Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Developmental Biology

애벌레 Zebrafish의 피부에 유도 GAL4 / UAS 식 시스템을 사용하여 선천성 면역과 종양 전 세포 상호 작용의 라이브 영상

Published: February 3, 2015 doi: 10.3791/52107

Introduction

그렇지 않으면 정상 상피 시트 내에서 발암 세포 자손의 전면에 자라 강하게의 미세 환경과의 상호 작용에 따라 달라집니다. 숙주 조직과의 상호 작용은 종양 전 셀이 상기 부푼 암으로 발전하는 클론 틈새를 확립 할 수 있는지의 주요 결정 요인이 될 가능성이 높다. 개발의 중요성에도 불구하고, 암의 진행이 초기 단계는 생체 내에서, 가장 일반적으로 사용되는 모델 시스템에 액세스 할 수 없습니다.

제브라 피쉬, 다니오 레 리오 (rerio)은, 때문에 개발 전반에 걸쳐 투명성, 수용성 약물의 유전자 조작에 대한 가능성과 접근성의 라이브 영상 검사에 대한 잘 확립 된 모델 생물이다. 상피 세포를 변환하는 과발현, 인간의 종양 유전자 HRAS G12V을 애벌레 제브라 피쉬 모델을 사용하여 최근의 연구는 숙주 세포가 특정 H 2 O 2 (으)로에서 신호를 유도 것을 보여 주었다선천성 면역 세포의 모집. 흥미롭게도, 모집 면역 세포, 호중구 및 대식 세포는 종양 전 세포 증식을 지원 2,3- 영양 역할을하는 것으로 하였다.

종양의 개시 및 진행의​​ 초기 사건뿐만 아니라 염증 반응의 기여를 이해하기 위하여, 하나는 이후 초기 시점에서 이러한 이벤트 이미지 할 수 있어야한다. 그러므로 시간적 및 조직 특이 적으로 세포 변환을 제어 할 필요가있다. 우리는 성공적으로 조건부 피부 특이 적 프로모터 각질 4 (krt4)의 제어하에 인간 종양 유전자 HRAS G12V을 표현하는 초파리 4에서 적응 된 GAL4 / UAS 시스템을 5 활용합니다. GAL4 전사 활성 즉, KalTA4 (6)의 수정 된 버전은, 상류 활성화 서열의 제어 (UAS하에 HRAS G12V의 발현을 가능하게). 조건부 전사 활성의 발현을 유도하기 위하여, 특별히 KalTA4 -4- Hydroxytamoxifen 결합 인간 에스트로겐 수용체 α의 돌연변이 리간드 결합 도메인 (ER의 T2) (7)에 융합 된 (4-OHT) 1. 4- OHT의 부재에서 ER-T2는 열 충격 단백질에 의해 세포질 바인딩된다. 4-OHT에 관심 8의 유전자를 제어 UAS의 KalTA4-ER T2의 핵 전위 이후 활성화 있도록, 단백질이 해리 열 충격 바인딩 (그림 1C을, B). 이러한 발현 시스템은 4 OHT의 존재에 의존 같이, 관심 유전자의 발현 조절 KalTA4 가역적이다. 비가역 재조합 이벤트 리드 치운다 ER의 T2 / 된 LOX 시스템과는 달리, KalTA4 ER-T2 의한 전사 활성화의 유도는 또한 4-OHT 제거함으로써 가역적이다.

다음 프로토콜여보세요 제브라 피쉬 애벌레 피부 세포의 조건 변화와 형광 단백질 발현에 의한 선천성 면역 세포와의 상호 작용의 후속 모니터링 WS. 13 -이 프로토콜에서 사용되는 기본적인 방법은 제브라 피쉬 커뮤니티 (9) 내에서 일반적으로 사용되는 기술과 유사하다.

세대와 함께 유전자 변형 구조의 미세 주입으로 유전자 변형 라인의 조합 적 사용은 모자이크 방식으로 단일 세포를 변환하는 일시적인 접근 할 수 있습니다. 배아와 유충 지브라 피쉬 피부의 산소 투과도는 일 시간이다 고해상도 현미경으로 시간 경과 라이브 영상 검사를위한 가능성을 제기한다. 또한, 수용성 약물 접근성 미래 기전 연구 및 암 발생의 초기 단계의 이해로 이어질 수 생체 내에서 세포의 생물학적 이벤트의 감시를 허용 할 것이다.

_content는 ">이 프로토콜은 모자이크 방식으로, 제브라 피쉬 유충에서 관심있는 조직 조건부 유전자 발현을 수행하도록 할 수있다. 하나는 또한 피부 이외의 화상 깊은 조직을 살 수 있도록 설정 현미경을 최적화 할 수있다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
(Z)-4-Hydroxytamoxifen Sigma Aldrich H7904 dilute in ethanol and store in the dark at -20 °C
20X Objective Zeiss 20X/0.5 Ph2 ∞/0.17
40X Objective Zeiss 40X/1.2W Korr ∞/0.14-0.18
63X Objective Zeiss 63X/1.4 Oil Ph3 ∞/0.17
BamHI New England Biolabs R0136S
Confocal Microscope Zeiss LSM 510 META
Cover glass VWR 631-0171 Diameter 25 mm
Dimethylpolysiloxane Sigma Aldrich DMPSV
Dow Corning high-vacuum silicone grease  Sigma Aldrich MKBL4135V
Flaming/Brown P-97 Micropipette Puller Sutter Instruments Co. P-97 Program: heat 530, pull 200, velocity 80, and time 150
Fluorescent stereoscope  Leica M205 FA
Kwik-Fill Brosilicate Glass Capillaries World Precision Instruments 1B100F-4
Microinjection mold TU-1 Adaptive Science Tools TU-1
Microloader tip Eppendorf 930001007
Microscope Zeiss Axiovert 200
mMESSAGE mMACHINE Kit Ambion AM1348
Nuclease-free water Invitrogen AM9937
Pneumatic pico pump World Precision Instruments  PV820 
Pneumatic pico pump Warner Instruments PLI-90A
pTol2-krt4:KalTA4-ERT2;cmlc2:eGFP Dr. Thomas Ramezani/Yi Feng Lab/The University of Edinburgh
QIAprep Spin Miniprep Kit Quiagen 27106
Rhodamine B isothiocyanate-Dextran Sigma Aldrich R8881 10 mg/μl in water
Stereoscope Leica M80
Tg(lysC:dsRed2)nz50Tg BMC Developmental Biology 7, 42, doi:10.1186/1471-213X-7-42 (2007)
Tg(UAS:eGFP-HRASG12V)io006 PloS One 5 (12), e15170, doi:10.1371/journal.pone.0015170 (2010)
Tricaine/MS-222 Sigma Aldrich A5040
UltraPure Agarose Invitrogen 16500-100
UltraPure Low Melting Point Agarose  Invitrogen 16520-050
UltraPure Phenol : Chloroform : Isoamyl Alcohol Invitrogen 15593-031 25:24:1, v/v

