Abstract
심근 경색은 여전히 지난 수십 년 동안 스텐트 개발 분야에서 상당한 진전에도 불구하고, 서방 국가에서 사망의 주요 원인이 남아있다. 기본 메커니즘의 해명과 새로운 치료 전략의 개발을위한 유효한 동물 모델의 가용성은 필수입니다. 우리가 심근 경색에 대처하기 위해 생체 내 조건 하에서 pathomechanisms 심혈관 질병에 대한 새로운 통찰력을 필요로하기 때문에, 동물 모델의 타당성은 중요한 측면이다. 그러나 동물의 보호는 이러한 맥락에서 매우 적합하다. 따라서, 우리는 높은 재현성과 동물의 생존율을 보장 마우스에서 심근 경색의 최소 침습과 간단한 모델을 확립한다. 따라서,이 모델은 동물 실험의 3R 원칙의 요구 사항 (교체, 정제 및 축소)을 충족하고 cardiov에 대한 치료 전략의 추가 개발에 필요한 과학적 정보를 보장ascular 질환.
Introduction
심근 경색은 선진국에서 사망의 주요 원인 중 하나입니다. 진단 및 치료 방법의 부정 할 수없는 진전에도 불구하고, 심혈관 질환은 여전히 사망의 주요 원인이다. 향상된 수명과 삶 리스크를 감안할 때, 심혈관 질환의 발생의 지속적인 증가는 미래에 예상된다. 따라서, 심혈관 질환의 치료를위한 신규 한 접근법을 확립하고 검증하는 강한 요구가있다. 인간 연구의 내용이 제한 고통, 이러한 연구는 일반적으로 설명하고, 이들 주요 건강 문제에 대한 해결책을 제공 할 수 없게되고, 분자 수준의 메커니즘을 이해하기에 불충분하다.
또한, 기초 연구는 실험실에서 심혈관 질환의 메카니즘을 재현하기 위해 복잡하고 어려움으로 인해 제한되어왔다. 따라서, 심장의 병태 생리에 대한 우리의 지식을 증가혈관 질환, 그것은 동물 모델 1, 2를 확인하는 것이 필수적이다. 그러나, 동물 실험의 많은 원인 필요한 다른 시점에서 심근 경색, 분석 후 치유에 관여하는 분자의 모든 이벤트 캐스케이드의 동정을 행 하였다.
심근 경색은 종종 실험 동물 모델을 이용하여 수행된다. 작은 동물 3-11 심근 경색을 유도하는 큰 동물 모델보다 세포 및 분자 사건을 조사하기 위해 사용되는 가장 적합하고 효율적인 모델이다. 또한, 다른 종은 마우스 (12) 형질 전환 또는 녹아웃 균주의 가용성을 제공합니다. 이 마우스 모델은 13, 14 (스텐트 재 협착에, 죽상 동맥 경화증 등) 심장 혈관 병변을 포함한 다른 질환에 매우 유용하다. 또한, 낮은 임신 기간과 자손들의 수가 많으면 심근 INFA의 분자 메커니즘을 연구하는 가장 매력적인 시스템으로 마우스 모델을 한정rction (12).
그럼에도 불구하고, 쥐의 심장의 크기가 미세 동안 조작의 높은 정밀도를 기대하고있다. 이러한 자격을 갖춘 숙련 된 수술 인력을 교육하는 것은 시간이 많이 소요되는 작업 집약적 인 과정이다. 따라서, 우리는 여기에 같은 마우스의 복잡한 심근 경색 모델을 수행하는 학생이나 기술자 심지어 평균 자격과 공동 작업자를 안내하는 팁과 트릭을 포함하여 상세한 미세 절차를 제시한다.
우선, 삽관은 절개술을 사용하지 않고 짧은 뉼러 의해 수행된다. 흉부 절개 리브 및 / 또는 주변 조직의 손상을 방지, 늑간 지역에 위치해 있습니다. 이 하위 단계는 빠른 회복과 치유 (15)을 보장하기 위해 매우 관련이있다. 여전히 상당한 경색 크기를 유지하면서, 합자 높은 생존율, 만성 허혈 및 허혈 / 재관류 모델을 미분한다. 우리의 경험은 그쪽을 보여줍니다실크 봉합사를 이용하여 t는 극저온 부상 16에 비해 더 높은 재현성을 보장한다.
