Abstract
的膜片钳记录，从急性脑切片制剂与同时细胞内生物胞素填充两个（或多个）耦合突触神经元（配对记录）的组合允许它们的结构和功能特性的相关分析。用这种方法，可以通过它们的形态和电生理反应模式来识别和表征前和突触后神经元。配对录音允许研究这些神经元之间的连接模式，以及化学和电突触传递的属性。在这里，我们得到，以获得可靠的配对记录连同神经元形态学的最佳恢复所需的步骤的一步一步的描述。我们将描述如何对经由化学突触或间隙连接连接的神经元在大脑切片制剂被识别。我们将阐述如何神经元被重建，以获得dendrit自己的3D形态IC和轴突域以及如何突触联系的识别和本地化。我们还将讨论配对记录技术的警告和限制，尤其是脑片的制备过程中与树突和轴突截断相关，因为这些强烈地影响连接的估计。因为配对记录方法的多功能性。然而，它会留在在大脑中的神经元鉴定微电路表征突触传递的不同方面的宝贵工具。
Introduction
2突触耦合的神经元之间的神经元微电路是在大脑中的大型网络的积木并且突触信息处理的基本单位。一个先决条件，例如神经元微电路的特征是知道的形态和两个前和突触后神经元的伙伴的功能特性，突触连接（S）和它的结构和功能的机制的类型。然而，在突触连接的许多研究中的至少一个在微电路中的神经元的是不是很好的特点。这导致从通常的突触连接研究中使用的相对非特异性的刺激协议。因此，突触前神经元的结构和功能特性要么根本不或仅到一个相当小的范围内确定的（ 即，标记蛋白质的表达等 ）。在组合配对录音与细胞内染色用标志sUCH作为生物胞素，neurobiotin或荧光染料更适合用于研究小神经微电路。这种技术允许一个调查的同时一个形态鉴定突触连接的许多结构和功能参数。
所谓的“单一”突触两个神经元之间的联系进行了研究使用急性切片准备两种皮层和皮层下大脑区域1-10。最初，尖锐的微电极在这些实验中使用;之后，膜片钳记录是采用为了获得突触信号记录具有较低噪声电平以及一个改进的时间分辨率。
一个显著的技术进步是利用红外微分干涉对比（IR-DIC）的光学11-14，微观技术，显著改善神经细胞的知名度和识别的脑片，使之成为可能吨Ø获得录音从视觉上确定的突触连接15-17。在一般情况下，一对录音进行急性切片的筹备工作;只有极少数的出版物可从报告突触连接的神经元在体内 18-20录音。
配对记录的最重要的优点是，一个功能表征可以与同时在光学和电子显微镜水平形态解析被组合（ 例如见。，7,16,21）。组织化学处理后，将突触连接的神经元对的树突和轴突的形态被追踪。随后，有可能量化的形态特征，如长度，空间密度，取向，分支图案等 ，然后这些参数可以为特定的突触连接的一个目标分类提供了基础。此外，与此相反，以用于研究神经元connecti大多数其它技术VITY，配对录音还允许对单一的突触连接突触联系的标识。这可以直接使用光学和电子显微镜16,21-27的组合或使用树突棘的钙成像28,29来完成。但是，与后者的方法只兴奋性但不抑制连接，可以研究，因为它需要通过突触后受体通道的钙内流。
除了 突触传递的在确定的神经元微电路配对的记录进行详细的分析还允许的突触可塑性规则30,31的研究或-与激动剂/拮抗剂组合的应用-突触传递由神经递质如乙酰胆碱32和腺苷调制33。
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Protocol
所有的实验过程进行了按照欧盟指令保护动物，德国动物福利法（Tierschutzgesetz）和欧洲实验动物科学协会联合会的指导原则。
1.建立了电
与配对记录开始之前，一个电设置具有待建。简述怎么这么的建立组装下面给出：
- 安装一个防振台在其上的显微镜，操纵器和所有其他设备将被放置。
注：振动或任何其它类型的运动需要从突触连接的记录，因为这需要移液器的变化（在搜索电极通过记录电极取代）时，必须尽可能地小。 - 周围放置防振台的法拉第笼，以减少电噪声。连接所有设备法拉第CA内GE与电气接地。
- 安装有一个根据制造商的指导方针的基础上的机动的xy表上的防振台机动焦点轴的显微镜。这允许显微镜可靠地移动到的神经元不属于在同一视场，因为它是在大脑皮层转层连接的情况下。
- 显微镜的相机端口上安装一台摄像机，并连接它到模拟和/或数字的屏幕观察切片的制备和电极的移动。使用照相机，其可以一个低和高功率放大，以获得一个概述和特写图像之间，来切换所述突触耦合的神经元细胞对分别。这也有助于控制块电极的移动。
- 安装含有插入的浴室中的样品台（在内部从一个有机玻璃块钻）的脑切片制备。此标本表不能连接到显微镜， 即，必须将固定在空气台和显微镜应根据它的机动性。
- 摩两个（或更多，如果需要）的高精度微操作，能够在所有三个维度上移动。上的操纵器安装膜片钳前置放大器和它们连接到主放大器。
注：如果需要额外的操纵器可以被安装为例如两个以上的前置放大器，细胞外刺激电极，药物输送系统等。 - 将浴室中的样品台。安装解决方案的入口和出口，并将它们连接到灌注系统。
- 使用蠕动泵以保持该记录室用人工脑脊液的灌注（ACSF; 表1），在4以稳定的流量- 6毫升/分钟为最佳切片生存能力。
注意：不要超过这个流量显著，因为它会导致动荡ASCF和切片，因此运动。 温度探测器和银/氯化银接地电极到样品表安装持有者。这是必要的，以允许探针和电极样品在室中的浴。 - 对于神经元的切片准备了良好的知名度，在显微镜下用红外线照射。这减少了光的衍射，因此图像模糊。确保该显微镜配备有微分干涉对比光学实现了“3D'状可视化。这将有助于修补神经元，并允许针对神经元深埋在片（60微米或更深）。
- 在实验过程中，保持脑切片在实验室中与在底部的玻璃盖玻片。发布一条“铂竖琴”片上的顶部，以防止片浮动。铂竖琴从U形，扁平铂丝制成与牙线串粘在上面。
- 保持ACSF灌注切片在32的温度下 - 35℃，以确保选择进制控制氧化和pH值。这可以通过加热与安装在靠近ACSF流入浴室中的珀尔帖装置的溶液来完成。
注意：使用超薄盖玻片使得即使显微镜冷凝器具有高数值孔径和工作距离短可以聚焦在试样上。这是必要的切片的最佳照明。
对于图像和一个电设置了配对录音优化大脑切片准备的说明见参考文献34 图4。
2.脑切片准备
- 轻度麻醉从中脑组织应采取用异氟烷（最终浓度<0.1％）的动物。
注意：其他麻醉剂也可使用。使用麻醉剂应符合相应的动物委员会的建议和规则。始终确保动物不过敏或在压力下加入后，麻醉剂。 - 斩首动物，打开头骨，并使用34,35在参考文献中描述的方法。迅速取出大脑越好。
- 转移到脑冷却的（4℃）的人工脑脊髓充以卡波金的气体用95％O 2和5％的CO 2的混合物的流体。
- 隔离应研究大脑区域。
注：该参数，以获得最佳的保存和树突前和突触后神经元轴突的最小截断应事先根据调查，每个神经元的连接和发展阶段决定的。在一个最佳解剖脑切片，则不需要突触前神经元的轴突平行于片表面。相反，它们应指向与一个小角度的切片。在适用于突触后锥体细胞的顶枝晶;这应该在光学显微镜下进行检查。这是对非本地或叔特别重要ranslaminar突触连接， 即 ，其中前和突触后胞体均超过200微米拆开的树突和轴突截短的概率是可能比用于本地连接基本上更高。 - 脑转移到切片机室中。根据经验发现，不同的细胞外的切片的解决方案依赖于动物的年龄（见表2和3;有用的信息，也可根据'发现http://www.brainslicemethods.com/ '）。
- 修剪大脑直到目标区域是可见的。
- 以获得片具有良好的细胞可见性，切300 - 400微米厚的脑切片，如果动物是成熟（> 3周）。如果动物是未成熟（第1次至2 次产后一周小鼠和大鼠）的切片可以被切割到厚度为〜600 - 800微米，而基本上不损害细胞visibility。
注意：这将提高“不成熟”片的稳定性，减少远距离树突和轴突抵押品可能截断的数量。 - 从切片机腔室转移切片到孵育室填充有通入95％O 2和5％ 的 CO 2的混合切片溶液。保持在培养室中的片至少30分钟至1小时或者在室温或在约30℃，这取决于实验的类型。
3.配对膜片钳记录和生物胞素填充
取决于突触连接的类型三种不同的方法用于查找突触耦合的神经元。如果连接概率很低（因为可以预期最兴奋的连接），步骤如下：
- 具有低连接神经元的连接
- 填写贴片移液器与组合物的所列的内部溶液表4对于在全细胞构造的所有录像添加生物胞素在3之间的浓度- 5毫克/毫升到内部（吸管）溶液中，得到良好的染色结果的前和突触后神经元。让生物胞素扩散进入细胞至少15 - 30分钟（取决于神经元的大小）。
注意：不要生物胞素添加到下面提及的“搜索”吸管使用的解决方案。 - 修补在全细胞模式的推定的突触后神经元。使用补丁移液器与修长小腿。这便于吸移管的操作性下的目标，并减少当电极在切片被引入可能发生的运动伪影。
- 10兆欧电阻和一个小尖端直径 - 然后，用8的“搜索”膜片吸管修补一个潜在的突触前神经元在细胞连接的配置。有了这些吸管建立“宽松”细胞贴附补丁。 FIL升了“搜索”吸管具有内部溶液中的 K +时，为了不期间搜寻在突触前的细胞去极化神经元代替的Na +（ 表5）。
注：“松”密封阻力不在GΩ的范围，但通常为约30 - 300兆欧。 - 握在电流钳模式下的“宽松”封膜电位为约-30至-60毫伏。然后，应用的大电流脉冲（0.2 - 2 NA）引发的潜在的突触前细胞的动作电位。观察这一动作电位作为电压响应小小穗。
- 刺激频率设定为0.1赫兹，以防止一个突触后响应破落。使用较低的刺激频率的情况下的脑组织是非常不成熟或突触连接并不十分可靠。
- 在情况下，“突触后”神经元不向测试“突触前”神经刺激响应罗恩，补丁'宽松'印章模式的新的神经元。只要不更换'搜索'补丁电极为> 30MΩ成立电阻密封。测试多达这种方式30潜在的突触前神经元。
注：为了防止松散膜片钳的搜索过程中损坏的神经元，仅轻轻抽吸，应适用于搜索吸管施加到全细胞膜片吸管比较。 - 如果刺激在'宽松'印章模式导致的EPSP / IPSP有潜伏期<5毫秒，在突触后神经元的突触前神经元中删除“搜索”吸管。
- 更换'搜索'补丁吸管与补丁电极注入含有生物胞素 - ，定期的内部解决方案。确保这个录音补丁吸管有4电阻 - 8MΩ;较大的胞体大小下部电极电阻即可。
- 修补突触前神经元和记录在全细胞，电流钳模式。通过电流注入在突触前神经元诱发动作电位，并记录突触后的反应。存储数据的计算机上购买离线分析。
- 填写贴片移液器与组合物的所列的内部溶液表4对于在全细胞构造的所有录像添加生物胞素在3之间的浓度- 5毫克/毫升到内部（吸管）溶液中，得到良好的染色结果的前和突触后神经元。让生物胞素扩散进入细胞至少15 - 30分钟（取决于神经元的大小）。
- 具有高连接神经元的连接
注：对于神经微电路具有高连接率（> 30％），使用不同的程序来找到突触连接。此过程概述如下，并经常被用于具有抑制性突触连接上平均更高的连接比较兴奋性连接36。当连接率低于该值时，它不应该被使用。- 直接在全细胞模式修补突触前神经元。然后，修补一个潜在的突触后神经元，也全细胞模式。两个单元应根据目前的钳位控制。引起突触前细胞的动作电位。监测准突触后神经元的postsynaptic潜力。
- 在的情况下，神经元不显示到突触前刺激的响应，用一膜片电极填充有规律的内部溶液修补在全细胞模式的新的神经元。如果发现连接，不改变补丁吸管，但继续进行录制。然后，继续按步骤3.1.9。
- 通过间隙路口的神经元连接
注意：要搜索电气（间隙连接）连接使用下列步骤，它代表用于低概率连接，修改后的版本。- 修补在全细胞膜片钳结构的突触后神经元。
