Introduction
Основная функция легких является обеспечение для обмена двуокиси углерода и кислорода между организмом и атмосферой. У людей, хозяин врожденных и приобретенных условий приводят к снижению площади легкого поверхности, которая приводит к нарушению функции легких. Хотя хозяин терапии, такие как ингаляционных кортикостероидов, бронходилататоров, дополнительного кислорода и хронической механической вентиляции используются для смягчения последствий нарушения функции легких 1-3, идеальная терапия для этих условий будет способствовать отрастания функциональной легочной ткани - то есть, легких регенерации.
Регенерации тканей млекопитающего были хорошо документированы. Африканский колючий мыши могут регенерировать большие участки кожи без образования рубцов 4. Дистальной фаланги у человека может регенерировать после травмы или ампутации 5-7. После пневмонэктомии (ПН), компенсационный рост легких происходит у мышей 8, крысы 9, делатьGS 10, а люди 11. По определению, компенсационный рост легкого включает в себя не только расширение существующих воздушных пространствах, но вновь перегородок этих увеличенных воздушного пространства с расширением, связанной микроциркуляции 12. Анализ экспрессии генов показал, что эта модель повторяет многие из сигнальных событий развития легких 13. Через четыре недели после мыши PNX, площадь поверхности альвеол является таким же, как ложнооперированных животных 14. В этой рукописи мы опишем ПН мыши и фиктивные процедуры ПН.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
ПРИМЕЧАНИЕ: Animal используйте оператор: Все процедуры в этом исследовании, были проведены с одобрения и в соответствии с инструкциями институциональной использования животных и Комитета помощи (IACUC) в больнице Цинциннати детей. Восемь недельных мышей C57BL / 6J мышей мужского пола были получены из Jackson Laboratories (Bar Harbor, ME) и оставляли для акклиматизации в течение одной недели перед использованием. До операции, животные были размещены в патогена барьерном объекта и при условии автоклавного чау и фильтрованной воды объявлений libdium. В каждой клетке мышь поставляется со специальным воздуха и воды, а также номера были сохранены на 12 ч дня и ночи. После восстановления после операции, Мышей содержали в клетках с фильтром на вершинах, при условии, автоклавного чау объявления libidum, и при условии, фильтрованную воду из бутылки с водой.
1. Подготовка инструментов
- Сделайте 6 втягивающих кожи с помощью скрепки и булавки. Twist выпрямился скрепки на черенки штифтов бумаги, лEAVE 5 см провода с прямой стальной на одном конце и сделать один 0,5 см "U" образный крючок на конце провода.
- Сделайте около 15 х 15 см квадратных хирургических простыней, используя пластиковую упаковку. Подготовьте соус на мышь. Положите бумагу башню между каждым пленкой.
- Стерилизовать всех хирургических инструментов наряду со стеком 12 х 12 дюймов пробковой плитки, марля, и ватным тампоном.
2. Подготовка мышь
- Анестезии с 2% изофлуран. Взвешивание животных.
- В специальных хирургической области подготовки бриться левой грудной клетки и области шеи с электрическим бритвы.
- Нанесите каплю искусственной слезы мазь для глаз мыши.
- Дезактивации шею и левую грудную клетку с хлоргексидином и изопропилового спирта. Повторите еще два раза.
3. Мышь Oro-интубации трахеи и искусственной вентиляции легких
- Есть нестерильных хирургических месту техник на спине мыши в предварительно нагретой области операции.
- Подтвердите глубины анестезии путем документирования отсутствие ответа на лапы крайнем случае.
- После мытья руки и надевать хирургическую одежду, маску и шляпу, дон стерильные хирургические перчатки.
- После драпировки и использование асептической техники, сделать 1 см вертикальный разрез по передней середине шеи, чтобы разоблачить гортань. Слегка втянуть Ремешок мышцы с изогнутыми, зубчатыми 10 см щипцы и раскрыть гортань и трахею, распространяя ремень мышцы кончика прямой ножницами.