결론적으로, 여기에 기재된 방법은 작은 동물 모두 만성 허혈 및 허혈 / 재관류 모델에서 적용 가능하다. 이 절차에 제시된 팁과 트릭은 작은 동물 모델에 적용하기에도 부족하거나 평균 자격을 가진 직원을 가능하게하기위한 것입니다.
Protocol
참고 : 본 논문에서는 실험을 저지 독일어와 유럽 동물 관리 지침에 따라 수행된다. 동물은 교수 R. Tolba 박사 A. Teubner (동물 복지 담당관)의 감독하에, 실험 동물 과학 연구소, Universiy 병원 아헨, 독일의 동물 시설에서 사육된다.
1. 동물 관리
- 음식과 전문 수의학 제어 및 치료에 대한 적절한 액세스를 보장, 전문 치료실에서 쥐를 유지합니다. 동물이 이동하거나 외부에서 구입하는 경우, 절차를 진행하기 전에 한 주간의 숙박 시설을 확보하시기 바랍니다.
2. 삽관
- , 8-10 주 된 남성 C57BL / 6 야생형 마우스를 마취 100 ㎎ / ㎏ 케타민 10 ㎎ / ㎏ 자일 라진의 복강 내 주사를 사용하여 25~27g. 발가락 핀치 반사에 의한 마취의 수준을 모니터링합니다. 절차를 수행하는 동안 건조를 방지하기 위해 눈에 수의사 연고를 놓습니다.
- 멸균 물질 및기구를 사용하여 수술하는 동안 감염을 피하기 위해 무균 상태의 유지를 확신시킨다.
- 가열 수술 테이블에 앙와위에서 마취 마우스를 놓습니다. 작은 면도칼을 사용하여 복부 목 영역과 흉부의 왼쪽 절반 모두에서 머리를 제거하고 절개하기 전에 70 % 알코올로 소독.
- 목의 중앙에 수술 가위를 사용하여 0.5 cm의 작은 중간 절개를 수행합니다. 피부 아래에, 살균 곡선 집게로 2 지방 기관을 통해 이동하여 피복 근육의 투명도를 통해 실체 현미경 아래에있는 기관을 시각화.
- 실체 현미경 (그림 1A)를 사용하여 구두로보기 아래 기관에 삽관 정맥을 소개합니다. 죽 금속 정맥을 구별투명한 조직을 우. 그리고 어느 순간 (그림 1B)의 운전 중, 위치 및 위치를 확인합니다.
- 작은 동물 인공 호흡기에 정맥을 연결하고 환기 설정있어서를 조정 가이드 라인 (100 ~ 150 μL와 분당 100 ~ 150 사이의 호흡 속도 사이의 호흡량)를 제조하고 있습니다.
3. 심근 경색 유도
- xyphoid 왼쪽 axila 라인 사이의 중간에 피부 절개 미만의 0.5 cm를 수행한다. 하부 리브에서 근육 층을 분리 집게를 사용한다.
- 흉강 (17)를 개방 할 때까지 작은 가위를 사용하여 리브 사이에 작은 절개를 수행한다. 만성 경색의 경우, 4 번째 늑간 공간 (그림 1D)에서, 5 번째 늑간 공간 (그림 1C) 및 / 또는 허혈 / 재관류 모델에서 절개를 수행합니다 쉽게 접근 번호의 2 번째와 아래에서 3 일
- 흉강을 엽니과 마음을 시각화하기 위해 절개로 견인기를 놓습니다.
- 조심스럽게 과도한 섬유화 과정을 방지하기 위해 심낭을 제거합니다.
- 깊은 위치 빛 붉은 혈관으로 좌측 하행 관상 동맥 (LAD)를 시각화. LAD이 가시화 할 수없는 경우, 재현성을 높이기 위해 일부 참조 점을 고려한다.
- 만성적 경색증 모델의 경우,도 1c에 도시 된 바와 같이 참조로 정맥을 갖는 (귓바퀴와 정점 사이) 심장의 복부 측면의 중간에 배치 합자. 전층 전후방 경색을 얻었다 0/7 실크 봉합사를 이용하여 동맥의 두 가지를 결합한다. 그레이 컬러는 봉합사의 위치를 표시하고 (도 1C) 필요하다면 반복 될 수있다.
- 허혈 / 재관류 모델의 경우, LAD의 본체 (그림 1D)를 통해, 귓바퀴에서 합자를 놓습니다. LIG 손해ature는 용기의 무결성을 보호하기 위해 실리콘 튜브 위에 위치한다. 회색 색상은 경색 영역을 표시하고 전체 심장 (그림 1D)에 나타납니다. 허혈 기간 동안 리브에 시간적 봉합사를 놓고 조직의 건조를 방지하기 위해 압축을 이용하여 적셔. 허혈 후 실리콘 튜브를 분리하고 재관류를 시각화 작은 가위로 절단 봉합사.
- 절차의 시작 부분에 사용되는 마취제와 진통제가 (2.1 및 2.2 단계) 옆에, 동물의 적절한 편안함을, 또는 기관의 동물 관리 지침을 따르지 수술 중 0.5 % 이소 플루 란을 사용합니다.
4. 봉합 및 복구
- 따뜻한 등장 소금 용액을 작성하여 가슴에서 잔류 공기를 제거합니다.
- 3 봉합 0/6 (그림 2A와 2B 참조)와 함께 가슴을 닫습니다. 으로 보장하기 위해 90 °의 각도로 배치 내측 봉합도 2에 도시 된 바와 같이, 리브 폐쇄 ealed (도 2A, B).
- 2 봉합 (그림 2C)와 3-4 봉합 0/6 (그림 2D)로 피부와 근육 층을 닫습니다. 또한 심 초음파 측정을위한 적절한 창을 얻기 위해 별도로 봉합을 수행합니다.
- 인공 호흡기에서 삽관 정맥을 분리하고 자발적인 호흡을 할 수 있습니다. 나중에 식별를 들어, 로컬 시스템 (교육 기관에서 동물 복지 담당자에게 문의)를 사용하여 마우스를 표시합니다.
- 이 깨어 때까지 빨간색 램프 아래 왼쪽에 마우스를 놓으십시오. 충분한 의식을 회복 할 때까지 무인 동물을 두지 마십시오. 완전히 회복 될 때까지 다른 동물의 회사에서 일하기 위해 수술을 한 동물을 허용하지 않습니다.
- 교육 기관의 동물 관리 지침에 따라, 다음 3 일 동안 buprenophine 0.1 mg / kg 체중 피하 통증 치료 관리.
심근 경색의 5 분석
- 구혈률, 분수 단축, 심 박출량과 심장 크기 : 정기적으로 심 초음파 (그림 3A)에 의해 심장 기능을 모니터링 할 수 있습니다.
- 100 밀리그램 / kg 케타민, 10 밀리그램 / kg 자일 라진의 복강 내 주사를 사용하여 동물을 마취. 반사의 부족으로 수술 전에 적절한 마취를 확인합니다.
- 흉강을 열고 광범위하게 멸균 PBS 용액 세척 나머지 혈액에 배치, 마음을 절제.
- 필요한 경우, 흉강에서, 또는 마음의 제거 후 infracted 지역의 부상을 피함으로써 심장에서 직접 혈액을 수집합니다.
- 세척 후, 포화 KCl을 솔루션에 diastola의 마음을 중지 (steril는 PBS에 3M KCl을 여과). 조직 학적 분석을 위해 10 % 포르말린에 마음을 수정하고 단계 5.7를 진행합니다.
- 필요한 경우, 차의 생존 능력을 측정에반스 블루 / 트리 페닐 테트라 졸륨 클로라이드 (TTC) 염색 DIAC 세포. 세척하지 않고, 초기 장소에서 합자를 재 구축 한 후, 대동맥 캐 뉼러를 사용하여 200 μL 1 % 에반스 블루 용액으로 심장을 관류 및 -20 ° C에서 작은 비닐 봉투에 마음을 동결.
- 2 시간 후, 날카로운 메스를 사용하여 5 횡으로 슬라이드를 수행함으로써 제조 된 바와 같이, 37 ° C에서 TTC 용액 중에서 10-15 분 동안이를 부화. 10 % 포르말린에 10 분 동안 슬라이드를 수정하고 추가 분석을 위해 현미경 슬라이드 사이에 넣어 두 었어요.
- 횡단 단면을 수행하기 위해, 끝의 마음을 위치시킴으로써, 파라핀의 심장 조직을 포함시킵니다. 5 μm의 직렬 섹션을 수행합니다. 처음 20 절을 수집하고 다음 300 μm의 폐기합니다. 승모판 레벨에 도달 할 때까지 부분 프로토콜을 계속 (도 3A, B). 직렬 부분은 떨어져 전체의 마음을 따라 400 μm의를 수집하고 F를 염색 할 수있다또는 정량적 분석.
- Gomori의 한 단계 6-8를 염색하여 경색 크기를 측정한다.
- 보통의 면역 조직 염색을 사용하여 시리얼 부분에서 혈관 신생, 콜라겐 내용이나 염증 세포 모집을 분석합니다.
Representative Results
심근 경색 절차는 25-30 분 내에 발생하고, 10 %의 사망률을 나타낸다. 수술 후, 마우스는 다음 15 분 이내에 마취에서 회복. 물리적 손상이 운영하는 마우스에 관찰되지 않았다. 복구 프로세스가 염증 단계에서 방해하는 경우에는 이후 만성 심근 경색 후 심장 파열의 위험이 높은 일주이있다. 심장 펌핑 중에 그 크기를 크게 변화시킬 수 있기 때문에 모든 수집 하트 diastola, 예를 들어, 동일한 위치에서 정지 할 수있는 것이 중요하다. 이 포화의 KCl 수용액으로 심장을 관류에 의해 달성 될 수있다. 세포 외 K + 농도 블록들 이온 펌프 증가 심장 활동의 이완기 구속의 결과로, 심장 세포의 막 쉬고 가능성을 감소시킨다.
경색 영역 초음파 분석 (도 3a, 하부 패널)에서 볼 수있다. 비교하여정상 심근은 허혈 영역은 얇고 hypokinetic (그림 3A, 상단 패널)가 나타납니다. 사용하는 모델에 따라 경색 크기는 다를 수 있습니다. 허혈 / 재관류는 얇고 중간 벽을 유도하고 모든 심장 (도 3c)에 걸쳐있는 동안 만성적 경색증 모델은, 정점 (도 3b)의 원형 전층 경색을 유도한다. 경색 크기를 결정하는 많은 방법이있다. 목적은 심장 생존에 직접적인 영향을 분석하는 경우, (18)를 염색 에반스 블루 / TTC는 심근에 변화를 볼 수 있도록, 2 시간 이상 재관류 후에 수행되도록 표시된다. 섹션은 염색 후 즉시 (그림 3B, 가운데 패널)을 분석 할 수 있습니다 또는 2-3일 (그림 3C, 가운데 패널)에 대한 포르말린에 유리 슬라이드 사이에 유지 될 수있다. 파란색 영역은 허혈에 의해 영향을받지 않는 건강한 심근를 나타냅니다. 빨간색 영역은 일 안에 가능한 심근을 나타냅니다전자 허혈성 지역 (위험 심근), 그리고 흰색 영역은 죽은 조직을 나타냅니다. 일반적으로, 경색 크기는 위험 지역으로부터의 퍼센트로서 표현된다.
프로세스 리모델링 후 얻어진 성숙한 흉터 용이 Gomori의 한 단계를 사용하여 염색 immunohistolgy에 의해 측정 될 수있다. 블루 염색 경색과 빨간색 염색 건강한 심실 영역 (그림 3B와 C, 오른쪽 패널) 승모판 막까지 각 레벨에서 첫 번째 섹션에서 결정된다. 인해 다른 레벨 LAD의 결합에 변화를 피하기 위해, 모든 부분에서 경색 고려 총 좌심실 체적 백분율로서 표현된다. 만성적 경색증 모델에서 10-15 %로 허혈 / 재관류 모델 후 15-20%의 경색 부피가 달성 될 수있다. 또한, 만성적 경색증 모델 지기도 팽창을 유도 할 것이다, 허혈 / 재관류 모델에서 관찰되지 않는다 (도 3B 및 C 적합한 올바른T 패널).
등으로 사용할 수 종래 염색 절차 : CD31 혈관을 계시하는데 사용 착색 (빨강,도 4a) 또는 평활근 액틴 염색 근육 섬유 모세포 (녹색,도 4b)을 결정한다. 이중 형광 염색도 심장 근세포의 부재가 더 자동 면역 (도 4C)를 제공하지 않기 때문에, 경색 영역 내에 상이한 타겟 분자를 식별하기 위해 적용 할 수있다.
그림 1 : 내측 절개 삽관의 캐 뉼러 (A)의 삽입. 조직 (B)의 투명성을 통해 금속 캐 뉼러의 stereomicroscopic 시각화. 기관 반지 (파란색 화살표)과 정맥 (검은 색 화살표)가 지적된다. 만성 경색 개월의 늑간 절개델과 LAD의 합자 (C). 합자는 참조로 (파란색 설계도, 낮은 패널) 정맥의 끝을 복용 (귓바퀴와 정점, 낮은 패널에서 검은 사이의) 마음의 중간에 위치하고 있습니다. 동맥의 두 가지 (하단 패널에 빨간색) 결합되어야한다. 그레이 컬러 경색 영역을 나타내며 이는 심장 (오른쪽 하부 패널)의 하부 절반 부에 나타난다. 허혈 / 재관류 모델의 합자은 실리콘 튜브 (오른쪽) (D)을 통해 LAD의 본체 (하단 패널에 빨간색)을 결합, 귓바퀴에서 이루어집니다. 회색 색상은 전체 심장 (오른쪽 아래 패널)에 존재하는 infracted 영역을 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2 : (A)에 90 °의 각도에 위치하는 경우 절개 및 허혈 / 재관류 모델 (B, 왼쪽 패널) 리브 봉합사. 생체 내 이미징 (C, 좌측 패널 ), 근육 봉합 (C, 가운데 패널) 및 피부 봉합 (C, 오른쪽 패널). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3 : 심 초음파 이미지. 정상 (A, 상단 패널) 및 경색 영역 (낮은 패널)의 이미지는, 긴 축에서 취득 (종 방향, 왼쪽 패널) 또는 단축 (가로, 오른쪽 패널)에 .. 경색 만성 합자에 의해 유도(B) 및 재관류 (C) 뒤에 한 열연 허혈. 에반스 블루 / TTC 염색은 관류 (파란색)의 식별 / 비 관류 영역뿐만 아니라 실행 가능한 (적색) / 죽은 (흰색) 심근 (B, C, 중간 패널)를 할 수 있습니다. Gomori의 한 단계 염색 경색 지역 (파란색)의 식별을 허용하고, 일반 지역 (빨간색) (B, C, 오른쪽 패널)에서 그들을 구별합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4 : 다른 염색과이 같은 설명 신 혈관에 CD31 (빨강, 간단한 화살표) 또는 근육 섬유 모세포에 대한 평활근 액틴 (B, G로, infracted 영역에서 수행 할 수 있습니다재 N, 간단한 화살표)뿐만 아니라 이중 염색 (C, CD31 - 레드 / 평활근 액틴 녹색),) 핵 (파란색에 대한 DAPI으로 대조. 근섬유 아세포는 항상 내피 층 (C, 화살표)을 동반 작은 또는 큰 혈관 평활근 세포에서 쉽게 구별 할 수있다. 더블 화살표는 적혈구의 형광도를 가리 킵니다. 규모는 50 μm의 바.
Discussion
절차를 수행하는 동안, 몇 가지 중요한 점은 주목해야 할이 있습니다 : 삽관, 개방 흉강과 LAD의 합자. 첫 번째 중요한 단계는 experiements 전에 동물의 삽관입니다. 많은 그룹은 기관에 직접 캐 뉼러를 삽입 마우스 및 빛의 소스에 고정하기위한 수직 지지대를 사용하고있다. 이 방법은 불확실성 기관에 정맥의 정확한 삽입 관한 정보를 가지고 있으며, 초보자에 의해 실패에 가장 경향이있다. 작은 절개 전진 뉼러의 위치는 그러므로 기본 속도 감소, 전체 기동시에 제어 될 수있다. 또한, 기관 절개 따라서 합병증을 감소시키고 작동 시간을 단축 능가한다.
다음으로 중요한 단계는 흉강의 개구이다. 중간 흉골 절개술은 동물의 회복을 지연 위험이 높은 기동을 나타냅니다. 2-3 리브 (15)의 절단을 의미 측면 왼쪽 절개
합자 자체가 가장 중요한 단계를 나타냅니다. 왼쪽 내림차순으로 관상 동맥이 가시화 될 어렵다, 자주보기없이 결합 될 필요가있다. 따라서 일부 해부학 적 기준점 올바른 결찰을 수행하기 위해 의사를 도와 지적된다. 만성적 경색증 모델의 경우, 결찰은 주요 전방 정맥 (도 2b)의 끝보다도 귓바퀴와 정점 사이, 심장의 복부 측면의 중간에 배치된다. 효율 contro 수피해 지역의 회색 색상의 모양을 시각화하여 채워. 경색 영역을 전방 나타나고 후벽을 포함하지 않는 경우, 새로운 봉합사는 봉합사 제의 왼쪽에 배치 될 수있다. LAD의 주요 루트는이 부분을 검출에 심각한 문제를 표시하지 않는 때문에 귓바퀴 (18)에서 항상 볼 수 있습니다합니다. 그러나, 귓바퀴 출혈 주요 위험을 제시하고, 신중하게 처리 될 필요가있다.
절차는 해당 기기의 존재에 의해 제한된다. 작은 동물 인공 호흡기와 적절한 마취 시스템은 비용이 많이 들고 공간의 가스 및 환기 시스템에 연결이 필요합니다. 또한, 동물의 가까운 감독은 프로 시저가 가능한 임상을 감지 한 후 첫 주에 필요하다. 실험 기간 동안 심장 기능을 검사하기 위해, 고해상도 초음파 복잡한 LANGENDORF 관류 시스템, 소형 또는 뇌 실내 카테터 측정이 요구되는, INV높은 비용과 추가로 전문 지식을 olving.
심근 경색 감안 체외에서 이벤트의 복잡도를 재현 가능한 다른 방법이 없다. 관심 지점에 따라, 랑겐 돌프 시스템에서 고립 된 심장의 생체 관류는 다른 자극이나 약물에 반응하여 수축, 심장 기능과 심근 생존 능력에 대한 정보를 제공합니다. 그러나, 혈액 성분과 면역 체계의 모든 간섭을 배제하며, 심근 경색 후 재 형성 및 치유의 장기 연구에 표시되지 않는다.
심근 경색 절차를 수행 한 후, 모든 다른 기능적 분석은 심 실내 압력 측정치, 초음파 (작은 동물 초음파 시스템) 또는 격리 랑겐 돌프 심장 재관류 같이 수행 될 수있다. 또한, 모든 분자 생물학적 분석, GE를 세포, 단백질, mRNA를, 마이크로 RNA를 식별하기 위해 수행 될 수있다NES 또는 심근 경색에 대한 새로운 치료 전략을 개발하는 치료 표적으로 사용될 수있는 다른 바이오 마커.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Stereomicroscope | Olympus | SZ/X9 | |
| Mouse ventilator | Harvard Apparatus | 730043 | Model Minient 845 |
| Dual Anesthesia System (Tabletop Version) | Harvard Apparatus | Selfcontained isofluranebased anesthesia unit for use on lab tables, with a compact 8" x 11" footprint. | |
| Intubation cannula | Harvard Apparatus | 732737 | |
| Forceps | FST, Germany | 9119700 | standard tip curved 0.17 mm x 0.1 mm |
| Scissors | FST, Germany | 9146011 | straight |
| Vannas scissor | Aesculap, Germany | OC 498 R | |
| Retractors | FST, Germany | 1820010 | 2.5mm wide |
| Retractors | FST, Germany | 1820011 | 5 mm wide |
| Wire handles | FST, Germany | 1820005 | 10 cm |
| Wire handles | FST, Germany | 1820006 | 14 cm |
| Ketamine 10% | CEVA, Germany | ||
| Xylazine 2% | Medistar, Germany | ||
| Bepanthene eye and nose cream | Bayer, Germany | ||
| Silicon tube | IFK Isofluor, Germany | custommade product | diameter 500 µm |
| section thickness 100 µm | |||
| polytetrafluorethylene catheter | |||
| PROLENE Suture 6/0 | ETHICON | 8707H | polypropylene monofilament suture, unresorbable, needle CC1, 13 mm, 3/8 Circle |
| 7/0 Silk | Seraflex | IC 1005171Z | |
| Ultrasound | Vevo, Canada | 770 Vevo |
References
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