Protocol
注：所描述的实验方案，在中西部的大学在此进行批准了中西部大学IACUC。
1.房间要求
- 安全过程的房间已运行冷热水，一种从水箱中取出的水，通常是漏在地板上。
- 使用在其上放置潜水坦克的研究表。由于配备了地漏一般轮廓供排水，减少橡胶塞，并把它们放在桌子腿，保证了桌面，并在坦克，因此水面，处于水平状态。
2.潜水坦克
- 跳水池的施工
- 构造中厚有机玻璃在有机玻璃的底部和1/2的侧壁（ 图1）用3/4的矩形槽（100×60×15厘米）。永久在一起使用氰基丙烯酸酯水泥或瑟尔连接外部的有机玻璃片罐TS，如三氯甲烷。
- 通过使用可移动的1/2英寸厚的有机玻璃切成85×15厘米的块分割槽成5个信道的每个约100厘米的长度，。永久地放置在底部的槽和罐进入这些通道分频器能插位置的边缘。
- 暂停从通道分频器水平的有机玻璃片，以创建一个“屋顶”的水下潜水“的隧道。
- 在坦克的地方一个可移动的平台提出，“完成区”，老鼠拖拉出水面，游泳和跳水选拔赛之间休息的一个角落。老鼠通常新郎自己，并从它们的皮毛，而在终点区除去水分。放置高大两侧围绕终点区，以保证鼠保持训练试验之间的平台上的边缘。
- 在从完成区域罐的相对的角放置的腔室只允许水下进入迷宫。这种可移动的“启动REA“仅用于潜水试验。
注：在潜水试验大鼠降入水中，而坐在起动室内的平台上的开头;因此，该平台被称为“电梯”。
注：使用模块化设计，其中起步区，终点区，和所有通道分频器是从水箱可拆卸。 1）以促进填充和排空水的水箱除去所有信道进行分割后，和2）如果一个鼠被迷失方向，特别是在水中，所述块可快速拆卸营救从大鼠：这是由于两个原因做水。
- 填充和排空水的水箱
- 灌装水的水箱
- 在每次训练的开始，注入新鲜的32℃的自来水中的罐，以约12cm的深度。搅拌该水箱中的水，以减少温暖或凉爽的口袋。
注：通常情况下，大约需要2个小时训练12只。在这期间水的温度约4℃的降低。通过培训课程结束时，水冷却至约28℃。由于30℃的水是热中性大鼠，采用这种温水，而不是常温清水，将最大限度地减少重复训练的热量损失。
- 在每次训练的开始，注入新鲜的32℃的自来水中的罐，以约12cm的深度。搅拌该水箱中的水，以减少温暖或凉爽的口袋。
- 排空水的水箱
- 在每个训练段结束时，从水箱采用大软管，如4米长的一块1英寸内径管排出水。完全浸没在油箱管路，确保没有气泡在管。快速地将管插入地漏的一端。将所得的虹吸效应将沥干水从水箱。
- 在保持管的罐端的水面之下，以保持虹吸，刀尖边缘的槽以促进水的完全排水。
注意：可替换地，而非虹吸，安装槽的底部附近的一个抽头，并连接从水箱软管挖掘的地漏。
- 灌装水的水箱
3.鼠过敏原的注意事项
- 戴一次性手套操作和训练的老鼠时。的手套将限制与水箱中的水，这必然将包含鼠尿接触。
注：在培训期间的老鼠会变得潮湿，房间就会充满了“湿鼠”的气味。因此抗组胺剂预防性方案可以防止或限制老鼠过敏的影响。培训师还需要戴一次性防尘口罩或N95口罩，他们应该对大鼠过敏原敏感。
4.游泳训练
- 每天游泳训练
注：个人的经验表明，年轻大鼠学习迷宫更好，更快，从而开始了训练，35克刚断奶的老鼠最好用成年鼠。- 补水箱加水。参见2.2.1。
- 插入完成区域和通道分频器创建5个游泳池的通道。
- 在第一堂训练课轻轻地放下老鼠手入水约3-5厘米的终点区。
注：在他们的介绍，水老鼠就会出现不稳定，因为他们第一次遇到漂浮的感觉。老鼠会划约以不协调的方式，同时试图找到一种方式来退出水，最终到达终点附近的区域。由于游泳他们与生俱来的能力，在以后的试验中老鼠会朝着终点区域更加协调地游泳。
注：从下面支持的老鼠让他们的脚都在调查人员手中。轻轻地降低大鼠入水，并让他们从手游开，而不是丢弃它们放入水中。 - 试验间让大鼠保持在终点区为至少1分钟。这是为了让鼠新郎和探索，使他们把终点区为“安全”的地方试验间去了。这是相对于抓住刚刚完成了试验的老鼠，并立即定位其放回水中，开始下试。
注意：在训练过程中不要使用外部奖励（ 即食物），从而防止激活奖赏回路在大脑中。 - 在终点区等待一段时间后，开始下一次开庭前轻轻按住老鼠，持续1分钟。轻轻擦干大鼠用毛巾，因为这种重复入水预审期间举行会导致老鼠变得非常潮湿，干燥它们将防止体温过低。
- 重复4.1.3。通过4.1.5。完成3〜5次试验为每天游泳训练期间训练的每只大鼠。
- 删除所有通道分频器和从油箱终点区。
- 从水箱将水倒出。参见2.2.2。
- 每周游泳训练日程
- 进行日常的培训课程（见4.1），每周5天，最好在同一时间的每一天。
- 从开始谈判成功前一天的距离一审判决。从增加的距离开始第二和第三测试。
- 与每个随后的日常训练增加，其中将大鼠置于水中和终点区之间的距离。对于最初的几个培训班由5-10厘米增加这个距离。之后，老鼠看起来更舒服游泳，30-50厘米加大距离。
- 用在游泳的距离较大升幅，而大鼠学习游泳游泳道的直线部分。相比之下，学游泳的发夹通道之间变成可能需要2-3个培训班。
注：通常情况下，当等待在终点区，老鼠会重新进入水中游泳，和/或淹没他们的头在水下，同时仍坐在终点区的平台上。 - 重复此日常训练方案3周以上，以保证整个5频道的成功游泳。这种重复的训练方案，确保圆满完成迷宫的，特别是因为迷宫包括交替向左和向右急转弯。
5.潜水培训
注：在老鼠学会了谈判，成功地通过迷宫游泳，他们已经准备好开始跳水训练。
- 最初的潜水培训（第一天）
- 将启动室。装满水的水箱（见2.2.1）。确保水位为1cm的开口到起始区域的下方。
- 将完成区域和通道分频器创建5个游泳池的通道。
- 在第一个潜水会话训练大鼠要在电梯入水开始腔内降低。进入迷宫是从一开始就腔室的底部。在此第一次会议中的水位低到足以使大鼠可以很容易地从一开始就室进入迷宫游泳。让老鼠在迷宫中穿行，以继续游泳在终点区。
- 试验间让大鼠保持在终点区为至少1分钟。
注意：在训练过程中不要使用外部奖励（ 即食物），从而防止激活奖赏回路在大脑中。 - 在终点区等待一段时间后，开始下一次开庭前轻轻按住老鼠，持续1分钟。这预审过程中保持轻柔地擦干大鼠用毛巾。
- 重复5.1.3。通过5.1.5。完成3项试验的初始潜水训练期间训练的每只大鼠。
- 删除所有通道分频器，开始腔和从油箱终点区。
- 从水箱将水倒出。参见2.2.2。
- 最初的潜水培训（第二天）
- 将启动室。装满水的水箱（见2.2.1）。确保水位稍高于开口的开始区域。
- 将完成区域和通道分频器创建5个游泳池的通道。
- 在第二潜水训练会话中的水位已经升高，使得退出起动室中的老鼠具有起动室进入迷宫的边缘下沾其头部。认为这是老鼠的第一次潜水。让老鼠然后通过迷宫的终点区继续游泳。
- 让大鼠保持在终点区为试验之间的至少1分钟。
注意：在训练过程中不要使用外部奖励（ 即食物），从而防止激活奖赏回路在大脑中。 - 在终点区等待一段时间后，开始下一次开庭前轻轻按住老鼠，持续1分钟。这预审过程中保持轻柔地擦干大鼠用毛巾。
- 重复5.2.3。通过5.2.5。完成3项试验为这个潜水训练期间训练的每只大鼠。
- 删除所有通道分频器，开始腔和从油箱终点区。
- 从水箱将水倒出。参见2.2.2。
- 最初的潜水训练（T赫德日）
- 将启动室。充满水（见2.2.1。）罐，确保水位开口到起始区的上方。
- 将完成区域和通道分频器创建5个游泳池的通道。将水平件有机玻璃立刻起步区创建5厘米长的潜水隧道外。
- 在第三次下潜训练的老鼠有沾它的头开始腔的下缘和游泳5厘米水下到达游泳通道的开放水域。让老鼠然后通过迷宫的终点区继续游泳。
注意：一旦放置在启动区，大鼠发起自己的水下浸没，因此这些被认为是“自愿”潜水。 - 让大鼠保持在终点区为试验之间的至少1分钟。
注意：在训练过程中不要使用外部奖励（ 即食物），从而防止激活奖赏回路在大脑中。 - 在终点区等待一段时间后，开始下一次开庭前轻轻按住老鼠，持续1分钟。这预审过程中保持轻柔地擦干大鼠用毛巾。
- 重复5.3.3。通过5.3.5。完成3〜5个试验这个潜水训练期间训练的每只大鼠。
- 删除所有通道分频器，开始腔和从油箱终点区。
- 从水箱将水倒出。参见2.2.2。
- 每周潜水训练计划
- 进行日常的培训课程（见5.3）每周5天，最好在每天同一时间。
- 从开始谈判成功前一天的距离一审判决。开始具有增加潜水距离在第二和第三测试。
- 随着每个后续的日常训练提高潜水隧道的长度增加额外的横向分隔线，延长距离的老鼠要在水下游泳。对于最初的几个培训课程增加THI设计的远程5〜10厘米。之后，老鼠看起来更舒服跳水，30-50厘米加大距离。
注意：不要透支潜水距离在连续试验尝试。如果有必要，抬起水平通道罩的末端，以提供更短的潜水距离。如果潜水试验过程中的老鼠没有达到下潜隧道的尽头，开始掉头水下，急忙扶起声道盖的末端，使老鼠浮出水面，并继续他的游泳。这将使老鼠成功地完成一个较长的潜水距离。这种积极的强化将让老鼠向前移动的海底隧道每下潜试验。 - 使用潜水距离较大升幅，而大鼠学习潜水游泳道的直线部分。与此相反，学习潜水周围的发夹通道之间变成可能需要2-3个培训班。
注：通常情况下，当等待在终点区，老鼠会重新进入次辰水游泳，和/或淹没他们的头在水下，同时仍坐在终点区的平台上。 - 重复此日常训练方案3周以上，以保证整个5频道的成功潜水。这种重复的训练方案，确保圆满完成迷宫的，特别是因为迷宫包括交替向左和向右急转弯。
注：全6周游泳和潜水训练计划与35克刚断奶的大鼠生长相吻合，达到体重为300g。 - 经过每天的训练课程完成后，和老鼠已经回到了自己的家笼，保证只通过梳理迅速干透它们的皮毛，或者如果有必要，将加热垫笼子下保持温暖的老鼠，直到它们的皮毛干燥。
6.实验变奏曲
注：基本实验装置和动物训练上面已经描述了。然而，行为训练只有PRovides能与其他实验技术用于收集感兴趣的数据模型。基本协议被修改，以调查潜水响应的特定方面。这些修饰的实例，以及一些考虑使用这些生理和神经解剖学的技术数据的收集，在下面给出。
- 植入式遥测发射机
- 培训结束后，用市售的遥测发射器传送搏动性动脉血压从游泳和跳水的影响。获得本地IACUC批准关于手术和手术后的恢复过程。按照该公司为其发射器建议植入程序，并确保在返回大鼠入水之前，从手术完全恢复。
- 确保天线接收到的无线电信号是在附近时，鼠是在水中。
注：水衰减无线电信号，所以距离的无线信号NE编行进通过水变得罐尺寸的限制因素。 - 使用一个手持式天线棒，而不是鼠笼尺寸天线，遵循鼠因为它的进展通过迷宫。保持30厘米以内的大鼠的棒天线，以确保无线信号不会丢失，而大鼠是在水下。
- 尾随插管
- 重新设计的通道分频器和横向件创造了跳水隧道的屋顶，使套管沿着小径穿过迷宫其进展过程中的老鼠的后面。
注：该通道的模块化设计是最重要的，也是必须允许快速从水下迷宫恢复大鼠。如果插管碰壁，并成为从大鼠脱落，老鼠很快就会渗出，而在水下，如果插管不能迅速重新连接。 - 使用后动脉插管在自愿的潜水记录大鼠动脉血压和心脏率。用90厘米长PE50为尾随插管。
注：该套管长度足够长，以大鼠连接到压力换能器，同时仍允许大鼠通过迷宫进步，但足够短以尽量减少插管死空间和足够接近的压力换能器，以允许足够的保真度动脉压力信号。 - 使用尾部静脉（或动脉）插管注入药剂，如副交感神经和交感神经激动剂和拮抗剂，或注入确定心输出量的分布的示踪剂或染料。
- 抽血样本使用静脉（或动脉）插管老鼠，而老鼠是在水下以确定水下儿茶酚胺水平或血液化学。
注：最小化所述后套管的长度和占所述套管的死空间中抽血。
- 重新设计的通道分频器和横向件创造了跳水隧道的屋顶，使套管沿着小径穿过迷宫其进展过程中的老鼠的后面。
- 检测激活脑干神经元
- 使用免疫学检测Fos蛋白来identi脑干风云特定区域，它们是潜水响应的一部分。
注：在心肺反射的重复启动，脑干神经元是反射电路可以被激活，并产生一种叫Fos蛋白的一部分。 - 通过迷宫重复潜水大鼠每隔5分钟2小时，共24次下潜。
注：也诱导神经元的Fos生产其它协议也可以使用。为了避免激活参与应激反应脑干神经元的，重复的行为应该被包括在行为训练的一部分。
- 使用免疫学检测Fos蛋白来identi脑干风云特定区域，它们是潜水响应的一部分。
- 潜水过程中血皮质酮水平
- 使用皮质酮作为应激大鼠的经验水平的游泳和潜水时的一个指标。
- 要获得血皮质酮分析，得出0.1毫升血液样本从大鼠尾静脉15分钟后，3自愿游泳或潜水。
注：初步实验表明，15分钟是苏fficient时间，以允许用于生产和皮质酮的释放进入循环，并导致血浆皮质酮水平的峰值。由于皮质酮水平有昼夜节律，安排所有抽血在每天的同一时间和对应的培训课程的时间安排。
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Representative Results
圆满完成了所描述的游泳和潜水训练过程可以减少老鼠经历时，在水中潜水的压力。血液中皮质酮水平表明，重复的日常训练降低自愿跳水有关的心理压力，训练大鼠找到潜水不超过每天由一个人（ 图2; 17）正在处理压力。相反，只在跳水协议没有经过培训找到自愿跳水压力（ 图2; 17）。此外，无论是训练，训练组找到被迫跳水是最紧张（ 图2; 17）。
和尾套管（ 图4; 21-23）;游泳，跳水自愿和强迫潜水大鼠的心血管反应使用植入遥测设备（8,17-20 图3）已经被记录下来。紧随志愿浸没，并在一个单一的节拍，78％和25％17平均动脉血压降低心脏速率降低。这些结果表明，自动潜水大鼠表现出典型地出现在其他潜水动物相同的心肺变化。尾动脉插管已经被用来注入毒蕈碱拮抗剂阿托品，这消除了与自愿潜水（ 图4; 21）相关联的心动过缓，并确定在自愿潜水心输出22，包括脑血流23的分布。后套管也被用来表明大鼠忽略增加动脉低氧血症和高碳酸血症，同时它们被淹没18，并且预先存在的化学感受器的驱动器不具有对心血管反应自愿潜水21有任何影响。
在椎板我和腹延髓背角II（MDH）表达的Fos都灵神经元克自愿潜水，这些神经元可以构成潜水响应（ 图5; 24）的初始脑干传入中继。重要的脑干心肺控制领域，如尾加压区（CPA），孤束核孤独者（NTS），延髓腹外侧区（RVLM）和peribrachial地区，各展期间自愿潜水与游泳25相比增长Fos蛋白标记。脑干的化学敏感区神经元的Fos表达后，持续时间长被迫潜水18。
图1：示意图潜水坦克的有机玻璃箱（100×60×15厘米）来创建一个简单的迷宫由五名长1米的通道。罐中填充30℃的自来水，和大鼠最初训练negotiatE按游泳的水面上，从开始区域（左上），迷宫的终点区（右下图）。将大鼠然后训练潜水穿过迷宫，保持水下由水平的有机玻璃片置于2-3厘米的水面之下。 [这个数字已经被修改26]
图2：皮质酮的测量 。从大鼠尾静脉抽血用于测量皮质酮的浓度（平均值±SE），从留在它们的笼子（朴素）的大鼠，大鼠为10分钟/天（处理的），大鼠训练的游泳和潜水（训练），和大鼠的处理没有接受游泳或潜水培训（未经训练）。皮质酮测定后，训练有素的老鼠已经完成了他们的游泳训练（左一组棒），经过培训后的老鼠已经完成了其自愿格Ë培训（中心组棒），训练大鼠后已经完成了他们的强迫潜水训练（右集条）。 1表示的值是显著大于朴素; 2表示的值是显著大于处理的; 3表示的值是显著大于经过培训; *表示在被迫潜水培训期间只值显著高于在自愿的潜水。 [这个数字已经被修改17]
图3：从遥测发射机动脉血压踪迹示出了从大鼠训练的游泳和潜水穿过迷宫游泳（左列），自愿潜水（中间列），并被迫潜水（右栏）中搏动的动脉血压的原始数据的踪迹。 （下排）和老鼠都没有了TRAI宁步骤（上排）。潜水水下（自愿和被迫淹没）产生一个立即的心动过缓和动脉压起效慢增加，而游泳水的表面上没有造成诸如心血管变化。下痕迹横道淹没的时间。在轨道断裂指示时期，遥测信号丢失。 [这个数字已经被修改17]
图4：阿托品消除潜水心动过缓 。自愿潜水大鼠（A）的前搏动的动脉血压和（B）的阿托品预处理后的原始记录。痕迹使用后动脉插管获得。前阿托品预处理，动脉压时浸没略有下降，但吨母鸡提高到大于预先潜水的潜水的剩余部分。心脏速率从相邻的脉冲压力的时间间隔来确定。浸水后有被持续潜水的时间直接和实质性的心动过缓。副交感神经阻滞剂阿托品预处理后，心动过缓被淘汰。也有在潜水过程中增加动脉压力。跟踪下的条指示淹没的时间。 [麦卡洛克，未出版]
图5：苹果酸脱氢酶内Fos蛋白标记。三叉延髓背角（MDH）和三叉神经脊束（SP5）大鼠训练有素的潜水水下的显微照片。 （A）在对照组大鼠未重复潜水没有Fos蛋白标记。（B）在游泳大鼠有很亮TLE Fos蛋白标签中的苹果酸脱氢酶（大箭头）或paratrigeminal核（小箭头）内SP5。（C）在一个潜水鼠有更多的Fos标记腹侧同时在苹果酸脱氢酶（大箭头）和paratrigeminal核（小箭头）相比游泳和对照组大鼠。在面板（A）将显示面板AC的喙，尾位置。在C图比例尺为100微米。 [这个数字已经被修改24]
图6：激活儿茶酚胺神经元跳水的影响。显微照片显示非潜水对照组大鼠（A，C和E）和自愿潜水鼠（B，D和F）的髓质。脑组织中免疫组织处理用于两Fos蛋白的ð酪氨酸羟化酶（TH），产生棕色TH胞体和黑色Fos蛋白的细胞核。打开箭头标识的单标记TH阳性神经元，而实线箭头标识的Fos + TH双标神经元。 A1神经元A和B中的C1神经元识别标识在C和D的A5神经元中E和F的更多的Fos和TH双标是出现在A 1，C 1标识，所述潜水鼠比A5的区域在非潜水对照大鼠。在电子商务校准酒吧是面板自动对焦，并且是250微米。插图中的F中的校准酒吧是所有插图，并且是50微米。 [这个数字已经被修改26]
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Discussion
在他们的野性表格可老鼠做利用半水生环境，而且会经常潜入水下，而觅食6。因此，这是不是太奇怪，老鼠可以很容易训练自愿潜水水下。所描述的训练过程可以持续长达6周，这将带来新断奶的大鼠在大多数成年大鼠脑图谱中使用的主体大小（〜300克）。因而从这些受过训练的动物的大脑将更加容易地比得上在这些图谱确定的解剖结构。
之后被放置在起步区最老鼠会在20秒内开始他们在水下游泳。不过，偶尔有老鼠会需要长达5分钟以上开始其自愿潜水前。虽然它可能是诱人在此阶段，强制大鼠进入海底隧道，这通常应该避免，以防止将大鼠从水中带负经验相关联。鼠类可以固执，可以initi盟友拒绝在培训课程跳水，但一旦他们意识到退出水的唯一途径是通过迷宫完成下潜，他们通常后不久被放置在起步区启动了潜水。
的重复的和有条理的训练过程的一个重要方面是，它们以这样一种方式，以减少由经验丰富的大鼠的应力进行。让老鼠探索周围的环境，特别是在审判之间的整理区域，似乎进一步减轻压力。老鼠往往会重新进入水中游泳，和/或淹没他们的头在水下，同时仍坐在终点区的平台上。这表明，老鼠是不是天生的水厌恶。此外，虽然这种情况并不少见老鼠游泳或潜水，或在终点区等候时，在较少的粪粒17日常的训练成果时产生的粪粒。一般来说，少强调，老鼠是在培训期间，越少的PEllets他们就会产生。所产生的任何粪粒从水或终点区除去尽快，以保持水比较干净。
只偶尔可能会血淋淋的鼻子，而游泳和潜水，这可能是充气的水进入鼻腔的结果。血液的出现可能是由于鼻粘膜内渗透胁迫。而在试验的终点区的老鼠会新郎自己。从鼻子的后果血液可以得到重新分配过的大鼠头部和鼻子，给大鼠略有微红，特别是眼睛周围，在训练的过程中。此外，一个偶然的老鼠可能会发现潜水压力和/或出现负的潜水体验（ 即通过转身迷路而水下潜水（见5.4.3后注意如何防止这种情况发生））。在这些老鼠的卟啉会出现在他们的眼角，预示着压力responsË。
潜水箱的尺寸将在一定程度上决定了房间的要求。所述罐被设计成具有大鼠游泳水的表面下2-3厘米至5米长的有机玻璃迷宫，得到10-15秒17,19,24,26,27水下游泳持续时间。应的实验被设计成从一个更长的持续时间的潜水测量的反应，或从更深的潜水水下，所述罐可能需要被重新设计。然后在房间的要求也可以改变，以适应重新设计的潜水箱的尺寸。如果在处置室没有地漏可用，从罐中的水可被收集在一个大的容器中，例如可以一个60加仑的垃圾，然后可以以方便的方式在别处排空。
Fos蛋白技术可以与其它神经元的检测方法被用于进一步鉴定和表征的神经元，它们是潜水响应的脑干电路的一部分。例如，fos基因检测与酪氨酸羟化酶染色结合已确定在A1，C1，A2，A5的儿茶酚胺能神经元和子斑的区域（ 图6; 26），以及球形的神经元的横向A7的区域26,27内，即是在自愿激活潜水。另外，Fos蛋白的检测与逆行示踪剂霍乱毒素结合已确定内外部形成所期间自愿潜水20活化的疑核的心脏迷走神经运动神经元的细胞体。
调查心肺响应潜水的中枢神经一体化是由于多种原因6,8,28重要。潜水反应使动物，包括人类，保持浸没在水下不呼吸对于延长的时间段。潜水回应表示脑干稳态控制的功能重组，并演示了最强大的PA之一在动物中观察到自主神经反射的tterns。潜水反应也可以在人类临床上重要的三叉神经心反射的一部分，鼻咽反射，和/或婴儿猝死综合症。最后，神经回路大鼠脑干中存在的的理解将有助于确定如何皮质传入信号可以修改基本的脑干自主反射。所有这些考虑使哺乳动物潜水响应中央方面的研究本身有价值和有趣的。使用所描述的方法培养大鼠自愿潜入水下将能够更好地调查，会比使用强迫跳入水中动物的哺乳动物潜水响应的主要方面。这是因为训练过程的描述1）减少激活中枢神经系统的压力电路; 2）不激活中枢神经系统的奖励，因为电路外部奖励不使用。
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Disclosures
笔者是一个顾问Stoelting公司，并提供了整体设计和麦卡洛克潜水坦克迷宫的规格作商业用途。
Acknowledgments
通过研究和赞助节目的中西部高校办公室资助研究的支持。还要感谢的中西部大学动物基金和埃里克·沃伦。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| McCulloch Diving Tank Maze | Stoelting Company | 60139 | |
| 1 inch internal diameter tubing | Fisher | 14-169-63 | Used to fill or drain tank |
| Plexiglas rodent restraint device (Economy flat bottomed restrainer) | Braintree | FB-M/L | For forced dives |
| Telemetric transmitters | DSI | Model PA-C40 (270-0040-008) | Used to transmit pulsatile arterial blood pressure |
| Hand-held antenna wand | DSI | Model RLA 3000 (272-5007) | Used to ensure radio antenna is near to transmitter while rat is negotiating underwater maze |
| Intramedic PE50, 0.023" ID | Fisher | 14-170-12B | Used as trailing arterial cannula |
| N95 mask - Moldex #2300N Series | Fisher | 19-003-246D | Used to limit inhalation of rat allergens |
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