Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Regioselective Biolistic המיקוד בOrganotypic פרוסות המוח באמצעות אקדח ג'ין השתנה

doi: 10.3791/52148 Published: October 24, 2014

Abstract

Transfection של DNA כבר לא יסולא בפז למדעים ביולוגיים ועם התקדמות שחלה באחרונה להכנות פרוסה מוח organotypic, ההשפעה של גנים שונים יכולה Heterologous כך להיחקר בקלות, תוך שמירה על היבטים רבים של הביולוגיה in vivo. יש כבר התעניינות גוברת לtransfect תאי עצב סופני הבדיל שלשיטות transfection קונבנציונליים היו כרוכות בקשיים, כגון תשואות נמוכות והפסדים משמעותיים ביכולת קיום. transfection biolistic יכול לעקוף רבים מהקשיים אלה עדיין רק לאחרונה טכניקה זו שונו כך שתהיה נוח לשימוש ברקמות של יונקים.

שינויים חדשים לתא המאיץ שיפרו את דיוק הירי של אקדח הגן והגדילו את מעמקיו של חדירה בעת גם מאפשר שימוש בלחץ נמוך יותר גז (50 psi) ללא אובדן יעילות transfection כמו גם מאפשרים התפשטות regioselective ממוקדת של הרשותrticles עד למרחק של 3 מ"מ. בנוסף, טכניקה זו היא ישר קדימה ומהר יותר לבצע מאשר microinjections מייגע. חולף וביטוי יציב שניהם אפשריים עם הפגזת חלקיק שבו ביטוי episomal יכול להתגלות בתוך 24 שעות והישרדות התא הוצגה להיות טוב יותר מאשר, או לפחות שווה ל, שיטות קונבנציונליות. טכניקה זו יש עם זאת יתרון אחד מכריע: הוא מאפשר transfection להיות מקומיים ברדיוס מאופק יחיד ובכך מאפשרים למשתמש לבודד מבחינה אנטומית ההשפעות של גן Heterologous. כאן אנו מציגים פרוטוקול לעומק להכין פרוסות organotypic מבוגרות קיימא ולשלוח אותם לregioselective transfection באמצעות אקדח גנים משופר.

Introduction

במקור טכניקת biolistic, ביטוי Turn-of-ל" בליסטיקה הביולוגית ", הוקמה להעברת גנים בתיווך חלקיקים לתאי צמח 1. שיטה פיזית זה של שינוי התא מאיצה מיקרו או חלקיקים במהירות גבוהה כדי להתגבר על המחסומים הפיזיים של קרום התא אטום כדי לספק מטענים כגון DNA או צבעים. כי זה לא תלוי בליגנד-קולטנים ספציפיים ו / או את התכונות הביוכימיות בקרומי תא השטח, העברת גנים בתיווך חלקיק יכולה להיות מיושמת בקלות למגוון רחב של מערכות ביולוגיות כגון פרוסות מוח organotypic.

יש לי פרוסות organotypic באמצעות יתרונות על פני אחרים בפלטפורמות מבחנה שכן הם לשמור על מאפיינים אנטומיים ויוכימיים רבים כי הם רלוונטיים לin vivo הביולוגיה 2-4. פרוסות בעיקר לשמר את המאפיינים אדריכליים המקומיים משם יש להם המקור וpreserve פעילות וקישוריות של סינפסות neurochemical. השימוש בפרוסות מוח למחקר בסיסי, ובמאמצי תרופות, גדלו במקביל עם מספר המניפולציות ביוטכנולוגיים ניתן למדוד ולעקוב אחר ההתנהגויות הנוירוביולוגי של המוח בin vivo כמו הקשר 3,5-7. היתרונות העיקריים לשימוש במערכות מבוססת assay פרוס organotypic הוא שהיא מספקת שליטה ניסיונית קלה ומאפשרת מניפולציות מדויקות של סביבות תאיים.

פורה, מערכות תרבות הפרוסה organotypic הוקמו ממגוון רחב של אזורים במוח כגון, אך לא מוגבלת ל, קליפה, חוט השדרה, ו8-10 המוח הקטן. יתר על כן, מספר cocultures הוכח, המאפשר ההערכה של תקשורת בין תאית על פני אזורי מוח דיסטלי, כמו גם בין תאי עצב ותאים פתולוגיים 11,12. פרוטוקולים רבים כבר הוקמו ליםuccessfully פרוסות organotypic התרבות ויכול לשמור על יכולת קיום לטווח ארוך ורבים מחקרים שנעשה לאחרונה עם החברה לנצל את שיטות ממשק קרום ושינויים שונים לזה 13. עיקרון זה שומר את פרוסות organotypic בממשק שבין הבינוני והאווירה humidified של החממה על ידי הצבת את הפרוסות על מסנן קרום נקבובי. כך הבינוני יכול לספק חומרים מזינים מספיק כדי להאכיל את פרוסות organotypic באמצעות תנועת נימים. בדרך כלל פרוסות הוכנו מבעלי החיים המוקדמים שלאחר לידה (3 - בן 9 ימים; P3 - 9). עם זאת, רקמות מוח מפרוסות אלה להציג רמה גבוהה של גמישות סלולרית ויש לי התנגדות טבועה לחצים מכאניים, שהוא מועיל להשגת תרבויות קיימא, עדיין סינפסות הבוגרת ומעגלי neuroanatomical לא פיתחו באופן מלא בגוף חי עד 2 עד 3 שבועות של גיל 14. לדוגמא, תצפיות קודמות שהראו כי פרוסות בהיפוקמפוס המתקבלות מP0 - 1 ילודים, למרות שמאוד viable הבא הכנה, איבד בהדרגה חלק ממאפיינים מורפולוגיים. בעיקרו של דבר, הם הוצגו להיות מתאימים לטווח ארוך תרבויות המצביעות על תאים לא בוגרים נטו יותר דה להבחין בהשוואה לתרבויות organotypic מבעלי חיים מבוגרים 15,16. מסיבה זו השיטה שלנו כבר מותאמת לפרוסות מוח organotypic מבוגרות שבהתבגרות והתפתחות אדריכלית הגיעו שלבי המסוף שלהם 13,17-21. עם זאת, שיטה זו מתאימה גם לילוד ופרוסות organotypic לנוער.