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kajita, M., Sugimura, K., et al. Filamin acts as a key regulator in epithelial defence against transformed cells. Nature communications. 5, 4428 (2014).
  2. Feng, Y., Santoriello, C., Mione, M., Hurlstone, A., Martin, P. Live imaging of innate immune cell sensing of transformed cells in zebrafish larvae: parallels between tumor initiation and wound inflammation. PLoS Biology. 8 (12), e1000562 (2010).
  3. Feng, Y., Renshaw, S., Martin, P. Live Imaging of Tumor Initiation in Zebrafish Larvae Reveals a Trophic Role for Leukocyte-Derived PGE 2. Current Biology. 22 (13), 1253-1259 (2012).
  4. Halpern, M. E., Rhee, J., Goll, M. G., Akitake, C. M., Parsons, M., Leach, S. D. Gal4/UAS transgenic tools and their application to zebrafish. Zebrafish. 5 (2), 97-110 (2008).
  5. Gong, Z., Ju, B., et al. fluorescent protein expression in germ-line transmitted transgenic zebrafish under a stratified epithelial promoter from keratin8. Developmental Dynamics an Official Publication of the American Association of Anatomists. 223 (2), 204-215 (2002).
  6. Distel, M., Wullimann, M. F., Köster, R. W. Optimized Gal4 genetics for permanent gene expression mapping in zebrafish. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (32), 13365-13370 (2009).
  7. Feil, R., Wagner, J., Metzger, D., Chambon, P. Regulation of Cre recombinase activity by mutated estrogen receptor ligand-binding domains. Biochemical and Biophysical Research Communications. 237 (3), 752-757 (1997).
  8. Gerety, S. S., Breau, M. a, Sasai, N., Xu, Q., Briscoe, J., Wilkinson, D. G. An inducible transgene expression system for zebrafish and chick. Development. 140 (10), 2235-2243 (2013).
  9. Yuan, S., Sun, Z. Microinjection of mRNA and Morpholino Antisense Oligonucleotides in Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (27), e1113 (2009).
  10. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function. J. Vis. Exp. (25), e1115 (2009).
  11. Eisenhoffer, G. T., Rosenblatt, J. Live Imaging of Cell Extrusion from the Epidermis of Developing Zebrafish. J. Vis. Exp. (52), e2689 (2011).
  12. Kague, E., Weber, C., Fisher, S. Mosaic Zebrafish Transgenesis for Evaluating Enhancer Sequences. J. Vis. Exp. (41), e1722 (2010).
  13. Balciuniene, J., Gene Balciunas, D. Trapping Using Gal4 in Zebrafish. J. Vis. Exp. (79), e50113 (2013).
  14. Balciunas, D., Wangensteen, K. J., et al. Harnessing a high cargo-capacity transposon for genetic applications in vertebrates. PLoS Genetics. 2 (11), e169 (2006).
  15. Santoriello, C., Gennaro, E., et al. Kita driven expression of oncogenic HRAS leads to early onset and highly penetrant melanoma in zebrafish. PloS One. 5 (12), e15170 (2010).
  16. Hall, C., Flores, M. V., Storm, T., Crosier, K., Crosier, P. The zebrafish lysozyme C promoter drives myeloid-specific expression in transgenic fish. BMC Developmental Biology. 7, 42 (2007).
  17. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics : an Official Publication of the American Association of Anatomists. 203 (3), 253-310 (1995).
  18. Westerfield, M. THE ZEBRAFISH BOOK: A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , 5th Edition, University of Oregon Press. Eugene. (2007).
  19. Le Guellec, D., Morvan-Dubois, G., Sire, J. -Y. Skin development in bony fish with particular emphasis on collagen deposition in the dermis of the zebrafish (Danio rerio). The International Journal of Developmental Biology. 48 (2-3), 217-231 (2004).
  20. Kwan, K. M., Fujimoto, E., et al. The Tol2kit: a multisite gateway-based construction kit for Tol2 transposon transgenesis constructs. Developmental Dynamics : an Official Publication of the American Association of Anatomists. 236 (11), 3088-3099 (2007).
  21. MultiSite Gateway Three- Fragment Vector Construction Kit. Protocols and Product Manuals. 12537-023, Invitrogen life technologies. (2010).
  22. Petersen, L. K., Stowers, R. S. A Gateway MultiSite Recombination Cloning Toolkit). PLoS ONE. 6 (9), e10 (2011).
  23. Magnani, E., Bartling, L., Hake, S. From Gateway to MultiSite Gateway in one recombination event. BMC Molecular Biology. 7, 46 (2006).
  24. Robertson, D. W., Katzenellenbogen, J. A. Synthesis of the (E) and (Z) isomers of the antiestrogen tamoxifen and its metabolite, hydroxytamoxifen, in tritium-labeled form. The Journal of Organic Chemistry. 47 (12), 2387-2393 (1982).
  25. Murphy, C., Langan-Fahey, S. Structure-function relationships of hydroxylated metabolites of tamoxifen that control the proliferation of estrogen-responsive T47D breast cancer cells in vitro. Molecular. 38 (5), 737-743 (1990).
  26. Furr, B. J. A., Jordan, V. C. The pharmacology and clinical uses of tamoxifen. Pharmacology & Therapeutics. 25 (2), 127-205 (1984).
  27. Akerberg, A. a, Stewart, S., Stankunas, K. Spatial and Temporal Control of Transgene Expression in Zebrafish. PloS One. 9 (3), e92217 (2014).
  28. Hans, S., Kaslin, J., Freudenreich, D., Brand, M. Temporally-controlled site-specific recombination in zebrafish. PloS One. 4 (2), e4640 (2009).
애벌레 Zebrafish의 피부에 유도 GAL4 / UAS 식 시스템을 사용하여 선천성 면역과 종양 전 세포 상호 작용의 라이브 영상
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Ramezani, T., Laux, D. W., Bravo, I. More

Ramezani, T., Laux, D. W., Bravo, I. R., Tada, M., Feng, Y. Live Imaging of Innate Immune and Preneoplastic Cell Interactions Using an Inducible Gal4/UAS Expression System in Larval Zebrafish Skin. J. Vis. Exp. (96), e52107, doi:10.3791/52107 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter