Summary
鼠背皮褶室呈现的可视化窗口的肌皮瓣急性缺血持续性的区域。活落射荧光显微镜许可证微血管和血流动力学的定量直接和重复评估。形态和血流动力学的结果可以进一步与组织学和分子分析。
Abstract
尽管有深厚的专业知识和先进的手术技术，缺血引起的并发症，从伤口裂开了广泛的组织坏死依然存在，特别是在皮瓣重建手术。多个实验皮瓣模型已经被开发来分析潜在原因和机制，并研究治疗策略来防止缺血性并发症。大多数型号的限制因素是缺乏可能性，直接和反复可视化微血管构筑和血流动力学。该协议的目标是提出一个行之有效的小鼠模型，这些挂靠前面提到的缺少的元素。难等人已开发出一种肌皮瓣的模型与经历急性持续缺血导致〜50％坏死后10天，如果保存未处理的随机灌注模式。随着活体落射荧光显微镜的帮助下，该室模型允许重复的可视化形态及利息随时间不同区域的血流动力学。相关的过程，如细胞凋亡，炎症，微血管渗漏和新生血管能进行调查和相关的免疫组化和分子蛋白分析。迄今为止，该模型已被证明可行和可重复性在几个发表的实验研究中调查的前，围缺血性挑战的组织的作用和后处理。
Introduction
暴露腱，骨和植入材料在整形后的覆盖依赖于使用折翼。甲瓣是转印在其血管蒂，保证动脉流入和静脉流出的组织块。尽管有广泛的专业知识和各种皮瓣被转移的可用性，缺血引起的并发症，从伤口裂开总组织损失仍然遇到。而由二级意向保守治疗和愈合可以轻微的组织坏死后预计，显著皮瓣坏死，通常需要再次手术，包括清创，伤口空调和二次重建。这增加了发病率，延长住院时间，从而导致增加的医疗费用。
护翼与脉管的远端区域从动脉流入最远端未定义的图案或随机地灌注区域特别容易出现局部缺血损伤。 ACCO rdingly，大量的实验和临床研究已经评估坏死的发展中都，轴型皮瓣（定义血液供应），以及随机图案的侧翼（未定义的血液供应）1-3。主要结论通常是基于坏死区域的大小的宏观评价。为了评估产生的原因和组织坏死的机制更详细地说，一些研究集中于微循环的分析。不同的技术已被用于测量组织灌流，包括用极谱电极4-5组织氧分压的分析，以及使用激光多普勒血流仪6-7，染料扩散8，和微球体9-10血流量的测量。这些技术中，然而，只允许用于测量组织灌流的间接的参数，并不的翼片的兴趣的个体区域内使microhemodynamic过程的任何形态分析。
吨“>迪森已知是谁使用一个透明的腔，用于延长在体内的研究，这是他在家兔11进行第一1943 -约20年后- Algire是第一适应这样的透明腔室可以适用在小鼠中，以研究微植入肿瘤细胞12的行为。由于这样的事实，将小鼠所谓松弛皮肤的动物和在接下来的几年一些技术精炼后，莱尔和同事们能够适应这样的背皮褶腔显影更小和更轻的钛腔内，该腔室使评价用活体荧光显微镜，一种技术，它允许若干形态和微循环特性及其随时间的不同的生理和病理生理条件下的变化的直接的和重复的可视化，这样如缺血再灌注损伤13。在PE的调查正常和病理状态下的皮肤，肌肉和骨皮瓣rfusion两个趋势出现了：首先，不使用背皮褶室，如鼠标14带蒂皮瓣耳的“急性”啪啪机型，基于横向岛状皮瓣在15仓鼠和老鼠16带蒂复合组织瓣。二，“慢性”啪啪模型，其中一个背皮褶室允许重复的微循环襟翼的组合分析了与活体荧光显微镜几天。它包括一个随机灌注肌皮瓣被集成在鼠标17的皮褶室。其宽度与长度的比值被选择了的急性缺血持续的情况下始终将导致〜50％皮瓣坏死组织瓣仰角后10至14天。组织坏死这种再现的程度使得两者，保护（ 即发展LES进一步评估s坏死）和有害的因素（ 即，在瓣病理生理发展，越来越坏死）。在过去几年里，几个实验出版物展示不同的产前，围绝经期和后期调理过程，包括组织保护性物质18-24的管理和生理应激，如热25和冲击波26的本地应用程序的效果，已经出现。