- Устно вставьте 22 G тупым кончиком ангиокатетера в середине трахеи (рис 1А) и визуально подтвердить размещение (рисунок 1b). Поддержание анестезии и проветрите использованием 1-3% изофлуран через грызунов вентилятора (225 мкл на удар; 200 Стокса в минуту). Применять предел давления 15 см H 2 O.
4. Мышь Пневмонэктомия
- Положите мышь в правой боковой позиции пролежни с бэк мыши должна быть обращенаОператор (левая сторона вверх). Используйте самогерметизирующийся полиэтиленовую пленку в качестве стерильной драпировки. Резка через простыни, используйте тупые наконечником изогнутые ножницы, чтобы сделать 2 см длиной, вырезанной параллельно ребрам на 4-й и 5-й межреберье. Вставьте тупым кончиком изогнутые ножницы и рассекают кожу от лежащих в основе ребер и межреберных мышц.
- Уберите кожу с четырьмя преднатяжителями подвергать квадрата 1,5 х 1,5 см хирургическое окна (рис 2а). Безопасный втягивающие в пробковой доски.
- Рассеките до ребер с использованием изогнутых щипцов, и использовать один конец изогнутых щипцов, чтобы войти в грудной полости.
- Использование тупым кончиком микро-ножницы, используйте нижнего ножа, чтобы войти в грудную полость. Сделать 0,5 см разрез между ребрами и повторите в обратном направлении.
- Использование двух оставшихся преднатяжителями, откройте грудную клетку в передне-задней оси и безопасный втягивающие в пробковой доски (рис 2, б). <LI> Использование изогнутых тупым наконечником пинцет в левой руке, возьмитесь за левое легкое и сместить верхнюю часть левого легкого с боков и книзу через торакотомии до левой легочной артерии и бронха не подвергаются (3А, Б).
- Проведение загруженной титана сосудистой microclip аппликатор в правой руке с телом аппликатора на ладони и изогнутой кончик направлен в сторону от ладони (рис 3C), вставьте наконечника аппликатора в грудной клетке вдоль кривизны задней поверхности левой легких и клип левого бронха и легочной артерии (рис 3D).
- Удалить аппликатор, но держать левое легкое убирается. Возьмитесь за тупым кончиком микро-ножницы с правой стороны и сократить бронхов и дистальных легочной артерии на клип и удалить левое легкое (рис 3E).
- Удалить ребра преднатяжителями.
- Используйте изогнутые тупые щипцы ущипнуть до 1 см кожи нижестоящие по отношению к incisiна но выше уровня диафрагмы и вставить 24 г ангиокатетер через кожу и в левой грудной полости (фиг.4А, В).
- Используйте 5-0 проленовой шва разместить два швами вокруг 4-й и 5-й ребра, чтобы закрыть грудной полости.
- Удалить втягивающие кожи. Использование двух наборов щипцов для аппроксимации кожу по всей длине надреза и клей кожа закрыты.
- Подключите 3 мл Луер-Лок шприц с ангиокатетер и удаления остатков воздуха путем легкого всасывания и отвода ангиокатетера.
- Клей шеи разрез закрыт с помощью двух наборов щипцов, как раньше.
5. Мышь Шам Пневмонэктомия
- Expose левое легкое, как отмечается в протоколе "мышь Пневмонэктомия". Поднимите грудную клетку с изогнутыми тупыми щипцами, чтобы воздух в левой грудной полости (рис 5а, б).
- Поставьте 24 г ангиокатетера в левой ТхоRacic полость, как указано выше, стараясь не повредить левое легкое.
- Использование 5-0 проленовой шва и быть осторожными, чтобы не проколоть легкое (5С), поместите две длины шовного материала в 3-м / 4-й и 5-й / 6-го ребра промежутки (рис 5D). Положите обе длины шовного материала перед связывать, чтобы уменьшить риски левой грыжи легких. Свяжите шовный материал, чтобы сделать два прерванных швов (рис 5E).
- Клей кожа над грудной разрез, удалить остаточный воздух с ангиокатетер, и приклейте шеи разрез, как описано выше.
6. Реанимация, Анестезия, и восстановление
- Выключите изофлуран и управлять 0,1 мг / кг бупренорфина и 0,5 мл физиологического подкожно.
- Когда спонтанные дыханий резюме, удалите эндотрахеальную трубку.
- Соблюдайте мышь, пока он не станет снова амбулаторно. Прогулки обычно resumэс несколько минут после удаления эндотрахеальной трубки.
- Наведите в 27 ° C инкубатора (увлажненной, 25% кислорода), чтобы восстановить O / N.
ПРИМЕЧАНИЕ: Мы размещаем несколько гранул чау, смоченной водой на полу клетки в течение первых 24 часов после операции. - Администрирование 0,1 мг / кг бупренорфина путем внутрибрюшинной инъекции два раза в день в течение трех дней после операции. Будьте осторожны, не открывать места операции при работе с животными.
7. Контроль мыши
- Взвешивание мышей через 1, 3, 5, и 7 дней после операции.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
. Сюжет PNX и ложнооперированных весов мыши приводится на рис 6 В наших руках, выживание последовательно 95 - 100% для обеих PNX и мнимого пневмонэктомии. Для описания того, как правое легкое повторное растет в этой модели и ожидаемого времени, конечно, мы отсылаем читателя к рукописи Gibney и др. 15 и Вонг и др. 14
Несколько распространенных ошибок следует избегать, чтобы успешно выполнить процедуры обман Пневмонэктомия ПН мыши и мыши.
Интубации трахеи: Многие исследователи обучения технике мыши ПН имеют трудности с эндотрахеальной интубации. Как гортани мыши передний и эндотрахеальной катетера должен быть передан через голосовые связки, это просто для катетера, чтобы пройти в пищевод. Как показано на рисунке 1А, с тупым концом катетера следует наклонить в передней возможные сроки после Керватуры языка по средней линии, а затем передаются в трахею с нежно давлением. Mid-трахеи позиция катетер должен быть подтверждены визуально (рис 1B). Размещение Эндотрахеальная может быть подтверждено, осторожно перемещая катетер из стороны в сторону и наблюдая за движением трахеи. Правильное расположение подтверждают наблюдения двустороннего грудной клетки. Альтернативный способ описан ниже.
Хирургическое Создание полей: вторая распространенная ошибка заключается в неспособности создать адекватную окно торакотомии. Как показано на фиг.2А и 2В, окно торакотомии должно быть достаточно большим, и задняя чтобы позволить адекватную визуализацию левой легочной артерии и левого главного бронха стволовые. Неопытный оператор обычно делают его торакотомия слишком мал, слишком передняя, или слишком уступает легко убрать левое легкое и получить доступ к левой рубчик.
Сосудистая Клип Применение вна: Сбой правильно применять зажим сосудов приведет к обескровливания. Правильное определение воротах имеет решающее значение (3А). Как показано на фиг.3В и 3С, когда зажим удаляется из держателя зажимом аппликатора, конец зажима находится на одном уровне с концом зажима аппликатора и корпусом зажима находится в теле изогнутой наконечника аппликатора , Нежный закрытие ручкой аппликатора закроет клип. Любое изменение в ориентации зажима может привести к недостаточной закрытия зажима; Поэтому, новый клип должен быть загружен, если ролик отсоединился от аппликатора. Кроме того, тяга на левом легком должен быть нежным, чтобы не порвать гилум проксимальнее клипа. Изогнутый наконечник аппликатора должны следовать кривой верхней аспектом левого легкого для лигирования левой рубчика (фиг 3D). Распространенной ошибкой является вязь пищевода. Как показано на рисунке 3E
Уход левого легкого ранения при Шам PNX: Наверное, наиболее распространенная ошибка опытных и неопытных операторов за травмы левого легких во время симуляции PNX. Как показано на фиг.5, оператор должен соблюдать осторожность при закрытии торакотомии не прокол легкого с хирургической иглы или позволить накапливания грыжи легких. Важно, чтобы поднять ребра при размещении натяжитель, 24 г ангиокатетера для отвода воздуха, и шов (рис 5A-D). Во закрытия торакотомии, помещая обе нити шва перед связывать сводит к минимуму риск легкого захвата (рис 5E). Наша лаборатория обычно выполняют четыре фиктивных процедур следуют четыре ПН, так что мы можем преобразовать фиктивные мышь в мышь PNX мы должны травмировать левое легкое. Следует отметить, что не все группы выполняют эвакуацию остаточного левой грудной воздуха. Для Насколько нам известно, нет данных, не существует сравнения ПН с и без лишнего воздуха.
С практикой и опытом, как ПН и фиктивных процедуры должны быть выполнены в течение 10 мин позволяет на срок до двух операций десятков мыши должны быть выполнены в течение одного сеанса.
Рисунок 1. Мышь интубации трахеи. (А) за полостью рта, трахеи катетер должен быть средней линии и использовали, чтобы нажать на язык, как это расширенный и под углом вперед по направлению к гортани. (В) Правильное расположение катетера в середине трахеи должны быть визуально подтверждено."TARGET =" _ пустое "> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 2. Мышь торакотомии. () После разреза и выпуска кожи от подлежащей грудной клетке, 1,5 х 1,5 см хирургическое окно создано по центру на 4-м и 5-м межреберье. (B) После создания торакотомии в 4-й и 5 го ребра межреберье, ретракторы для визуализации легких. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 3. Пневмонэктомия. (А) оставили л Ун схватывается с изогнутыми щипцами и поднял через торакотомии, чтобы выявить левую рубчик (белая стрелка). (B) сосудистой клип должен сидеть на одном уровне с кончиком сосудистой клип аппликатора и внутри изогнутого наконечника аппликатора. (C) аппликатор должны быть проведены с большим пальцем правой руки и 4-го пальца с телом аппликатора сидя вдоль ладони правой руки с загнутой верхушкой под углом от ладони. (D) После кривой верхней доли левого легкого, сосудов клип применяется для левой воротах. (E) Как видно следующее левой PNX, пищевода (между белыми стрелками) находится всего позади левой воротах (сосудистая клип изложено белой коробке). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этот показатель.
ES / ftp_upload / 52294 / 52294fig4highres.jpg "/>
Рисунок 4. Размещение ангиокатетера для воздушной эвакуации. () Наконечник ангиокатетера пронзает кожу. (B) ангиокатетера вставляется выше диафрагмы в грудную полость. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 5. Мышь Шам пневмонэктомии. () В процессе симуляции, подъем грудной края до втягивающим размещение минимизирует риск повреждения легких. (B) ретракторы должны быть оставлены на месте, как они относятся к PNX. (C) нижнего края грудной клетки должны быть отменены, когда размещение 24 г ангиокатетера используется для аспирации остаточного воздуха после закрытия грудной клетки и чрезмерночисле кожи. (D) грудная клетка также должны быть сняты для размещения шва. (E), поместив две нити шва над торакотомии сайта, прежде чем связывать, риск легкого захвата сведена к минимуму. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этот показатель.
Рисунок 6. Ожидаемые потери веса. Использование пять мышей в группе, мы показали, что 24 часа после операции, мыши ПН потеряет в среднем 1,5 г (7,2%), а фиктивные мыши будут терять в среднем 1,1 г (5,2%). Обе группы вернуть их предоперационную вес послеоперационный день 3.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Мы предоставляем наиболее подробное описание процедур ПН ПН мыши и мыши фиктивных зарегистрированных на сегодняшний день. Мы сделали читатель осознает несколько распространенных ошибок, что следователи Освоение процедуры обычно сталкиваются, и мы наметили несколько методов, разработанных нашей лаборатории, для снижения этих опасностей. Другие лаборатории, использующие эту модель могут быть разработаны другие модификации техники или использовать различные инструменты. При оценке различий в методах, отдельные исследователи должны решить, являются ли эти различия существенно влияют результаты эксперимента.
Мышь ПН модель компенсаторный рост легочной имеет много преимуществ по сравнению с другими животных моделях ремонта легких и регенерации. Большое количество трансгенных отслеживания клонов мышей доступны косметики, ген избыточная экспрессия и вообще целевых делеции гена экспериментов достижимых для большинства лабораторий 16. Во-вторых, морphometric методы количественного альвеолярного повторного роста хорошо описывается 17. В-третьих, расходы на внедрение этой модели является умеренным. Только специализированное оборудование эти процедуры требуют сосудистая клип аппликаторы и тупым кончиком Кохан-Vännäs весенние ножницы. Все другое оборудование будет широко представлена в мыши хирургический набор или доступные через мышь хирургического основной объект. В-четвертых, с опытом, ПН мыши и фиктивные процедуры ПН сравнительно быстро позволяет в течение многих операций, которые будут выполнены в тот же день. И, наконец, небольшой размер мыши по сравнению с другими животных моделях, скромных требований жилищного и легкость, с которой они могут быть выведены также сделать модель мыши легче поддерживать, чем другие модели на животных.
Есть также несколько недостатков мыши PNX модели по сравнению с другими моделями регенерации легких. В то время как рост мышь компенсационный легких в значительной степени зависит от участка 18, компенсационная легких растиго у высших млекопитающих зависит как растяжения и повышенной легочного кровотока 19. С регенерации легких человек, скорее всего, больше похожи на регенеративных механизмов этих высших млекопитающих, следователь должен быть осторожным экстраполяции результатов у мыши непосредственно на человека. Механики дыхания мыши отличаются от механики дыхания человека. У человека, конец выдоха сопровождается паузой, в которой нет воздуха. На конец выдоха у человека, набор легких поддерживается в радиальном тяги с низким соответствия грудной клетке. Цикл мыши дыхательных недостатков этого выдоха паузу в результате небольшого количества воздуха захвата из-за неполного выдоха. Поскольку мышь имеет гораздо более высокую соблюдение грудной клетки, именно это пузырьки воздуха, который поддерживает набор легких 20. Третий недостаток модели мыши является анатомии. Поскольку мышь имеет только один лепесток левого легкого, частичное слева ПН невозможно, так как он находится в другомвид.
Несколько распространенных ошибок следует избегать в нескольких критические моменты для успешного выполнения ПН мыши и фиктивные процедуры. Эти критические моменты являются интубация трахеи, создание операционного поля, применение сосудистых клип, и предотвращение травмы левого легкого во время симуляции операции.
Вскрытие ни мышей, которые не пережить эти хирургические процедуры является ключевым фактором для улучшения хирургических методов в будущем. Ниже мы устранить несколько общих трудностей и обеспечить альтернативные методы, которые могут давать более высокую степень успеха.
Неспособность успешно иглу в трахею: Другие лаборатории используют подвеску и транс-трахеи освещение для орально-интубации трахеи, который устраняет необходимость прямой визуализации 21.
Сложность Визуализация Рубчик: Создание большой, правильно расположенных окно торакотомии необходимо ян для того, чтобы визуализировать левую рубчик. Если во время визуализации процедура является недостаточным или не хватает места для установки сосудистых клип аппликаторов, торакотомия следует увеличить и ретракторы перемещены. Там должно быть никаких скоплений крови во время этой процедуры. Если есть, то следователь должен определить его размещения или не слишком большое напряжение на левом легком и разрыв левой легочной артерии.
Кровотечение после удаления левого легкого: Там должно быть небольшое кровотечение во время этой процедуры. Загружена неправильно или применены сосудистой клип наиболее частой причиной кровотечения, а мышь с кровотечением из левой легочной артерии должны быть умерщвлены. Если этот тип кровотечения происходит, собственно загрузка сосудистой клипа и применения фирмы, даже давление во время нанесения должны быть подтверждены, прежде чем снова пытается процедуру. Кроме того, в послеоперационном периоде смерть с выводом крови в левой груди являетсявероятно, из-за неправильного применения сосудистого зажима. Альтернативой нашей техники сосудистого клип вязь с шелковой нитью.
Левое легкое повреждение во Шам хирургии: Во многих отношениях, процедура обман требует более высокой степени хирургического мастерства, чем процедуры PNX. Левое легкое может быть причинен вред при торакотомии, во время введения 24 г ангиокатетер ниже места операции, или во время закрытия торакотомии. В зависимости от экспериментальной необходимости, мышей, перенесших операции фиктивный могут быть преобразованы в PNX. Другой возможной причиной травмы левого легких лишения свободы грыжи левого легкого при закрытии торакотомия сайта. Шам мыши с левой травмы легких должны быть либо подвергнуты эвтаназии или иметь их хирургическая процедура изменено на PNX.
Бедствие Респираторные после восстановления: Дыхательная недостаточность после выхода из наркоза может исходить от отек гортани из-за травматического интубации, недостаточного контроля боли или unrecognized повреждение легких. В общем, если бедствия освобожден путем введения дополнительного обезболивающего животных не должно быть умерщвлены и вызвать определяется. Многочисленные попытки интубации может привести к голосовой щели или подсвязочный отек с вытекающим трудности с вдохновением. На аутопсии, отсутствие голосовой щели патентной будут очевидны после голосовой щели отделена от глотки. Альтернативные подходы к эндотрахеальной катетеризации описаны выше. Недостаточный контроль боли могут быть решены с помощью дополнительных доз обезболивающих препаратов. Как отмечалось выше, непреднамеренные травмы левого легкого является общим при обучении мнимая хирургическую процедуру, и если непризнанных, может привести к дыхательной недостаточности и изменения экспериментальных результатов.
Чрезмерная потеря веса и обезвоживание: Мыши, которые испытывают чрезмерную потерю веса или обезвоживания после операции может иметь лигированного пищевод, недостаточный контроль боли, или неспособность прокормить, ни пить. Пищевод лежит JУсть кзади от левой воротах, и перевязка пищевода, следует заподозрить в любой обезвоженной мыши. Недостаточный контроль боли следует заподозрить у мышей с пилоэрекции, повышенная агрессивность, или снижение передвигаться. Торакотомия может предотвратить мышей от достижения пищу и воду, подвешенный на клетке крыши на первый день после операции. Мыши, которые не едят и пьют после выхода из наркоза, станет еще слабы и обезвожены. Мы рекомендуем размещать смоченную еду на пол клетки в течение 24 часов после операции.
В заключение, мыши пневмонэктомия модель компенсационного роста легких полезной моделью для выяснения основных механизмов регенерации легких.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 6 inch Vascular clip applicator | Teleflex Medical (WECK) | 137062 | |
| Horizon small titanium red clip | Teleflex Medical (WECK) | 1201 | |
| Narrow pattern 12 cm curved forceps | Fine Science Tools | 11003-12 | |
| Curved serrated 10 cm Graefe forceps | Fine Science Tools | 11052-10 | |
| Castroviejo needle holder | Fine Science Tools | 12565-14 | |
| Straight 9 cm Strabismus scissors (blunt tip) | Fine Science Tools | 14075-09 | |
| Straight 8.5 cm hardened fine scissors | Fine Science Tools | 14090-09 | |
| Straight, blunt tip Cohan-Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15000-12 | |
| Skin glue | Gluture | 32046 | |
| 22 G Angiocatheter | |||
| 24 G Angiocatheter | |||
| 3 ml Luer lock syringe | |||
| 4 Short retractors | |||
| 2 Long retractors | |||
| 5-0 Prolene on curved cutting needle | Ethicon | 8698G | |
| 0.5 ml Syringe on 27 G needle | |||
| Normal saline | |||
| Buprenorphine | |||
| Press-n-Seal wrap | Glad Products Company | ||
| 12 x 12 inch Cork board stack | Office Depot | ||
| 70% Ethanol | |||
| Betadine | |||
| Mouse ventilator | Hugo Sachs Elektronnik | Minivent Type 845 | |
| Isoflurane vaporizer | OHMEDA | Excel 210 SE | |
| Artificial tear ointment | Puralube | NDC: 17033-211-38 |
References
- Strueby, L., Thebaud, B. Advances in bronchopulmonary dysplasia. Expert review of respiratory medicine. , (2014).
- Donn, S. M., Sinha, S. K. Recent advances in the understanding and management of bronchopulmonary dysplasia. Seminars in fetal & neonatal medicine. 14, 332 (2009).
- Molen, T., Miravitlles, M., Kocks, J. W. COPD management: role of symptom assessment in routine clinical practice. International journal of chronic obstructive pulmonary disease. 8, 461-471 (2013).
- Seifert, A. W., et al. Skin shedding and tissue regeneration in African spiny mice (Acomys). Nature. 489, 561-565 (2012).
- Vidal, P., Dickson, M. G. Regeneration of the distal phalanx. A case report. Journal of hand surgery. 18, 230-233 (1993).
- Potter, P. C., Levine, M. H. Bone Regeneration Following Chronic Suppurative Osteitis of the Distal Phalanx. Annals of surgery. 80, 728-729 (1924).
- McKim, L. H. Regeneration of the Distal Phalanx. Canadian Medical Association journal. 26, 549-550 (1932).
- Brown, L. M., Rannels, S. R., Rannels, D. E. Implications of post-pneumonectomy compensatory lung growth in pulmonary physiology and disease. Respir Res. 2, 340-347 (2001).
- Holder, N. Regeneration and compensatory growth. British medical bulletin. 37, 227-232 (1981).
- Hsia, C. C. Lessons from a canine model of compensatory lung growth. Curr Top Dev Biol. 64, 17-32 (2004).
- Butler, J. P., et al. Evidence for adult lung growth in humans. N Engl J Med. 367, 244-247 (2012).
- Konerding, M. A., et al. Spatial dependence of alveolar angiogenesis in post-pneumonectomy lung growth. Angiogenesis. 15, 23-32 (2012).
- Kho, A. T., Liu, K., Visner, G., Martin, T., Boudreault, F. Identification of dedifferentiation and redevelopment phases during postpneumonectomy lung growth. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 305, 542-554 (2013).
- Wang, W., Nguyen, N. M., Guo, J., Longitudinal Woods, J. C. Noninvasive Monitoring of Compensatory Lung Growth in Mice after Pneumonectomy via (3)He and (1)H Magnetic Resonance Imaging. Am J Respir Cell Mol Biol. 49, 697-703 (2013).
- Gibney, B. C., et al. Detection of murine post-pneumonectomy lung regeneration by 18FDG PET imaging. EJNMMI research. 2, 48 (2012).
- Rawlins, E. L., Perl, A. K. The a'MAZE'ing world of lung-specific transgenic mice. Am J Respir Cell Mol Biol. 46, 269-282 (2012).
- Ochs, M., Muhlfeld, C. Quantitative microscopy of the lung: a problem-based approach. Part 1: basic principles of lung stereology. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 305, L15-22 (2013).
- Ysasi, A. B., et al. Effect of unilateral diaphragmatic paralysis on postpneumonectomy lung growth. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 305, L439-445 (2013).
- Dane, D. M., Yilmaz, C., Estrera, A. S., Hsia, C. C. Separating in vivo mechanical stimuli for postpneumonectomy compensation: physiological assessment. Journal of applied physiology. 114, 99-106 (2013).
- Mortola, J. P., Magnante, D., Saetta, M. Expiratory pattern of newborn mammals. Journal of applied physiology. 58, 528-533 (1985).
- MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. An improved simple method of mouse lung intubation. Journal of applied physiology. 106, 984-987 (2009).
