Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

步骤人类隐静脉 Published: October 1, 2014 doi: 10.3791/52079
* These authors contributed equally

Summary

导致内膜增生(IH)和静脉移植物衰竭的发展机制仍然知之甚少。这项研究描述了一种体外系统灌注在控制流量和压力的人脉。另外外部钢筋网的效率限制IH的发展进行了评价。

Abstract

现代疗法的广泛闭塞性动脉疾病的主要方法是静脉旁路移植术。然而,它的耐久性受到威胁内膜增生(1H),最终导致血管闭塞和移植失败。的机械力,特别是在低剪切应力和高壁张力,被认为是发起和维持这些细胞和分子变化,但其确切的贡献仍有待解开。以选择性地评估的压力和剪切应力IH的生物学上的作用, 离体灌注系统(EVPS)已创建灌注下动脉方案的大隐静脉(高剪切应力和高压力)的片段。进一步的技术创新,使两部分的同时灌注同出一脉,一个是外部的网状钢筋。脉中使用非接触式技术收获并立即在EVPS转移到实验室进行组装。新鲜ISOL的一个片段ATED静脉未灌注(对照组,第0天)。另外两个节段灌注长达7天,一个是完全为4毫米(直径)外部网的庇护。压力,流速,和脉冲速率连续地监测并调节以模仿血液动力学条件盛行的股动脉。在灌注完成后,静脉被拆卸,并用于组织学和分子分析。下离体条件下,高压灌注(动脉,平均= 100毫米汞柱)足以产生IH和人类静脉的重塑。这些改变都减小外部聚酯丝网的存在。

Introduction

心血管疾病是发病率和死亡率在西方国家1的主要原因。尽管血管内治疗取得了进步,搭桥手术仍然是现代治疗的主体,从而五十多万元静脉移植在美国每年进行的。然而,尽管几十年的研究,下肢静脉移植30-60%范围内的最初几年,由于内膜增生(1H)2失败。机械力,特别是低切应力(SS)和高壁张力,关键是在这个增生反应3,4的启动和发展。为了解决这个问题,一个离体血管灌注系统(EVPS)中产生的学习,严格控制的血流动力学条件(压力和剪切应力),人隐静脉的行为下。在这项研究中,下列插入到动脉样循环,高压(平均= 100毫米汞柱)足以刺激prolif关合作和平滑肌细胞进入血管内膜层(1H)迁移。

哺乳动物的研究表明使用外部加固作为一种有效的方法来支持“静脉动脉化”,并抵消急性血液动力学改变静脉面临一次植入动脉周围环境。网状防止过 ​​度膨胀,增大的剪切应力,并降低了壁张力,因而IH 6-10。然而,潜在的机制和其适用于人类静脉改善旁路通畅性没有得到充分的表征。我们EVPS用于比较,在条件模拟的静脉面临一次插入动脉方案的改变(高剪切应力和压力),在外部大孔聚酯管状网的不存在和存在的大隐静脉的行为。防止病理性重构和IH,网格提供了其潜在的临床有效率11证据

这项研究1)引入体外控制下的压力和剪切应力2)人类隐静脉灌注模型显示,外部大孔涤纶网眼降低IH和提供了其潜在的临床应用至关重要的信息。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

洛桑大学的伦理委员会批准了试验,这是按照1975年赫尔辛基宣言提出的原则,修订于1983年为使用人体组织。

1,人类大隐静脉丰收

  1. 从发生下肢搭桥手术缺血患者获得非曲张的大隐静脉的盈余部分。在手术室,消毒与碘溶液的整个腿和悬垂性,患者从腹股沟到脚露出的腿。
  2. 请从腹股沟到膝盖正中切口(在离开中断的皮肤部分)。
  3. 收获大隐静脉与周围组织(非接触式技术)的蒂。用4-0丝束静脉安全侧枝。在4℃下立即存储最小为9厘米的大隐静脉的长剩余段,具有2.5-4毫米的外径在RPMI-1640ģlutamax介质,辅以12.5%胎牛血清,并把它带到实验室。

2,每股内含价值的设计

  1. 装配在图1所示的通用设备。高压灭菌的所有设备,并保持所有组件在无菌条件下。此外,确保系统具有防水和不漏化学品到培养基中。为封面用聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA-GS)。钢(X5铬镍18 10)和聚甲醛塑料(聚甲醛)作为静脉的支持。
  2. 设计灌注腔至所需的几何形状,以使放置在静脉和其连接的。确保深度(或半径如果使用圆柱形结构)是至少2.5厘米所以它允许随着恒定覆盖的培养基( 图1)最小屈曲容器和扩张。密封是一个主要问题,是长方形的PMMA-GS建设使用的原因。
  3. 设计静脉支持所需的geometr年。避免静脉扭结或以上腹胀,允许长度调节通过推动或拉动(螺钉不能用于这一目的,因为静脉将与螺钉扭沿)。
    注:完全钢杆被2连接滑动的L形件支持2静脉缸(直径5毫米,以适应容器)和静脉( 图1B图2)被用在这里。
  4. 设计压力柱,使得施加到该系统的“静息压力”是:P = 0-10 = HXρXG,其p =压力(N / m 2时,Pa)的流体柱(米)为h =高度ρ =液体(千克/米3)和g =重力常数(9.81米/秒2)的密度。设计四个连接管,从顶部到底部:以施加压力,对所述流出(从静脉),所述流入(到静脉),并允许更换培养基。
  5. 准备中。根据以往的研究5,11-14,选择的RPMI-1640,辅以Glutamax的,12.5%胎牛血清和1%抗生素 - 抗真菌剂溶液(10,000 U / ml的青霉素G,加上10毫克/毫升硫酸链霉素,外加25毫克/毫升两性霉素B,加0.5微克/毫升:庆大霉素)。剪切应力(SS)由SS = 4μQ/π* R 3 Q给定的流速(毫升/秒),R的静脉段的半径(厘米),并且μ是灌注介质的粘度。
    1. 调制的SS通过另外的70 kDa的葡聚糖调节粘度。测量用粘度计的粘度。这里,加8%70kDa的葡聚糖设置SS到9-15达因/厘米2。
  6. 设置齿轮泵诱导的60个脉冲/分钟,恒定幅度产生的150±15毫升/分钟的单向流动,独立于由计算机系统中的应用和控制的压力脉动心形信号。确保该驱动软件集成恒定采集与监控压力,流速,脉搏速率,和信号。如果需要,使用第二个泵(非同步hronized),以产生一个非层流,湍流。

3 EVPS组件(图1)

  1. 在开始之前,请确保所有的设备是无菌的。执行层流罩下无菌以下所有步骤。
  2. 将静脉在培养皿中充满介质。使用手术刀片,分化静脉分成3等份。
  3. 立即冲洗的PBS一段。划分段三部分,在福尔马林固定一个用于形态。冻结的其它两个用于定量转录物(RT-PCR)和蛋白质(免疫印迹)分析。考虑这些片段作为对照,非静脉灌注。
  4. 用剩下的2段灌注。
    1. 轻轻地注入介质插入静脉并确定正常流动方向;在阀门存在的静脉是相反的。
    2. 密封脉是最重要的实验取得成功。检查通过络脉泄漏。争取用6-0丝线缝合任何泄漏。
    3. </ OL>
    4. 连接这两个金属圆柱体之间的静脉段,一端在一个时间(2.3, 图1)。确保与Ethibon 3-0气缸周围的凹部( 图1A和B)。
      1. 将整个静脉段进入灌注腔预先填充有介质。重复同样的步骤进行的第二部分。
        注意:不正确密封静脉缸将泄漏的来源,需要再次介入,并显著增加感染和实验失败的风险。
    5. 加强(目)的第二段,松开两个汽缸(装有静脉)从L形件(2.3和图1)。
      1. 要轻柔,不要触碰静脉使用任何手段。第一张幻灯片网格上的圆筒,然后到静脉。推/拉推撞就会在静脉网。
      2. 一旦网格覆盖静脉的整个表面上固定的第jacketed静脉与Ethibon 3-0缸。
      3. 重新组装静脉/气缸化合物为L形支撑,并将其转移到灌注腔,预先填充有介质。
    6. 使用过氧化处理的硅橡胶管具有3.2毫米的内径(在和流出),每个金属筒连接到一个Y型分离器。
    7. 连接的流出分离器使用相同类型管道的第二Y型分离器。从这个Y型分线器,​​使用一管来测量通过两艘船的灌注压。连接的另一个回柱,以形成一个封闭的回路系统( 图2)。
    8. 内的培养箱中,使用长(一米长)管与低压塔连接到泵头部。
    9. 完成建立连接的泵头部,以在流入Y型分光器与另一个长长度管( 图1)。

    4,静脉灌注

    1. 之后的每股内含价值组件已经合作mpleted,填充介质柱(保持低于静脉流出道,让加气站)。添加更多的介质进入塔之前,系统已满。将所有系统进入维持在37±0.1℃,pH值为孵化器保持恒定在7.40±0.01(使用基于恒基哈塞尔巴赫方程的CO 2 / pH值算法)。
    2. 使齿轮泵头部培养箱外,并将其连接到齿轮泵的驱动。螺丝杆,以确保大会。
    3. 交换机上的泵浦功率,确保其在驱动软件激活,允许5分钟的灭火剂能均匀地分布在每一个车厢。
    4. 要监视的压力,用动脉在线监测。连接EVPS压力输出(它对应于动脉导管),以连接到计算机中的压力换能器。
      1. 确保将管完全充满介质,并且不包含任何气泡。脱泡的培养体系,通过“动脉里NE“管( 图2)。注意显示器,寻找60个脉冲/恒定振幅的分的心搏动信号。在这点上,平均压力为0-10毫米汞柱之间。如果压力<0且列逐渐清空寻找(静脉和管之间的静脉侧支或密封不足)的泄漏。
    5. 设置最小压力至6毫米汞柱的静脉试验或在90毫米汞柱为动脉的测试。在这些条件下,空气喷射器施加所需压力的柱和系统。
    6. 通过使用连接到高压塔的管更换培养基,每2天。为了防止压力变化造成的破坏,先打开柱插头。

    5,完成灌注的

    1. 灌注后3天或7天:乘坐每股内含价值从孵化器和下马的静脉。丢弃5毫米近端和远端静脉端连接于设备。切中央5毫米厚的RIN从剩余的部分GS和福尔马林(形态)修复。冻结剩余的碎片和降低成粉末作进一步的分子分析。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

的每股内含价值提供了一个有价值的工具,以独立评估血流动力学的力量对人类隐静脉移植重建和IH。

图1示出了灌注腔和静脉支撑。在图1AB,前静脉载体( 图1A)和之后( 图1B)组件,分别被描绘。它是由(从顶部至底部)的1平纹不锈钢管尺寸为9厘米,这可作为2为L形件,可以容易地滑动(从左至右)的载体,并提供了可靠的技术,以调节支承尺寸的静脉。每个这些片段的持有POM盘,以适应钢筒(静脉连接器)固定在适当位置以集成螺钉(箭头)。 图1C-D示出了单独使用(C)和插入静脉载体(D)的后灌注腔。在灌注腔,凹部被设计成保持在适当位置(顶部)的静脉的支持,并避免在连接管的扭结进出从静脉(底部)。

图2示出的实时图像( 图2A)和EVPS的示意图( 图2B)。灌注腔,静脉和它的支撑,以及在高压塔,被保持在受控的环境(温度,CO 2O 2),而泵,压力喷射器,和控制装置全部留在培养箱外。该图中示出了齿轮泵(1),其生成由计算机(2),其监视流速(3),压力控制的脉冲信号(4),并且控制最小舒张压(5);相同的隐静脉的两段并联连接到内部分离灌注腔室的灌注泵(6a和6b)放置在细胞培养孵育箱。

图3中,组织形态学分析表明,外部强化防止内膜增生和病理媒体改造后的高压下7天(动脉方案,平均为100毫米汞柱),否则灌注观察。在图3A中 ,染色的苏木精-曙红代表性组织切片(HE)揭示了内腔的内皮细胞的细胞核和平滑肌细胞的细胞核中的各种情况下,介质层衬里。 图3B-C示出了代表性的范Gieson染色弹力膜( VGEL)染色切片。在图3B中 ,内膜增厚(IH)在静脉灌注在高压(平均= 100毫米汞柱),连续7天进行比较,以控制非灌注静脉,这种现象在很大程度上降低在外部网孔的存在。 图3C示出病理向外重塑和媒体变薄的血管受到7天动脉压。这在很大程度上防止了由外部加固。 FurthermorE,在图3D中,Masson三色染色(蓝色=结缔组织,红色=肌肉)关联这个病理重塑仅为三个肌肉层和平滑肌细胞的积累,内层(内膜)中的一个持久性。外部加固保留校董会和媒体结构的分布。

图4示出的外部网孔的当前临床应用。一个说明性的例子是由动脉瘤动静脉瘘(血液透析通路)的外部加强件提供。 图4A示出了静脉加强件的时间进程表示(从顶部至底部)。首先,网格周围放置一个刚性管,而静脉的末端被固定到心轴(上图)。然后,静脉穿过管由于芯棒被拉扯。一旦静脉已经到位,将管缓慢缩回,留下周围的静脉网状(UPPER和中图)。在这种特定情况下,该步骤被重复的静脉的两侧,并在静脉段和网状增强件是由一个端-端吻合术(下面板)组装而成。 图4B中提供的动静脉端的放大视图 - 至侧吻合,这表明网状缠绕在吻合沿动脉后壁捆扎它。

图1
图1中的静脉支撑和灌注腔。 A.静脉支撑是由1滑动管,2为L形件,光盘和气缸(形成顶部至底部)B.静脉支撑一旦组装。C.视图灌注腔。D.灌注室被设计到位,以保持静脉支撑,并允许其连接离子的静脉和连接管。

图2
图2中的离体灌注系统。答完全组装EVPS在细胞培养箱中。B.示意图。 1)泵产生搏动心波; 2)在计算机控制的压力,流量(类型,速度和幅度); 3)流量计; 4)中的压力换能器 - 动脉管路; 5)高压注射器; 6)一个非常相同的大隐静脉的两段无灌注(6A)或与外部钢筋网(6B)。

图3
图3:外部加固防止内膜增生。 á代表性的组织切片用苏木精-伊红(HE)。律师表示染色弹力(VGEL)50微米。 公元前代表组织切片。 L =流明M =媒体,1H =内膜增生。律师表示沾上Masson染色50微米。D.代表组织切片。律师代表50微米。

图4
图中的动脉瘤瘘4外部加固。 A.时间过程的照片静脉增强剂(从上到下)。动脉-静脉端-侧吻合术B.大视图。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

这项研究揭示了体外静脉灌注系统(每股内含价值)在人类静脉进行大量的血流动力学研究。这个系统允许根据在没有通过体内循环细胞所释放的加重炎症和生长因子定义的血流动力学参数隐静脉灌注。因此,它提供了更好的理解涉及IH在人静脉移植物5,11,12,15的控制的基本途径。

可重复和可定量的血液动力学扰动体内限定几个复杂的鼠显微手术操作进行了描述。通过采用来自供体小鼠腔静脉的介入旁路同系移植模式进入右颈总动脉和流出分支结扎的额外创造,中移植或颈总动脉狭窄,水流和SS剧烈下降,增强了IH 3。外向与内向重塑还可以是跨rogated使用中焦与远端的颈总动脉狭窄16。在大型动物(羊,猪,和狒狒),旁路移植物在技术上更简单,并代表一个有吸引力的方式来测试的临床前人体尺寸的装置,如在本研究8-10中使用的网格。然而,它的成本和有效的分子工具的缺乏限制了使用这些策略。最后,这些流程操作不断改变壁紧张,未能询问单一成分。此外,血流动力学和免疫系统和内分泌系统进一步之间的错综复杂的关系,限制单个演员的分析。

一些问题的出现与使用的每股内含价值的。 1)低度细菌污染往往伴随着人类静脉收获和离体情况下的循环细胞支架感染的一个重要原因。这主要是防止由手工洗涤的碎片分开,然后高压灭菌所有材料之前使用。此外该组件在少于90分钟,并在严格无菌进行。 2)密封的承受反复消毒。出于这个原因,一个长方形的PMMA-GS结构被使用时,避免了使用接头和限制形变。 3)SS和壁张力计算在定义的时间点,根据该血管腔半径(组织学),流程和粘度为常数。纵向成像(高清晰度摄像头,激光或多普勒),可持续监控静脉内径和/或流量将提供本地流量变化的详细信息,并允许循环应变计算的融合。 4)两个平行脉段可以具有在其壁顺应性和半径不受控制的差异。因此,我们只从同一静脉比较片段,并假定在相同的压力下,将流量特性是在这两个区段相似。

在这项研究中,静脉被提交到脉动层流;然而,50%氧˚F内膜增生性病变发生在静脉移植物,在层流被破坏的端 - 端吻合口周围的区域。湍流条件也可以与另外的第二泵来建模的,非同步的第一泵。将来的研究将被执行以具体评估IH层流中断和钢筋网的潜在有益效果的影响。有趣的是,该网状物的柔性结构允许周向缠绕在吻合部位,如已经进行的修复动脉瘤瘘17( 图4)。因此,网格可以证明是有用的,以限制吻合口周围扩张,层流中断,从而降低IH在吻合部位。这可能是特别有益的远侧旁路移植,经常受静脉和胫骨或腓骨动脉之间直径的不匹配。

总之,此处所示的设置允许人类诉平行灌注一型,在相同的血流动力学条件。这些数据表明,使用外部的大孔的管状聚酯网状物是一种有效的方法,以限制IH的发展中静脉插入动脉环境11移植。该系统可实现利润研究若干领域。特别是,它的出现是一个强大的工具来执行测试的可行性和各种方法的效率,减少IH在人力物力临床前研究,是一个有价值的补充体内动物模型。其他假体支架或网格涂有药剂将使用此方法6-10进行评价。此外,人们可以设想以测试局部施加的药理学的分子,以防止IH在人体组织中,接近生理状态下。基因疗法的干预也是可以实现的,转导静脉段过度或感兴趣的沉默靶基因。

总之,我们的系统会增加我们的未derstanding对人类移植静脉疾病的血流动力学的贡献。它提供了一个创新的平台,以测试新的治疗策略和可能出现的“板凳旁边的翻译工具。”

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者什么都没有透露。

Acknowledgments

这项工作是从SNF [31003A-138528],该Octav和马塞拉Botnar基金会,诺华基金会和艾玛Muschamp基金会的资助。我们感谢马丁Lambelet,和让 - 克里斯托夫施特勒的出色技术援助。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
RPMI 1640 - Glutamax Life Technologies 61870-010
Penicilline/Streptomycine/Fungizone Bioconcept 4-02F00-H
Dextran from Leuconostoc spp. 500 g Sigma-Aldrich 31390
Tampon PBS CHUV pH 7.1-7.3 1 L Laboratorium und Grosse Apotheke Dr. G. Bichsel AG 100 0 324 00
Cryosectionning embedding medium - Tissue-Tek OCT Compound Fisher Scientific 14-373-65
Silicon Tubing (Peroxide) L/S 16 (96400-16 ) - 7.5 m Idex Health & Science GMBH MF0037ST
Y-splitter  Idex Health & Science GMBH Y-connector
35 mm Culture dish Sigma-Aldrich CLS430165-100EA
15 ml Falcon tube BD Bioscence 352096
50 ml Falcon tube BD Bioscence 352098
Gearing pump - Reglo-Z Idex Health & Science GMBH SM 895   App-Nr 03736-00194
Pump Head Idex Health & Science GMBH MI0008 
Monitoring Kit TRANSPAC IV icumedical 011-0J736-01
20 ml Syringes B. Braun Medical SA 4612041-02
Etibon 3-0 FS-2 Ethicon- Johnson&Johnson EH7346H
Mesh ProVena 6-8mm B. Braun Medical SA 1105012-14
NaCl: Sodium chloride solution perfusion 0.9% (100 ml) B. Braun Medical SA 534534
Masterflex L/S Standard Drive Cole-Parmer Instrument Co 7521-10
Acquisition card National Instruments PCI-6024 E
Flowmeter module Transonic Systems Inc. TS410 and T402
Stopcock with 3-ways BD Connexta Luerlock 394600
Millex Filter Milian SE2M229I04

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sal Go, A., et al. Executive summary: heart disease and stroke statistics--2014 update: a report from the american heart association. Circulation. 129, 399-410 (2014).
  2. Sal Conte, M., et al. Results of PREVENT III: a multicenter, randomized trial of edifoligide for the prevention of vein graft failure in lower extremity bypass surgery. Journal of Vascular Surgery. 43, 742-751 (2006).
  3. Yu, P., Nguyen, B. T., Tao, M., Bai, Y., Ozaki, C. K. Mouse vein graft hemodynamic manipulations to enhance experimental utility. The American Journal of Pathology. 178, 2910-2919 (2011).
  4. Davies, M. G., Hagen, P. O. Reprinted article "Pathophysiology of vein graft failure: a review". European journal of vascular and endovascular surgery : the official journal of the European Society for Vascular Surgery. 42, Suppl 1. S19-S29 (2011).
  5. Berard, X., et al. Role of hemodynamic forces in the ex vivo arterialization of human saphenous veins. Journal of Vascular Surgery. 57, 1371-1382 (2013).
  6. Vijayan, V., et al. Long-term reduction of medial and intimal thickening in porcine saphenous vein grafts with a polyglactin biodegradable external sheath. Journal of Vascular Surgery. 40, 1011-1019 (2004).
  7. Jeremy, J. Y., et al. On the biology of saphenous vein grafts fitted with external synthetic sheaths and stents. Biomaterials. 28, 895-908 (2007).
  8. Zilla, P., et al. Constrictive external nitinol meshes inhibit vein graft intimal hyperplasia in nonhuman primates. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 136, 717-725 (2008).
  9. Zilla, P., et al. Utilization of shape memory in external vein-graft meshes allows extreme diameter constriction for suppressing intimal hyperplasia: a non-human primate study. Journal of Vascular Surgery. 49, 1532-1542 (2009).
  10. Yeoman, M. S., et al. A constitutive model for the warp-weft coupled non-linear behavior of knitted biomedical textiles. Biomaterials. 31, 8484-8493 (2010).
  11. Longchamp, A., et al. The use of external mesh reinforcement to reduce intimal hyperplasia and preserve the structure of human saphenous veins. Biomaterials. 35, 2588-2599 (2014).
  12. Saucy, F., et al. Ex vivo pulsatile perfusion of human saphenous veins induces intimal hyperplasia and increased levels of the plasminogen activator inhibitor 1. European Surgical Research. Europaische Chirurgische Forschung. Recherches Chirurgicales Europeennes. 45, 50-59 (2010).
  13. Dubuis, C., et al. Atorvastatin-loaded hydrogel affects the smooth muscle cells of human veins. The Journal of pharmacology and experimental. 347, 574-581 (2013).
  14. Deglise, S., et al. Increased connexin43 expression in human saphenous veins in culture is associated with intimal hyperplasia. Journal of Vascular Surgery. 41, 1043-1052 (2005).
  15. Muto, A., Model, L., Ziegler, K., Eghbalieh, S. D., Dardik, A. Mechanisms of vein graft adaptation to the arterial circulation: insights into the neointimal algorithm and management strategies. Circulation Journal : Official Journal of the Japanese Circulation Society. 74, 1501-1512 (2010).
  16. Tao, M., et al. A simplified murine intimal hyperplasia model founded on a focal carotid stenosis. The American Journal of Pathology. 182, 277-287 (2013).
  17. Berard, X., et al. Salvage treatment for venous aneurysm complicating vascular access arteriovenous fistula: use of an exoprosthesis to reinforce the vein after aneurysmorrhaphy. European Journal of Vascular and Endovascular Surgery : the Official Journal of the European Society for Vascular Surgery. 40, 100-106 (2010).

Tags

医药,第92期,静脉,人,内膜增生,内膜,灌注,目,压力,
步骤人类隐静脉<em&gt;前体内</em&gt;灌注和外部强化
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Longchamp, A., Allagnat, F., Berard, More

Longchamp, A., Allagnat, F., Berard, X., Alonso, F., Haefliger, J. A., Deglise, S., Corpataux, J. M. Procedure for Human Saphenous Veins Ex Vivo Perfusion and External Reinforcement. J. Vis. Exp. (92), e52079, doi:10.3791/52079 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter