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Medicine

マウスの左前下冠動脈の動脈の常設ライゲーション:心筋梗塞後のリモデリングおよび心不全のモデル

Published: December 2, 2014 doi: 10.3791/52206

Abstract

心不全は、心臓が、安静時またはストレス中の細胞酸素要求に見合った速度で血液を送り出すために失敗する症候群である。これは、労作時、特に、体液貯留、息切れ、疲労によって特徴付けられる。心不全は、成長している公衆衛生問題、入院の主要な原因であり、死亡率の主要な原因である。虚血性心疾患は、心不全の主な原因である。

心室リモデリングは、左心室の構造、大きさ、形状の変化を指す。左心室のこのアーキテクチャのリモデリング( 例えば、全身性動脈高血圧症または大動脈弁狭窄症)、または容量過負荷による圧負荷により、傷害( 例えば、心筋梗塞)によって誘導される。心室リモデリングは、壁応力に影響を与えるので、それは心機能及び心不全の発症に重大な影響を与える。左前descendinの永久結紮のモデルマウスにおけるグラム冠動脈心室リモデリングおよび心臓機能心筋梗塞後を調査するために使用される。このモデルは、左冠動脈前下行枝の過渡結紮のモデルに比べて目標や病態生理学的関連性の点で基本的に異なる。虚血/再灌流傷害のこの後者のモデルにおいて、梗塞の初期の程度は、再灌流後の心筋救済に影響を与える要因によって調節され得る。対照的に、左冠動脈前下行枝の永久結紮後24時間での梗塞領域は固定されている。このモデルにおける心機能は、1)梗塞拡大、梗塞の治癒、および瘢痕形成のプロセスによって影響される。 2)左心室拡張、心肥大、及び心室リモデリングの同時開発。

左冠動脈前下行枝の永久結紮モデル、侵襲的血行動態MEAの技術に加えてマウスにおけるsurements詳細に示されている。

Protocol

注:この項で説明するすべての実験手順は、動物実験ルーヴェン·カトリック大学の研究諮問委員会によって承認された(プロジェクト:2013分の154-B·デ·沖積層)。

