longueur et de la largeur de la cage d'accueil) au cours de chaque essai. Note le temps passé en reniflant unetemps d approcher de la vidéo à l'aide d'un chronomètre.
- De même, pour le test habituation / déshabituation, ont un aveugle de l'évaluateur de la condition expérimentale mesurer le temps passé en reniflant la cartouche, le temps d'aborder la cartouche, et l'activité locomotrice.
6. Statistiques
- Analyser le test de granulés enterrée en utilisant des statistiques non paramétriques parce que le temps de latence pour trouver le culot scores ont tendance à montrer l'hétérogénéité de la variance. La moyenne du temps de latence pour localiser le culot au fil des jours 3-5, puis de comparer entre les groupes de souris en utilisant un test U de Mann-Whitney. De même, pour la partie de pastille de surface de l'essai, l'analyse de latence pour trouver la pastille en utilisant un test U de Mann-Whitney pour comparer les génotypes.
- Pour le test de bloc, d'analyser les données de première instance 7 (introduction du bloc de roman parfumé). En règle générale, employer des analyses non paramétriques pour tenir compte de l'hétérogénéité de la variance. Pour analyser les différences de temps passé renifler ee roman bloc ainsi que le temps d'aborder les blocs pour différents groupes expérimentaux, utilisez le test U de Mann-Whitney. Utilisez le test des rangs signés de Wilcoxon pour comparer le temps passé renifler le roman bloc au temps passé en reniflant les blocs familiers.
- Pour le test habituation / déshabituation, conduite analyses paramétriques sur les essais 1, 6 et 7, similaire à des études antérieures 20. Si les souris présentent peu ou pas de renifler, utiliser des analyses non paramétriques.
Representative Results
Les granulés, bloc, et des tests habituation / de déshabituation enterrés sont tous des évaluations très avantageuses de l'olfaction chez la souris. Grâce à ces tests, nous avons constaté des changements importants dans l'olfaction dans les modèles de souris génétique multiples de la maladie de Parkinson, y compris l'alpha-synucléine surexprimant (Thy1-ASYN) 18 et souris knock-out Atp13a2. Les deux souris knock-out THY1-ASYN et Atp13a2 prennent plus de temps pour trouver le culot enterré que les témoins 18. Figures 1-3 montrent les données recueillies à partir de souris de type sauvage et Atp13a2 finale. Dans l'essai de culot enterré, des souris knock-out Atp13a2 montrent une augmentation de la latence pour trouver la pastille enterré par rapport à des souris témoins de type sauvage (figure 1). Dans le test de bloc à la fois de type sauvage et des souris knockout Atp13a2 renifler le bloc de roman de la cage de l'autre la souris par rapport à des blocs de leur propre cage (figure 2). Chez les souris de type sauvage de test habituation / déshabituation de montrer l'accoutumance à un odeur et puis a augmenté renifler quand un roman odeur est introduit (Figure 3).
Figure 1: Buried pastille test. Latence pour trouver le culot dans de type sauvage (n = 10) et Atp13a2 KO (n = 14) à 20-27 m de l'âge. * P <0,05, Mann-Whitney U.
Figure 2: test de bloc Temps renifler le bloc de roman (E) dans le test de bloc de type sauvage (n = 10) et Atp13a2 KO (n = 12) des souris femelles à 20 -. 27m de l'âge. ΔΔ représente p <0,01 par rapport à des blocs A, B et C du même génotype. Mann-Whitney U.
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Figure de test 3 habituation / de désaccoutumance. Temps renifler une cartouche parfumée chez les souris de type sauvage moyenne (9 m de l'âge, n = 7) sur 6 essais et la mise en place d'une cartouche avec un nouveau parfum à l'essai 7.
Discussion
Chacun des essais décrits dans cette étude de mesurer différents aspects de la fonction olfactive chez la souris. Le test de granulés enterrée mesure l'aspect de la motivation de la nourriture de l'olfaction, de tester la capacité de faim (restriction alimentaire, pas privés de nourriture) souris pour détecter un morceau savoureux de céréales sucrées enterré sous des matelas. Le test de bloc mesure plus de l'aspect social de la fonction olfactive, tester la capacité des souris à la distinction entre leur propre parfum et celle d'un congénère. Le test habituation / déshabituation évalue la capacité de la souris pour discriminer entre senteurs inoffensifs connues et nouvelles,. Utilisation de plusieurs essais est important lors de la caractérisation d'un nouveau modèle, car des anomalies dans la motivation ou la peur alimentaire pourraient contribuer aux différences observées chez les souris mutantes par rapport aux témoins. Par exemple, si seul le test de bloc est effectuée et a diminué renifler du bloc qui a l'odeur d'une autre souris est observé, il est difficile de savoir si il ya une Olfactdéficit oire ou une réaction de peur accrue de la même espèce qui peuvent conduire à l'évitement de ce bloc. Lorsque plusieurs tests sont effectués et les déficits sont observés dans tous les essais, il soutient fermement une interprétation de déficience olfactive. Cependant, si des différences sont observées dans un seul test, mais pas les autres, alors il peut y avoir une déficience olfactive plus subtile, mais il sera essentiel pour écarter d'autres explications (c'est à dire, la peur accrue ou réduite motivation alimentaire). D'autres facteurs importants à garder à l'esprit lors de l'essai des souris de la fonction olfactive comprennent la souche de fond et le sexe des souris. Différentes souches de fond génétique (c'est-à-C57BL / 6, DBA, etc) peuvent avoir des effets profonds sur le comportement de la souris par conséquent, il est recommandé d'adapter chaque protocole chez la souris de type sauvage de la même origine avant d'effectuer l'ensemble de l'expérience. Il est également recommandé que les souris mâles et femelles être testés séparément les uns des autres parce que le système olfactif masculin est élevément sensible aux femelles en oestrus et la détection olfactive d'une femelle en oestrus pourrait interférer avec les performances dans les trois tests.
Certaines mesures sont absolument essentielles à suivre pour tester l'olfaction chez la souris. Il est important d'être conscient des odeurs de l'expérimentateur est l'introduction des animaux. Le port de gants pour les procédures est essentielle et changement fréquent de gants entre les animaux est nécessaire. Il est toujours une bonne pratique pour l'expérimentateur ne pas porter de Cologne ou de parfum sur jours d'essais de l'olfaction. Alors que certaines parties de la procédure sont rigides, il ya d'autres parties qui peuvent être modifiés et adaptés sans réduire la validité ou de la sensibilité du test. Par exemple, le nombre d'essais d'habituation peut être augmentée ou diminuée en fonction de la souche de souris à l'essai et à quelle vitesse ils s'habituent aux stimuli. La principale limite de ces tests est qu'ils sont tous animés par une certaine forme de motivation, que ce soit alimentaire ou sociale, ce quiil est difficile d'éliminer complètement les anomalies dans la motivation comme une explication quand une altération de la réponse observée. Ceci peut être minimisé par l'analyse de paramètres supplémentaires, comme l'activité au cours de l'essai et le temps d'approcher stimuli.
Une fois maîtrisé, les tests peuvent être facilement utilisés en examinant le phénotype de modèles de souris de nouveaux des maladies neurodégénératives. En outre, les essais qui ont la plus forte puissance peuvent être inclus dans les études précliniques essais thérapeutiques potentiels (pour un exemple, voir réf. 25).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cap'n Crunch | Quaker Oats | 30000065310 | |
| Wooden Blocks | Lara's Crafts | 10144 | |
| Almond Flavor Extract | Kroger | 011110664716 | |
| Anise Flavor Extract | Kroger | 011110615619 | |
| Banana Flavor Extract | Kroger | 011110669919 | |
| Coconut Flavor Extract | Kroger | 011110669889 | |
| Lemon Flavor Extract | Kroger | 011110669957 | |
| Orange Flavor Extract | Kroger | 0011110669964 | |
| Tissue Cartridges | Sigma-Aldrich | Z672122-500EA | Manufactured by Simport no: M490-2 |
| Cotton Balls | Kroger | 11110793119 | |
| Mouse Cages | Ancare | 19 x 29 x 12.7 cm | |
| Camcorder | Sony | HDR-HC9 | |
| MiniDV Tapes | Sony DVC premium | 27242523432 | 60 minute long play |
References
- Hawkes, C. Olfaction in neurodegenerative disorder. Adv. Otorhinolaryngol. 63, 133-151 (2006).
- Ward, C., Hess, W., Calne, D. Olfactory impairment in Parkinson's disease. Neurology. 33, 943-946 (1983).
- Doty, R., Stern, M., Pfeiffer, C., Gollomp, S., Hurtig, H. Bilateral olfactory dysfunction in early stage treated and untreated idiopathic Parkinson's disease. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 55, 138-142 (1992).
- Doty, R., Deems, D., Stellar, S. Olfactory dysfunction in parkinsonism: a general deficit unrelated to neurologic signs, disease stage, or disease duration. Neurology. 38, 1237-1244 (1988).
- Tissingh, G., et al. Loss of olfaction in de novo and treated Parkinson's disease: possible implications for early diagnosis. Movement Disorders. 16 (1), 41-46 (2001).
- Montgomery, E., Baker, K., Lyons, K., Koller, W. Abnormal performance on the PD test battery by asymptomatic first-degree relatives. Neurology. 52, 757-762 (1999).
- Berendse, H., et al. Subclinical dopaminergic dysfunction in asymptomatic Parkinson's disease patients' relatives with a decreased sense of smell. Ann. Neurol. 50 (1), 34-41 (2001).
- Ponsen, M., Stoffers, D., Booij, J., van Eck-Smit, B., Wolters, E., Berendse, H. Idiopathic hyposmia as a preclinical sign of Parkinson's disease. Ann. Neurol. 56, 173-181 (2004).
- Langston, J. The Parkinson's complex: parkinsonism is just the tip of the iceberg. Ann. Neurol. 59 (4), 591-596 (2006).
- Ross, G., et al. Association of olfactory dysfunction with risk for future Parkinson's disease. Ann. Neurol. 63, 167-173 (2008).
- Fleming, S., et al. Early and progressive sensorimotor anomalies in mice overexpressing wild-type human alpha-synuclein. J. Neurosci. 24, 9434-9440 (2004).
- Fleming, S., Ekhator, O., Ghisays, V. Assessment of sensorimotor function in mouse models of Parkinson's disease. J. Vis. Exp. , e50303 (2013).
- Schallert, T., Tillerson, J. L. Intervention strategies for degeneration of DA neurons in parkinsonism: Optimizing behavioral assessment of outcome. Central Nervous System Diseases. , 131-151 (2000).
- Whishaw, I., O'Connor, W., Dunnett, S. The contributions of motor cortex, nigrostriatal dopamine and caudate-putamen to skilled forelimb use in the rat. Brain. 109 (5), 805-843 (1986).
- Schwarting, R., Huston, J. The unilateral 6-hydroxydopamine lesion model in behavioral brain research. Analysis of functional deficits, recovery and treatments. Prog Neurobiol. 49 (3), 215-266 (1996).
- Glasl, L., et al. Pink1-deficiency in mice impairs gait, olfaction and serotonergic innervation of the olfactory bulb. Experimental Neurology. 235, 214-227 (2012).
- Kim, Y., Lussier, S., Rane, A., Choi, S., Andersen, J. Inducible dopaminergic glutathione depletion in an α-synuclein transgenic mouse model results in age-related olfactory dysfunction. Neuroscience. 172, 379-386 (2011).
- Fleming, S., Tetreault, N., Mulligan, C., Huston, C., Masliah, E., Chesselet, M. Olfactory deficits in mice overexpressing human wildtype alpha-synuclein. The European Journal of Neuroscience. 28 (2), 247-256 (2008).
- Nuber, S., et al. A progressive dopaminergic phenotype associated with neurotoxic conversion of α-synuclein in BAC-transgenic rats. Brain. 136 (2), 412-432 (2013).
- Macknin, J., Higuchi, M., Lee, V., Trojanowski, J., Doty, R. Olfactory dysfunction occurs in transgenic mice overexpressing human tau protein. Brain Res. 1000, 174-178 (2004).
- Lazic, S., et al. Olfactory abnormalities in Huntington's disease: decreased plasticity in the primary olfactory cortex of R6/1 transgenic mice and reduced olfactory discrimination in patients. Brain Res. 1151, 219-226 (2007).
- Wesson, D., Wilson, D., Nixon, R. Should olfactory dysfunction be used as a biomarker of Alzheimer's disease? Expert Review of Neurotherapeutics. 10 (5), 633-635 (2010).
- Taylor, T., Caudle, W., Miller, G. VMAT2-deficient mice display nigral and extranigral pathology and motor and nonmotor symptoms of Parkinson's disease. Parkinsons Dis. 2011, 124-165 (2011).
- Tillerson, J., Caudle, W., Parent, J., Gong, C., Schallert, T., Miller, G. Olfactory discrimination deficits in mice lacking the dopamine transporter or the D2 dopamine receptor. Behav. Brain Res. 172, 97-105 (2006).
- Fleming, S., et al. A pilot trial of the microtubule-interacting peptide (NAP) in mice overexpressing alpha-synuclein shows improvement in motor function and reduction of alpha-synuclein inclusions. Mol. Cell. Neurosci. 4, 597-606 (2011).
- Crawley, J. What's Wrong with My Mouse? Behavioral Phenotyping of Transgenic and Knockout Mice. , Wiley-Liss. NY. (2000).
- Nathan, B., Yost, J., Litherland, M., Struble, R., Switzer, P. Olfactory function in apoE knockout mice. Behav. Brain Res. 150, 1-7 (2004).
- Spinetta, M. A simple and sensitive odor recognition test for rats and mice detects retrograde amnesia caused by ethanol or other drugs that interfere with memory consolidation. Society for Neuroscience. , Washington, D.C. (2005).
- Spinetta, M., et al. Alcohol-induced retrograde memory impairment in rats: prevention by caffeine. Psychopharmacology. 201 (3), 361-371 (2008).
- Bielsky, I., Hu, S., Szegda, K., Westphal, H., Young, L. Profound impairment in social recognition and reduction in anxiety-like behavior in vasopressin V1a receptor knockout mice. Neuropsychopharmacology. 29, 483-493 (2004).