ברגע שפרוסות organotypic קיימא הופקו כולו הצלחת המכילה את הפרוסות ניתן להביא להר biolistic והוגשה לregioselective משלוח וtransfection. הרכבה נכונה של אקדח הגן (כמתואר באיור 1), בכיוון 90 ° במרחק של 10 מ"מ ישירות מעל את הפרוסות (מהצוהר לרקמות), מאפשרת משלוח biolistic המהיר של 40 ננומטר ללכתחלקיקי ld מצופים מטענים. מטענים אלה כגון צבעים ווקטורי DNA ניאון, כמו גם כל גן של עניין, מועברים בקלות לתוך פרוסות קיימא בקלות. שיטה זו ובכך מתארת ​​את הפרוטוקול נחוץ כדי לספק, באופן regioselective, חלקיקי זהב מטען מצופים לפרוסות מוח organotypic קיימא. קנה אקדח הגן וההרכבה אופטימלית שניתן לראות באיור 1. למידע נוסף לגבי בליסטיקה החבית והחלקיק השתפרה, אנא ראו אובריאן, et al. 17.

חידודים לאחר גם מצוינים עבור המשתמש כדי לייעל את התנאים כגון הכמות הנכונה של זהב נמסרה לאזור היעד, מוגדרת ככמות טוען microcarrier (MLQ), ולקבוע את הסכום של DNA הטעון למ"ג של זהב, שהוגדר כיחס טוען DNA (DLR). לפני מזרז DNA על חלקיקי זהב וטעינתם בצינורות TEFZEL שכולל מחסניות "אקדח הגן בפועל9 ;, יש צורך לחשב את כמות DNA והזהב הנדרשת לכל transfection שיכול להשתנות מעט בין רקמות ותנאים (יחס צריך להישמר בין מ"ג זהב 1 וDNA מיקרוגרם 1 עד 1: 5). זה חיוני כדי להכין את היחס הראוי של MLQ לDLR אחרת חלקיקי זהב DNA מצופים יכולים לדבוק יחד יוצרים גדול יותר ממסכת צפויה, אשר יכול להפחית את ההומוגניות הכוללת של התפשטות biolistic כמו גם נזק ורעיל רקמת גידול.

שיטה זו מציגה את השיפורים האחרונים במסירת biolistic, שנבדקו ונקבעו להיות נוח עבור פרוסות מוח organotypic בילוד, לנוער ולמבוגרים. יתר על כן, על ידי ניצול התפשטות biolistic המופחת של קנה רובה הגן, המשתמש יכול transfect סלקטיבי אזור דייקן במוח עכשיו. בעקבות זמן הדגירה המתאים, הביטוי של חלבוני הניאון, אשר מגיע שיעורים מרביים בין 24 ו48שעה, ניתן דמיינה ידי epifluorescence ומיקרוסקופיה confocal. fluorophores אלו מאפשר ניתוח הצורני ולוקליזציה של תאים בודדים בתוך מבנים רלוונטיים מבחינה ביולוגית. עם זאת, אפנון regioselective של פרוסות organotypic על ידי הגנים Heterologous אחרים יכול גם להיות במעקב על ידי בדיקות אחרות ניתנות להכנות אלה. אסטרטגיות עבודה אפשריות למסירת הגן המקומית מוצגות באיור 2.

Protocol

השימוש בבעלי חיים וברקמות של בעלי חיים צריכים להקפיד על אישור וועדה אתי לפי כללים מקומיים ורגולציה. כל הרקמות שהושגו במהלך מחקר זה דבק הנחיות הניסויים בבעלי החיים של MRC-LMB.

.1 הכנת מדיה חומרים ותרבות

  1. הכן את כל הפתרונות באמצעות מים Millipore; להשתמש ריאגנטים כיתה אנליטיים בלבד. להכין ולאחסן את כל חומרים כימיים ב RT (אלא אם צוין אחרת).
  2. הפוך 500 מ"ל של תמיסת מלח HEPES שנאגר (10 HEPES מ"מ, 120 mM NaCl pH 7.2). לסנן באמצעות יחידת סינון סטרילי 0.2 מיקרומטר. חנות ב 4 ° C..
  3. הפוך 500 מ"ל של תמיסת מלח שנאגר פוספט (PBS; 10 מ"מ Na 2 HPO 4, 2 מ"מ KH 2 PO 4, 137 mM NaCl, 2.7 מ"מ KCl, pH 7.4). לעקר ידי מעוקר.
  4. הכן בינוני עצבי על ידי השלמת DMEM (המדיום של הנשר שונה Dulbecco) עם 25 HEPES מ"מ, 10% עגל בסרום עוברי, 30 גלוקוז מ"מ, 1: 100 N2 supplement, 1,100 U / ml פניצילין, סטרפטומיצין; pH 7.2. לסנן עם יחידת סינון סטרילי 0.2 מיקרומטר. חנות ב 4 ° C..
  5. הפוך פתרון polyvinylpyrrolidone המניה (PVP) עם 20 PVP מ"ג באתנול 1 מ"ל 100%. Aliquot זה ל1 מ"ל כמויות, הקפאה ולאחסן ב -20 מעלות צלזיוס. עובד פתרון הוא 0.05 מ"ג / מ"ל, לכן להוסיף 10 μl של פתרון מניות PVP לכל 4 מ"ל של 100% אתנול.
  6. הכן פתרון מניות 0.05 M spermidine במי Millipore; להתאים את pH עד 7.2.
  7. בצע פתרון 2% agarose בDMEM (agarose הכיתה אלקטרופורזה 2 גרם ב100 מ"ל DMEM בבקבוק כובע בורג מעוקר). מיקרוגל זה עד agarose נמס. אחסן במקרר 4 ° C. במשך כמה שבועות, במידת צורך.

2 הכנת Organotypic Slices

  1. להרדים C57 שחור 6 עכברים של הגיל הרצוי על ידי CO 2 מחנק אחריו עריפת ראש. הסר את המוח באמצעות קיצוצי גולגולת רוחביים החל משעת מגנום הנקב ומסתיימים באונות הרחה. רם בעדינות את הגולגולת מאחור כדי לחשוף את המוח.
  2. לחתוך בין אונות הרחה וקליפת המוח הקדמית, ומקורית למוח הקטן. רם בעדינות את החלק מקורי של המוח וחתך את עצבי הראייה. לבסוף, להסיר את המוח ולמקם אותו בצלחת פטרי מלאה שבנאגרה מלוח HEPES הקרים כקרח על קרח.
  3. באמצעות מיקרוסקופ לנתח, לקלף פיא באמצעות מלקחיים קנס; להסיר בזהירות את כלי דם וקרומי מוח סביב המוח.
  4. מניחים את המוח הטרי לתוך תבנית נמען קטנה ולכסות אותו עם פתרון agarose מקורר מעט מעל RT. ואז במהירות לקרר את התבנית ל4 ° C על ידי הצבתו על קרח.
    הערה: תהליך פרוסות במהירות אפשרי כדי למנוע אובדן של יכולת קיום.
  5. כאשר agarose יש להגדיר (5 - 10 דקות), להסיר את המוח מוטבע agarose מהתבנית (לקצץ במידת צורך), ולאחר מכן להדביק אותו לפלטפורמת vibroslicer. את המקום הזה לחדר vibroslicer מכיל PBS הקר כקרח סטרילי. Disinfect קאמרי vibroslicer לפני בשימוש עם 70% אתנול כדי למזער זיהומים שלאחר מכן.
  6. חותך את המוח באמצעות vibroslicer נבנה מותאם אישית או שווה ערך מסחרי. רעיון המודל היה לתכנן מבצעה רקמה שיכולה ליצור תנועות אופקיים לקצה הלהב גדולות משרעת ותדירות גבוהה תוך מזעור תנודות אנכיות.
  7. השתמש בתדירות התנודה של 90 הרץ, במשרעת של 1.5 - 2.0 מ"מ, והלהב החיתוך ממוקם בזווית של ° 15 למישור האופקי; להגדיר את בלוק ההרכבה מחזיק המוח מוטבע agarose לנוע ב1.7 מ"מ / דקה לכיוון הלהב. לאסוף חלקים (150 מיקרומטר) לתקשורת ותרבות הקרה כקרח המכילה תא (DMEM / סטרפטוקוקוס + 10% FCS). צפו בחיתוך ומניפולציה של פרוסות הרקמה כוידאו נוסף בארסנו ו13 אובריאן.
  8. מניח בעדינות את הפרוסות למוסיפה תרבית תאים (0.4 מיקרומטר, בקוטר 30 מ"מ) במגש 6 רב גם עם מד התרבותIA בצד החיצוני של העלון, ודגירה בחממה humidified על 37 מעלות צלזיוס עם 5% CO 2.
    הערה: לכדאיות רקמות תקינה, להיות מאוד עדין בעת ​​העברה והמניפולציה של הפרוסות. כמו כן, יותר מדי נוזלים ימנעו את פרוסות organotypic מהקפדה על הקרום של להכניס את המסנן. אם זה יקרה, להסיר את הנוזלים העודפים או צלחת שוב.
  9. למרות שפרוסות organotypic יכולות להיות מתורבתות במשך כמה שבועות, להמשיך לtransfection לא יאוחר מ -4 ימים לאחר ציפוי לתשואות transfection הטובים ביותר.
    הערה: כדי למנוע צמיחת יתר גליה בתנאי תרבות לטווח ארוך, ARAÇ שימוש או בסרום בינוני חינם 2.

.3 הכנת מיקרו וננו קליעי מצופי DNA

  1. הכן ננו קליעים באמצעות חלקיקים בקוטר זהב 40 ננומטר. בקצרה, להוסיף 50 μl של 0.05 M spermidine ו10 DNA μl ב1 מ"ג / מ"ל ​​(pEYFP-N1) ל10 מ"ג של חלקיקי זהב.
    1. הוספת סידן וspermidine בתמהיל הפתרוןמכשור במייקרו DNA-זהב חלקיקי הכנה על מנת לסייע במחייב של מולקולות דנ"א לחלקיקי זהב.
      הערה: הכמות של DNA משמשת לכל מ"ג של נשאי זהב (DLR), צריכה לנוע בין 1 ל 5 מיקרוגרם DNA לכל 1 מ"ג של זהב. יתר על כן, הסכום של חלקיקים נשאים זהב שיהיה ירה לכל מחסנית (MLQ), צריך עצמו נע 0.1-0.5 מ"ג של זהב. יש לנסות DLR וMLQ ומותאם לכל משתמש בהתאם למערכת המסוימת בחקירה, כמו גם הסוג של אקדח חלקיקים וגן בשימוש.
  2. מערבבים בעזרת מערבולת תוך הוספה לאט 50 μl של 1 M CaCl 2 בשברים של 10 - 15 μl. בעקבות 5 דקות של מזדמן vortexing, צנטריפוגה XG ב 1000 ל30 שניות לאחר מכן להסיר את supernatant. Resuspend גלולה חלקיקי זהב ב3.5 מ"ל של 0.075 M PVP.
  3. לצייר השעיה זו לתוך צינורות (קוטר 2.36 מ"מ פנימי) באמצעות מזרק. הנח את הצינור בתחנת הכנת צינורות. לאפשרחלקיקי זהב להתיישב ולהסיר את supernatant על ידי שאיפה עם מזרק. סובב את צינורות כדי להתפשט באופן שווה את חלקיקי זהב, שהיו יבש תחת זרימת חנקן קבועה לאחר מכן בשעה 5 ליטר לדקה.
  4. כדי ליצור DNA-כדורים, לחתוך את צינורות באמצעות חותך צינורות ל1 אורכי סנטימטר. כך או להכניס מייד למחסנית אקדח הגן או לשמור (4 ° C) המיובש עד נדרשת.

.4 Biolistic Transfection על Organotypic Slices

  1. בצע את השלבים בזרימה למינרית סטרילי הבאים.
  2. הכנס סוללה 9 V ובעל מחסנית ריק לתוך אקדח גן הליוס.
  3. צרף את אקדח הגן למכל הליום עם צינור הליום. 2 אש - 3 כדורי סרק (חריצים ריקים) בשעה 50 psi לחצים על צינור הליום והמאגרים באקדח.
  4. טען את המחסניות המכילות זהב מצופה דנ"א לתוך מחזיקי המחסנית וטען את בעל לאקדח הגן.
  5. להתיר את spacer אקדח הגן ולצרףקנה אקדח הגן הותאם לאקדח הגן.
  6. בעזרת מלקחיים סטריליות, מקום להוסיף מסנן המכיל פרוסת organotypic לתוך צלחת פלסטיק סטרילי.
  7. הסר את המדיה מפרוסות organotypic.
  8. הגדר את לחץ הגז ב50 psi.
    הערה: ההגנה על עיניים היא חיונית והגנה על אוזן רצויה.
  9. מניחים את אקדח הגן במרחקים המתאימים על ידי שימוש בהרכבה נמדדה ל10 מ"מ. בזהירות לכוון מרכז החבית מעל האזור הרצוי למסירה גנטית.
  10. לאחר הירי, להחליף מוסיף בחזרה לתוך הצלחת שלהם עם תקשורת טרי ולהחזיר אותם לתנאי גידול נורמלים, כלומר, 37 ° C עם 5% CO 2 באינקובטור.
  11. ברגע שסיימתי, לסגור את מיכל הליום, לשחרר את הלחץ מאקדח הגן ולנתק את אקדח הגן מיכל הליום.
  12. הסר את בעל המחסנית וזורקים את המחסניות ולנקות את אקדח הגן.
  13. בדוק את הרקמה למורפולוגיה ולחדירה מוצלחת של visuaLizing פרוסות באמצעות מיקרוסקופ הפוכה. אם אתם משתמשים בmicroparticles, באופן שווה לפזר את הזהב; לא צריך להיות שום אזורים צפופים של חלקיקי זהב ראו על הפרוסה. לא ניתן לראות חלקיקים בשל גודלם הקטן כיחידות בודדות על ידי שיטות מיקרוסקופיה קונבנציונליות.
  14. לאחר מרווח הזמן המתאים זמן (בדרך כלל 1 - 2 ימים), לתקן את הפרוסות בparaformaldehyde 4% (PFA) לתצפית במיקרוסקופ.
    הערה: תיקון בPFA לא תמיד רצויה. הדמיה תא חי להימנע מהצעד הזה.

.5 תיקון ויזואליזציה של פרוסות המוח

  1. לאחר transfection biolistic, לשטוף פרוסות פעמים PBS למשך 2 דקות.
  2. תקן את הפרוסות על ידי דוגרים בטריים, 4% הקרח קר PFA ב PBS עבור 20 דקות.
  3. לשטוף פרוסות פעמים PBS למשך 2 דקות.
  4. בעדינות לחתוך עגול הקרום תומך באמצעות אזמל, מבלי להפריע את הפרוסות רכובים עליהם. שימוש במלקחיים כדי למקם כל תמיכה / פרוסת קרום בשקופית מיקרוסקופ. לנוח organotypפרוסות ic על גבי הקרום על שקופית הזכוכית.
  5. הוסף טיפה של תקשורת הרכבה אחד על גבי פרוסה ולהוסיף coverslip בעדינות ללא כל כוח ישירות במגע עם פרוסת organotypic.
  6. Secure coverslip עם שכבה דקה של מסמר לכה.
  7. צפה פרוסות במיקרוסקופ מתאים.

.6 יישומים Confocal

  1. דמיינו פרוסות באמצעות מיקרוסקופ לייזר confocal סריקה זקוף עם 60X / 1.4 צמצם מספרי (NA) עדשה אובייקטיבית טבילת שמן.
    הערה: התכונה הבעייתית ביותר של מיקרוסקופ confocal היא בגודל חריר (שנקבע ליום 1 בAU) אשר מסוגל בידוד ואיסוף מטוס של מוקד, ובכך לחסל מחוץ לפוקוס 'ערפל' בדרך כלל נראה עם מדגם ניאון. פרטים קטנים לעתים קרובות מוסתרים על ידי אובך זה ולא ניתן לאתרם במיקרוסקופ nonconfocal.
  2. הגדר את לייזר ארגון לגל עירור של 488 ננומטר ולייעל לאוסף שלהםאור itted בלהקת ננומטר 500-520. בדרך כלל, לאסוף תמונות ב1,024 x 1,024 פיקסלים ועם ערימות של z-חלקים ב0.5 מיקרומטר מרווחים להקיף את כל רוחבו של כל תא עצב שנותח.
    1. כדי לבחון את המבנה של הגרעין, דלפק להכתים תאים אלה עם DAPI (גל עירור להגדיר ב405 אור ננומטר והפליטה שנאסף בין 420-4 40 ננומטר). לבסוף, לבחינת הקרינה אדומה, להגדיר את הלייזר ב561 ננומטר לעירור ו565-620 ננומטר לפליטה.
  3. בדרך כלל, לרכוש תמונות על ידי שימוש בזום 4X סריקה שכיסה שטח של 57.6 מיקרומטר 2; גודל תמונה היה באזור של 1,024 x 1,024 פיקסלים. רשומות ערימות של z-סעיפים ב0.5 מיקרומטר מרווחים ותחזיות של 5 - 8 מסגרות משולבות.

Representative Results

כדאיות הפרוסה organotypic יכולה להיות במעקב עם פעילות dehydrogenase חומצת החלב, תיוג יודיד propidium, ומכתים dUTP כפי שדווחה בעבר 13,22. ככל הנראה, את הכדאיות ואת היושרה של הפרוסות חשובות לביטוי המתמשך לטווח הארוך של המטען הגנטי נמסר. בעקבות מסירת biolistic לפרוסות organotypic, הביטוי של גן Heterologous הניאון היה פיקוח על ידי מיקרוסקופ confocal. האטימות של התפשטות biolistic באמצעות החבית שונה שניתן לראות באיור 3 א. איור 3 ב מציג תמונה מייצגת של אזור ההיפוקמפוס transfected באמצעות חלקיקי זהב DNA מצופים. איור 4 מראה תמונות נציג של פרוסות organotypic עכבר מבוגר transfected. כפי שניתן לראות באיור 4 א, ​​נוירון פורקינג עם נמל דנדריטים מדהים מצא בממשק של שכבת פורקינג והשכבה המולקולרית של CERebellum תערוכות תיוג בולט הבא transfection biolistic החולף עם pEGFP-N1. איור 4 מראה הגדלה גבוהה יותר של דנדריטים אלה שבי ניתן לצפות קוצים. איור 4C מראה תא פירמידה נמצא באזור CA1 של ההיפוקמפוס לאחר לידת biolistic של חלקיקי זהב pDSredFP מצופים .

גם צבעים במקום מטעני DNA מקודד ניאון יכולים לשמש באופן דומה כדי להמחיש מאפיינים מורפולוגיים בפרוסות organotypic. Dio, אשר תוויות ממברנות הפלזמה, יכול במהירות רבה יותר להתוות מורפולוגיות תא בודדות או יכול לשמש בשילוב עם biolistic DNA המצופה לאותו האזור כדי לאשר את regioselection. כפי שניתן לראות באיור 5A נוירון מוכתם בדיו בהיפוקמפוס גם מראה דנדריטים ארוכים עם שדרות רבות. חץ מצביע על האקסון שמזוהה על ידי הנוכחות של boutons הסינפטי בהשוואה לdentritic קוצים על neurites האחרות. איור 5 מציג דוגמא נוספת לCA1, אשר מדגיש את תחזיות בהיפוקמפוס רבות עם כתם דלפק DAPI לתייג את הגרעין. איור 5 ג תערוכות הגדלה גבוהה יותר של סוגים אלה של הדנדריטים מקבילים עם שדרות רבות.

ככל הנראה, התמונות האלה ממחישות מאפיינים מורפולוגיים הבאים תיוג סלולארי. שום דבר לא מונע אותן השיטות ממיושם כדי לספק כל מספר של גנים אקסוגניים המצופים על חלקיקי הזהב. כדי לאפשר אישור חזותי של transfection המוצלח, פלסמיד בודד ניתן לבנות לשתף להביע את שניהם את הגן של עניין וחלבון כתב ניאון באותו הווקטור.

איור 1
איור ג'ין 1 קנה רובה והרכבה. () לשפר את חבית ד שפותחה על ידי ד"ר אובריאן בMRC-LMB שיש התפשטות biolistic מוגבלת שממזערת את ניזק לרקמות על ידי הורדת הלחץ הדרוש להאצת חלקיקים. (B) המבט מהצד של אקדח גן מותאם עלתה בי שפותחה על ידי ד"ר הנדרסון וד"ר אנדראס נאגי באוניברסיטת טורונטו. ההרכבה מחזיקה אקדח הגן בדיוק 90˚ ניצב לפרוסות organotypic תוך התרת למשתמש לשלוט בצורה מדויקת את המרחק של משלוח biolistic. תנאי biolistic אופטימליים צמצם החבית צריך להיות ממוקם ישירות מעל האזור של עניין במרחק 10 מ"מ מפרוסות organotypic. נוף מאחור (C) של אקדח גן הרכבה. האזור של עניין להיות transfected צריך להיות ממוקם ישירות מתחת לצמצם החבית. מיקוד יכול להיות מאושר עם צבע (diolistic) או tranfection ניאון חלבון (biolistic).ank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2
איור הכנת .2 Organotypic הפרוסה ומיקוד regioselective. () מוח עכבר מבוגר DMEM המוטבע מוכן לחיתוך. (B) העובש היה מודבק על vibroslicer גובר עם הלהב מוכן לחתוך פרוסה. (C) Regioselective ביטוי גני Heterologous אסטרטגיות למסירת biolistic לפרוסות מוח organotypic העטרה. תמונות שהוכנו מתמונות שהתקבלו מאטלס ההתייחסות אנטומיים אלן מוח אטלס 23. לוח שמאלי מציג שני אזורי המוח שונים הממוקדים לדוגמא ירושלים. כדי להגביל את ביטוי גנים (1) לאזור בקליפת המוח של האונה השמאלית. כדי להגביל את ביטוי Heterologous הגן (2) לאזור ההיפותלמוס במוח. פנל אמצעי מראה that את הביטוי של שני גני Heterologous (3 ו -4) יכולים להיות מבודדים ומשווים את ההיפוקמפוס של שתי ההמיספרות באותה הפרוסה organotypic, בעצם ביטול הטיה כלשהי משימוש בחלקים שונים ו / או מתן האפשרות לטיפול בcrosstalk דיסטלי מההשפעות של את אותם גנים. פנל ימני מראה את החפיפה האפשרית של משלוח מהונדס להביע את הגן הראשון (5) באזור קליפת המוח מדויק תוך הבעת גן אחר (6) בשונה אזור בקליפת המוח עדיין חופף. זה מאפשר לנתח את ההשפעה של אפנון הגנטי של כל גן Heterologous לבד וגם בשילוב בתוך אותו פרוסה. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 3
ראה .3 דפוס פיזור Biolistic איור על filtאה נייר ותמונה בהגדלה נמוכה. החבית () השתפרה פוטרה על נייר סינון כדי לקבוע את התפשטות חלקיקי זהב. צד שמאלי מציג את ההתפלגות של החבית השתפרה בזמן שהפנל הימני מראה חבית הרגילה. פס שחור: 1 סנטימטר. תמונה נלקחה מאובריאן, et al. 17. תמונה (B) נמוכה הגדלה מראה את להג transfection סטוכסטיים בתוך 3 מ"מ התפשטות biolistic בתוך האזור בהיפוקמפוס של עכברים זקנים 6 בשבוע. בר לבן:. 100 מיקרומטר אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 4
איור 4 משלוח Biolistic של DNA חלבון פלואורסצנטי מקודד לפרוסות organotypic של עכברים זקנים 6 בשבוע. () Inverteתמונות confocal ד של פרוסת organotypic קבועה של המוח הקטן של תא פורקינג pEGFP-N1 חלקיקי זהב מצופה transfected. תמונה צולמה ב40X הגדלה. פס שחור:. 30 מיקרומטר (ב) מראה הגדלה 60x של נמל dentritic אחר של תא פורקינג כדי להדגיש את עמוד השדרה. פס שחור:. 5 מיקרומטר (C) מציג תמונת confocal של פרוסות קבועות שנלקחו מהאזור בהיפוקמפוס ב60x הגדלה של ארבעה DSredFP transfected תאים פירמידליים. פס שחור:. 10 מיקרומטר אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 5
.5 משלוח איור Diolistic של צבעי ניאון תיוג קרום לפרוסות organotypic. (א) מראה ההדמיה החיה של ליטר נוירון היפוקמפוסabeled עם DIO תחת הגדלת 20X. בבירור ניתן לראות קוצי dentritic כמו גם האקסון כפי שזוהה על ידי ההיעדרות של עמוד השדרה dentritic ואת הנוכחות של boutons הסינפטי שצוין על ידי חץ לבן. בר לבן: מכתים 30 מיקרומטר (B) מבוטא באזור בהיפוקמפוס שכותרתו עם DIO וcounterstained עם DAPI.. בר לבן:. 30 מיקרומטר הגדלה (C) גבוהה (60x) של dentritic הקוצים שנמצאו באזור CA1 של ההיפוקמפוס. בר לבן:. 5 מיקרומטר אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Discussion

הפרוטוקול מתאר גישות כדי לספק צבעים וחומרים גנטיים לפרוסות organotypic מבוגרות באמצעות אקדח גנים משופר. בעיקרו של דבר, הסוגים של צבעים והמגוון הרחב של גנים אפשריים לעשות בשיטה זו רבת פנים ונוחים לענות למגוון רחב של שאלות ביולוגיות. שיטת הצגת regioselective משמשת, במקרה זה לאזור מסוים במוח, פותחת אפיקים חדשים לניסויים כאפנון גן Heterologous של אזורים מקומיים בתוך ארכיטקטורה רלוונטית מבחינה ביולוגית לא היה בקלות אפשרית לפני. יש לנו נקבעו בעבר כי שיטה זו ניתן להשתמש בפרוסות organotypic מבוגרות, שבו סינפסות בוגרות נוצרות באופן מלא, כפי שהראה הישרדות תא משופרת וביטוי גני Heterologous לשבועות רבים 13. עם כניסתו של תנאים חדשים ומשופרים תרבות למוח של יונקים, כמו גם רקמות אחרות, השימוש במודולציות גנטית regioselective תהפוך שימושית יותר ויותר עבור מגוון רחב של biocheמיכל ניתוחים.

כפי שמדגישים כאן ובעבר הוזכר על ידי אחרים 24, גורמים רבים ושונים יכולים בקלות להשפיע על הדיוק והמהימנות של מסירת biolistic. ראשית, הכנת חלקיקי הזהב קשור לצבעים או DNA חייב להיות מאוזנת במידה מספקת כדי למנוע הצטברות וכדי להקל על גירוש מטען מחסנית. סידן וspermidine בפתרון חלקיקי מיקרו DNA-זהב יכולים לסייע המחייב של מולקולות דנ"א לחלקיקי זהב. היכולת לחלקיקים לחדור את התאים תחת לחץ מופחת נקבעה בעבר 17. שנית, אקדח הגן חייב להיות מותקן יציב ככל האפשר עם הזווית ומרחק הנכונים. מד לחץ אמין הוא גם הכרחי לשחזור, כדי לשמור על שלמות רקמה, וכדי להאיץ כראוי חלקיקי זהב למטרות שלהם נועדו. ואכן, המרחק, הכיוון, והיציבות של הציוד גם גורמים מכריעים לtargeting ודיוק של משלוח regioselective. כמבנים מוחיים אלה הם קטנים מאוד, שינויים קלים בזווית הירי יכולים היו בקלות להפוך את ההליך כולו פחות אמין. ולבסוף, ההכנה והתחזוקה של פרוסות organotypic קיימא כבר כרוכה בקשיים במשך עשורים רבים עדיין פרוטוקולים בשפע ואמינים לבעלי חיים שונים, אזורים במוח, גילים וcocultures זמינים כעת 2,4,25,26. נהלים אלה צריכים להיות לפני הגשת הרקמות לפרוצדורות biolistic-מותאם משתמש. זה יותר בקלות יאפשר למשתמש להעריך את השפעתה של חלקיקי biolistic וההשפעה של הגן Heterologous על התרבויות שלהם unbiasedly. לשם כך, השימוש בגני ניאון כגון EYFP וEGFP יכולים גם מאפשרים למשתמש רומן כדי לבדוק את דיוק המיקוד וגם לבצע את הכדאיות הסלולרית דרך ביטוי גני Heterologous על פני תקופה ממושכת של זמן 13. רבים מהצעדים הקריטיים לאמיניםושימוש לשחזור של פרוטוקול זה מודגשים בשלוש הפסקאות הבאות.

לtransfection יעיל, ריכוז DNA חייב להיות מתאים. ריכוזים נמוכים מדי ימנעו את תשואת transfection בעוד ריכוזים גבוהים מדי עלולים לגרום להצטברות של חלקיקים. מצרפים של זהב יכולים להפחית באופן דרמטי את יעילות transfection, לגרום להפצות לא אחידות, ויכולים להוביל לרעיל מוגברים וסטרס חמצונים. בעיות עם יעילות ציפוי צפויות בשל פקיעת תוקפו של פתרון spermidine (יש להחליף כל 2 עד 3 חודשים). להתפשטות biolistic נאותה, התיוג חייב להיות אפילו. תיוג הלא הומוגנית של ההשעיה חלקיק זהב / DNA יכול להיות בגלל פתרון PVP. גם זה צריך להיות מוחלף כל 2 עד 3 חודשים. ציפוי של חלקיקי הזהב ניתן לראות על ג'ל אלקטרופורזה agarose כלהקת MW גבוהה 27.

כל syst הביולוגישלהם תחת חקירה, כמו גם כל מכשיר אחר המשמש עשוי לדרוש שינויים קטנים בלחץ גז כדי להגיע לרמות מותאמות של transfection והתפשטות biolistic. הפרמטר הקריטי הוא הלחץ של דופק הליום נדרש להתפשט מיקרו או ננו נשאים ממחסנית הפלסטיק ולהניע אותם לרקמה. לחץ גז גבוה ישפיע הישרדות תא, משום שהיא תיצור גלי הלם על פני היעד ולשבש או לנתק את הרקמה מהמטריצה ​​17. מכוון את קנה רובה גן ויש להם המנגנון בדיוק בניצב לרקמה חשוב למסירת biolistic מדויקת. האזור שנבחר צריך להיות ממוקם במרכז הישיר של החבית בדיוק 10 מ"מ מהפתח החיצוני. התוצאה היא בקוטר 3 מ"מ של משלוח חלקיקי זהב סביב מוקד הרעש. קנה אקדח הגן יש לנקות עם אתנול 70% לאחר כל שימוש. כדי להגן על הרקמות מאגרגטים חלקיקים גדולים, החבית מכילה גם רשת ניילון שshoULD להיות מוחלף באופן קבוע כדי לשמור על רמת ביצועים אופטימליים. על מנת להחליף את הרשת לפתוח את המכסה ואז להכניס רשת ניילון חדשה בין הכובע וO-הטבעת.

Fluorescently תאים שכותרתו צריכים להיות גלויים לפחות 1 - 2 ימים לאחר transfection סביב המוקד. עדר או חוסר תיאום של תיוג יכול להיגרם כתוצאה מהכנה וחוסר היציבות מספקת של הרכבת אקדח הגן. התצפיות של תאים באמצעות מיקרוסקופיה confocal תלויה במספר הגורמים: אורך הגל של אור עירור / הפליטה, גודל חריר, NA של העדשה האובייקטיבית, מקדם שבירה של רכיבים בנתיב האור, עומק הרקמה, והיישור של המכשיר. גורמים אלו צריכים להיות מותאמים לכל מערכת תחת חקירה.

התקדמות שחלה באחרונה בbiolistics נוצלה להצלחה של שיטה זו. קנה אקדח הגן שימש במחקר זה היה שונה על מנת להפחית את הלחץ הדרוש, כמו גם לנתב biolisticדפוס פיזור לאזור יותר מוגבל וספציפי 17,19. שינויי חבית אחרים לא ניסו להגביל את התפשטות biolistic ולהפחית את לחץ יצוא 28 עדיין חבית זו מעוצבת בהתאמה אישית גן האקדח תוכננה על ידי ד"ר אובריאן היא מצויד לאקדח הליוס ג'ין הסטנדרטי רכיב בודד. בהמשך לכך, חלקיקי זהב תת מיקרומטר שמשו כדי להפחית את הפולשנות של חלקיקי מיקרומטר שקבענו בעבר שנגרמו נזק לתאים וסופו של דבר, אובדן של ביטוי גני Heterologous המתמשך. שינויים אלה להליך biolistic שיפרו את ההיתכנות ואת שחזור הכולל של השיטה 13. שיפורים אחרים בהכנת פרוסה כגון פתרון בעיות מעמיקות של הליך החיתוך, באמצעות מטריצת DMEM-Agarose לשמר את המוח, והתקדמות שימושית רבות אחרת בהכנת פרוסה מוח organotypic שדווחו בעבר 13 אפשרו לנו לחקור את השימוש בפרוסות מבוגרות ש פיתח בוגררשתות הסינפטי.

במחקר שלנו אנו משמשים בעיקר צבעים והגנים Heterologous ניאון לדמיין מורפולוגיה של תאים כקריאה על יעילות transfection ויכולת תמונת המאפיינים מורפולוגיים של תאי עצב ברקמות מוח עכבר. יחס האות לרעש של המשלוח סטוכסטיים ברדיוס מוגדר אפשרה לנו לבודד את נמל dentritic של תא בודד לחלוטין בהקשר המקורי שלו. מאמצים רבים נעשו שימוש כדי לחקור מאפיינים מורפולוגיים אלה, 'connectomics' המיפוי או לתייג תאים בודדים עבור ניתוחים שונים, שיטה זו יכולה היתה בקלות להיות משולבת עם פרוטוקולים קיימים כגון מדידות אלקטרופיזיולוגיה וneurite 29,30. ככל הנראה, שילוב של גני Heterologous ניאון יכול לאפשר הרבה יותר חזק תיחום של תאים בודדים כהפצה סטוכסטיים של חלבוני ניאון, והשילוב שלהם היה לקבוע את הצבע של התאים הבודדים 31,32. השימוש במקדמי תא ספציפיים כגון synapsin וחלבון חומצת fibrillary גליה במעלה הזרם של אקסון גן Heterologous יכול גם להגביל את הביטוי לאוכלוסיות 33. ואכן, מגוון בלתי פוסק של חומר גנטי יכול גם להיות מועבר באופן regioselective על ידי חלקיקי זהב תוך שימוש באותו הליך זה. סך הכל transfected האזורים ובכך יכולים להיות מנותחים בשיטות מסורתיות, כגון נתיחה והגשת שהאזור לimmunoblotting המערבי כדי לנתח את ההשפעות נקודתיות של גן Heterologous.

שיפורים בנהלים פרוס organotypic גם יאפשר שימוש רחב יותר של רקמות מוח לניסויים לטווח ארוך, כמו גם היתר השימוש ברקמות וcocultures אחרים והיה להקל על הליכי transfection. שומנים בדם וtransfection פולימר כבר דיווחו בעבר להשפיע על הומאוסטזיס קרום, הפנמה, חדירות חלבון 34 ולעתים קרובות להראות יעילות נמוכה מאוד לtransfect terminally מובחן תאי עצב. מיקוד מטען ספציפי תא הוא גם נוח רק לתאים המבטאים את הקולטנים בתא השטח דרושים להפנמה, ולמרות ששיטה זו יכולה להיות מאוד סלקטיבית, יכול לחסור ממוקד זה regioselectivity 35. וקטורים ויראליים אחרים הם לעתים קרובות קשים ויקרים לייצור, דורשים תקנות מחמירות ויש מדי פעם הפגינו חששות בטיחות. לכן יש משלוח Biolistic יכולת שאין כמו transfect regioselectively נוירונים וסוגי תאים אחרים בתוך רקמות קיימא. כזהב הוא לא התקדמות רעילה, נוספת בשימוש בbiolistics יכולה לסלול את הדרך לשימושים ביו כגון משלוח דרך העור תרופות, in vivo מסירת גן לא פולשנית, כמו גם טיפולי גן nonviral מקומיים.

Acknowledgments

המחברים מבקשים להודות לסדנת MRC-LMB לייצור חבית אקדח גן המשופר. כמו כן, אנו רוצים להודות לד"ר דוד ר 'Hampson באוניברסיטת טורונטו לשימוש בציוד ובמשאבים.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Helios gene gun system Bio Rad 165-2431 Gene gun and tube prep station
HEPES  Sigma 83264-100ML-F
NaCl Sigma S7653-250G
KCl Sigma P9333-500G
Na2HPO4 Sigma S7907-100G
KH2PO4 Sigma P9791-100G
0.2 µm sterile filter unit Millipore SCGPU05RE to filter media
DMEM Gibco 21885-025
Fetal calf serum Gibco 10270-098
D-Glucose Sigma G8270-100G
N2 Life Technologies 17502-048
Penicillin/Streptomycin Sigma p4333
Polyvinylpyrrolidone Sigma 856568-100G
Ethanol  Sigma 277649-100ML
Spermidine Sigma S2626
Agarose Bio Rad 161-3100EDU
Vibroslicer Laica VT1200 We used a custom design
Gene gun mount Built in house at U of T
Humidified cell culture incubator
Gold nanoparticles cytodiagnostics G-40-20
pEYFP-N1 Clontech
Tubing cutter Bio Rad 165-2422
Tefzel tubing Bio Rad 165-2441
Barrel Custom made by the LMB
Cell culture insert Millipore PICM0RG50
Paraformaldehyde Sigma 76240 Fluka
Dissecting microscope for convenience
Confocal microscope user defined for usage
Glass slide VWR 2588-CA48323-185
Microcover glass VWR 2448-CA48366-067-1
Vectashield mounting media Vector laboratories H-1400  

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Klein, R. M., Wolf, E. D., Wu, R., Sanford, J. C. High-velocity microprojectiles for delivering nucleic acids into living cells. Biotechnology. 24, 384-386 (1987).
  2. Kim, H., Kim, E., Park, M., Lee, E., Namkoong, K. Organotypic hippocampal slice culture from the adult mouse brain: a versatile tool for translational neuropsychopharmacology. Progress in Neuro-Psychopharmacolog., & Biological Psychiatry. 41, 36-43 (2013).
  3. Morin-Brureau, M., De Bock, F., Lerner-Natoli, M. Organotypic brain slices: a model to study the neurovascular unit micro-environment in epilepsies. Fluids and Barriers of the CNS. 10, 11 (2013).
  4. Millet, L. J., Gillette, M. U. Over a century of neuron culture: from the hanging drop to microfluidic devices. The Yale Journal of Biology and Medicine. 85, 501-521 (2012).
  5. Cho, S., et al. Spatiotemporal evidence of apoptosis-mediated ischemic injury in organotypic hippocampal slice cultures. Neurochemistry International. 45, 117-127 (2004).
  6. Daviaud, N., et al. Modeling nigrostriatal degeneration in organotypic cultures, a new ex vivo model of Parkinson's disease. Neuroscience. 256, 10-22 (2013).
  7. Drexler, B., Hentschke, H., Antkowiak, B., Grasshoff, C. Organotypic cultures as tools for testing neuroactive drugs - link between in-vitro and in-vivo experiments. Current Medicinal Chemistry. 17, 4538-4550 (2010).
  8. Oishi, Y., Baratta, J., Robertson, R. T., Steward, O. Assessment of factors regulating axon growth between the cortex and spinal cord in organotypic co-cultures: effects of age and neurotrophic factors. J Neurotrauma. 21, 339-356 (2004).
  9. Baratta, J., Marienhagen, J. W., Ha, D., Yu, J., Robertson, R. T. Cholinergic innervation of cerebral cortex in organotypic slice cultures: sustained basal forebrain and transient striatal cholinergic projections. Neuroscience. 72, 1117-1132 (1996).
  10. Barateiro, A., Domingues, H. S., Fernandes, A., Relvas, J. B., Brites, D. Rat Cerebellar Slice Cultures Exposed to Bilirubin Evidence Reactive Gliosis, Excitotoxicity and Impaired Myelinogenesis that Is Prevented by AMPA and TNF-alpha Inhibitors. Molecular Neurobiology. 49, (1), 424-439 (2013).
  11. Franke, H., Schelhorn, N., Illes, P. Dopaminergic neurons develop axonal projections to their target areas in organotypic co-cultures of the ventral mesencephalon and the striatum/prefrontal cortex. Neurochemistry International. 42, 431-439 (2003).
  12. Mingorance, A., et al. Regulation of Nogo and Nogo receptor during the development of the entorhino-hippocampal pathway and after adult hippocampal lesions. Molecular and Cellular Neurosciences. 26, 34-49 (2004).
  13. Arsenault, J., O'Brien, J. A. Optimized heterologous transfection of viable adult organotypic brain slices using an enhanced gene gun. BMC Research Notes. 6, 544 (2013).
  14. De Simoni, A., Griesinger, C. B., Edwards, F. A. Development of rat CA1 neurones in acute versus organotypic slices: role of experience in synaptic morphology and activity. J Physiol. 550, 135-147 (2003).
  15. Laywell, E. D., et al. Neuron-to-astrocyte transition: phenotypic fluidity and the formation of hybrid asterons in differentiating neurospheres. J Comp Neurol. 493, 321-333 (2005).
  16. Walder, S., Zhang, F., Ferretti, P. Up-regulation of neural stem cell markers suggests the occurrence of dedifferentiation in regenerating spinal cord. Dev Genes Evol. 213, 625-630 (2003).
  17. Brien, J. A., Holt, M., Whiteside, G., Lummis, S. C., Hastings, M. H. Modifications to the hand-held Gene Gun: improvements for in vitro biolistic transfection of organotypic neuronal tissue. J Neurosci Methods. 112, 57-64 (2001).
  18. Brien, J., Unwin, N. Organization of spines on the dendrites of Purkinje cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 1575-1580 (2006).
  19. Brien, J. A., Lummis, S. C. Nano-biolistics: a method of biolistic transfection of cells and tissues using a gene gun with novel nanometer-sized projectiles. BMC Biotechnology. 11, (66), 1472-6750 (2011).
  20. Brien, J. A., Lummis, S. C. Diolistic labeling of neuronal cultures and intact tissue using a hand-held gene gun. Nature Protocols. 1, 1517-1521 (2006).
  21. Brien, J. A., Lummis, S. C. Diolistics: incorporating fluorescent dyes into biological samples using a gene gun. Trends in Biotechnology. 25, 530-534 (2007).
  22. Han, X., et al. Validation of an LDH assay for assessing nanoparticle toxicity. Toxicology. 287, 99-104 (2011).
  23. Lein, E. S., et al. Genome-wide atlas of gene expression in the adult mouse brain. Nature. 445, 168-176 (2007).
  24. Woods, G., Zito, K. Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture. Journal of Visualized Experiments. 12, (2008).
  25. Su, T., Paradiso, B., Long, Y. S., Liao, W. P., Simonato, M. Evaluation of cell damage in organotypic hippocampal slice culture from adult mouse: a potential model system to study neuroprotection. Brain Research. 1385, 68-76 (2011).
  26. Mewes, A., Franke, H., Singer, D. Organotypic brain slice cultures of adult transgenic P301S mice--a model for tauopathy studies. PloS One. 7, 45017 (2012).
  27. Ito, T., Ibe, K., Uchino, T., Ohshima, H., Otsuka, M. Preparation of DNA/Gold Nanoparticle Encapsulated in Calcium Phosphate. Journal of Drug Delivery. 2011, 647631 (2011).
  28. Rinberg, D., Simonnet, C., Groisman, A. Pneumatic capillary gun for ballistic delivery of microparticles. Appl Phys Lett. 87, 014103 (2005).
  29. Meijering, E. Neuron tracing in perspective. Cytometry. Part A : the Journal of the International Society for Analytical Cytology. 77, 693-704 (2010).
  30. Sasaki, T., Matsuki, N., Ikegaya, Y. Targeted axon-attached recording with fluorescent patch-clamp pipettes in brain slices. Nature Protocols. 7, 1228-1234 (2012).
  31. Gan, W. B., Grutzendler, J., Wong, W. T., Wong, R. O., Lichtman, J. W. Multicolor 'DiOlistic' labeling of the nervous system using lipophilic dye combinations. Neuron. 27, 219-225 (2000).
  32. Livet, J., et al. Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system. Nature. 450, 56-62 (2007).
  33. Gholizadeh, S., Tharmalingam, S., Macaldaz, M. E., Hampson, D. R. Transduction of the central nervous system after intracerebroventricular injection of adeno-associated viral vectors in neonatal and juvenile mice. Human Gene Therapy Methods. 24, 205-213 (2013).
  34. Arsenault, J., et al. Botulinum protease-cleaved SNARE fragments induce cytotoxicity in neuroblastoma cells. Journal of Neurochemistry. 129, 781-791 (2014).
  35. Arsenault, J., et al. Stapling of the botulinum type A protease to growth factors and neuropeptides allows selective targeting of neuroendocrine cells. Journal of Neurochemistry. 126, 223-233 (2013).
Regioselective Biolistic המיקוד בOrganotypic פרוסות המוח באמצעות אקדח ג'ין השתנה
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Arsenault, J., Nagy, A., Henderson, J. T., O'Brien, J. A. Regioselective Biolistic Targeting in Organotypic Brain Slices Using a Modified Gene Gun. J. Vis. Exp. (92), e52148, doi:10.3791/52148 (2014).More

Arsenault, J., Nagy, A., Henderson, J. T., O'Brien, J. A. Regioselective Biolistic Targeting in Organotypic Brain Slices Using a Modified Gene Gun. J. Vis. Exp. (92), e52148, doi:10.3791/52148 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter