Introduction
폐의 주요 기능은 유기체와 대기 사이의 산소와 이산화탄소의 교환을 제공하는 것이다. 인간에서, 선천성 및 획득 조건 호스트 손상된 폐 기능의 감소 결과 폐 표면적 이어질. 즉, 폐 - 같은 흡입 코르티코 스테로이드, 기관지 확장제, 산소 보충, 만성 기계 호흡으로 치료의 호스트가 손상된 폐 기능 1-3의 결과를 완화하기 위해 사용되지만, 이러한 조건을위한 이상적인 치료는 기능 폐 조직의 재성장을 촉진 것 재생.
포유류 조직 재생이 잘 설명되어 있습니다. 아프리카 가시 마우스 반흔 4없이 피부의 넓은 지역을 다시 생성 할 수 있습니다. 인간의 말단 지골 부상 또는 절단 5-7 다음 다시 생성 할 수 있습니다. 다음 전폐 절제술 (PNX), 보상 폐 성장 할, 9 쥐, 마우스 (8) 발생GS (10), 및 11 인간. 정의에 따라 보상 폐 성장은 관련 미세 (12)의 확장과이 확대 airspaces의 기존 airspaces의뿐만 아니라 확장,하지만 다시 격막을 포함한다. 유전자 발현 분석은이 모델은 폐 (13)의 개발 시그널링 많은 이벤트를 되풀이 것을 보여 주었다. 네 주 마우스 PNX 후, 폐포 표면적은 가짜 운영 동물 (14)의 그것과 동일하다. 이 논문에서 우리는 마우스 PNX와 가짜 PNX 절차를 설명합니다.
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Protocol
참고 : 동물 use 문 : 본 연구의 모든 절차를 승인 신시내티 아동 병원의 기관 동물 사용 및 관리위원회 (IACUC)의 가이드 라인을 다음과 같이 실시 하였다. 여덟 주령의 C57BL / 6J 수컷 마우스는 잭슨 연구소 (주 바 하버, ME)로부터 획득하고 사용하기 전에 일주일 동안 순응시켰다. 수술까지는 동물은 무균 장벽 시설에 보관하고 멸균 차우 여과 물 광고 libdium를 제공했다. 각 마우스 케이지는 전용 공기와 물을 공급하고, 객실은 12 시간 밤낮주기를 유지 하였다. 수술 회복 후, 마우스, 여과 탑과에서 사육 멸균 우 광고 섭취하는을 제공하고, 물병에서 물을 여과 제공되었다.
악기 1. 준비
- 종이 클립과 핀을 사용하여 6 피부 견인기를 확인합니다. 트위스트 종이 핀의 정강이에 종이 클립을 곧게, L일단에 5cm 직선 강선 처마와 와이어의 단부에 단일 0.5 cm "U"자 고리를 만든다.
- 플라스틱 랩을 사용하여 약 15 X 15cm 정사각형 외과 드레이프를 확인합니다. 마우스 당 하나의 드레싱을 준비합니다. 각 랩 사이에 종이 타워를 넣습니다.
- 12 × 12 인치 코르크 타일, 거즈, 그리고 면봉 면봉의 스택과 함께 모든 수술 도구를 소독.
2. 마우스 준비
- 2 % 이소 플루 란 마취를 유도한다. 동물의 무게를.
- 전용 수술 준비 영역에서 전기 면도기 왼쪽 흉부와 목 영역을 면도.
- 마우스의 눈에 인공 눈물 연고의 드롭을 적용합니다.
- 클로르헥시딘과 이소 프로필 알코올 목과 왼쪽 가슴의 오염을 제거. 두 번 더 반복한다.
3. 마우스 오로 - 기관 내 삽관 및 기계 환기
- 비 멸균 수술 기술자 장소를 예열 외과 영역에서 마우스 부정사가있다.
- 발 핀치에 대한 응답의 부족을 문서화하여 마취의 깊이를 확인합니다.
- 수술 복장, 마스크, 모자를 손을 씻고 걸치고 후, 멸균 수술 장갑을 돈.
- 입체 재단 및 무균 기술을 사용하면, 후두를 노출 앞쪽 중간 목을 통해 1cm 세로 절개를합니다. 살짝 곡선, 톱니 모양의 10cm 집게와 스트랩 근육을 철회하고 직선 가위의 끝 스트랩 근육을 확산하여 후두와 기관을 노출.
- 경구 중반 기관 (그림 1A)에 22 G 뭉툭한 팁 angiocatheter를 삽입하고 시각적으로 배치 (그림 1B)를 확인합니다. 마취를 유지하고 설치류 인공 호흡기를 통해 (스트로크 당 225 μL, 분 당 200 스톡스를) 1-3% 이소 플루 란 (isoflurane)을 이용 환기. 15cm의 H 2 O의 압력 한계를 채용
4. 마우스 전폐 절제술
- 마우스의 뒷면을 향 우측 측와위 위치에 마우스를 놓는다연산자 (왼쪽 위). 멸균 드레이프로 자체 밀봉 플라스틱 랩을 사용합니다. 드레이프를 통해 절단, 4 번째와 5 번째 늑간에서 갈비뼈에 2cm 길이 컷 평행하게 끝이 무딘 곡선 가위를 사용합니다. 무딘 끝 곡선 가위를 삽입하고 기본 갈비와 늑간 근육에서 멀리 피부를 해부하다.
- 광장을 1.5 × 1.5 cm 수술 창 (그림 2A)를 노출 네 견인기로 피부를 후퇴. 코르크 보드에 견인기를 고정합니다.
- 곡선 집게를 사용 갈비뼈 아래로 해부하고, 흉강을 입력 곡선 집게 중 하나 팁을 사용합니다.
- 뭉툭한 팁 마이크로 가위를 사용하여, 흉강을 입력 하부 날개를 사용합니다. 반대 방향으로 갈비와 반복 사이에 0.5 cm의 절개를합니다.
- 나머지 두 견인기를 사용하여 전후방 축과 코르크 보드 (그림 2B)로 견인기 보안에 흉부를 엽니 다. <왼쪽 폐 동맥과 기관지가 (그림 3A, B)에 노출 될 때까지 왼쪽 손에 곡선 무딘 팁 집게를 사용하여 리>, 개흉술을 통해 옆으로 하방 왼쪽 폐의 상부를 왼쪽 폐를 잡고 대체.
- 손바닥에 도포 손목 (그림 3C)에서 멀리 가리키는 곡선 팁의 시체와 함께 오른쪽에있는로드 티타늄 혈관 microclip 주걱을 잡고, 왼쪽의 후방 측면의 곡률을 따라 흉부에 도포 팁을 밀어 폐는 왼쪽 기관지 및 폐 동맥 (그림 3D)를 클립.
- 도포를 제거하지만 수축 왼쪽 폐를 유지합니다. 오른손으로 무딘 팁 마이크로 가위를 잡고 클립에 기관지 및 폐 동맥 원위부 절단과 왼쪽 폐 (그림 3E)를 제거합니다.
- 리브 견인기를 제거합니다.
- incisi 열등 피부의 1cm를 끼지 곡선 무딘 집게를 사용하여에하지만 진동판의 수준 이상과 피부를 통해 왼쪽 흉강 (그림 4A, B)에 24 G의 angiocatheter를 삽입합니다.
- 흉강을 닫습니다 제 4 회 약 2 단속 봉합 5 일 리브를 배치 5-0 prolene의 봉합을 사용합니다.
- 피부 견인기를 제거합니다. 절개의 길이를 따라 피부를 피부에 근사하고 폐쇄 붙 집게 두 세트를 사용한다.
- angiocatheter에 3 ㎖ 루어 잠금 주사기를 연결하고 부드러운 흡입을 적용하고 angiocatheter을 인출하여 잔류 공기를 제거합니다.
- 목 절개 전과 집게 두 세트를 사용하는 폐쇄 붙인다.
5. 마우스 위장 전폐 절제술
- "마우스 전폐 절제술"프로토콜에서 언급 한 바와 같이 왼쪽 폐를 노출. 왼쪽 흉강에 공기를 허용하는 곡선 무딘 집게로 갈비뼈를 들어 올립니다 (그림 5A, B).
- 왼쪽 상점에 24 G의 angiocatheter를 배치왼쪽 폐를 손상하지 않도록주의 상기와 흉부 캐비티.
- 5-0 prolene의 봉합을 사용하고 폐 (그림 5C)를 구멍을 뚫거나하지 않도록주의, 제 3 회 / 4 회에 봉합사의 두 길이와 5 일 / 6 일 리브의 사이 공간 (그림 5D)를 배치합니다. 왼쪽 폐 탈출증의 위험을 줄이기 위해 묶는 전에 봉합사의 양쪽 길이를 놓습니다. 두 중단 바늘 (그림 5E)을 만들 수있는 봉합사를 묶어.
- 흉부 절개를 통해 피부 접착제, angiocatheter에 잔류 공기를 제거하고, 상기와 목 절개를 붙입니다.
6. 소생술, 진통, 및 복구
- 이소 플루 란의 전원을 끄고, 부 프레 노르 핀의 0.1 ㎎ / ㎏을 관리하고 생리 식염수를 피하 0.5 ml의.
- 자발 호흡이 다시 시작하면, 기관 튜브를 제거합니다.
- 다시 외래 때까지 마우스를 관찰합니다. 일반적으로 resum 워킹기관 내 튜브의 제거 후 몇 분 말이지.
- / N을 O를 복구하기 위해 27 ° C 배양기 (가습, 25 % 산소)에 마우스를 놓습니다.
참고 : 우리는 수술 후 첫 24 시간 동안 케이지 바닥에 물을 적신 차우의 몇 가지 알약을 배치합니다. - 수술 후 하루에 두 번 3 일 동안 복강 주사로 부 프레 노르 핀의 0.1 ㎎ / ㎏을 관리합니다. 동물을 처리 할 때 수술 부위를 열 않도록주의하십시오.
7. 마우스 모니터링
- 수술 후 1, 3, 5 및 7 일째에 마우스 체중.
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Representative Results
. 모두 PNX와 가짜 전폐 절제술 100 % - PNX와 가짜 운영 마우스 무게의 플롯은 그림 6에 제공됩니다 우리의 손에, 생존은 지속적으로 95이다. 오른쪽 폐 - 성장 다시이 모델과 예상 시간 과정에서, 우리는 기 브니 등. (15)과 왕 등의 원고에 독자를 참조하는 방법에 대한 설명. (14)
몇 가지 일반적인 함정이 성공적으로 마우스 PNX와 마우스 가짜 전폐 절제술 절차를 수행하기 위해 피해야한다.
기관 내 삽관 : 마우스 PNX 기술을 배우는 많은 연구자들은 기관 내 삽관에 어려움이있다. 마우스 후두가 전방이고 기관 내 카테터 성대 통과해야하므로 카테터 식도 내로 통과하기 쉽다. 그림 1A에서 알 수 있듯이, 무딘 팁 카테터 curva 다음 가능한 전방으로 기울어해야다음 중간 선을 따라 혀의 헌과 부드럽게 압력으로 기관에 전달. 미드 기관 카테터 위치를 시각적으로 (그림 1B) 확인해야합니다. 기관 배치 부드럽게 측으로 카테터 측으로 이동 기관의 움직임을 관찰함으로써 확인할 수있다. 적절한 위치는 양자 가슴 상승을 관찰함으로써 확인된다. 다른 기술은 후술된다.
수술이 필드 만들기 : 두 번째 공통의 함정이 적절한 개흉술 윈도우를 생성 실패입니다. 도 2a 및도 2b에 도시 된 바와 같이, 개흉술 창 좌측 폐동맥을 적절히 시각화 및 좌측 원줄기 기관지을 허용하도록 충분히 크고 후방이어야한다. 미숙 한 운전자는 일반적으로 쉽게 왼쪽 폐를 철회하고 왼쪽 폐문 액세스 할 수 있도록 개흉술이 너무 작 너무 앞쪽에, 또는 너무 열등 할 것입니다.
혈관 클립 입학 원서에 : 올바르게 혈관 클립을 적용하지 않으면 일어난 과다 출혈이 발생할 것입니다. 폐문의 적절한 식별이 중요 (그림 3A)입니다. 만곡 된 어플리케이터 팁의 몸체 내에서 클립이 클립 어플리케이터 홀더로부터 제거되어도 3b 및도 3c에서 보여 지듯이 클립의 단부 클립 어플리케이터 팁과 클립의 몸과 일직선 인 . 어플리케이터 핸들의 부드러운 폐쇄 클립을 닫습니다. 클립 방향의 모든 변경은 부적절한 클립 폐쇄 될 수 있습니다; 클립이 도포에서 탈락 될 경우 따라서, 새로운 클립을로드 할 수 있어야합니다. 클립에 폐문 근위 찢어지지 않도록 마찬가지로, 왼쪽 폐에 견인 부드럽게해야한다. 도포의 곡선 끝은 왼쪽 폐문 (그림 3D)을 결찰하려면 왼쪽 폐의 우수한 측면의 곡선을 따라야합니다. 일반적인 실수는 식도의 합자이다. 그림 3E에서 알 수 있듯이
가짜 PNX 동안 왼쪽 폐 손상 방지 : 경험과 경험이 사업자의 아마 가장 일반적인 함정은 가짜 PNX 동안 폐 손상을 남아 있습니다. 도 5에서 입증 된 바와 같이, 작업자는 봉합 바늘 폐 천공하거나 탈출 폐의 포획을 허용하도록 폐색되지 개흉술 동안 조심해야한다. 그것은 견인기, 공기 배출 용의 24 G angiocatheter 및 봉합사 (도 5A-D)를 배치 할 때 리브 리프트 중요하다. 개흉술을 폐쇄하는 동안, 끼워 팔기 전에 봉합의 두 가닥을 배치하는 것은 폐 함정 수사 (그림 5E)의 위험을 최소화 할 수 있습니다. 일반적으로 네 개의 가짜 절차를 수행 우리의 실험실에 네 PNX 우리는 우리가 왼쪽 폐를 손상한다 PNX 마우스로 가짜 마우스를 변환 할 수 있도록. 그것은 모든 그룹이 잔류 왼쪽 흉부 공기의 대피를 계획하고 실시 할 것을 유의해야한다. 우리가 아는 한, 데이터가 함께 잔류 공기 배출없이 PNX을 비교 존재하지 않습니다.
연습과 경험을 바탕으로, 모두 PNX와 가짜 절차는 단일 세션에서 수행하는여 개의 마우스 수술까지 허용 10 분에 수행되어야한다.
1. 마우스 기관 내 삽관 그림. (A) 경구 기관 카테터는 중간 선하고 전방 후두쪽으로 고급 각도 그대로 혀를 우울하게하는 데 사용되어야한다. (B) 중앙 기관에 카테터의 적절한 위치 시각적으로 확인되어야한다."대상 ="_ 빈은 ">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
2. 마우스 개흉술 그림. 기본 흉부 케이지에서 절개하고 피부의 릴리스 후 (A), 1.5 × 1.5 cm 수술 창은 4 번째와 5 개흉술을 생성 한 후 4 번째와 5 번째 늑간 공간을 중심으로. (B) 작성 제 리브 늑간 공간, 견인기가 폐를 시각화하는 데 사용됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3. 전폐 절제술. (A) L 좌측 웅 좌측 폐문 (흰색 화살표)를 공개하는 개흉술을 통해 곡선 집게로 파악하고 해제한다. (B) 혈관 클립이 혈관 클립 주걱과 곡선 어플리케이터 팁 내의 팁과 같은 높이로한다. (C) 도포 곡선 팁 멀리 손바닥에서 각도로 오른쪽 손의 손바닥 함께 앉아 어플리케이터의 몸과 손가락 번째 오른쪽 엄지 손가락과 네 개최한다. (D) 좌측 상엽의 곡선, 혈관 클립 다음 좌측 폐문에 적용됩니다. (E) 왼쪽 PNX 다음 알 수있는 바와 같이, (흰색 화살표 사이) 식도 단지. (혈관 클립 흰색 상자에 의해 설명) 왼쪽 폐문 후부 위치 의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림.
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에어 피난을위한 Angiocatheter 그림 4. 배치. (A) angiocatheter 팁이 피부를 관통. (B) angiocatheter가 흉강에 격막 위에 삽입됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
5. 마우스 위장 전폐 절제술 그림. 가짜 과정 중 (A)는, 배치를 트랙터에 앞서 리브 가장자리의 리프팅은 폐 손상의 위험을 최소화한다. (B)가 PNX위한 같은 견인기가 자리에 남아 있어야합니다. (C) 흉곽의 하부 가장자리 24 G의 angiocatheter을 배치하는 것은 지나치게 흉부의 폐쇄 및 다음 잔류 공기를 흡인하는 데 사용 때까지 해제해야피부를 보내고. (D) 흉곽도 봉합 배치를 해제해야합니다. (E) 묶는 전에 개흉술 사이트를 통해 봉합의 두 가닥을 배치함으로써 것은, 폐 함정 수사의 위험이 최소화된다. 여기를 클릭하십시오이의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다 이 그림.
그림 6. 예상 체중 감소. 그룹에 5 마우스를 사용하여, 우리는 24 시간 수술 후, PNX 마우스는 1.5 g (7.2 %)의 평균을 잃게되며, 가짜 마우스는 1.1 g (5.2 %)의 평균을 잃게됩니다 보여 주었다. 두 그룹은 수술 후 3 일째되는 날에는 자신의 수술 전 체중을 회복.
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Discussion
우리는 지금까지보고 된 마우스 PNX와 마우스 가짜 PNX 절차의 가장 상세한 설명을 제공하고 있습니다. 우리는 절차를 학습 연구자들은 일반적으로 발생하는 일반적인 함정의 여러 가지의 독자가 인식 한 우리는이 함정을 완화하기 위해 실험실에서 개발 한 몇 가지 기술을 설명했다. 이 모델을 이용하여 다른 실험실은 다른 기술 수정을 개발하거나 다른 악기를 사용할 수 있습니다. 기술의 차이를 평가할 때, 개별 연구자들은 이러한 차이는 상당히 실험 결과에 영향을 미칠 여부를 결정해야합니다.
보상 폐 성장 PNX 마우스 모델 폐 수리 및 재생의 다른 동물 모델보다 많은 장점을 갖는다. 형질 전환 마우스를 사용할 수 있도록 계보 추적의 많은 수의 과발현 유전자, 대부분의 실험실 (16)에 대한 달성 목표 유전자 삭제 실험의 일반적인. 둘째, MOR폐포 재성장을위한 정량 phometric 기법 17 잘 설명된다. 셋째,이 모델을 채택하는 비용은 중간이다. 이 절차에 필요한 유일한 전문 장비는 혈관 클립 어플리케이터와 무딘 팁 코한 - Vannas 스프링 가위입니다. 모든 다른 장치는 일반적으로 마우스, 외과 핵심 기능을 통해 마우스 수술 키트 나 사용할에 제공 될 것이다. 넷째, 경험, 마우스 및 가짜 PNX PNX 절차가 비교적 빠른 많은 수술을 가능하게되고 동일한 날에 수행 될 수있다. 마지막으로, 다른 동물 모델, 적당한 하우징 요건에 비해 마우스의 작은 크기, 그들은 또한 사육 될 수있는 용이성은 다른 동물 모델보다 유지하는 마우스 모델을 쉽게.
폐 중생의 다른 모델에 비해 마우스 PNX 모델에 몇 가지 단점도 있습니다. 마우스 보상 폐 성장 스트레칭 (18)에 따라 크게 좌우하지만, 보상 폐 성장더 높은 포유 동물에서 일 신축성 증가 폐 혈액의 흐름 (19) 양에 따라 달라집니다. 인간의 폐 재생이 높은 포유 동물의 재생 메커니즘 가능성이 더 유사하기 때문에, 연구자는 인간에 직접 마우스의 연구 결과를 외삽주의해야합니다. 마우스 호흡 기계는 인간의 호흡 역학과 다를 수 있습니다. 인간에서, 엔드 호기 더 기류가없는 한 간격으로 수반된다. 인간의 최종 호기에서 폐 모집은 낮은 준수 흉부 케이지의 반경 견인에 의해 유지된다. 마우스 호흡주기 불완전한 호기 행 트래핑 소량 발생이 호기 일시 없다. 마우스가 훨씬 더 높은 준수 흉부 케이지를 가지고 있기 때문에, 그것은 폐 모집 (20)를 유지하고이 공기 폐색이다. 마우스 모델의 세 번째 단점은 해부학이다. 마우스는 단일 로브 왼쪽 폐를 갖기 때문에 그것이 다른에서와 같이, 좌측 부분이 PNX 불가능종.
몇 가지 일반적인 함정이 성공적으로 마우스 PNX와 가짜 절차를 수행하려면 몇 가지 중요한 고비에서 피해야한다. 이 중요한 고비는 기관 내 삽관, 수술 부위의 생성, 혈관 클립 응용 프로그램 및 가짜 수술 중 왼쪽 폐 손상의 회피입니다.
이러한 수술을 생존하지 못할 어떤 마우스의 부검은 미래의 수술 기법 향상에 필수적이다. 다음, 우리는 몇 가지 일반적인 문제를 해결하고 성공의 큰 정도를 얻을 수있다 대체 기술을 제공합니다.
실패는 성공 기관을 Cannulate합니다 : 다른 실험실 직접 시각화 (21)에 대한 필요성을 제거 오로 - 기관 내 삽관을 위해 서스펜션과 트랜스 기관 조명을 사용합니다.
난이도 폐문 시각화 : 큰, 적절하게 배치 개흉술 창을 만들기가 필요 내가있다좌측 폐문를 시각화 N 순서. 시각화 절차가 불충분하거나 혈관 클립 어플리케이터의 삽입을위한 공간이 부족한 경우 중에, 개흉술 연장되어야하고, 견인기는 재배치. 이 절차를 수행하는 동안 혈액의 더 풀링이 없어야합니다. 존재하는 경우, 조사원은 그 왼쪽 폐에 너무 많은 장력을두고 좌 폐동맥을 찢 있는지 여부를 확인한다.
왼쪽 폐의 제거 후 출혈 :이 절차를 수행하는 동안 약간의 출혈이 있어야한다. 부적절하게로드되거나 클립인가 혈관 출혈의 가장 흔한 원인이며, 그 좌측 폐동맥 출혈 쥐는 안락사한다. 이러한 유형의 출혈이 발생하면, 혈관 클립과 상사의인가 적절한 로딩이인가에 일정한 압력이 절차를 다시 시도하기 전에 확인한다. 마찬가지로, 왼쪽 가슴에 혈액의 발견과 수술 후 죽음이다부적절한 혈관 클립 응용 프로그램에 의한 것이다. 우리 혈관 클립 기법에 대한 대안은 실크 봉합사로 결찰된다.
위장 수술 중 왼쪽 폐 부상 : 여러 가지면에서 가짜 절차는 PNX 절차보다 수술 기술의 높은 수준이 필요합니다. 왼쪽 폐는 수술 부위 아래 24 G의 angiocatheter의 삽입시, 또는 개흉술의 폐쇄하는 동안, 개흉술 중에 부상을 입을 수 있습니다. 실험의 필요성에 따라, 모의 수술을받은 생쥐 PNX로 전환시킬 수있다. 왼쪽 폐 손상의 또 다른 잠재적 인 원인은 개흉술 사이트 폐쇄시 허리 왼쪽 폐의 감금입니다. 왼쪽 폐 손상과 위장 마우스는 안락사 또는 수술이 PNX로 변경해야 하나.
복구 후 호흡 곤란 : 마취에서 회복 후 호흡 곤란으로 인해 외상 삽관, 불충분 한 통증 조절, 또는 unreco에 성문의 팽윤에서 올 수gnized 폐 손상. 일반적으로, 추가 진통제의 투여에 의해 안심 조난하지 않는 한, 동물 안락사되어야하고, 결정의 원인이됩니다. 여러 삽관 시도 성문이나 성문이 영감 결과 어려움 부종이 발생할 수 있습니다. 성문이 하인두로부터 분리 된 후 부검에서, 특허 성문 개구부의 부족은 명백 할 것이다. 기관 내 삽관에 대한 대체 방법은 위에서 설명되어 있습니다. 불충분 한 통증 조절은 진통제의 추가 투여로 해결할 수 있습니다. 위에서 언급 한 것처럼 가짜 수술을 배울 때, 의도하지 않은 왼쪽 폐 손상은 일반적이고, 인식 할 수없는 경우, 호흡 곤란과 실험 결과의 변경으로 이어질 수 있습니다.
과도한 체중 감소와 탈수 : 수술 후 과도한 체중 감소 또는 탈수를 경험 마우스는 결찰 된 식도, 불충분 한 통증 조절, 또는 공급 또는 마실 수없는이있을 수 있습니다. 식도는 J 거짓말UST의 좌측 폐문에 후방 및 식도의 결찰은 어떤 탈수 마우스를 의심해야한다. 불충분 한 통증 조절은 경직 증가 공격성, 또는 감소 보행 쥐 의심해야한다. 개흉술은 수술 후 첫째 날에 케이지 지붕에 매달려 음식과 물에 도달하는 쥐를 방지 할 수 있습니다. 먹고 마취에서 회복 후 마시지 않는다 마우스는 더 약한 탈수가 될 것이다. 우리는 수술 후 24 시간 동안 새장 바닥에 묻힌 음식을 배치하는 것이 좋습니다.
결론적으로, 보상 폐 성장의 마우스 폐 절제술 모델은 폐 재생의 기본 메커니즘을 해명하기위한 가치있는 모델입니다.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 6 inch Vascular clip applicator | Teleflex Medical (WECK) | 137062 | |
| Horizon small titanium red clip | Teleflex Medical (WECK) | 1201 | |
| Narrow pattern 12 cm curved forceps | Fine Science Tools | 11003-12 | |
| Curved serrated 10 cm Graefe forceps | Fine Science Tools | 11052-10 | |
| Castroviejo needle holder | Fine Science Tools | 12565-14 | |
| Straight 9 cm Strabismus scissors (blunt tip) | Fine Science Tools | 14075-09 | |
| Straight 8.5 cm hardened fine scissors | Fine Science Tools | 14090-09 | |
| Straight, blunt tip Cohan-Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15000-12 | |
| Skin glue | Gluture | 32046 | |
| 22 G Angiocatheter | |||
| 24 G Angiocatheter | |||
| 3 ml Luer lock syringe | |||
| 4 Short retractors | |||
| 2 Long retractors | |||
| 5-0 Prolene on curved cutting needle | Ethicon | 8698G | |
| 0.5 ml Syringe on 27 G needle | |||
| Normal saline | |||
| Buprenorphine | |||
| Press-n-Seal wrap | Glad Products Company | ||
| 12 x 12 inch Cork board stack | Office Depot | ||
| 70% Ethanol | |||
| Betadine | |||
| Mouse ventilator | Hugo Sachs Elektronnik | Minivent Type 845 | |
| Isoflurane vaporizer | OHMEDA | Excel 210 SE | |
| Artificial tear ointment | Puralube | NDC: 17033-211-38 |
References
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