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Neuroscience

神经元的3-D成像和分析感染 doi: 10.3791/52237 Published: December 9, 2014

ERRATUM NOTICE

Summary

使用该协议,我们能够从感染寄生虫弓形虫 ,使可视化和的encysting寄生虫和感染的神经元之间的空间关系分析的小鼠图像160微米厚的脑切片。

Abstract

弓形虫是一种专性细胞内寄生虫具有广泛的宿主范围,包括人类和啮齿类动物。在人类和啮齿类动物, 弓形虫建立在大脑终身持续感染。虽然这种脑部感染是无症状的,在大多数人的免疫功能,在发育中的胎儿或免疫功能低下的个体如获得性免疫缺陷综合征(AIDS)患者,这种偏爱与执着在大脑中可能会导致灾难性的神经系统疾病。因此,很显然,献计弓形虫相互作用是由弓形虫产生的症状的疾病的关键,但我们对中枢神经系统(CNS)和寄生虫的细胞之间的细胞或分子的相互作用的了解甚少。在中枢神经系统的小鼠模型弓形体病已经知道了30多年的神经元中的寄生虫仍然存在的细胞,但信息很少哪些神经元的一部分,通常感染(体细胞,树枝状,轴突),如果菌株之间的这种蜂窝关系变化。在某种程度上,这是缺乏二次成像的难度,从动物整体可视化感染神经元。这些图像通常需要连续切片和组织通过电子显微镜或免疫染色后,激光共聚焦显微镜成像的拼接。通过组合多种技术,这里所描述的方法使得能够使用厚的切片(160微米),以确定和包含包囊图像的完整细胞,允许三维可视化和个人,慢性感染的神经元的分析,而不需要免疫染色,电子显微镜,或连续切片和拼接。使用这种技术,我们可以开始理解寄生虫和感染的神经元之间的蜂窝式关系。

Introduction

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该方法的总的目标是要获得高的分辨率,被感染的专性细胞内寄生虫弓形虫单个神经元的三维图像。

弓形体通常被认为是由于其较大的中间宿主范围,包括人类和啮齿类动物中最成功的寄生虫之一。在人类和啮齿类动物,通过污染的食物或水摄入的急性感染后, 弓形虫能够通过从它的快速复制的形式(将速殖子)转化成其慢复制和encysting形式引起的中枢神经系统的持续性感染(在缓殖子)。在免疫活性个体,这种潜中枢神经系统感染被认为是相对无症状的,但在免疫受损的个体,如爱滋病患者或移植者,寄生虫的复发可导致致命弓形虫脑炎1,2。此外,最近的研究公顷已经表明,隐性感染弓形虫会导致行为的变化在啮齿类动物3,4,尽管机制仍不清楚。

令人惊讶的是,尽管这些数据突出了CNS- 弓形虫相互作用的重要性,相对知之甚少这种关系,特别是在细胞和分子水平。研究脑寄生虫互动,甚至简单的方面的能力受到了阻碍部分由TECHNOLOGIC限制。例如,大多数的工作表明神经元的细胞,其中包囊坚持已经完成,电子显微镜(EM)5,6。虽然EM提供高分辨率,这是费时,劳动强度大,而且价格昂贵。免疫荧光(IF)测定法最近已结合使用共聚焦显微镜来确认由EM 7所做的工作。中频测定在技术上易于实施和相对便宜的,但使用这些技术来underst和囊肿和感染的神经元之间的空间关系,需要串行重建,这是耗时的,在技术上困难,并且可能会导致有价值的信息丢失。因此,我们开发了可与中枢神经系统弓形虫病的小鼠模型中使用,并允许我们图像感染的神经元的全部未经EM或免疫组织化学(IHC)的方法。通过开发这样的技术,我们可以开始探索以相对快速和廉价的方式感染细胞和囊肿之间的蜂窝式关系。

我们开发的方法,结合了用于光学结算和成像厚脑切片通过共聚焦显微镜8较新的技术与系统,它标志着已经注射了寄生虫蛋白9,10 体内细胞。在这个系统中,我们感染表达绿色荧光蛋白(GFP)的Cre-报告小鼠仅后的Cre介导的重组11 弓形虫 9株。这种组合可以让我们收获了感染小鼠的大脑后,中枢神经系统感染建立后,切成厚脑切片,并迅速查明相关领域的图像通过查找RFP +囊肿。要注意,作为绿色荧光蛋白的宿主细胞中表达完全取决于注射的Cre的寄生虫,而不是在感染,一些将GFP +细胞不含有寄生虫10是很重要的。作为该协议的目的是为了能够将图像的整体感染的神经元,重点是仅在GFP +神经元还含有RFP +囊肿,但该协议也可以用于图像的GFP + / RFP -神经元。

一旦感染脑收获并切片,该切片是由甘油结算呈现透明。部的适当的区域,然后用共焦显微镜,人成像感染的宿主细胞,并在其整体的成囊寄生虫降脂前所未有的可视化。在这里,我们提供了一个完整的协议识别,光学结算和成像感染神经元。

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Protocol

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注:小鼠饲养,并保持在一个温度和湿度控制的房间12小时逆转食物和水可用自由采食光/暗周期在亚利桑那大学。实验下的指引和亚利桑那大学的机构动物护理和使用委员会批准进行的。所作的所有努力,尽量减少痛苦。该Cre的报告小鼠是在C57BL / 6背景11和可商购。

1.鼠标感染

注:小鼠感染弓形虫下面所描述的方法已被用于在先前公布的10项研究- 12。

  1. 生长弓形虫菌株在人包皮成纤维细胞(HFFS)的Dulbecco氏高糖培养的改良的Eagles培养基(DMEM),补充有10%FBS,100U / ml青霉素,100mg / ml的链霉霉素,和2mM L-谷氨酰胺(cDMEM)的T-25烧瓶内的5%的CO 2培养箱中,直到寄生虫已形成大虫空泡。
  2. 通过从烧瓶底部刮的细胞和使所得到的溶液通过一个25号针头连接到3毫升注射器的2倍的烧瓶内,则所有溶液转移至5ml注射器壳体连接到27号针头的注射器释放寄生虫已被置于一个15毫升的锥形管内上下颠倒。柱塞连接到注射器,并通过该寄生虫溶液进入锥形管。
  3. 离心管在300×g下10分钟。吸出上清液,然后重悬沉淀在4-6毫升无菌USP级1×磷酸盐缓冲盐水(PBS)pH 7.4的(原液)。
  4. 装入10微升原液血球,等待5-10分钟的寄生虫定居然后计算寄生虫的数目,中间大正方形的四角和中心方块。
  5. 第稀网站的100K / 200微升合适的接种物大小的1X PBS,然后用200微升的总体积注射小鼠腹膜内(IP)。
    注:在此过程中,小鼠接种100K型III(CEP)13速殖子200μl的1X PBS。当感染小鼠弓形虫的其它菌株,接种体浓度可能需要进行调整以考虑毒力的水平。

2.灌注和脑收获

注意:此协议是第21天感染后(dpi)的进行,因为这代表了时间点被发现在小鼠大脑囊肿峰的数字,但也可以使用其它的时间点。大小,数量,位置,以及存在包囊的存在与否,取决于很多因素,包括小鼠品系,寄生虫菌株类型以及接种量7,14 - 17。研究者将需要单独确定合适的接种物为鼠标和Toxoplas马应变,他/她使用。

  1. 设置所有手术收获的工具( 图1)。
  2. 对于每个小鼠,制备并保持在冰上:20ml注射器填充有0.9%的氯化钠(NaCl)中+ 10单位/毫升肝素在1×无菌USP级的PBS(肝素/盐水); 20毫升注射器填充有4%多聚甲醛(PFA);闪烁小瓶用15毫升的4%的PFA。对于多个小鼠,制备填充有所需的所有小鼠,然后制定一个新鲜注射器充满每个灌注溶液各溶​​液的全部量的烧杯中。
  3. 麻醉小鼠IP用200μl/ 25克体重的氯胺酮/甲苯​​噻嗪混合物(24毫克/毫升与4.8毫克/毫升,分别)在感兴趣的日子。通过检查脚趾捏反射监视鼠标麻醉水平。继续协议只有一次鼠标显示了一个坚定的脚趾捏没有反应。
    注:如之前达到麻醉的适当水平的麻醉的其它方法也可以使用,只要在继续进行协议。
  4. 鼠标放置在有盖的泡沫平台上仰卧位。 PIN所有四肢出在脚上,然后喷洒胸部和腹部用70%乙醇(乙醇)( 图2A)。另外的鼠标下几个无菌纸巾可以用来帮助吸收灌注流体的溢出。
  5. 正下方用钳子胸骨抬起皮肤,然后用剪刀做一个切口。拉回来的皮肤暴露胸部( 图2B)。
  6. 提起剑突,使刚刚膈下腹部切口,暴露出这是钝性分离离膈肌肝脏。使两个切口,一个在左,一个在通过隔膜和右肋的底部。延伸的左,右的切口大约1 / 2-2 / 3的方式向上胸腔,然后将其反射回以打开胸腔( 图2C)。
    注意:小心不要削减任何器官或主要血管杜响此过程,因为这样做会损害灌注质量。
  7. 用10-20毫升肝素/盐其次是10-20毫升4%PFA灌注transcardially。
    注意:如果灌注得当,肝脏会从红色变成棕褐色( 图2D)。如果没有正确完成,血管将可见( 图2E)。
  8. 把鼠标放在其上腹部,重脚脚再喷头部和颈部用70%乙醇。从颈部的底座抬起皮肤,使一个切口。去除皮肤暴露的头骨( 图2F)。斩首头在肩的水平。取出颅骨,轻轻取出大脑,并放入闪烁瓶中装满4%PFA( 图2G-H)。
    注意:如果灌注良好,大脑会出现白色无可见的血管( 图2I)。如果大脑没有得到很好的灌注,血管就会可见( 图2J)。
  9. 将火花化小瓶大脑在4%PFA在4℃过夜,涵盖了从光。冲洗脑部非USP级1×PBS中,并转移到一个新的闪烁小瓶填充有冷却的1×PBS。存储大脑在1×PBS中,在4℃,涵盖了从光。
    注:成功清算和成像已经完成与存储在1×PBS中进行长达一个月的部分,但最好是部分在几天之内为长时间储存​​在PBS将扭转PFA固定和大脑可能导致低于最佳的图像。自体荧光和增加的模糊已注意到在一些路段储存后成像在1×PBS中一个月或更长的时间。

3.脑切片

  1. 从1 PBS取出大脑,并把它变成一个大脑基质( 图3A),以便更精确,通过大脑甚至削减。剪掉小脑和嗅球,如果存在的话,然后切成冠脑部成2个或3段。
  2. 贴上各脑切片上与氰基丙烯酸酯样品安装块。加盖的背后支持的脑切片( 图3B)的5%琼脂糖凝胶的小块。
    注:其它支持机制都可以使用,但不提供支持,所述的vibratome可推动对脑造成不均匀的切片。
  3. 切割组织成厚的切片用的vibratome设置为4的速度和9振幅为160μm(用于成像物镜的工作距离)。
    注:在速度和幅度的设置可以根据特定的机器上进行调整所使用,以获得均匀,平滑的部分。如果设置不正确,结果可能是不均匀的部分,组织或振痕撕裂。
  4. 收集组织切片成闪烁小瓶填充有新鲜,冷冻的1×PBS,如果他们打算一个星期内,以被清除。如果段不打算在一周内被清除,放置部分成1.5ml微量管中填充有在-20℃冷冻保存液溶液和存储。

脑组织切片4.光学结算

注:此协议已被修改从先前公布的方法8。

  1. 在1×PBS + 2%吐温-20(GL / PBST)中制备25%,50%,75%和90%体积/体积甘油。
  2. 从1×PBS中移除部分,或者,如果在冷冻保存液,冲洗在1×PBS中并转移到含有10毫升25%的GL / PBST闪烁瓶中。地方小瓶在振荡器上在4℃下,盖从暴露于光,12小时。
  3. 确认所有部分已经沉没到微博TTOM小瓶。吸出25%的GL / PBST中,只留下足以覆盖部分然后填充在振荡器上在小瓶用10毫升50%的GL / PBST和地点在4℃下,盖从暴露于光,12小时。对于75%GL / PBST那么90%GL / PBST重复此过程。留在90%GL / PBST路段24小时达到最高结算。在结算过程中的过程中,逐步观察光透明( 图4)。
    注意:如果解决方案更改后立即路段已经沉没到小瓶的底部这个过程可能会加快。在75%与90%的溶液,部分不会下沉一路小瓶的底部,但将在中间浮动。

5.安装脑组织切片

  1. 切1.5号盖玻片到5个创建间隔。用尺子和金刚石尖铅笔得分和打破盖玻片沿图5A中所示的虚线。丢弃吨他围绕一块,安排4件外的一个普通的载玻片,以创建一个窗口,然后刷透明指甲油到接缝坚持间隔的碎片在正确的配置( 图5B)的幻灯片。
    注:该垫片将被用于创建载玻片和盖玻片用于安装清除部分之间的必要的空间。盖玻片可被切割以不同的方式来创建所需的任何尺寸的窗口。预切割泡沫衬垫也可商购。为了让指甲油完全干燥,最好是安装部分,至少提前一天进行幻灯片与垫片。
  2. 使用具有尖端的塑料移液管转移到节幻灯片切断。请务必填写周边地区有90%GL / PBST。小心地放下盖玻片在确保不引入任何气泡的部分。多余的GL / PBST可吸走了无绒擦拭。
  3. 图像GFP +含RFP元+ 图7A-B),然后存储幻灯片平坦和覆盖从光在4℃。
    注意:可替换地,密封滑动完全围绕所有边缘来存储和成像在以后的时间。使用的透明指甲油密封滑动是可选的,并且可以使之更难以除去盖玻片如果一个人以除去从滑动部分在稍后的日期,以便进一步处理。

6.成像

注意:任何显微镜,可以使用具有获得高解析度的z栈的能力。

  1. 在最初发现的焦平面的10倍,变为20倍的目标,并通过部分扫描识别位于GFP +细胞内囊肿。在视场中心的感兴趣区域(ROI)的区域。
  2. 更改为40X的目标。注重上下贯通整个投资回报率,以确保整个细胞和CYST是可见的。
    注:图片均使用共焦显微镜用40X / 1.30石油DIC M27目标获得。
  3. 使用安装的成像软件,得到Z堆叠包括与囊肿整个单元。用于获取图像的平均设置示于图6中
    注:设置可能需要根据每个研究者的组织切片和显微镜的能力进行调整。
  4. 由突起的数目设置为1。由突起的数目设定为64获得完整的旋转视图获取Z堆叠的最大投影图像。
    注:其它软件包可用,并且可以被用于获得最大突出,旋转以及Z堆叠图像的其它视图。
  5. 分析图像与图像分析软件。

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Representative Results

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图7包括两个GFP +神经元从两个不同的160微米厚的切片,以及来自囊肿至细胞体为图7B的距离的代表测量结果。 含有囊肿-7的A和 B示出了这个新的代表图像协议允许在其全部被感染的神经元的可视化。 图7C示出了与该成像技术,现在有可能量化囊肿和胞体(了Imaris 7.7)之间的距离。 图7D的一个完整旋转视图7B。的z栈以这种方式的可视化允许核查细胞和孢囊的完全捕获的。 图7E是一个3D旋转动画显示如何从7D的图像可以通过了Imaris 7.7软件进行分析,以测量来自囊肿的距离,以胞体无论是从中间到中间Øř边缘到边缘。虽然使用下列实际的GFP +进程到细胞体囊肿和细胞体,测定之间的直线做图示的测量,也可产生(数据未显示)。

图1
图1:用于去除小鼠脑的外科设备。 (A)吸收垫。(B)泡沫块。(C)针牵制脚。(D)25克血收集组。(E)3路阀。(F)20毫升注射器肝素/盐。( G)20毫升注射器4%PFA。(H)拇指钳。(I)精细剪刀,角度的摆动,尖锐犀利。(J)夏普锋利的剪刀。(K)凯利止血。(L),梅奥剪刀。 (M)的 。(N)闪烁小瓶的4%PFA。比例尺= 8公分。

图2
图2:收获小鼠大脑。不当灌注后(A)鼠标牵制和胸部喷以70%乙醇。(B)裸露的胸部。(C)胸腔打开的。适当的灌注后,(D)。(E)。(F)裸露的头骨。( G)与脑颅骨的一半删除。(H)小瓶装有4%PFA(I)适当灌注后,脑收获的大脑。(J)脑灌注不当后。

图3
图3:切片鼠脑。 (A)鼠脑马特里 X(B)小鼠大脑和琼脂糖凝胶贴安装块与氰基丙烯酸酯的vibratome室洋溢着冷1X PBS内。

图4
图4:清除处理的小鼠脑切片的过程中清算过程的每个步骤代表性图像

图5
图5:切割和固定间隔滑动。一个号1.5盖玻片有代表性的标志切割盖玻片到5个; B。每一块切盖玻片普通载玻片上涨到位透明指甲油来创建一个窗口。

2237 / 52237fig6highres.jpg“/>
图6:屏幕快照用于图像采集常规参数。

图7
图7: 弓形虫包囊可以驻留遥远的神经元突起中(AB)最大的投影GFP的图像+含RFP +囊肿(白色箭头)神经元。比例尺= 20微米。(CE)提供的B所示的囊肿-神经元关系的其他可视化和分析。(C)的了Imaris生成的直线距离的囊肿到细胞体的边缘上的边缘测量(149μm )。(D) 3-D旋转的电影 。(E)了Imaris生成www.jove.com/files/ftp_upload/52237/Animated-Video图7E.avi“目标=”_空白“>的3-D电影表示从囊肿到细胞体的测量两者中间到中间(163微米)和边缘到边缘(149微米)。

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Discussion

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由于在感染宿主细胞的细胞变化都与疾病结果在感染细胞内的其他生物如HIV,狂犬病,和衣原体18,19,我们开发出一种技术,使我们研究CNS之间发生亲密互动宿主细胞和弓形虫 。这里介绍的方法实现这一目标,通过使慢性感染神经细胞的有效成像。在此之前的方法的发展,这样的成像是耗时的,昂贵的,或者是不可能的。

现在,我们可以使用这种技术来回答有关弓形虫 -neuron互动的基本问题,比如是由寄生虫针对特定的神经元的地方?是否弓形虫株之间的这种差异?做在其中驻留囊肿从细胞的其余部分不同( 不感染,并且从相同的神经元未感染的树突有棘相同数量的蜂窝区)?什么是被感染的神经元共享蜂窝特点?回答这些问题的能力是必不可少的理解如何弓形体感染改变中枢神经系统,包括在行为水平。

以获得最佳的图像成为可能,这是非常重要的,以确保组织被切割成连部分。如果部分是不均匀的,盖玻片不正确地导致与导致亚最佳成像的目标不均匀接触的部分坐。在这个方案的最优化,一些改动做了。原来的结算过程中重现称为SeeDB 20的技术显示的结果,企图用果糖做的。这种方法是用这种模式不兼容,因为它淬火RFP(特别mCherry)。另一个关键的一步,可能是最重要的是,允许组织切片最大结算。如果没有正确清零,背景光衍射会更高和图像噪点。我们发现,加入吐温20至甘油给予了比单独甘油稍微清晰的图像。目前的技术允许我们通过160μm厚的脑组织切片,以获得Z堆栈的图像,但在未来,我们希望增加这个厚度500微米以上,以便更深入的分析。

只有通过观察整个小区及其连接,我们就可以开始开发大脑如何在全球范围受到弓形虫一种机械的想法。这个新的协议提供了研究弓形虫 -neuron相互作用在单细胞水平和这样做以快速,经济的方式提供了机会。我们还没有探讨所有的潜在用途的这个协议,以及它如何可能转化到其他系统,但我们预计将有多个应用程序。

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Disclosures

作者什么都没有透露。

Acknowledgments

我们感谢整个Koshy实验室进行有益的讨论。我们感谢侯佩岑Jansma和亚利桑那州神经科学系的大学征求意见,并与成像帮助。我们也感谢波雷卡实验室使用他们的vibratome的。这项研究是由健康的美国国家研究院​​(NIH NS065116,AAK)的支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Vibratome Series 1000 Sectioning System Technical Products International, Inc. Other vibratomes are compatible
Glycerol Fisher Scientific BP229-1
Tween-20 Fisher Scientific BP337-500
Premium Slides Fisher Scientific 12-544-2
#1.5 Coverslips VWR 48393 251
Diamond Scriber VWR 52865-005
Zeiss LSM 510 Meta confocal microscope Zeiss LSM 510
Ketaject® Ketamine HCl Inj., USP 100 mg/ml Western Medical Supply, Inc. 4165
AnaSed® Injection Xylazine 20 mg/ml Lloyd Inc.
ZsGreen Mice Jackson Laboratories 7906 B6.Cg-Gt(ROSA)26Sortm6(CAG-ZsGreen1)Hze/J
Surgical equipment Thumb forceps; Fine scissors-angled to side, sharp-sharp; Sharp-sharp scissors; Kelly hemostats; Mayo scissors; Micro spatula.
Human Foreskin Fibroblasts (HFF) cells These are primary cells from human foreskins.  We make these in-house but they may be purchased from outside vendors.
Dulbecco's High Glucose Modified Eagles Medium (DMEM) HyClone SH30081.01
Penicillin Streptomycin Solution, 100x Corning 30-002-Cl
200 mM L-alanyl-L-glutamine Corning 25-015-Cl
25 cm2 Canted neck flask Fisher Scientific 1012639
Phosphate-Buffered Saline, 1x Without Calcium and Magnesium VWR 45000-446
Phosphate-Buffered Saline, 10x, USP Sterile Ultra Pure Grade amresco K813-500ml
Fetal Bovine Serum Gibco 26140-079
Bright-Line Hemocytometer Sigma-aldrich Z359629-1EA
Mouse Brain Slicer Matrix Zivic Instruments BSMAS005-1
Sodium Chloride Fisher Scientific BP358-1
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa Sigma-aldrich H3393-100KU
Paraformaldehyde Fisher Scientific O4042-500
20 ml Disposable Scintillation Vials Fisher Scientific FS74500-20
Alcohol, Ethyl, 95%, 190 Proof In-house 17212945 This product is purchased from an in-house stockroom.  Other companies are compatible.
Imaris Software Bitplane
Clear nail polish Other brands are compatible
10 ml Syringe with Luer-Lok VWR BD309604 Other syringes are compatible
Three-way Stopcock Any brand is compatible
Hypodermic needle Any brand is compatible - used to pin down mouse.
Cell Scraper Any brand is compatible
25 G x 12" Tubing, Safety Blood Collection Set, with Luer Adapter Greiner Bio-One 450099 Other brands are compatible

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References

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Erratum

Formal Correction: Erratum: 3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii
Posted by JoVE Editors on 09/01/2015. Citeable Link.

A correction was made to "3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii". The ordering of the authors was inverted. The order has been updated from:

Anita A. Koshy, Carla M. Cabral

to:

Carla M. Cabral, Anita A. Koshy

神经元的3-D成像和分析感染<em&gt;在体内</em&gt;与<em&gt;弓形虫</em
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Cite this Article

Cabral, C. M., Koshy, A. A. 3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii. J. Vis. Exp. (94), e52237, doi:10.3791/52237 (2014).More

Cabral, C. M., Koshy, A. A. 3-D Imaging and Analysis of Neurons Infected In Vivo with Toxoplasma gondii. J. Vis. Exp. (94), e52237, doi:10.3791/52237 (2014).

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