Abstract
Il campo elettrico fisiologico serve funzioni biologiche specifiche, come dirigere la migrazione delle cellule in fase di sviluppo embrionale, escrescenza neuronale e epiteliale guarigione della ferita. L'applicazione di un campo elettrico in corrente continua a cellule coltivate in vitro induce migrazione cellulare direzionale, o galvanotaxis. Il metodo galvanotaxis 2-dimensionale dimostriamo qui viene modificato con poli misura (cloruro di vinile) (PVC) camere, superficie di vetro, elettrodi di platino e l'uso di uno stadio motorizzato su cui vengono esposte le cellule. Le camere di PVC e elettrodi di platino presentano bassa citotossicità e sono accessibili e riutilizzabili. La superficie di vetro e la fase di microscopio motorizzato migliorare la qualità delle immagini e consentono possibili modifiche alla superficie di vetro e trattamenti alle cellule. Abbiamo girato la galvanotaxis di due linee di cellule tumorali non-SV40-immortalata prostata, PRN-1-1 e pnt2. Queste due linee cellulari mostrano velocità di migrazione simili ed entrambe migrano versoil catodo, ma lo fanno mostrano un diverso grado di direzionalità in galvanotaxis. I risultati ottenuti con questo protocollo suggerire che i PRN-1-1 e le linee cellulari pnt2 possono avere diverse caratteristiche intrinseche che regolano le loro risposte migratori direzionali.
Introduction
Campi elettrici endogeni vengono rilevati in vari tessuti, come la pelle 1, 32, 33 e il cervello 2. Il campo elettrico fisiologica serve funzioni biologiche specifiche, tra dirigere sviluppo embrionale 3, 4, guidando la conseguenza di processi neuronali 5, 6 e promuovere cicatrizzazione corneale epiteliale e 1, 7. In vitro, l'applicazione di un campo elettrico in corrente continua a cellule coltivate imita il campo elettrico fisiologico e induce migrazione cellulare direzionale, o galvanotaxis. Galvanotaxis è stato studiato in fibroblasti, cheratinociti 8 9 pesci, epiteliale umano e cheratinociti corneali 10-12, linfociti 13, neuroblasti 2 e cellule progenitrici neuronali 14. Se esposto al campo applicato, la maggioranza delle cellule studiate migrare direzionalmente verso il catodica (-) poli. Tuttavia, diverse cellule tumorali, tra cui altamente metastaticole cellule del cancro al seno umano e della prostata umano linea di cellule di cancro PC-3M, passare al anodica (+) Polo 15, 16. Diversi meccanismi sono proposti a mediare galvanotaxis o per spiegare la capacità delle cellule di percepire il campo elettrico, tra cui l'attivazione recettori di EGF 12, il canale del sodio epiteliale 17, PI3K e PTEN 18, e il rilascio di ioni calcio 15, 19. Il meccanismo non è ancora completamente compresa ed è possibile che più vie di segnalazione sono coinvolti in galvanotaxis.
Il metodo galvanotaxis 2-dimensionale dimostriamo qui è utile per caratterizzare la migrazione direzionale aderenti, cellule mobili, sia per monitorare la migrazione singola cella 10, 12, 17 o migrazione di un foglio di cellule confluenti 18, 20. Questa tecnica è modificato dal Peng e Jaffe 21, e Nishimura et al. 10 con, camere di PVC trasparente su misura, con coversl rimovibileips consentendo il recupero delle cellule facile dopo galvanotaxis per l'analisi secondaria, come l'imaging immuno-fluorescenza. La superficie di vetro delle camere galvanotaxis è ottica compatibile, che consente le riprese ad alto ingrandimento e con cellule fluorescenza marcata. Inoltre permette il disegno sperimentale con modifica della superficie di vetro, ad esempio modificando il rivestimento o di superficie. Distanziatori realizzati No. 1 coprioggetti sono utilizzati nelle camere per minimizzare il flusso di corrente sulle celle; quindi il riscaldamento joule, che è proporzionale al quadrato del flusso di corrente, non surriscaldare le cellule durante l'esperimento. I ponti di collegamento agar impediscono il contatto diretto degli elettrodi con le cellule e prevenire cambiamenti del pH medio o concentrazione di ioni durante galvanotaxis.
Due linee cellulari di prostata umana non-cancerogeni sono stati esaminati per la loro risposta galvanotaxis in questo studio. I PRN-1-1 22 e 23 sono entrambi pnt2 SV40 immortalizzate, linee cellulari fattore dipendente dalla crescita esprimono marcatori epiteliali citocheratina 5, 8, 18 e 19 con bassa o nessuna espressione di antigene-specifica della prostata (PSA). Entrambe le linee cellulari mantengono la morfologia poligonale di cellule epiteliali normali, ma cromosoma anomalia è stata osservata in cariotipo 22, 24. Sebbene PRN-1-1 e pnt2 condividono comportamenti simili nella maggior parte degli esperimenti, fanno mostrano differenze nella formazione della struttura e in acinose galvanotaxis. Su una matrice 3-D, Matrigel, i PRN-1-1 cellule formano strutture acinose cave con lumen che assomiglia alla prostata normale della ghiandola tessuto 25. Tuttavia, le cellule pnt2 formano sferoidi solidi senza lumen o polarizzata dell'epitelio 26. Le cellule PRN-1-1 dimostrano anche una risposta galvanotactic superiore alla pnt2 in questo studio. La correlazione tra la formazione della struttura acinar e galvanotaxis in PRN-1-1 suggerisce che i segnali galvanotactic possono svolgere un ruolo nell'organizzazione della prmovimenti tessuto ghiandolare ostate in risposta a campi elettrici endogeni, e fornisce ulteriori caratteristiche di discriminare tra queste linee cellulari 2.
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Protocol
1. Le celle Culturing prostata
- Cultura dei PRN-1-1 e pnt2 prostata cellule in 100 piatti mm di coltura in RPMI 1640 supplementato con 10% FBS e antibiotici contro funghi a 37 ° C con il 5% di CO 2. Aggiornare il terreno di coltura ogni giorno fino a quando le cellule raggiungono 80% di confluenza per gli esperimenti galvanotaxis.
2. Montaggio Galvanotaxis Chambers
- Assemblaggio camere inferiori
- Pulire una camera galvanotaxis plastica con 2-propanolo. Applicare il sigillante silicio di qualità marine intorno alle aperture circolari sul lato inferiore di una camera con una siringa e attaccare un grande coprioggetti (Figura 1). Usare il lato posteriore di un applicatore di cotone per spingere verso il basso il coprioggetti e pulire la colla in eccesso con tamponi di cotone. Le aperture circolari consentono la corrente elettrica media e scorrano sulle cellule situate tra i due serbatoi medie interne.
- Tagliare un piccolo coprioggetti per fare 6 mm x 25 millimetri distanziali con un pennarello a punta di diamante.
- Capovolgere la camera. Applicare 2 strisce di colla silicio con una siringa e / o una spatola metallica per creare una superficie canale x 25 mm 10 mm per l'adesione delle cellule tra i 2 aperture circolari sul fondo di vetro. Colla 2 pezzi di vetro distanziatore tra le due aperture circolari. Utilizzare il retro degli applicatori di cotone per spingere verso il basso i distanziali e pulire la colla in eccesso con tamponi e / o stuzzicadenti cotone.
- Asciugare la camera per 24 ore fino a quando la colla di silicio è guarito. Mettere a bagno nella camera durante la notte acqua distillata per rimuovere il residuo di acido acetico da colla. Asciugare la camera per un uso immediato, o conservare la camera per un uso successivo in un contenitore pulito.
Figura 1: Montaggio della camera di fondo galvanotaxis. A) Una grande coprioggetti è attaccato al fondo di una camera pulita. B) Two pezzi di distanziali vetro sono incollati tra le 2 aperture circolari per creare un canale 10 mm mm x 25 per le cellule di allegare.
- Semina cellule sulle camere galvanotaxis
- Preparare il numero richiedere di camere galvanotaxis necessari per l'esperimento. Ogni linea o il trattamento di cellule richiede una sola camera galvanotaxis. Pulire le camere galvanotaxis con 2-propanolo. Lavare le camere sterili con PBS 3 volte e controllare il flusso di liquido tra le due aperture circolari nelle camere.
- Racchiudere le camere sterili in piatti di coltura di cellule e permettere loro di equilibrare a 37 ° C per 15 min. Staccare le cellule della prostata dal loro piatto di coltura utilizzando 5 ml 0,25% tripsina-EDTA a 37 ° C per 5 minuti. Neutralizzare il tripsina-EDTA con 5 ml di 10% FBS in PBS.
- Trasferire le cellule a 15 ml provette e centrifugare le cellule per 5 minuti a 200 xg, 37 ° C. Aspirare il supernatante e risospendere le cellule in 1 ml di terreno di coltura.
- Prendere 20 μl di soluzione di cellule per caricare ad una camera di conteggio e calcolare il numero di cellule. Regolare la concentrazione cellulare di 8 x 10 4 cellule / ml con terreno di coltura.
- Prendete le camere galvanotaxis dalla C incubatore 37 °. Seed 350 ml di sospensione cellulare su ciascuna camera.
- Incubare le cellule nelle camere di notte nel piatto cultura con Kimwipe bagnato o in una camera umida in incubatore a 37 ° C con 5% di CO 2.
Figura 2:. Semina le cellule alla camera La camera inferiore viene asciugato e pulito cellule A) della prostata vengono tripsinizzate, contate e trasferiti alla camera e incubate overnight B) Un coprioggetti superiore è collegata a sigillare la camera prima di girare...
- Lassembling le camere superiori
- Montare la camera superiore prima delle riprese. Il microscopio può ospitare l'imaging un'unica camera galvanotaxis contemporaneamente. Warm up 10 ml di terreno di coltura a 37 ° C per ogni camera galvanotaxis. Trasferire una camera galvanotaxis dalle incubatrici ad una piastra 37 ° C il riscaldamento.
- Lavare le cellule con terreno di coltura per rimuovere le cellule separati. Lasciare 400 microlitri di media nella camera. Utilizzare una siringa per applicare grasso alto vuoto sulla parte superiore di entrambi i distanziali vetro.
- Aggiungere una piccola coprioggetti per sigillare la camera. Premere delicatamente verso il basso il coprioggetti con il lato posteriore di un applicatore di cotone. Pulire l'eccesso di terreno con tamponi di cotone.
- Asciugare la superficie di vetro e applicare il grasso alto vuoto per sigillare il divario tra il coprioggetti e la camera. Utilizzare una spatola metallica per diffondere il grasso. Aggiungere 4 ml del terreno di coltura per i serbatoi interni e controllare il flusso di liquido tra i serbatoi.
- Fai agarponti
- Tagliare un paio di tubi lungo PVC da 2 pollici (503/16 ID x 5/16 OD x 1/16 Muro), capovolgere e inserirli in un bicchiere da 100 ml.
- Misura 200 mg Bacto-agar e aggiungere in un pallone da 50 ml con 10 ml di terreno di coltura per fare 2% gel di agar. Forno a microonde per 30 secondi. Caricare il gel di agar per il tubo di plastica con una pipetta di trasferimento. Lasciare i ponti agar a temperatura ambiente per 10 minuti per solidificare l'agar.
- Aggiungere 2 ml di terreno di coltura per i serbatoi esterni della camera galvanotaxis. Inserire i ponti agar al mezzo interno ed esterno serbatoi per condurre la corrente.
Figura 3:. Filmare le celle della camera Un diagramma per dimostrare l'assemblaggio finale della camera galvanotaxis. La camera è completamente sigillata con grasso alto vuoto. Medium è aggiunto to riempire i serbatoi, e due ponti agar vengono inseriti nella camera. Poi la camera galvanotaxis viene trasferito alla fase microscopio e gli elettrodi sono attaccati per applicare il campo elettrico. Vista laterale della camera galvanotaxis assemblato è mostrato per dimostrare che la corrente elettrica scorre sulle cellule attraverso i ponti agar e lo spazio tra il vetro di copertura.
3. Time-lapse imaging
- Accendere la camera ambientale a 37 ° C con 5% di CO 2 in aria circolante 2 ore prima di imaging.
- Accendere il microscopio e avviare il software di immagine acquisizione. Calibrare palco microscopio e selezionare l'obiettivo 10X.
- Trasferire le camere galvanotaxis al palco microscopio, fissare la camera con nastro adesivo e concentrarsi sulle cellule. Gli elettrodi galvanotaxis ai serbatoi esterni con catodo sul lato destro. Fissare il filo e gli elettrodi con nastro adesivo.
- Accendere il bo poterex per applicare un campo elettrico alla camera. Misurare la tensione di uscita con il voltmetro attraverso la camera per raggiungere 2,5 volt per la camera lunga 25 mm (100 mV / mm). Mantenere l'intensità di campo durante l'esperimento regolando la corrente di uscita.
- Selezionare 10 punti in tutta la camera per filmare nel software per generare dieci film time-lapse. Impostare le condizioni di acquisizione a intervalli di 10 min per 2 ore.
- Inizio riprese e regolare la corrente di uscita, se necessario.
- Alla fine dell'esperimento, rimuovere la camera dalla fase e fissare le cellule con 95% di alcol. Rompere aperto la camera con una lama di rasoio per pulire e ri-utilizzarlo.
4. Quantificazione di Galvanotaxis
- Ruotare i filmati time-lapse e ri-orientare il catodo alla parte superiore delle immagini. Esportare i film per il software di monitoraggio delle cellule.
- Monitorare manualmente il (x, y) posizione 10-20 cellule in ciascun time-point da ogni film (Figura 4 A, B).Le distanze di migrazione e gli angoli rispetto alla direzione nord-sud, lo stesso orientamento del campo elettrico, vengono calcolati nel software di monitoraggio cella (Figura 4C).
NOTA: La velocità media di migrazione viene convertito dalla distanza di migrazione totale e tempo totale riprese. La direzionalità viene convertito da angoli al valore del coseno. Se le cellule migrano con direzionalità a caso, la media del coseno netto sarà vicino allo zero. Se le cellule migrano direttamente verso il catodo, il valore del coseno sarà +1. Se le cellule migrano direttamente verso l'anodo, il valore del coseno sarà -1.
Figura 4: Inseguimento cellulare per misurare direzionalità A) Sovrapposizione delle linee di tracciamento con immagini di cellule.. I (x, y) posizioni delle cellule sono Manually rintracciato nei film time-lapse. . Se le cellule migrano caso, il coseno media è vicina a zero B) Tuttavia, se le cellule migrano verso il catodo e l'anodo, il valore del coseno media è vicino a + (catodo) o -. (Anodo) 1.0 C ) La direzionalità è presentato dal valore del coseno, che viene convertito da angoli di migrazione (θ). Il coseno (θ) è uguale al rapporto tra la distanza a (la distanza di migrazione) della distanza b (la distanza proiettata alla direzione del campo elettrico).
- Salvare le misurazioni. Importare i dati di un'applicazione database per calcolare i risultati combinati.
- Esportare i dati combinati di velocità media di migrazione e il valore medio del coseno di un foglio di calcolo per tracciare i grafici a barre (Figura 5).
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Representative Results
Due linee di cellule della prostata (PRN-1-1 e pnt2) sono stati studiati con questo metodo. Cellule in entrambe le linee migrano a velocità simili di 1,0 +/- 0,3 micron / min nel corso di 2 ore (Figura 5A). Tuttavia, la direzionalità al campo elettrico è di 0,7 +/- 0,3 per l'PRN-1-1 riga e 0,2 +/- 0,8 per la linea pnt2 (Figura 5B). I risultati mostrano una differenza significativa nella galvanotaxis di queste due linee cellulari (p <0.01, 100 cellule sono state seguiti), suggerendo che hanno diversi meccanismi di segnalazione cellulare che provocano diverse risposte a stimoli direzionali posizionali.
Figura 5: Galvanotaxis delle cellule della prostata. A) Le velocità di migrazione di PRN-1-1 e linee pnt2 sono simili quando le cellule sono esposte al campo elettrico.B) Tuttavia, la linea PRN-1-1 mostrato una elevata direzionalità verso catodo (coseno = 0.7), mentre la linea pnt2 mostrato una bassa direzionalità (coseno = 0,2) nel campo elettrico.
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Discussion
L'analisi della risposta galvanotaxis di una cellula è stato un indicatore funzionale importante per molti migratori o crescita cellulare elabora 27, 28. Qui usiamo una camera di misura con superficie di vetro per filmare due linee di cellule della prostata. Queste linee cellulari hanno dimostrato diversi gradi di galvanotaxis, e ipotizzano che la localizzazione intracellulare o l'attivazione delle proteine galvanotaxis mediare potrebbero creare interferenze durante il processo di generazione di linee cellulari immortali, determinando la differenza osservata nella risposta galvanotaxis.
Rispetto ad altri disegni da camera galvanotaxis realizzati in capsule di Petri 27, 28, ci sono diversi vantaggi per il design attuale. In primo luogo, la superficie del vetro è adatto per l'imaging e la coprioggetti con le cellule possono essere recuperate dopo galvanotaxis per immunocolorazione. In questo studio abbiamo utilizzato un basso ingrandimento obiettivo 10X per monitorare un gruppo di celle. Tuttavia, con these ottica migliorata vetro, è possibile filmare una singola cella a più alto ingrandimento con un obiettivo di olio 60X, per tracciare l'estensione veloce e retrazione lamellipodial all'avanguardia delle celle 17, o inseguimento cellule marcate con proteine fluorescenti. In secondo luogo, la superficie di vetro può essere modificato con rivestimenti proteici matrice 10, 12 o modellata con micro-canali. Trattamenti chimici sono possibile pre trattare le cellule prima di girare 29 anche. Rivestimento Matrix non è richiesto per le linee cellulari prostata usato qui, e il rivestimento matrice è dipendente dal tipo cellulare. Ad esempio, occorre un rivestimento collagene I per la galvanotaxis di cheratinociti umani 30, ma occorre un rivestimento laminina per la galvanotaxis delle cellule staminali neurali umane 31. Abbiamo testato galvanotaxis cheratinociti umani sul collagene I, collagene IV, fibronectina e laminina. Diverse proteine della matrice alterate velocità di migrazione delle cellule, ma non hanno cambiato i migrati catodica su in galvanotaxis 29. In terzo luogo, gli elettrodi di platino modificati sono inerti nel campo elettrico. Rispetto agli elettrodi di argento come usati in altri metodi galvanotaxis 27, essi non abbattere o rilasciano ioni metallici al mezzo, che riduce la citotossicità in galvanotaxis. Quarto, possiamo cambiare gli intervalli di telaio cattura, che ci aiuta a monitorare la migrazione delle cellule sia veloce o lento. Il microscopio motorizzato offre anche la possibilità di acquisire più filmati provenienti da aree diverse in una camera. Un esperimento di controllo senza il campo elettrico applicato è importante per determinare se il campo elettrico altera la velocità migratoria delle cellule.
Tuttavia, le camere galvanotaxis attuali sono limitate alla migrazione cellulare riprese per 4 ore a causa del piccolo volume di terreno nei serbatoi. Con una versione ingrandita del disegno della camera, sarebbe possibile filmare cellule per un periodo di tempo più lungo.
