Summary
Этот фильм показывает, как приобрести системные и печеночные гемодинамики у мышей. Весь мониторинг включает приобретение жизненно важных параметров, системного артериального давления, центрального венозного давления, общего расхода артерии печени, и портал давления вены, а также скорость потока портал у мышей.
Abstract
Использование моделей мыши в экспериментальных исследованиях имеет огромное значение для изучения печени физиологии и патофизиологии нарушений. Однако в связи с небольшим размером мыши, технические детали процедуры интраоперационного мониторинга, подходящей для мыши редко описано. Ранее мы уже сообщали процедуру мониторинга для получения гемодинамики у крыс. Теперь, мы адаптировали процедуру приобретения системных и печеночные показатели гемодинамики у мышей, вид в десять раз меньше, чем у крыс. Этот фильм демонстрирует приборов животных, а также процесс сбора данных, необходимых для оценки системных и печеночные гемодинамики у мышей. Жизненные параметры, в том числе температуры тела, частоты дыхания и частоты сердечных сокращений были записаны в течение всей процедуры. Системной гемодинамики состоят из давления сонной артерии (CAP) и центрального венозного давления (ЦВД). Печеночные показатели перфузии включают портал VEin давление (ПВП), скорость потока портала, а также скорость потока общей печеночной артерии (таблица 1). И средств сбора данных для записи нормальные значения был завершен в течение 1,5 часов. Системные и печеночные показатели гемодинамики оставались в пределах нормы во время этой процедуры.
Эта процедура является сложной задачей, но выполнимая. Мы уже подали эту процедуру для оценки печеночной гемодинамики у нормальных мышей, а также при 70% и частичной гепатэктомии в доле печени зажима экспериментов. Средний PVP после резекции (п = 20), был 11,41 ± 2,94 КМЗ 2 O, который был значительно выше (Р <0,05), чем раньше резекции (6,87 ± 2,39 КМЗ 2 O). Результаты доли печени зажимного эксперимент показал, что эта процедура мониторинга является чувствительным и пригодны для обнаружения небольших изменений в портального давления и скорости потока портала. В заключение, эта процедура является надежным в руках опытного микро-хирурга, но должно быть ограничено ехрeriments где мышей абсолютно необходимы.
Introduction
Общая цель этого видео было продемонстрировать процедуру мониторинга в режиме реального времени для получения системных и печеночные показатели гемодинамики. Причиной разработки этой процедуры является ее большое значение для экспериментальных вмешательств у мышей, которые требуют получения системных и печеночные показатели гемодинамики. Эта процедура может быть применена к наивных животных и во время или после заданного гепато-билиарной экспериментальной хирургического вмешательства, таких как частичной гепатэктомии воротной вены, лигирование и трансплантации печени.
Приобретение печеночных гемодинамики данных у грызунов требуется предложенную инвазивные процедуры. Печени перфузии не может быть получена неинвазивным. Тем не менее, есть альтернативы для приобретения системного артериального давления. Техника мониторинга, такие как техники хвост манжеты 8 были использованы для приобретения кровяное давление в обоих крыс и мышей. Методика хвост манжеты могут быть применены в consciOUS животных. При измерении кровяного давления, животное должно быть размещены и закреплены в определенном неудобном положении. В руководстве по эксплуатации хвост манжеты устройства, производитель заявляет, что мыши могут стать нервным и подчеркнул, которое может снизить циркуляцию в хвосте. В соответствии с этим обстоятельством, периферической крови, приобретенный в хвосте давление может быть намного ниже, чем в центральной артериального давления.
Процедура полный мониторинг проводили с интегрированным монитором многоканальным используя серию датчиков для сбора данных. Давление крови была получена путем введения катетера в соответствующем сосуде после тщательного микрохирургической вскрытия и воздействия под микроскопом. Скорость потока была измерена путем размещения трансзвуковой зонд потока вокруг каждого судна.
Мы уже сообщали об аналогичном интраоперационной процедуру мониторинга для крыс приводит к всеобъемлющей серии физиологических гемодинамики данных, сопоставимых с одданные по сообщениям из других групп 7. Поэтому мы считали эту процедуру, чтобы представлять хорошую основу для адаптации к мыши, вида 10 раз меньше, чем у крыс. Основное различие с процедурой, крысы является использование катетеров Миллар для получения данных артериального давления, вместо системы катетера на основе текучей среды. Поток данных были также приобретены с околозвуковых зондов потока, всего много мелких, чем за соответствующий крысы сосудов.
В связи с небольшим размером животного, приборы мышей технически сложным, но возможным. После того, как приборы завершена, сбора данных и первичный анализ данных жизнь проста, так как предопределенный файл настройки могут использоваться. Файл параметр должен быть определен один раз в начале серии экспериментов, и могут быть сохранены и использоваться для всех последующих экспериментах.
До сих пор мы применяли эту процедуру для оценки печеночные гемодинамические эффекты в острых опытах. Мы измерили CAP и ПВП до и сразу после 70% частичной гепатэктомии (PH) и в зажимные / де-зажима эксперименты. Мы зажат гепато-перстной связки правой доли составляет 20% от печени масса последующим кратким (5 минут) зажима медианы и левого бокового лепестка, представляющей совершенно 90% массы печени. Де-зажима начал с освобождения зажим с правой доле последующим освобождая средней и левой боковой лепесток. Максимальное время зажима был ниже 10 мин.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Корпус и все процедуры, проводимые были в соответствии с немецким защиты животных законодательства.
1 Датчики Калибровка (Следуйте инструкциям производителя для датчиков калибровки)
1.1) Миллар катетер калибровки. Предварительно замочить кончик катетера в стерильной водой или физиологическим раствором в течение 30 мин до сбалансировать (обнуления) и калибровки.
- Подключите Миллар датчик к millar1 канала усилителя моста и вставьте Миллар наконечник датчика в толще воды.
- Установите значение водяного столба до 0 КМЗ 2 O. В анализе данных окна программы, выбрать мост усиливать и обнулить его. Базовое значение 0 КМЗ 2 O может быть установлен.
- Установите значение водяного столба до 20 КМЗ 2 O. Запуск анализа данных окна программного обеспечения прогресса, и остановиться. Выберите "единицы" в окне моста усиливать, установить базовую 0 и 20 КМЗ 2 O соответственно. Отрегулируйте "единицу", чтобы КМЗ <суб> 2 O.
- Калибровка millar2 для измерения CAP таким же образом (установить два базовой линии 90 и 110 КМЗ 2 O).
1.2) калибровка зонда Кровоток
- Поставьте датчик в деионизированной воде. Подключите датчик с системой трансзвуковом зонда поток.
- В анализе данных окне программы, выберите Ввод усиления к нулю зонд потока. Отрегулируйте единиц.
- Нажмите кнопку "тест-канал", чтобы собрать сигнал: если сигнал имеет 3-4 баров, это означает, что сигнал хороший. В случае, если приобретается хороший сигнал, процедура может быть продолжена.
- Нажмите кнопку "ноль канал" и масштаб канал, чтобы увидеть, был ли откалиброван значение или нет.
- Нажмите кнопку, чтобы "мера канал" для последующего измерения.
2 Подготовьте мышь для хирургической процедуры
- Наведите в индукционной камере и обезболить мышь с 2% изофлуран и0,3 мл / мин кислорода. Операция может быть выполнена, если схождение щепотка снятие рефлекс мыши отсутствует.
- Бритье мех хирургических регионах, в том числе левую шею и живот.
- Наведите на операционном столе и закрепить его с помощью ленты. Используйте ветеринар мазь на глазах, чтобы предотвратить сухость в период эксплуатации.
- Поместите марлевую подушку под шею для оптимальной экспозиции операционного поля шеи.
- Лечить поле работы и разместить стерилизованные сеток для покрытия мышь только оставив операционного поля открыты.
3. жизненные параметры измерения
- Вставьте ЭКГ иглы подкожно в лапы мыши.
- Установите датчик дыхательных в задней части мыши.
- Поместите датчик температуры в прямой кишке мыши.
- Температура Запись ЭКГ и частоты дыхания мыши в программное обеспечение для анализа данных.
4 шеи Операция для Systemic Сердечно-сосудистая Мониторинг
4.1) судно рассечение
- Определить среднюю линию шеи, среднюю точку ключицы, угол нижней челюсти.
- Сделать 2 см продольный разрез от угла нижней челюсти к средней точке ключицы, который 0,5 см с левой стороны от средней линии.
- Проанализируйте подчелюстной слюнной железы, переверните его и покрыть ее солевого пропитанной марли.
- Определите яремную вену, вскрыть его и поместите три 6-0 шелковые швы под вены для последующего лигирования и фиксации.
- Определить кивательной мышцы, отделить его от верхнего чреве omohyoid и заднее брюшко двубрюшной мышцы, и вытащить его с втягивающим для легкого воздействия на сонной артерии.
- Проанализируйте сонную артерию и поместите три 6-0 шелковые швы под артерии для последующего лигирования и фиксации.
4.2) измерение кровотока в сонной артерии
- Поместите трансзвуковыеисследовать вокруг сонной артерии, держать его стабильным, и оптимизировать контакт с помощью ультразвука гель или физиологический раствор.
- Запись скорость кровотока в сонной артерии, как указано на маленьком экране трансзвуковом устройства с помощью программного обеспечения для анализа данных
- Снимите зонд после завершения измерения
4.3) для измерения давления Сонная артерия (CAP)
- Лигировать дистальный конец сонной артерии и зажим его проксимальный конец.
- Поместите 2 крепежных швов вокруг сонной артерии. Используйте 10-0 Prolene для пребывания шва.
- Сделать небольшой разрез на передней стенке сосуда.
- Вставьте Миллар катетер и исправить ее с предварительно размещены швов.
- Запишите CAP в программное обеспечение для анализа данных.
4.4) измерение кровотока яремной вены
- Поднимите яремную вену и поместите трансзвуковое зонд потока для измерения расхода.
- Запишите расход в программное обеспечение для анализа данных.
4.5) измерение Центральное давление венозной (CVP)
- Зажим проксимальный конец яремную вену и лигируют дистального конца.
- Вырезать небольшой надрез с помощью microscissors на передней стенке сосуда.
- Вставьте заполненный жидкостью катетер и зафиксируйте его с помощью предварительно размещены линий швов.
- Запишите CVP в программное обеспечение для анализа данных.
5 полостной операции для приобретения печеночной гемодинамики
5.1) определение судно
- Сделайте поперечный разрез на животе.
- Eventerate кишечник в левую сторону и накрыть влажной марлей.
- Определить нижнюю полую вену, в портальную вену, общей печеночной артерии и надлежащего печеночной артерии.
- Оставьте немного теплой солевой раствор в животе и на поверхности кишечника каждые 5 мин в течение всей процедуры мониторинга.
5.2) Измерение портального кровотока
- Проанализируйте в портальную вену.
- Поместите 6-0 шелк под воротной вены, чтобы облегчить снятие судна при размещении зонд потока.
- Поместите трансзвуковое зонд потока вокруг воротной вены и измерить его скорость кровотока.
- Запишите скорость кровотока в воротной вене.
5.3) Измерение общего потока печеночной артерии
- Проанализируйте общей печеночной артерии осторожно.
- Поместите один 6-0 шелковой нити вокруг судна, чтобы облегчить подъем судна.
- Поместите зонд потока вокруг артерии.
- Измерьте свой кровоток и получения данных.
5,4) Измерение давления воротной вены (ПВП)
- Выберите один филиал брыжеечной вены с нескольких боковых ответвлений, который истощает прямо в воротной вене.
- Лигировать дистальный конец выбранного брыжеечной вены. Убедитесь, что лигирование близка к кишечной трубки. Лигировать свои мелкие ветки
- Поместите 2 Fixing швов, используя 6-0 Prolene вокруг вены. Ключевым моментом этой процедуры является, не прикасаясь к брыжеечной артерии, когда лигирования вены.
- Зажмите проксимального конца воротной вены.
- Place 2 Stay швов, используя 10-0 Prolene. Некоторые кровотечение будет происходить с пребывание шов должен проникнуть в сосудистую стенку тонкой брыжеечной вены.
- Сделайте небольшой надрез на ключе, используя microscissor косо под углом 45 градусов.
- Вставьте катетер Millar через брыжеечной вены в воротной вене и исправить
- Запишите давление воротной вены. В конце процедуры, пожертвовать мышей путем обескровливания при анестезии.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Жизненно важные параметры, такие как мышей частоты дыхания и частоты сердечных сокращений, очевидно, значительно выше, чем у крыс. Среднее системное артериальное давление и яремной вены давление аналогичны значений крыс и даже похожи на человеческие данных.
Печеночные гемодинамики данных явно отличается. Мы получили нормальные значения из 8 мышей. Портал кровоток в нормальных мышей в диапазоне от 1,6 до 2,3 мл / мин. Поток в общей печеночной артерии в диапазоне от 0,10 до 0,35 мл / мин. Портал давление вены у нормальных животных был в широком диапазоне от 4,4 до 11,2 КМЗ 2 O со средним значением 8,09 ± 2,47 CMH 2 O (Таблица 1). Такой широкий диапазон, может привести к небольшим, но не существенных различий при сравнении средней величины небольших групп нормальных животных.
Поскольку мы наблюдали значительные между индивидуальные различия особенно в портального давления, мы проверили, может ли небольшие внутрииндивидуальная различия распознаются этой технологииNique. Мы оценили эту процедуру в двух различных экспериментальных условиях: частичное гепатэктомия и печени лепестка зажима / DE-зажим. Портал давление до и сразу после 70% частичная гепатэктомия (п = 20) в том же животного (Рисунок 1) увеличился в 2 раза от 6,87 ± 2,39 и 11,41 ± 2,94 КМЗ 2 O (P <0,001). Эти результаты были в аналогичном диапазоне, как наблюдалось у других видов, а также 5,12 у людей 7.
Нормальное давление воротной вены и портальное давление до резекции были приобретены у двух разных групп (по одному от нормальной группе параметров мониторинга, других от 70% PH группы). В связи с широким спектром портального давления в нормальных мышей (от 4 до 11 КМЗ 2 O), средние значения малых групп животных могут немного отличаться, как это наблюдается в нашем эксперименте (8,09 ± 2,47 КМЗ 2 O по сравнению с 6,87 ± 2,39 КМЗ 2 О). Тем не менее, при анализе данных, мы обнаружили, что не было никакой STATISчески значимое различие между этими двумя группами (р = 0,237).
Зажимное / де-зажимной эксперимент был разработан, чтобы продемонстрировать, что процедура является достаточно чувствительным, чтобы забрать еще меньшие изменения в давлении портала. Зажим правой доле составляет 20% от массы печени привело к увеличению примерно на 17%. Кроме того зажим медианы и левый боковой лепесток вызвал увеличение по крайней мере, 2-3 складок по сравнению с исходным давлением портала. Портал давление постепенно возвращается в исходное давление, при отпускании зажим с правой доле в результате зажима 70% печени. Давление вернулся с исходным уровнем при снятии зажим с левой воротной вены, питающей средней и левой боковой лепесток (рисунок 2 и таблицу 2). Карта оперативной группы мнимого оставалась стабильной в течение 1 часа после открытия живота. Карта мышей в контрольной группе, полученный в сопоставимых момент временикак в зажимного эксперимента, не было значительной разницы по сравнению с МАП экспериментальной группе. Результаты обоих экспериментов показали, что даже небольшие интра-индивидуальной изменения менее 20% могут быть обнаружены с этой процедурой.
Типичные осложнения, такие как тяжелые кровотечения и заторов может произойти во время процедуры. С тяжелой кровопотери может вызвать значительное снижение карте, а также PVP, результаты мышей с этого осложнения должны быть устранены. Чтобы избежать венозный застой и тромбоз при выполнении печени лепестка зажима эксперимент, мы предлагаем вводя небольшое дозы гепарина (500 ЕД / кг) во время операции до зажима. Общей печеночной артерии может пройти кратковременный спазм сосудов при обращении, например, подъема судна и размещение зонда. Это может вызвать временное краткое ишемию печени. В общем, спазм может решить самостоятельно в течение нескольких минут. Короткий спазмах сосудов в ЦДХ не представляет серьезную проблемув жизни животного, но может помешать экспериментальных результатов, при фокусировке на печеночной ишемии реперфузии.
В заключение, эта процедура является сложной задачей, но выполнимая. Это требует определенной подготовки даже для опытных микро-хирургов. В связи с высокой между индивидуального сравнения изменчивости данных давления, полученных в различных животных до и после вмешательства не может привести к неоспоримых результатов. Поэтому мы рекомендуем эту процедуру для изучения краткосрочную регулирование печеночных гемодинамики в острых опытах путем приобретения данные до и после вмешательства в рамках того же животного.
| Параметры | Получены собственные данные | Параметры сообщил | |
| Vital параметры | Частота сердечных сокращений (N = 8) | 418 ± 55 BPM | 389 (353-566) BPM 1 |
| 162 ± 11 BPM | 254 ± 28 BPM 2 | ||
| Температура (N = 8) | 33.56 ± 0.54 ° C | 36.1-36.6 ° C 11 | |
| Системного артериального давления (CAP) (п = 8) | 130,54 ± 20,47 КМЗ 2 O (= 96,02 ± 15,06 мм) | 94 ± 15 мм рт.ст. 9 | |
| Центрального венозного давления (ЦВД) (п = 2) | 8.90 ± 3.25 КМЗ 2 O | 5.9 ± 2.0 КМЗ 2 O 11 | |
| Печеночные гемодинамика | Портал поток вены (N = 6) | 2,03 ± 0,24 мл / мин | 3.0 (2,5-3,1) мл / мин 1 |
| 3,3 мл / мин 1 | |||
| Общие поток печеночной артерии (N = 6) | 0,20 ± 0,09 мл / мин | Не FOU й | |
| ПВП (N = 8) | 8.09 ± 2.47 КМЗ 2 O (= 5,95 ± 1.82mmHg) | 5,3 ± 1,4 см солевой 3 | |
| 8,7 ± 2,1 мм рт.ст. 4 | |||
| 4mmHg 6 | |||
Таблица 1 Нормальные системные и печеночные показатели гемодинамики мышей, приобретенные с помощью этой процедуры мониторинга CAP:. Давления сонной артерии; КАРТА: среднее артериальное давление; CVP: центральное венозное давление; PVP: портальное давление вены.
Рисунок 1. ПВП до и после 70% PH. Давление воротной вены до и после 70% частичной резекции печени (N = 20) были 6,87 ± 2,39 и 11,41 ± 2,94 КМЗ 2 О.www.jove.com/files/ftp_upload/51955/51955fig1highres.jpg "целевых =" _blank "> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
| Параметры (см H2O) | После лапаротомии | После зажима 20% печени (RL) | После зажима 90% печени (RL + ML + LLL) | После зажима 70% печени (ML + LLL) | В конце (освободить всех зажимы) |
| PVP - Клеммы ехр группа (п = 10) | 9.59 ± 4.00 | 10.45 ± 3.89 | 25.78 ± 8.99 | 16.91 ± 9.86 | 11.14 ± 4.48 |
| Среднее CAP - зажима ехр группа (п = 10) | 121,50 ± 18,67 | 95.89 ± 32.76 | 74.41 ± 35.35 | 93.88 ± 42.96 | 89.44 ± 44.20 |
| Среднее CAP - Шам группа (п = 3) | 123.33 ± 12.42 | 121,0 ± 5,57 | 124.00 ± 8.66 | 127,33 ± 7,23 | 123.00 ± 8.89 |
. Таблица 2 гемодинамики ответ после пережатия и освобождения зажима различных долей печени (п = 10) RL: правая доля, ML: средней доле (в том числе правом средней доле и левой средней доле), LLL: левый боковой лепесток.
Рисунок 2 гемодинамики ответ после пережатия и освобождения зажима различных долей печени (животное ID: CHI-108) А.. PVP сразу после вставки Миллар катетер был 8,8 КМЗ 2 О. PVP после пережатия 20% доли печени составила 10,8 КМЗ 2 OBPVP вырос до 17,5 КМЗ 2 O после пережатия 90% доли печени. С. PVP снизилась до 10,3 КМЗ 2 O при отпускании зажим правой доле. D.PVP вернулся к 8,7 КМЗ 2 Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Мониторинг печеночных гемодинамики является важным инструментом исследования в гепатологии и гепатобилиарной хирургии. Приобретение печени гемодинамических данных помогает охарактеризовать действие гепатобилиарных процедур на сердечно-сосудистой системы. Приобретение печеночных гемодинамики данных также необходима для изучения влияния лекарственных средств, влияющих портального давления и портальной поток, например, при необходимости в исследованиях, оценивающих вазоактивные препараты.
Несмотря на небольшой размер, жизненные параметры, системные и печеночные гемодинамика может контролироваться на мышах. Критические шаги в протоколе были следующие: Во-первых, важно, чтобы поместить животное на потепления площадку во время всей процедуры, чтобы избежать переохлаждения, которое может привести к сердечно-сосудистой дисфункции. Во-вторых, очень важно быть очень осторожным, когда рассекает сосуды мыши, так как стенки сосуда мыши очень хрупкий и тонкий. Кажется все возможное, чтобы исправить стенку сосуда, захватывая некоторые жировой ткани на гоэ поверхность вместо того, чтобы схватить саму стенку сосуда. В-третьих, очень важно, чтобы избежать случайного перевязку брыжеечной артерии для не умаление артериальное снабжение при размещении крепежные швы вокруг брыжеечной вены.
Тем не менее, агрессивная техника наставничества имеет некоторые ограничения. Первый его инвазивность сам по себе. Эта техника мониторинг инвазивный метод, который требует хирургического вмешательства. Поэтому сама процедура мониторинга может вызвать побочные эффекты для животных. Таким образом, мы использовали только эту процедуру, чтобы получить гемодинамических параметров у нормальных животных, и в острых опытах, но не в экспериментах выживания. На следующем этапе, мы хотим оценить эту технику в экспериментах выживания. Второе ограничение этой процедуры является то, что он требует существенной микрохирургической опыт. Гемодинамический мониторинг у мышей должна выполняться только специально обученным микрохирургов. Самым трудным парт из этой процедуры мониторинга является вставка катетера Millar в небольшом брыжеечной вены, так как это вены чрезвычайно хрупким. В наших руках, около 10 учебных операции были необходимы для опытного микрохирурга до технически овладения этой процедуры. Опыт был определен в том, успешно выполнено более 50 сосудов анастомоза (сонной артерии, яремной вены) на крыс или мышей. Третье ограничение в том, что давление портал получены с помощью этого метода может быть ниже физиологического диапазона для нормального животного. Mesenteric перевязка вены и ввода катетера может снизить общий объем крови стекать в воротной вене, по оценке, 10%. Тем не менее, этот физиологический диапазон не может быть приобретено с использованием имеющихся в настоящее время устройств. Кроме того, эффект от самой анестезии на ПВП не могут быть исключены 13. Однако, так как все животные, подвергают той же вмешательства, потенциальная ошибка будет систематической ошибки. Поэтому, дата интерпретация должно быть сделано с осторожностью упором на относительных изменений в животное и не обязательно на абсолютных разностей между животными.
Тем не менее, есть небольшие альтернативы инвазивной гемодинамики мониторинга у грызунов. Неинвазивная контроль ограничивается приобретением системного артериального давления. Портал давление или расход портала не может быть определена неинвазивно у мышей. Телеметрическая мониторинг также ограничивается приобретением системного артериального давления. Не было обнаружено никаких отчетов о телеметрической приобретения других параметров гемодинамики.
Это полный порядок интраоперационная мониторинг необходим, чтобы понять печени физиологические процессы, такие как регулирование перфузии печени, регенерации печени и гепатобилиарной хирургии всесторонне. Способность отслеживать и собирать данные лабораторных животных во время операции в режиме реального времени, таким образом, представляет собой значительный шаг вперед в изучении ди печениСиз и портальная гипертензия.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что они не имеют конкурирующие финансовые интересы.
Acknowledgments
Это исследование было поддержано немецким Федеральным МИНИСТЕРСТВО образования и научных исследований (BMBF), финансируемого "Виртуальный Печень сети". Я хотел бы поблагодарить Фрэнка Шуберта и Рене Gumpert от медиа-центра Йенского университета больницы за оказанную помощь в производстве видео и создания анимации и Изабель Jank для записи звука.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| PowerLab 16/30 | ADInstruments | PL3516 | |
| Quad Bridge Amp | ADInstruments | FE224 | Bridge amplifier |
| Animal Bio Amp | ADInstruments | FE136 | |
| Needle Electrodes for FE136 (3 pk) | ADInstruments | MLA1213 | |
| Perivascular Flowmeter Module | Transonic | TS420 | |
| Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB | Transonic | MA0.5PSB/MA1PSB | |
| SPR-1000 Mouse Pressure Catheter | Millar instruments | 841-0001 | |
| fluid filled catheter | Terumo | SR+DU2619PX | 26G, 0.64×19mm |
| micro scissors | F·S·L | No. 14058-09 | |
| micro serrefine | F·S·L | No.18055-05 | |
| Micro clamps applicator | F·S·L | No. 18057-14 | |
| Straight micro forceps | F·S·L | No. 00632-11 | |
| Curved micro forceps | F·S·L | No. 00649-11 | |
| needle-holder | F·S·L | No. 12061-01 | |
| 6-0 silk | ethicon | ||
| 6-0 prolene | ethicon | ||
| 7-0 prolene | ethicon | ||
| 10-0 prolene | ethicon | ||
| Tail cut-off device | Kent Scientific | www.kentscientific.com | |
| LabChart7 | ADInstruments | data analysis software |
References
- Albuszies, G., et al. Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock. Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).
- Bernhard, W., et al. Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).
- Cheever, A. W., Warren, K. S. Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow. 18, 405-407 (1963).
- Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine. Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).
- Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. Venous resistance increases during rat anaphylactic shock. Shock. 29 (6), 733-739 (2008).
- Geerts, A. M., et al. Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation. Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).
- Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats. Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).
- Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice. Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).
- Kuga, N., et al. Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse. J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).
- Muraki, T., Strain Kato, R. difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice. Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).
- Nielsen, J. M., et al. Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration. Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).
- Sakamoto, M., et al. Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen. Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).
- Reverter, E., et al. Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis. Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).