左前下冠動脈の動脈の1常設ライゲーション

  1. / kgのペントバルビタールナトリウム70mgの40〜10mg / kgの腹腔内投与によりマウスを麻酔。それはもはやしっかりとつま先のピンチを反応するときに、マウスが麻酔のその適切な面に到達しないことを確認してください。常に適切な麻酔の前に、任意の外科的処置または介入にこの方法を確認する。麻酔下ながら、角膜の乾燥を防ぐために、眼軟膏、潤滑使用してください。手順(ブプレノルフィン0.05 mg / kgをSQ)の開始前に術前鎮痛2-4時間を提供します。
    1. 生存手術中に一貫性のある無菌技術を適用します。最大限可能な範囲で微生物詐欺に抑制する手順を実装tamination重大な感染や化膿が発生しないようにします。これらの手順は、このサイトの手術部位と消毒の上、滅菌器具及び無菌材料の使用、手術領域の消毒、および毛皮/髪の除去が含まれています。
  2. 自己準備平滑化20ゲージ針でマウスを挿管。
    1. 頭の過伸展と仰臥位でマウスを置きます。
      1. 首領域に光の焦点を合わせる。鈍いピンセットと舌を持ち上げます。喉頭の入口を明瞭に見ることができる。
      2. 直視下気管内に喉頭を鈍化針を渡します。人工呼吸器にマウスを接続することにより、正しい挿管を評価する(μlのストローク量:3×体重(g)+ 155、周波数:毎分120ストローク)。
    2. あるいは、第慎重に気管を露出することにより、気管内挿管の可視化を強化する。
      1. 5ミリメートル半ば首の切開を作成し、撤回ちょうど気管上記筋肉組織。
      2. 気管の直接可視化のための外科的実体顕微鏡を使用して挿管を実行します。舌を持ち上げ、気管内に自己準備平滑化20ゲージの針を入力してください。人工呼吸器にマウスを接続することにより、正しい挿管の確認(μlのストローク量:3×体重(g)+ 155、周波数:毎分120ストローク)。
  3. 仰臥位でマウスを保持し、テープでマウスを修正。低体温症を防ぐために加熱パッド上に手術を行う。
    1. 剃るとベタジンで皮膚を消毒する。左後肢が手術中に左心室に、より良いビューを得るために、右後肢を横切るように注意してください。
  4. 胸骨までの小さな横方向の皮膚切開を作成し、下にある皮膚や筋肉を分離する。
  5. Mを脇に引き出します。胸マイナーであり、m。 5-0絹縫合糸で大胸筋
  6. 私を作る鈍いピンセットを挿入することによって第3肋間でncision。
  7. 胸骨に到達するまで、外側から内側の側方から肋間筋の下にピンセットを移動します。皮膚に内側からピンセットを押して胸壁を穿刺。慎重にちょうど小さなハサミとピンセットの上肋間筋を切断して開胸を完了します。肺のパンクチャリングを防ぐために、このテクニックを使用してください。
  8. 肺を保護するために空洞に0.9%のNaCl中に浸漬したスポンジを入れてください。心臓の左側の露出を得るために、肋間空間に創傷スプレッダ(胸部リトラクタ)を導入する。今のところ、左心房、左心室、および左冠動脈前下行枝は実体顕微鏡下に表示されます。
  9. 左心房の先端で約1ミリメートルシングル6-0プロレン合字と左冠動脈前下行枝の結紮を行います。これは最初の対角枝から遠位にある。
    注:または、7-0(00.05ミリメートルの直径)または8-0のスレッド(0.04 mmの直径)を使用することができる。針は、C-1 13ミリメートル3/8円形テーパーポイントの針である。左冠動脈前下行枝の成功ライゲーションは、影響を受けた領土で淡い登場する心筋で、その結果、即時の変色を誘導する。
  10. 傷スプレッダー(胸のリトラクター)を取り外します。
    1. 肋間スペースを中心に3 6-0のTi-Cronの縫合糸を配置します。縫合糸を締める前に、胸腔からスポンジを除去し、人工呼吸器の流出を遮断することによって、肺を再膨張する。そうすることによって、肺は壁側胸膜との再接続。
    2. その後、タイトな縫合糸を引っ張り、胸を下に押して、再膨張を繰り返します。生理食塩水を少量使用して胸部の成功した閉鎖を確認して(胸に圧力を適用する際に気泡が見られないことがあります)。
    3. 肺の正常な展開を確認す​​るために、肋間筋に目を通す。 、両方の胸の筋肉を再配置として気胸の予防のための余分な障壁。
  11. 5-0シルク縫合糸で皮膚を閉じます。
  12. 人工呼吸器からマウスを外し、加熱パッド上で回復を可能に。それは胸骨横臥位を維持するのに十分な意識を取り戻したまでは無人の動物を放置しないでください。完全に回復するまで、他の動物の会社に手術を受けた動物を返さないでください。
  13. 一貫して術後鎮痛(手術後少なくとも48時間ブプレノルフィン0.05 mg / kgをSQ BID)を提供する。

マウスの生体内侵襲血行動態測定2.

  1. 手順の前に、信号ドリフトを最小限に抑えるために、少なくとも30分間37℃で滅菌水中1.0フレンチのMillar圧力カテーテルを沈める。電子的に2000ヘルツを0 mmHgでおよび100mmHgの圧力センサと記録データを較正する。
  2. 1.4グラム/ kgのウレタンの腹腔内投与により麻酔を行います。それを確認してくださいそれはもはやしっかりとつま先のピンチを反応するときに、マウスは、麻酔のその適切な面に到達しない。
  3. 仰臥位で麻酔をかけたマウスを置きます。テープで手足を固定します。加熱パッドと体温を維持し、直腸プローブで監視。首領域を剃ると甲状腺が露出するように首領域における正中切開を作る。
  4. 曲がった針で首を固定します。
  5. 唾液腺を脇に引いて、右総頸動脈を公開します。 、白い糸に似ている迷走神経は、動脈に沿って存在する。慎重に湾曲した鉗子を用いて迷走神経から頸動脈を分離する。
  6. 他の組織からそれを分離するために右総頸動脈の下に湾曲した鉗子を渡します。動脈周囲の結合組織を除去します。
  7. 右総頸動脈の下2 6-0シルクワイヤーを渡します。近い頭に向かって配置され、トップワイヤー、上にタイトな結び目を作り、コッヘル(遠位閉塞性ライゲーション)で固定します。 proxiを渡すMALワイヤは二回から左から右へと2 kochers(近位非閉塞性ワイヤー)で固定します。
  8. 無菌の0.9%NaClをドロップすることで、湿った頸動脈にしてください。綿棒で余分な液体をオフに乾燥させます。
  9. 遠位連結および近位非閉塞性ワイヤとの間26ゲージ針で右総頸動脈の切開を行います。
  10. 動脈に圧力センサを導入する。全く血液の損失がないことを確認します。ゆっくりと前進1.0フレンチのMillar圧力カテーテルをプッシュし、カテーテルが鎖骨の下にワイヤーを通して慎重に渡すことができるような方法で、近位非閉塞性ワイヤーを調整します。
    1. 近位非閉塞性ワイヤーの調整中に血液の損失を最小限に抑えます。それは非常に壊れやすいですので、進めながらあまりにも多くの圧力センサを圧縮しないでください。近ワイヤーが動脈を閉塞してはならないので、血管は血液で満たされたままにしてください。
  11. 圧力信号の記録を開始。動脈圧の信号fluctuat70 mmHgで100の収縮期血圧 - - 120 mmHgで60の拡張期血圧の間に健全なマウスにおけるES。
  12. 無名動脈を介して左心室に大動脈を経由してカテーテルを向ける。 120 mmHgで - 心室の圧力が0ミリメートルHgのと100の間で変動する。カテーテルが左心室の内部で安定化させる。実験の要件に応じて60分まで30分間の信号を記録します。
  13. 実験終了後、30分間、1%Alconoxカテーテルを浸す。 Milli-Q水でカテーテルを洗ってください。フォームブロックにカテーテルを保管してください。
  14. さらなる分析のために記録ソフトからデータを取得します。
    1. データ分析のために、圧力信号が安定している時間間隔を考える。興味のある記録されたデータの少なくとも10の連続した​​心臓サイクルを選択してください。
    2. 心拍数、最大収縮期左心室圧、最小の拡張期左ventrを分析するLabChartソフトウェアバージョン8.0または類似を使用icular圧力、等容性左心室収縮(のdP / dtの最大 )、等容性左心室弛緩(のdP / dtの )、拡張終期左心室圧のピークレートのピークレート、及び等容性左心室の時定数圧力秋(タウ)7。
      注:拡張末期圧は直ちに等容性収縮によって誘発される圧力サージの前の時点での圧力に対応する。タウの計算は、単一指数減衰曲線に左心室圧を適合に基づいており、P(t)として表さこの式において、P 0電子-t /τの + bを=、P(t)は、時間における左心室圧であるDP / DTの最大の負の値の後トンに達しました。パラメータbは、簡略化されたアプローチではゼロであると仮定することができる理論的な漸近線に対応する。強化された等容性弛緩は、タウの小さい方の値になる。
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Representative Results

心筋梗塞の程度は、エバンスブルー/塩化2,3,5-トリフェニルテトラゾリウム(TTC)の二重染色によって評価することができる。 TTCは、NADH 8の存在下で様々なデヒドロゲナーゼの活性による生体組織の深い赤1,3,5- triphenylformazanに変換され、酸化還元指示薬、ある。 図1は、24時間後に心臓の代表的な断面を示している左冠動脈前下行枝の結紮。ブルー染色領域が非虚血/正常な領域を示している。リスクのある心筋の領域は、左冠動脈前下行枝の結紮から遠位ベッド灌流内の心筋組織として定義されている。ネガティブ染色領域(淡赤色)が梗塞領域を示すのに対し、深い赤色に染色された領域は、虚血が、実行可能な領域(リスクのある非梗塞面積)領域を示している。このモデルでは、リスクのある非梗塞領域は、目の永続的なキャラクターを反映したこの画像、で無視できなく見える左冠動脈前下行枝のEライゲーション。総左心室壁領域9,10の60% -梗塞領域は、典型的には50の間である。梗塞ゾーンの進化の二成分は識別されるべきである:1)梗塞の三次元形状)は、梗塞の総容積をより薄く、より拡張された心筋梗塞をもたらす梗塞拡大の結果として変化させ、そして2よい創傷収縮及び瘢痕形成と治癒過程を反映し、減少させることができる。

梗塞拡大は、梗塞の長さおよび梗塞厚さ10の時間経過を評価することによって定量することができる。 図2に示されている代表的には、シリウスレッド左冠動脈前下行枝の永久結紮後28日目に、心臓の断面を染色した。画像は、実質的に延伸された梗塞を示している。断面において、この膨張はabsoluの増加に対応するTE梗塞の長さと梗塞の厚さの減少。

三次元形状および梗塞のボリューム上の考慮事項に加えて、梗塞のパラメータの解釈に関して、別の警告を考慮すべきである。生存可能な心筋組織はまた、肥大を受けるので、総左心室壁の面積に対する梗塞面積の割合が時間の関数として減少するであろうことは明らかである。梗塞領域の長手方向の変化の評価は、したがって、絶対的なパラメータと相対パラメータの間の差が明確な洞察力が必要です。

動脈および心室圧レジスタは、図3に示されている。カテーテル、心拍数、最大収縮期左心室圧、最小の拡張期左心室圧、等容性左心室収縮(のdP / dtが最大 )のピークレート、最後の安定した後に-diastolic左心室圧、およびt等容性左心室弛緩(のdP / dtの )の彼ピークレートが決定される。等容性の左心室圧力降下(τ)の時定数は、ワイスの方法を用いて定量化される。7。

図1
図リスクおよび梗塞サイズで領域の1次評価、心筋梗塞後1日。左からの画像は右心のベースに心尖部から行く。 24時間の左冠動脈前下行枝の永久結紮した後、エバンスブルー色素の2mlを灌流心筋の容積を定量化するために大動脈内にボーラスとして注入した。心臓を、その後のCdClの注射により拡張期に逮捕された(100μlの、0.1 N)、過剰な青色染料を洗い流す生理食塩水でフラッシュし、5%低ゲル化温度アガロースに包埋した。 AFterwards、厚さ500μmの断面はHM 650 V振動ミクロトームを使用して作製されたスライスを、次に37℃で30分間の等張リン酸緩衝液(pH7.4)を含む1.5%の2,3,5-トリフェニルテトラゾリウムクロリド中でインキュベートした。画像はステレオLumar V.12顕微鏡を用いて行った。梗塞組織のネガティブ染色領域、リスクのある赤色に染色された非梗塞領域、および青色染色非虚血の健康な心室壁領域は、イメージJソフトウェアを用いて定量した。スケールバーは0.5ミリメートルを表しています。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図2
図2.代表シリウスレッドは左冠動脈前下行枝の結紮後28日目に、心臓の断面を染色した。画像の再生を左からESは、右心のベースに心尖部から行く。ジュンケイラらは 11の標準プロトコルは、シリウスレッド染色のために適用した。この組織化学的方法は、線維性梗塞組織暗赤色と健康な組織のオレンジ色を染色する。スケールバーは1ミリメートルを表します。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図3
図3.動脈(A)と左心室の正常なマウスのカテーテル挿入後に得られた(B)圧力レジスタ。動脈信号の間に明らかな違いと心室信号が後者の信号は拡張期約0ミリメートルHgまで低下することがある。 LVP:左心室圧。

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Discussion

慢性心筋の構造および機能の変化、左心室機能不全の発症、および心不全への進行は、いくつかのマウスモデル12で調査することができる。心臓リモデリングおよび機能不全は、心筋障害、または圧力大動脈狭窄を横断する第二過負荷、または拡張型心筋12の遺伝モデルで研究することができることによって誘導することができる。明らかに、マウスモデルの最も顕著な利点は、トランスジェニックおよび細胞型特異的および誘導性トランスジェニックモデルを含むノックアウト株の多数の利用可能性がある。これらのモデルにおける心臓リモデリングの評価は非常にmicromanometryを用いて超解像度2D-及び3次元心エコー検査、マイクロ磁気共鳴イメージング、血行力学的評価のような技術の開発により容易化されており、圧力容量ループの微圧計コンダクタンス技術は、分析する。本稿では、MODに焦点を当てている心筋傷害のelは左心室micromanometryにより冠動脈および左心室機能の評価を左前の永久結紮により誘発される。

心筋梗塞の最初のマウスモデルはZolotareva 13によって1978年に記載された。永久閉塞のこのモデルは、明らかに最初のマイケル 14によって記載された左冠動脈前下行枝の過渡的閉塞のマウスモデルから識別されるべきである。この後者のモデルは、永久結紮を、心筋梗塞後の心臓リモデリングの病態生理学を研究するために適用されるのに対し、虚血 - 再灌流傷害および心筋救済を調査するために使用される。

マウスの冠状動脈樹は、ヒト15-17と比較して異なっている。マウスで中隔冠動脈が起源15-17可変である。それは右冠動脈ARの分岐として古典的に生じたバッテリ18,19だけでなく、バルサルバ17の右洞内の別の口から、または例外的に左冠状動脈16から発生する可能性がある。冠動脈ツリーの解剖学は、わずかに異なる株20との間で異なる場合があります。しかし、それは前外側、後部、および組織学によって実証し、15,17の心エコー検査、心臓の頂端領域を含む再現可能な大梗塞で左心耳結果の下にすぐに出てくるように左冠動脈前下行枝の結紮。重要なことには、隔壁は、別個の中隔冠状動脈の存在を反映して、梗塞から免れている。マウスとは対照的に、ヒトにおける隔壁の血液供給は、主に冠状動脈21の左前下行枝の枝によって提供される。マウスでの解剖学と中隔の結果としてスペアリングのこの差は、心臓のリモデリングに影響します。

結果で述べたようにsのセクション、マウスで左冠動脈前下行枝の結紮は、左心室9,10の50%〜60%を構成する大心筋梗塞を誘発する。マウスでの心筋梗塞後の最初の2週間で心室破裂の発生は22,23頻繁にある。心筋梗塞のこの合併症は、ひずみに依存し、雌マウス22の場合よりも雄マウスで有意により頻繁に発生します。さらに、心室破裂はnormocholesterolemia 9の条件下より高コレステロール血症のマウスではより頻繁に起こります。マウスでの心室破裂の発生は右視野に配置する必要があります。まず、この合併症は、梗塞拡大の現れである。梗塞セグメントのこの不均衡な間伐や拡張だけではなく、心筋破裂を誘発するだけでなく、心臓リモデリングのためのおよびうっ血性心不全24〜27のトリガである。したがって、心筋破裂の周波数である梗塞拡大度のため、生存マウスにおける心臓リモデリングおよび心機能障害の発生の程度を示す指標。

心室破裂に関して第二の重要な考慮事項は、機能的または構造的データは介入研究10内の2つの群の間で比較された際に考慮生存バイアスを取る必要があることである。これは、心室破裂で死亡します最も顕著な梗塞拡大とそのマウスを想定するのが妥当である。 2グループ間の生存率の有意差の場合には、1マウスは、機能や構造解析から除外されて死亡したことに注意する必要があります。その結果、バイアスは、特定の時点で生存マウスの任意の比較で導入されている。

上述したように、多くの異なる技術は、心筋梗塞後の心臓リモデリングを評価するために利用可能である。しかし、高度で複雑な技術の利用可能性いくつかの研究者のために制限される場合があります。総頸動脈を介して導入されたマイクロマノメーター圧力センサを使用して血行動態評価は、比較的簡単で、他の技術よりも大幅に安価である。しかし、左心室micromanometryの解釈には固有の限界があることが強調されるべきである。これとは対照的に、心室圧力-容積関係の分析( 例えば、コンダクタンスmicromanometryを使用して)は、完全な心臓機能28を評価するための最も厳格かつ包括的アプローチを構成している。心機能を測定するための圧力量論の固有の利点は、それが独立して負荷条件及び心拍数29の左心室性能のより具体的な測定を可能にすることである。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Buprenorphine (Buprenex) Bedford Laboratories
Sodium Pentobarbital (Nembutal) Ceva
Betadine VWR internationals 200065-400
5 - 0 silk suture Ethicon, Johnson & Johnson Medical K890H
6 - 0 prolene suture  Ethicon, Johnson & Johnson Medical F1832
6 - 0 Ti- Cron suture Ethicon, Johnson & Johnson Medical F1823
Urethane  Sigma 94300
Alconox Alconox Inc.
Ventilator, MiniVent Model 845 Hugo Sachs 73-0043
Chest retractor or Thorax retractor Kent Scientific corporation INS600240 ALM Self-retaining, serrated, 7 cm long, 4 x 4 "L" shaped prongs, 3 mm x 3 mm
1.0 French Millar pressure catheter  Millar Instruments  SPR - 1000/NR
Powerlab ADInstruments Pty Ltd.
LabChart® software ADInstruments Pty Ltd.
Rectal probe ADInstruments Pty Ltd.

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References

  1. He, J., et al. Risk factors for congestive heart failure in US men and women: NHANES I epidemiologic follow-up study. Arch Intern Med. 161, 996-1002 (2001).
  2. Anversa, P., Sonnenblick, E. H. Ischemic cardiomyopathy: pathophysiologic mechanisms. Prog Cardiovasc Dis. 33, 49-70 (1990).
  3. Erlebacher, J. A., Weiss, J. L., Weisfeldt, M. L., Bulkley, B. H. Early dilation of the infarcted segment in acute transmural myocardial infarction: role of infarct expansion in acute left ventricular enlargement. J Am Coll Cardiol. 4, 201-208 (1984).
  4. Shimizu, I., et al. Excessive cardiac insulin signaling exacerbates systolic dysfunction induced by pressure overload in rodents. J Clin Invest. 120, 1506-1514 (2010).
  5. Tirziu, D., et al. Myocardial hypertrophy in the absence of external stimuli is induced by angiogenesis in mice. J Clin Invest. 117, 3188-3197 (2007).
  6. Theilmeier, G., et al. High-density lipoproteins and their constituent, sphingosine-1-phosphate, directly protect the heart against ischemia/reperfusion injury in vivo via the S1P3 lysophospholipid receptor. Circulation. 114, 1403-1409 (2006).
  7. Weiss, J. L., Frederiksen, J. W., Weisfeldt, M. L. Hemodynamic determinants of the time-course of fall in canine left ventricular pressure. J Clin Invest. 58, 751-760 (1976).
  8. Bohl, S., et al. Refined approach for quantification of in vivo ischemia-reperfusion injury in the mouse heart. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 297, 2054-2058 (2009).
  9. Van Craeyveld, E., Jacobs, F., Gordts, S. C., De Geest, B. Low-density lipoprotein receptor gene transfer in hypercholesterolemic mice improves cardiac function after myocardial infarction. Gene Ther. 19, 860-871 (2012).
  10. Gordts, S. C., et al. Beneficial effects of selective HDL-raising gene transfer on survival, cardiac remodelling and cardiac function after myocardial infarction in mice. Gene Ther. 20, 1053-1061 (2013).
  11. Junqueira, L. C., Bignolas, G., Brentani, R. R. Picrosirius staining plus polarization microscopy, a specific method for collagen detection in tissue sections. Histochem J. 11, 447-455 (1979).
  12. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).
  13. Zolotareva, A. G., Kogan, M. E. Production of experimental occlusive myocardial infarction in mice. Cor Vasa. 20, 308-314 (1978).
  14. Michael, L. H., et al. Myocardial ischemia and reperfusion: a murine model. Am J Physiol. 269, 2147-2154 (1995).
  15. Salto-Tellez, M., et al. Myocardial infarction in the C57BL/6J mouse: a quantifiable and highly reproducible experimental model. Cardiovasc Pathol. 13, 91-97 (2004).
  16. Fernandez, B., et al. The coronary arteries of the C57BL/6 mouse strains: implications for comparison with mutant models. J Anat. 212, 12-18 (2008).
  17. Kumar, D., et al. Distinct mouse coronary anatomy and myocardial infarction consequent to ligation. Coron Artery Dis. 16, 41-44 (2005).
  18. Clauss, S. B., Walker, D. L., Kirby, M. L., Schimel, D., Lo, C. W. Patterning of coronary arteries in wildtype and connexin43 knockout mice. Dev Dyn. 235, 2786-2794 (2006).
  19. Icardo, J. M., Colvee, E. Origin and course of the coronary arteries in normal mice and in iv/iv mice. J Anat. 199, 473-482 (2001).
  20. Yoldas, A., Ozmen, E., Ozdemir, V. Macroscopic description of the coronary arteries in Swiss albino mice (Mus musculus). J S Afr Vet Assoc. 81, 247-252 (2010).
  21. James, T. N., Burch, G. E. Blood supply of the human interventricular septum. Circulation. 17, 391-396 (1958).
  22. Gao, X. M., Xu, Q., Kiriazis, H., Dart, A. M., Du, X. J. Mouse model of post-infarct ventricular rupture: time course, strain- and gender-dependency, tensile strength, and histopathology. Cardiovasc Res. 65, 469-477 (2005).
  23. Muthuramu, I., Jacobs, F., Singh, N., Gordts, S. C., De Geest, B. Selective homocysteine lowering gene transfer improves infarct healing, attenuates remodelling, and enhances diastolic function after myocardial infarction in mice. PLoS One. 8, 63710 (2013).
  24. Eaton, L. W., Weiss, J. L., Bulkley, B. H., Garrison, J. B., Weisfeldt, M. L. Regional cardiac dilatation after acute myocardial infarction: recognition by two-dimensional echocardiography. N Engl J Med. 300, 57-62 (1979).
  25. Erlebacher, J. A., et al. Late effects of acute infarct dilation on heart size: a two dimensional echocardiographic study. Am J Cardiol. 49, 1120-1126 (1982).
  26. Schuster, E. H., Bulkley, B. H. Expansion of transmural myocardial infarction: a pathophysiologic factor in cardiac rupture. Circulation. 60, 1532-1538 (1979).
  27. Jugdutt, B. I., Michorowski, B. L. Role of infarct expansion in rupture of the ventricular septum after acute myocardial infarction: a two-dimensional echocardiographic study. Clin Cardiol. 10, 641-652 (1987).
  28. Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Batkai, S., Kass, D. A. Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats. Nat Protoc. 3, 1422-1434 (2008).
  29. Vanden Bergh, A., Flameng, W., Herijgers, P. Parameters of ventricular contractility in mice: influence of load and sensitivity to changes in inotropic state. Pflugers Arch. 455, 987-994 (2008).

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医学、問題94、心筋梗塞、心臓リモデリング、梗塞拡大、心不全、心臓機能、侵襲的血行動態測定
マウスの左前下冠動脈の動脈の常設ライゲーション:心筋梗塞後のリモデリングおよび心不全のモデル
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Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F.,More

Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent Ligation of the Left Anterior Descending Coronary Artery in Mice: A Model of Post-myocardial Infarction Remodelling and Heart Failure. J. Vis. Exp. (94), e52206, doi:10.3791/52206 (2014).

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