ve_content "> Alcuni problemi potenziali nel metodo includono:. 1) le cellule potrebbero muoiono durante l'assemblaggio della camera se diventano essiccato Poiché vi è un piccolo volume di terreno nella camera (400 microlitri), è importante evitare di intrappolare aria bolle nella camera e per mantenere un liquido che copre le cellule durante la fase di risciacquo cella. 2) La camera potrebbe fuoriuscire durante l'imaging, che ridurrebbe la corrente che passa attraverso la camera. Il flusso di liquido nella camera deve essere attentamente controllati prima che sia trasferito al palco microscopio e grasso più alto vuoto applicato, se necessario. 3) e sbavature grasso per alto vuoto può interferire con le riprese. La superficie di vetro può essere pulito con il 95% di alcool per eliminare i grassi. 4) Fase di deriva o spostamento delle camere su una fase di microscopio motorizzato potrebbe falsare le misurazioni della migrazione direzionale. Pertanto, è importante proteggere le camere galvanotaxis con supporto fase adeguata e nastro etichettatura. S copi "> In generale, il metodo galvanotaxis è utile a rivelare la direzionalità intrinseca di cellule mobili in un campo elettrico applicato, che ci aiuterà a capire meglio la migrazione direzionale negli organismi.Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Acknowledgments
Le linee di cellule della prostata sono gentilmente forniti dal Dr. Ling-Yu Wang e Dr. Hsing-Jien Kung al Cancer Center, UC Davis. Questo progetto è sostenuto da NIH concedere galvanotaxis 4R33AI080604.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cells | |||
| pRNS-1-1 prostate cells | Lee, et al. (1994) | ||
| PNT2 prostate cells | Sigma-Aldrich | 95012613-1VL | Berthon, et al. (1995) |
| Medium and solutions | |||
| RPMI 1640 medium | Invitrogen | 11875-093 | warm up to 37 °C before use |
| Fetal Bovine Serum - Premium | Atlanta Biologicals | S11150 | 10% in PBS, warm up to 37 °C before use |
| Antibiotic-Antimycotic (100x) | Life Technologies | 15240 | add 5 ml to 500 ml medium |
| 2-propanol | VWR | BDH1133-5GL | |
| PBS | - | - | 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 4.3 mM Na2HPO4 and 1.5 mM KH2PO4 in 1,000 ml of H2O, pH to 7.4 and autoclaved, warm up to 37 °C before use |
| 0.25% Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25200-056 | warm up to 37 °C before use, treat cells for 3-5 min at 37 °C |
| Galvanotaxis device | |||
| Galvanotaxis chambers | Precision Plastics Inc, CA | Custom-designed (1/4" x 2" x 3.5"), non-toxic, clear PVC chambers. Please contact the authors for the design specs. | |
| Galvanotaxis electrodes | UCD electric shop | platinum coiled electrodes with flexable cords | |
| Galvanotaxis power box | Substrate Engineering, CA | custom-designed DC power output with voltmeter | |
| Microscope Cover Glass, Large, 45 x 50 mm, No. 1.5 | Fisher | 12-544-F | |
| Microscope Cover Glass, small, 25 x 25 mm, No. 1 | ThermoScientific | 3307 | |
| Diamond point marker | ThermoScientific | 750 | |
| Marine grade silicon sealer, clear | 3M | 051135-08019 | |
| High vacuum grease | Dow Corning | 2021846-0807 | |
| 6 ml syringe | Fisher Scientific | 05-561-64 | |
| Nichiryo Syringe, 1.5 ml | Nichiryo | SG-M | |
| Cotton applicators | Purtian Medical Products | 806-WC | |
| Qtips | Johnson & Johnson | 729389 | |
| Nalgene 180 PVC tubing | Nalgene | 8000-9030 | 503/16 ID x 5/16 OD x 1/16 Wall |
| Bacto-Agar | Difco | 0140-01 | make 2% agar solution |
| Razor Blade | Personna | 74-0001 | |
| Equipments and Software | |||
| Benchtop Centrifuge | Eppendorf | 5810R | operated with an A-4-62 rotor |
| Cellometer Auto T4 | Nexcelom | Auto T4 | |
| Cellometer counting chambers | Nexcelom | CHT4-SD100-002 | load 20 μl cell solutions to count |
| Culture Temp Warming plate | Bel-Art Scienceware | 370150000 | to keep the galvanotaxis chambers at 37 °C |
| Eclipse TE-2000 microscope with motorized stage and environmental chamber | Nikon | ||
| Plan Fluor 10X/0.30 objective len | Nikon | ||
| Retiga EX CCD camera | Qimaging | Cooled CCD camara, mono-color, 12-bit | |
| Compressed air with 5% CO2 | Airgas | special order | |
| Volocity 6.3 | PerkinElmer | Image acquiring software | |
| Improvision OpenLab 5.5.2 | PerkinElmer | Cell tracking software and customized to measure migration angles | |
| FileMaker Pro Advanced, 8.0 | FileMaker | ||
| Microsoft Excel 2008 for Mac | Microsoft | ||
References
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