坏死，微血管形态和微循环的参数的定量分析还可以被关联到免疫组化分析和蛋白质分析。不同的蛋白质和分子，包括血管内皮生长因子（VEGF），一氧化氮合成酶（NOS），核因子κB（NF-κB）和热休克蛋白（HSP-32：血红素加氧酶-1（HO-1）和HSP- 70）已经显示出在组织保护的作用。在此基础上腔皮瓣模型，两处修改，已经开发了奥德r以在植皮愈合27和血管生成发展的带蒂皮瓣轴型灌注28分析新生血管和微循环。我们提出了一个可重复和可靠的模型，其中包括在老鼠皮褶室的缺血性挑战肌皮瓣。这种模式使可视化微循环及血流动力学通过活体落射荧光显微镜和定量。
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Protocol
注：在实施之前所提出的模型，相应的动物保护法必须进行协商和权限必须从当地政府获得。在这项工作中，所有实验符合进行与涉及动物研究的指导原则和保护动物的德国立法。实验是经当地动物保护委员会。
1.动物准备和皮瓣手术高程
- 饲养动物在单个笼中，在22-24℃的室温，并在60-65％，采用12小时日 - 和 - 夜循环的相对湿度。让小鼠自由获取饮用水和标准实验室食物。始终保持在生存手术无菌条件。
- 通过腹膜内麻醉的小鼠（IP）的注射的每个含90毫克/千克体重盐酸氯胺酮和25mg /10克体重0.1毫升生理盐水溶液公斤体重dihydroxylidinothiazine盐酸盐。麻醉是必要的动物的准备，外科手术和随后的显微镜。通过检查响应疼痛刺激，确认正确的麻醉。在麻醉的时候，涂抹于眼兽医软膏，以防止干燥。
- 诱导足以麻醉后，脱毛用电动剃须刀的背面。此后，应用脱毛霜剃光区域以除去剩余的毛发。
- 在的〜7-10分钟，脱毛霜的停留时间，准备工具，包括皮肤镊子和微型镊子，剪刀和微型剪刀，缝合材料和记号笔。消毒并通过应用两个螺钉与螺母在所述腔室的基座，并通过固定自粘泡沫（ 图1的AC）围绕所述腔室的对应的窗口，以保证腔室系统的气密性制备的钛室。
- 从后面洗涤去除所有脱毛霜它关闭用温水。然后干燥和消毒用含醇溶液中的皮肤。
- 鼠标放置在俯卧位置，并定义了背部的中线。掌握肌肤集中地，抬不起来，以创建一个倍（ 图2A）。通过使用任何种类的光源的反式照明，决定在哪里provisorily放置钛帧（ 图2B）。确保胸外侧动脉（LTA）颅和旋髂深动脉（DCIA）当然尾端通过该室的窗口中心的远端分支（ 图2B-D）。一旦该腔室的定位完成时，穿孔两个层的皮肤在折叠的钛架的后固定的最底部。现在除去钛架，鼠标放置在俯卧位，并在必要时重新背部的中线。
- 概述瓣垂直于脊柱处开始以15×1的宽度与长度比率的中线1mm至导致横向基于随机灌注瓣。然后概括为2毫米延伸到对侧的额外的皮肤区域（ 图2C，D）。该区域采摘的镊子和缝合后的钛架而不可见瓣区域的干扰。
- 下面最后的标记，切开皮瓣。在这样做时，横切两个LTA和DCIA和提升翼片（ 图2E）。没有必要对凝血横断的血管或结扎。
- 通过先前制造的皮肤穿孔（ 图2F）将腔室的螺杆和升高的挡板的使用腔室的框架和孔5-0的框架的背面部分的腔室的框架内固定的皮褶既向前和向后间断缝合（ 图2G）。
- 由5-0间断缝合装置缝合皮瓣的垂直肢体回到周围的皮肤（
- 切除皮肤侧的半圆形区域到2毫米， 也就是小皮带，在翼片的另一侧观察到瓣的脉管系统中。这允许通过对具有90 mm 2的表面上的腔室的观察窗直接观察。
- 除去从横纹肌采用显微仪器和光学放大镜或显微镜的明胶样疏松蜂窝组织，以提高显微镜中的图像质量。尽量不要肌肉组织层内的血管损伤。
- 最后，通过安装先前已赋予了泡沫的自粘合条前方的帧的对应物，颅和向后，沾湿外用双苯甲亚胺和盐水（ 图2J），翼片密封所述腔室。此后，应用该观察窗与使用的卡环的盖玻璃。尽量不要坑害玻璃下的空气气泡（ 图2K，L）。皮肤会坚持以盖玻片通过粘附力。
2.活体荧光显微镜
- 等待第显微镜分析为理想光学质量外科准备后24小时。这个分析表示显微镜的基线，并且重复在第3天，5，7和10在手术后。每一次，如在步骤1.2中所述麻醉的小鼠。将动物在一个特制的有机玻璃载体上的横向褥疮位置。通过这种方式，护翼附着于玻璃盖的肌肉组织层朝上，病房。
- 注0.05毫升5％的绿色荧光右旋糖酐（分子量15万）和0.05毫升1％高荧光罗丹明系列染料的尾静脉或复古球的静脉丛。绿色荧光葡聚糖弄脏血液中的非细胞成分如应用于静脉内（ⅳ）。荧光罗丹明染色白细胞和血小板，可以是DIST从其他细胞和非细胞成分inguished。最后，双苯甲亚胺渍发射更多或更少的荧光，根据缩合的状态核组分。
- 接着，将鼠标在显微镜下。确保在显微镜包括一个LED系统 - 对于470＆425纳米，365及490纳米，540和580nm的LED光束的组合以及相应的过滤器组（62，HE BFP / GFP / HcRed，取值范围为1：350-390纳米激发波长，拆分395纳米/ 402-448纳米; 2范围：460-488纳米，分为495纳米/ 500-557纳米; 3范围：567-602纳米，分为610纳米/ 615纳米到20无限罗丹明，范围。 ：540-552纳米，分为560纳米，发射575-640纳米）。
- 记录的静止图像和利用电荷耦合器件摄像机的运动图像，并将其保存在计算机硬盘上作进一步的离线分析。
- 使用不同的目标（2.5X，NA（数值孔径）= 0.06室的全景图; 5X，NA = 0.16; 10X，NA = 0.32; 20X，NA = 0.50; 50X，NA = 0.55）对感兴趣的区域的记录。
- 实际上，分 瓣表面是可见通过腔室的窗口分成相等的高度， 即 ，一个近端，一个中心，和一个远端面积最远离血管流入（ 图3F）的三个领域。对于图像采集，请通过以下方式在各观察时间点：
- 通过扫描图像的组织形象腔的近端从窗内使用5X物镜到远端。
- 在皮瓣的每个区域，选择第二或第三级小动脉及其随行静脉用易于识别的分支模式。使用5X，10X或20X物镜，使arteriolovenular束的打印输出，以便容易地在整个观察期内重新定位的捆。
- 随着20X物镜和50X的目标，进一步创纪录的5-6毛细血管字段和“细胞凋亡分别每翼片的区域“字段。记录有10X和20X的目标的所有图像用的蓝色光（荧光葡聚糖）和（若丹明）滤波器，而分别绿光记录有5X和50X物镜使用蓝色光（荧光葡聚糖）和白光（双苯甲亚胺）滤波器，图像。
记录的数据3.分析
注：通过使用计算机辅助图像分析系统定量离线记录 的所有参数如下29。
- 的面积的测定非灌注，分别坏死组织（毫米2）。
- 使用记录有5X物镜（从2.6.1）的完整扫描腔室窗口图像和荧光葡聚糖测定非灌注分别坏死组织。用“AreaBo”功能来衡量非灌注暗区：边境非灌注区和计算米的区域米2用软件的面积测量算法。
- 测量微血管直径小动脉，毛细血管和小静脉（微米）。
- 加载视频或照片从记录的AV-束或毛细管领域到软件。为获得最佳效果使用蒸馏器或视频具有最高放大率，其中所述容器的明确的边界是清晰可见的。
- 使用该软件的“DiamPe”功能，以确保测量的垂直进行到容器的壁上。这样做的标记在容器的壁并与所述第三点击标记容器的垂直直径两点。该软件将在微米执行测量。
- 重复在同一个容器的所有记录的测量值在同一个地方。测量多个毛细血管累积平均直径。
- 在动脉红细胞（RBC）的速度分析，毛细血管一次静脉（毫米/秒）。
- 对于动脉红细胞（RBC）的速度（毫米/秒）的测量使用该软件的“VeloLSD”功能，并选择在荧光葡聚糖窗口相同的容器的量，直径进行了测量。
- 它与使用线移位方法，它是一个单独的血管内的灰度级图案的位移（毫米）的测定的基础上，在一段时间（秒）的计算机辅助图像分析系统进行分析。
- 在测量血管体积血流量（PL /秒）。
- 计算体积血流量（复/秒）在动脉，静脉和毛细血管从红细胞速度和容器的横截面面积（π* R 2）根据Gross和Aroesty，即：Q = V *π* R 2中的方程假定圆柱形容器的形状30。
- 测定红细胞灌注毛细血管的功能性毛细血管密度（营养灌注：厘米/厘米
- 加载一个记录荧光毛细管场20X物镜放大倍数到软件中。使用“DensLA”功能来衡量RBC灌注微血管的功能性毛细血管密度。
- 跟踪毛细血管灌流用光标和标记血管灌注。不标记非灌注毛细血管，小动脉和小静脉。该软件将测量灌注毛细血管厘米/厘米2的功能性毛细血管密度。重复上述步骤，为其他记录的毛细管领域。
- 负载录制的视频或荧光毛细领域的帧到软件中。识别gyrose船只和使用该软件的“TorqIx”功能。跟踪的过程中，明确船舶流量和点击右键结束。该软件会画一条直线的直接方式，并设置它与跟踪路径的关系。
注：留意血管的迹象，如芽，芽和新形成的毛细血管，通常垂直发出的预先存在的毛细血管。衡量这些新形成的血管的密度在3.5步描述。
- 加载双苯酰亚胺录制的视频（50X物镜）到软件。使用“DenseNA”功能。根据提到的特性，如核固缩，碎裂和边集用左键单击标记凋亡细胞。
- 标志认证的所有特性细胞在整个视频后，点击“N / A”的软件，该软件会自动计算所有标记的细胞和整个区域划分它。其结果将是凋亡个/ mm 2。
- 通过计数罗丹明数分析的炎症反应标记的白细胞附着于毛细血管后小静脉的内皮细胞衬里为≥30秒的时间段（“贴”）和间歇地附着白细胞（<30秒，“辊”） 。微静脉白细胞粘附表示为每mm 2的内皮细胞表面。
- 评估大分子升eakage作为微血管通透性静脉注射荧光右旋糖酐后的参数。光密度确定的多个灰度级中的组织容器（E2）的边缘的无细胞血浆中直接相邻的毛细血管壁（E1），以及。然后计算大分子外渗（E）为E1 / E2 31的比率。
4.术后护理
- 返回的动物在一个单独的笼子，以避免其他动物的公司，直到完全恢复。不要让动物无人看管，直到它已经恢复了足够的意识，保持胸骨斜卧。每天监测动物的出血，局部和全身感染的迹象和腔室的位置。
- 通过观察马达的活性，体重，痛苦的迹象，耐受性敷料和自动切割评价动物的一般状态。
- 请将鼠标1每笼以避免穆图人操纵室。在疼痛的迹象，适用丁丙诺啡在0.05-0.1毫克/千克体重的剂量，皮下8小时一班。
5.安乐死和皮褶庭外植
- 在第10天，使用麻醉药品（150毫克/千克戊巴比妥钠）的过量牺牲动物。
- 取出室，品尝皮瓣组织进行免疫组化和分子蛋白分析。对于传统的组织学（福尔马林）和可量化的蛋白质分析（液氮或干冰）样品组织。
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Representative Results
坏疽
这种模式的主要终点-组织坏死以下瓣仰角（ 即，诱导急性持久性缺血） -重复地测量和图示的宏观如图3历时10天。皮瓣坏死的最终划界通常在5天和第7天之间发生手术后，其特点是一个红色条纹的血管舒张和微血管重塑的， 也就是说 ，区域，近端重要和护翼的远端坏死区（ 图3D-F之间的显影）。在灌注良好的近端，所述插层和危重灌注中心区域和坏死的远端区域（ 图3F）：未处理的对照小鼠通常在10天后，可以分成三个不同的区域发展的约50％的坏死区。我们组以前的研究中，正如在引言中，都表现出保护ê经过不同的预处理过程，其特征在于，所述临界灌注区域从中心区域的移位朝护翼的远端区ffects。
船舶参数
微血管直径和小动脉的血红细胞（RBC）的-velocity和各种直径以及相邻的毛细血管小静脉被测量，并且所得到的体积血流离线计算。这允许从第1天到第10天（ 图4A-B）的相关独特微血管的两个形态和功能的改变。此外，红细胞灌注毛细血管的功能密度，对所述组织的营养灌注参数，进行了分析。毛细管通常取向于平行和本与生理条件下（ 图4C）在3-5微米之间的直径。血液流动，所述修订髋关节的功能性毛细血管密度和最终氧张力UE从近端逐渐减小到远端到达“活力”的阈值（ 图4C-E），其中，所述毛细管没有灌注了（ 图4E）。
微血管重塑和血管生成
改造与扩张的微血管迂曲增加可发生皮瓣准备所有实验组中观察到（ 即诱导的急性缺血持续：图4F）。然而，在该模型中，单独的缺血刺激不足以诱导血管生成作为例如见于各种预处理实验与激素促红细胞生成素（ 图4G-H）。新的功能性微血管网络，通常从微血管芽和芽从发出垂直发展的预先存在于平行的布置毛细管是第一个可见的3天和第5天之间。
炎症反应（白细胞-内皮细胞相互作用和细胞凋亡）
急性持久性缺血通常导致在由附着白细胞对微血管内皮表示未处理的动物相当的炎症反应。这种炎症反应的特征在于，滚动（ 即白细胞对血管内皮的粘附间歇）和粘附（ 即白细胞对血管内皮的牢固粘附性）白细胞（ 图5A-B）。此外，局部缺血诱导增加凋亡细胞可以与核固缩，碎裂和边集（ 图5C-D）的特征标志可以看出在所有的对照动物。在这两方面，白细胞-内皮的相互作用和细胞凋亡的标志为缺血诱导的炎症反应，并进行性微血管功能障碍逐渐增加，降低了组织的氧张力（ 即 图5A-D））。
图1.钛室架和其所有的工件。（A）中由两个框架部件，三个螺钉，螺母5，一块泡沫，玻璃盖片和止动环被拆卸的帧。 （b）所需的工具来组装，包括六角螺丝刀，一个卡环钳和切割钢丝框架。不需要螺丝刀只是建议，如果室会多次使用。 （C）组装单腔部分。左：框架背面的两个螺丝和螺母连接的下两个洞。背面是用来缝合帧到皮肤上并带有翼片。右：组装前侧附带的泡沫框架，以保证气密性。需要注意的是所有这三个螺钉孔被保持无泡沫。确保没有泡沫的将被压入观察窗，它担负着玻璃盖。 （D）示意图组装室框架无背皮褶。
图2.插图手术瓣过程及其在小鼠的钛背皮褶室实施。（A）高架跨照亮了一倍鼠标的背部皮褶形象化血管架构概述背皮褶室的位置。 （B）的所述腔室的钛架的背面已被定位并与所述容器对准。的两个孔用于螺钉切口附着在框架公顷的前侧s被制成。 （C和D）在概述于背部皮肤侧向护翼：宽度与长度的比值为15mm至11mm，而集中在两个垂直于所产生的血管。 A 2毫米的距离，以对侧（薄皮瓣外形及粗框之间无标记的区域）将被用于掌握用钳子皮肤提升瓣。用于通过所述腔室的窗口，观察背侧皮肤的，另外的组织已被删除（阴影区域）。 （E）的高架横向基于皮瓣，展示出随机排列的血管体系结构，从护翼的基部始发。该阴影区域已经被切出的，但仍连接到所述翼片，并在接下来的步骤中除去（挂下面钳子皮肤）。 （F）安装在腔体的背面侧。护翼的皮肤表面上的背面和下窗玻璃侧的“原始”表面。该chamber`s螺丝THR卡ough的刻在背皮褶两侧的孔。 （G）周围的皮肤上，前方和后方，翼片被固定在所述上部腔室轮缘的孔中。 （H）的皮瓣被拉伸并同时缝合到框架的后侧。以避免翼片的脱水，0.9％氯化钠溶液反复滴到瓣。 （I）中的翼片和周围的皮肤完全固定在上部腔室轮缘的孔中。皮瓣缝合回横向到相邻的背部皮肤，以保证室内的密封性。 （J）安装在框架的泡沫承载的对应，周围的观察窗。 （K）的完全安装的腔室：一护罩玻璃安装于观察窗，并与止动环密封。第三螺钉附连到所述框架为附加密封性的顶部。在腔室的窗口允许microvasculatur的重复分析E中的襟翼通过活体显微镜的。显微镜期间更容易获得三个螺丝缩短。 （L），清醒和移动鼠标背装皮褶室。
图3展示了皮瓣坏死的形态发育和分界的日子0，1（B），3（C），5（D），7（E）和10（瓣的准备，A后）（F） 。最终坏死划分需要5天至7（D和E）之间。控制显示划界的一个独特区域的中心瓣区域内，包括一个红色条纹和白色镰（双箭头和星号中的E），这反映了充血反应和微血管重塑以及非灌注但潜在可行的区域划定组织坏死开发远端（E）。在图F中，翼片组织是由2个水平行分成三个不同的区域：在灌注良好的近位部（在图像的底部），危重灌流中央区域（包括红色条纹的白色的“镰lunatica”对应于在缺血性脑缺血半暗带中风损伤）和远端坏死区（沿圆周标记红色边框）后的组织。放大倍数16X。
图4.活体落射荧光显微镜显示arteriovenular的影像（AV）包（A，B），毛细管字段（C，D，E）和形态的变化，如重塑（F）和血管生成（G，H）。活体显微镜表示相同的AV束在第1天（A）和10（B）一种控制动物（B A，）。请注意没有拖拉响应的对照过在两个小动脉的整个观察期间芳（a）和小静脉（v）的直径。图像C，D和E演示了平行布置的毛细管中的灌注良好的近侧区（C），危重灌流中心过渡区（D）和缺血性组织瓣的非灌注坏死的远端区域（E）。在平行布置毛细管扩张和增加弯曲度在危重灌流中央区域的对照小鼠只显示血管重塑（F）中，其特征在于。与此相反，小鼠接受促红细胞生成素瓣仰角之前作为预处理方案展示新形成的并垂直而产生毛细管，它们是从正常的预先存在的毛细血管（G，H）的清晰可辨。这种血管反应并没有在控制被观察到。对比度增强荧光右旋糖酐15万元。放大倍数80X。
图5. </ STRONG> 活体落射荧光显微镜显示AV-捆绑在井灌注近瓣区（A）和组织（B）的批判灌注缺血中心过渡区。注意毛细血管小静脉秉承白细胞（箭头）的存在增加（v）和当比较健康的近侧区（A）的局部缺血瓣区（B）内的小动脉（a）所示。对比度增强罗丹明。放大倍数80X。活落射荧光显微术显示核缩合指示的控制之内的近端（C）的凋亡细胞死亡和危重灌流中央翼片区域（D）中。凋亡细胞（白色箭头）的数量增加时相比，近端区（C）越缺血中心过渡区（D）的范围内观察到。对比度增强与双苯酰亚胺。放大倍率250X。
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Discussion
为了减少缺血并发症，从而改善临床结果，在危重灌注皮瓣组织病理生理过程的更详细的知识是必需的。的模仿急性缺血持续的新动物模型的发展，因此强制性的。因此，我们能够发展一种容易再现的和可靠的模型允许肌肉和皮肤脉管系统的各种参数，可以与所采样的皮瓣组织的免疫组织化学和分子生物学分析相关联的重复的形态，动态的和功能性的实时评价。
在外科手术过程不需要任何具体的手术技能，虽然实践和一些手巧是必要的。约25-30手术动物学习曲线通常需要掌握背皮褶室和皮瓣准备安装正确。在有经验的医生，手术时间平均为35分钟。关键步骤瓣制备的包含正确的位置和轮廓，在腔室的窗口用的主容器准确定位的中心瓣的待横切（使用反式照明）和上面的肉膜的细致除去明胶状层的利用图像放大倍数，以改善图像质量。
由于皮瓣尺寸以毫米为单位给出，我们建议您使用游标卡尺的正确瓣标记。如果有，而定位室的窗口中水平布置的主导船只的任何困难，应该宁愿选择一个比船更近的位置更远端。这些血管的横切室窗口的正确定位，保证了这些横断而从远端升高瓣近，导致随机灌注皮瓣。换句话说，不横切这些大血管，将导致在轴向灌注图案，而不在窗口下面的组织的坏死。手术准备过程中的最后关键步骤涉及除去明胶样蜂窝组织层。经验表明，过度去除损坏的下卧肌层等的微妙水平布置肌肉毛细血管。反之，水肿，形成保守的去除效果和感兴趣的区域的显微最终在有限的可见性。如果所有这些步骤都掌握小心，瓣非常皮瓣不断抬高后，开发约50％的坏死10天。这允许研究各种治疗策略，可能改善或恶化的皮瓣组织的存活。最后，活体荧光显微镜的方法是一种行之有效的方法来评估组织微血管灌注，可以很快学会。
这种模式的主要缺点是对组织的腔室内的有限观察时间217，大约10〜14天以下的皮瓣准备的窗户。这是由于皮肤近端向背侧皮褶室，其最终导致该腔室的侧面倾斜的逐渐松动。极少数情况下，夹心状，固定皮肤翻出室的框架，并使显微镜是不可能的。因为坏死是最多充分5天和第7天之间划定手术后，这并没有真正倾斜腔或拉出腔室中的皮肤之前，破坏数据的采集。
该模型的优点包括易于再现性和潜在使用转基因动物。可评估但是可能损害意义在翻译结果到人体条件的窗口的尺寸相对较小。此外，也有松散剥皮动物和人类之间的解剖学差异。而动物和外科手术工具具有一个合理的成本效益，所述哈尔D-和必要的软件来执行镜（反射照明显微镜，高分辨率照相机，荧光染料和专用软件进行脱机数据分析）代表一个更大的投资。
结论：
我们提出了一个时间，在小鼠中具有成本效益的动物模型，允许可视化和微循环的参数的量化在高分辨率。这种方法是，分析临界灌注肌皮瓣组织和下面的细胞机制的理想方法。感兴趣区域的形态学变化可以反复调查和对微血管和细胞水平的功能性改变相关。后活落射荧光显微镜中，组织可以进一步使用组织学和分子生物学方法进行处理。
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Acknowledgments
我们感谢卡塔琳娜哈伯兰进行图像编辑。资金来源：该资深作者收到了KKF格兰特从慕尼黑工业大学成立一个新的研究实验室。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| C57Bl/6 mice, 6-8 w, 20-22 g | Charles River | ||
| Depilation cream | Balea | Any depilation cream | |
| Titanium chamber | Irola | 160001 | Halteblech M |
| Custom-made Plexiglass mounting frame | Frame to secure chamber to avoid chamber movement due to the animal's respiration. | ||
| Slotted cheese head screw | Screws and More | 842210 | DIN84 M2x10 |
| Hexagon full nut | Screws and More | 93422 | DIN934 M2 |
| Snap ring | Schaefer-Peters | 472212 | DIN472 J12x1,0 |
| Cover glass | Volab | Custom-made cover glass, 11.8 mm in diameter. | |
| Fixing foam | tesamoll | 05559-100 | tesamoll Standard I-Profile |
| Ketamine hydrochloride | Parke Davis | Ketavet® | |
| Dihydroxylidinothiazine hydrochloride | Bayer | Rompun® | |
| Buprenorphin | Essex Pharma | Temgesic® | |
| Saline 0.9% | |||
| Desinfection alcohol | |||
| Vicryl 5-0 | Ethicon | V 490 H | |
| Ethilon 5-0 | Ethicon | EH 7823 H | |
| 1 ml syringes | |||
| Surgical skin marker with flexible ruler | Purple surgical | PS3151 | Any surgical skin marker and flexible ruler |
| Pointed scissors | |||
| Micro-Scissors | |||
| Normal scissors | |||
| 2 clamps | |||
| Fine anatomic forceps | |||
| Micro-forceps | |||
| Hex nuter driver | wiha | 1018 | |
| Screwdriver | wiha | 685 | |
| Snap ring plier | Knipex | 4411J1 | 12-25 mm |
| Wire cutter | Knipex | 70 02 160 | Wire cutter is used to cut screws short; 160 mm |
| Trans-illumination light | IKEA | 501.632.02 | LED light Jansjö; any light |
| Magnification glasses | |||
| Intravital microscope | Zeiss | 490035-0001-000 | Scope.A1.Axiotech |
| LED system | Zeiss | 423052-9501-000 | Colibri.2 |
| LED module 365nm | Zeiss | 423052-9011-000 | |
| LED module 470nm | Zeiss | 423052-9052-000 | |
| LED module 540-580nm | Zeiss | 423052-9121-000 | |
| Filter set 62 62 HE BFP + GFP + HcRed | Zeiss | 489062-9901-000 | Range 1: 350-390 nm excitation wavelength, split 395 nm / 402-448 nm; range 2: 460-488 nm, split 495 nm / 500-557 nm; range 3: 567-602 nm, split 610 nm / 615 nm to infinite. |
| Filter set 20 Rhodamine | Zeiss | 485020-0000-000 | 540-552 nm, split 560 nm, emission 575-640 nm |
| 2.5X objective NA=0.06 | Zeiss | 421020-9900-000 | A-Plan 2.5X/0.06 |
| 5X objective NA=0.16 | Zeiss | 420330-9901-000 | EC Plan-Neofluar 5X/0.16 M27 |
| 10X objetive NA=0.30 | Zeiss | 420340-9901-000 | EC Plan-Neofluar 10X/0.30 M27 |
| 20X objective NA=0.50 | Zeiss | 420350-9900-000 | EC Plan-Neofluar 20X/0.50 M27 |
| 50X objective NA=0.55 | Zeiss | 422472-9960-000 | LD Epiplan-Neofluar 50X/0.55 DIC 27 |
| ZEN imaging software | Zeiss | ZenPro 2012 | |
| CapImage | Dr. Zeintl | ||
| Fluorescein isothiocyanate-dextran | Sigma-Aldrich | 45946 | |
| bisBenzimide H 33342 trihydrochloride | Sigma-Aldrich | B2261 | Harmful if swallowed; causes severe skin burns and eye damage, may cause respiratory irritation. |
| Rhodamine 6G chloride | Invitrogen | R634 | Harmful if swallowed; may cause genetic defects; may cause cancer; may damage fertility or the unborn child. |
| Pentobarbital | Merial | Narcoren® |
References
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