- 随后，在打补丁的宽松的密封结构的假定突触前神经元（30个低电阻印章 - 300MΩ）使用的7'搜索'补丁吸管 - 10MΩ的电阻。此吸管应该充满松动密封刺激改性高的Na +内液。
- Injec吨100 - 300毫秒通过'松'封长超极化电流脉冲;吸移管电位命令应设置为约-60至-70毫伏。注意在“突触后”神经元小超极化反应，间隙连接的连接，如果这种刺激的结果。
- 重配接在全细胞模式的“突触前”神经元，并继续如上所述。
注：为了确保轴突和树突的进程良好的染色，使用下面给出的协议。这个协议在短暂这里描述，但是，对于在我们的实验室中使用组织化学处理的详细协议见参考文献37。
4.组织化学处理
- 与该对突触耦合的神经元传输脑切片成含有4％多聚甲醛溶解在0.1M磷酸盐缓冲液的小瓶中，并固定在切片24小时。电子显微镜，固定用2.5％戊二醛的切片醛和1％多聚甲醛。
- 在第二天，转切片成不含有固定剂的正常的磷酸盐缓冲液中。 8次10 - - 用磷酸盐缓冲液洗6切片15分钟，每一个以除去过量的固定剂。
- 孵育在3％的H 20分钟的切片2 O 2的 0.1M磷酸盐缓冲液以最小化的内源性过氧化物酶反应。观察强泡沫的形成。继续进行反应直到没有进一步的气泡产生。然后，漂洗中为6的0.1M磷酸盐缓冲液的片- 8次（每次10分钟），以除去任何剩余的 H 2 O 2。
- 免疫组化和显色反应
生物胞素填充神经元的可视化是基于催化剂以二氨基联苯胺一个链霉抗生物素化的辣根过氧化物酶反应;这将产生能产生脆污渍具有高空间分辨率的一个暗沉淀。下列程序被用于显色反应：<OL> - 准备ABC解决方案按照制造商的协议。加入14.55毫升磷酸盐缓冲液补充有150微升10％的Triton X100（ 表6;仅用于光学显微镜），并保持该溶液为在黑暗中约30分钟。在这个解决方案O / N使用前孵化切片。
- 孵育在振荡器上1小时，在室温和在黑暗中的ABC溶液切片。随后，不断切片O / N在4℃的冰箱。上的第二天早晨，在室温下孵育切片为一小时。
- 在此之后，冲洗切片，至少四次，在磷酸盐缓冲液每10分钟。然后，孵育在振荡器上约30分钟，在黑暗中在2毫升的镍加剧3-3'-二氨基联苯胺溶液（ 表7）。处理氨基联苯胺，只有在通风橱使用时要非常小心;它甚至在非常低的浓度极其致癌性。
- 添加6.5微升3％的H 2 O 2的所述含二氨基联苯胺-解决方案。监视在光学显微镜下对显色反应，直至棕黑色染色的神经元都清晰可见。然后，通过洗涤切片数倍于磷酸盐缓冲液，立即使反应停止。
- 片山与胶粘剂，硅烷涂层Histobond或凝胶化标准载玻片染色的神经元。
- 保持载玻片在保湿室具有至少80％的湿度O / N。在接下来的日子里，让切片风干另外10分钟。之前嵌入，转印滑动随着乙醇浓度的溶液 - 以脱水它们（20 100％）。
注：脱水过程应缓慢否则在树突和轴突过程的扭曲可能发生37。如果一个替代嵌入程序被选择， 例如，一个与甘油基Moviol，脱水不是必需的;然而，这很可能会导致在该切片的不均匀压缩，因而扭曲神经morpholoGY。 - 最后，孵育10分钟，在二甲苯，嵌入切片在光学显微镜疏水包埋介质和放置一个超薄盖玻片放在上面。让载玻片干燥20分钟，在RT。
5.神经重建和突触联系本地化
- 检查载玻片与生物胞素标记的神经元的光显微镜配备一个60X / 100X油浸物镜和与最佳空间分辨率高数值孔径的冷凝器下。确保轴突终扣和树突棘都清晰可见。
- 跟踪使用商业神经追踪系统的神经元或突触耦合神经对（ 参见表具体材料/设备 ），以获得三维神经重建。开展不断受到目视检查手动跟踪检测到小轴突树突或抵押品。从突触神经元加上配对录音手动跟踪依然方法选择，因为例如，一个轴突配置文件无论是前或突触后神经元的归属需要大量的重建经验。
- 如果需要，使轴突终扣和/或树突棘的数量。因为刺甚至脊柱亚型和轴突终扣可以表现出相对于例如，皮质层或区域的特定的分布和密度，这可能有助于表征神经元细胞类型。
- 对于突触神经元加上对，检查突触前神经轴突和树突突触后近距离appositions在可用的最高放大倍率。观察一个轴突布顿和突触后树突棘或轴是在同一焦平面可以被认为是假定的突触接触。纪念这个接触的重建。
- 纠正神经重建收缩在跟踪程序的相应部分的所有三个空间维度。
注：在固定，组织化学处理和脱水显着的机械变形和收缩发生;这会影响轴突和树突长度测量，并严重扭曲了他们的空间安排。收缩的校正因子用于灌封介质是〜1.1为x和y方向和〜2.1为z方向37。 - 对于定量形态分析使用数据分析程序的神经生理学（ 见表具体材料/设备 ）。
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Representative Results
配对录音是选择的方法进行了深入的表征形态识别的单向或双向的突触连接，以及间隙连接（电）连接（ 图1）。在体感桶皮质层4配对记录的一个例子示于图1A。两个单向兴奋性和抑制性突触连接可被表征（ 图1B中的C）。此外成对录音允许来自双向突触连接， 即 ，记录，从连接，其中两个神经元中的一对是前和突触后彼此。这示于图1D，其示出记录从抑制中间神经元和神经元兴奋性。引发在突触后抑制性中间神经元（黑色迹线）的兴奋性神经元的动作电位（红色迹线）的结果中的EPSP。然而，当一个动作电位是EVO的KED中的中间神经元，一个IPSP可以记录在兴奋性神经元。 图1E示出的是，也可行从神经元经由间隙连接或经由间隙连接和一个突触耦合来记录。倒数和间隙连接的连接只能由成对电生理记录，到目前为止，但尚未通过任何其它技术来鉴定。
经由膜片吸管和电生理记录耦合神经元的生物胞素填充的组合允许神经元突触性质的形态性质的相关性。后组织化学处理的神经元是作为在迷恋切片（ 图2A）暗结构可见。此后，记录神经元细胞对可重构形态和神经细胞类型可以被识别。此外，它是可以识别的推定的突触联系（ 图2A右面板和造型的数目和位置Ë2B插图）。在图2B中所示的神经元对被相互连接，因此突触触点在两个神经元建立的。在我们的手中，公认的，光显微镜鉴定突触联系被确认为与80的电子显微镜真正的突触联系-精度16,21,26的90％的程度。
图3示出了从突触前锥体神经元在枪管皮质新皮质层6和层4的兴奋性刺状神经元的配对记录的一例这种转层的神经元微电路具有低的连接概率，但可以使用在所描述的搜索过程被识别步骤3.1.1 - 3.1.9与低连接神经元的连接。与配对记录技术能够鉴定突触连接具有非常低的连接性是神经之间有一些长程转层连接（本例中），或连接的情况下NS位于不同的皮层'列'（跨柱状突触连接）。
从图突触加上电池对1配对录音。 （A） 左，脑切片的IR-DIC的形象。右，一个中间神经元（上）和兴奋性神经元（底）。（b）一种突触前动作电位（顶部）中的兴奋性神经元引出一个单突触兴奋性突触后电位（EPSP）的另一兴奋性神经元（底）。（C）的一个动作电位（顶部）中的突触前抑制中间神经元唤起一个单突触抑制性突触后电位（IPSP）的兴奋性神经元（底）。（D）中的一个动作电位（左上）的突触前神经元的兴奋性唤起一个EPSP（左下）中抑制中间神经元。反过来，一个动作电位在抑制性中间神经元（右上）引发的IPSP在兴奋性神经元（右下图）。（E）的一系列的由电流注入引起甲亢和去极化电压的步骤进一神经元（左上）反映在间隙结加上第二个神经元（左下）。此外，突触前动作电位（右上）中的第一个神经元唤起一个早期的小的去极化（小穗，插图）随后在第二神经元（右下）的膜电位的后期深超极化（IPSP）。在（B），比例尺也适用于（C）。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2.识别的突触联系和形态reconstr，减税的生物胞素填充细胞对。 （A）左，一个相互耦合的细胞对包括多刺的星状和快速扣球中间神经元的4层记录过程中充满了生物胞素的低功耗显微照片。光显微镜鉴定假定的兴奋性突触的突触前神经元多刺的突触后中间神经元之间的联系的标志是绿色的点。假定相互抑制突触联系是由蓝点表示。右，高功率的图像突触联系。绿色的圆圈，兴奋性接触;蓝色的圆圈，抑制接触。层的边界是由低功率显微镜下染色的脑切片的cytoarchitectonic结构决定的。（B）的 Neurolucida重建中（A）和图1C中所示的相同的细胞对组成。蓝色，中间神经元轴突;红色，中间神经元胞体和树突;绿色，多刺神经元轴突;白色的，多刺的神经元胞体和树突。插图显示了前和突触后神经元连同推定的突触联系的somatodendritic隔间。桶轮廓是从急性脑切片制成的低功耗明场显微鉴别。 请点击此处查看该图的放大版本。
图3.具有极低的连接比例代表突触连接。 （A）突触前动作电位（顶部）中的层6锥体细胞唤起一个单突触兴奋性突触后电位（底部）中的层4星级锥体神经元。请注意这个跨层连接的长潜伏期（> 3.0毫秒）相比，本地内部层连接（≈1.0毫秒）的。（B）突触后respons第4层星级锥体神经元两个动作电位Ë在10赫兹诱发了6层，锥体细胞。注意这方面的短期便利相比本地连接的短期抑郁症（数据未示出）。在同一连接的变焦成像（C）的扩展深度如在（A，B）。插图，一层四星级锥体神经元的躯体/树突域。注意：标有箭头的一个突出顶树突的存在。 请点击此处查看该图的放大版本。
| 毫米 | 克/升 | |
| 氯化钠 | 125 | 7.305 |
| 氯化钾 | 2.5 | 0.186 |
| 葡萄糖 | 25 | 4.5 |
| 碳酸氢钠 | 2.1 | |
| 的NaH 2 PO 4 | 1.25 | 0.173 |
| 氯化钙 | 2 | 0.294 |
| 氯化镁 | 1 | 0.095 |
| 渗透压〜310 mOsmol / L | ||
| 用95％O 2和5％CO 2的 | ||
录制期间灌注表1人工脑脊液（ACSF）。
| 毫米 | 克/升 | |
| 氯化钠 | 125 | 7.305 |
| 氯化钾 | 2.5 | 0.186 |
| 葡萄糖 | 25 | 4.5 |
| 碳酸氢钠 | 25 | 2.1 |
| 的NaH 2 PO 4 | 1.25 | 0.173 |
| 氯化钙 | 1 | 0.147 |
| 氯化镁 | 五 | 0.476 |
| 肌醇 | 3 | 0.54 |
| 丙酮酸钠 | 2 | 0.22 |
| 抗坏血酸（维生素C） | 0.4 | 0.07 |
| 渗透压〜310 mOsmol / L | ||
| 用95％O 2和5％CO 2的 | ||
表2.细胞外液未成熟动物急性脑切片。
| 毫米 | 克/升 | |
| 蔗糖 | 206 | 70.51 |
| 氯化钾 | 2.5 | 0.186 |
| 葡萄糖 | 25 | 4.5 |
| 碳酸氢钠 | 25 | 2.1 |
| 的NaH 2 PO 4 | 1.25 | 0.173 |
| 氯化钙 | 1 | 0.147 |
| 氯化镁 | 3 | 0.286 |
| 肌醇 | 3 | 0.54 |
| 丙酮酸钠 | 2 | 0.22 |
| 抗坏血酸（维生素C） | 0.4 | 0.07 |
| 渗透压〜310 mOsmol / L | ||
| 用95％O 2和5％CO 2的 | ||
成熟动物的急性脑片表3.细胞外液（Sucrose生理盐水）。
| 毫米 | 克/升 | 克/50毫升 | |
| K-葡糖 | 135 | 31.622 | 1.5811 |
| 氯化钾 | 4 | 0.298 | 0.0149 |
| HEPES | 10 | 2.384 | 0.1192 |
| 磷酸肌酸 | 10 | 2.552 | 0.1276 |
| ATP， 镁离子 | 4 | 2.028 | 0.1014 |
| GTP-娜 | 0.3 | 0.156 | 0.0078 |
| 调节pH至7.3，用KOH | |||
| 渗透压〜300 mOsmol / L | |||
| 加入3 - 5毫克/毫升生物胞素 | |||
表4.低氯吸管的解决方案。
| 毫米 | 克/升 | 克/50毫升 | |
| 钠葡萄糖 | 105 | 22.92 | 1.146 |
| 氯化钠 | 三十 | 1.76 | 0.088 |
| HEPES | 10 | 2.384 | 0.1192 |
| 磷酸肌酸 | 10 | 2.552 | 0.1276 |
| ATP， 镁离子 | 4 | 2.028 | 0.1014 |
| GTP-娜 | 0.3 | 0.156 | 0.0078 |
| 调节pH至7.3，用NaOH | |||
| 渗透压〜300 mOsmol / L | |||
表5.高娜搜索突触神经元加上吸管的解决方案。
| 比 | 毫升 | |
| 试剂A | 1 | 0.15 |
| 试剂B | 1 | 0.15 |
| 10％的Triton X100 | 1 | 0.15 |
| 0.1M磷酸盐缓冲液 | 97 | 14.55 |
| 在使用之前，在黑暗保持30分钟 | ||
表6. ABC解决方案，组织化学反应。
| 重量 | 音量 | |
| 3-3'-二氨基联苯胺 | 10毫克 | - |
| 0.1M磷酸盐缓冲液 | - | 20毫升 |
| 1％（NH 4）2的Ni（SO 4）2 | - | 5 - 10微升 |
| 1％ 氯化钴 | - | 5微升 |
| 1％（NH 4）2的Ni（SO 4）2和1％氯化钴2通过滴在搅拌的同时将溶液滴加入。 | ||
表7.解决方案二氨基联苯胺（DAB）反应。
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Discussion
从突触耦合兴奋性和/或抑制性神经元成对录音是神经元微电路的研究中非常通用的方法。不仅这种方法允许一个来估计神经类型之间的突触连接，但也允许确定连接和前和突触后神经元的形态的功能特性。此外，激动剂和/或拮抗剂可以很容易地应用到神经元片的准备工作。这允许人们研究神经调的影响突触传递32的属性或一个深入表征使用定义酉突触连接的，例如，突触释放16,17,38,39量子分析。化学和/或电气（缝隙连接）的突触连接的发现是该协议的最关键的一步。因此，我们已列出不同的方法用于查找突触连接，这取决于连接比和其类型（化学/电气）。
片制剂的主要缺点是远距离轴突突起的常大量截断，以使轴突的总的轴突长度的一小部分被回收。对于一些锥体细胞类型，截短的程度可以高达90％或甚至更多服用突起到其它皮层区或皮层下区域考虑时。这使得该切片准备不适合于学习的神经元之间的突触连接的，其中所述细胞体均超过> 300微米分开。然而，在急性切片制剂， 局部轴突突起，特别是局部的interneurons通常回收的，因为它们的轴突乔木的有限水平和垂直场跨度具有相对低的树突和轴突截断（〜10％以下）的程度。涉及这些类型的神经元的连接，因此可以用特征的准确性和reliab高度ility和产量基本上正确的连接的估计。除这些本地突触连接的，用于在片制剂获得的两个神经元的类型之间的连通性的比率的绝对值都是很成问题，尤其是对神经元的大间体的距离如在转层或非本地，远程板内核突触连接。当切片条件没有被优化为在限定的年龄给定突触连接这个问题恶化。为了更真实的连通性，估计新的方法，如密集的电子显微重建40和结构轴-树突状重叠41已经开发出来。然而，即使这些技术必须考虑到抑制性和兴奋性也神经元的高度多样性。
与连通估计一个附加的问题是，远侧突触联系， 例如，那些在锥体神经元的心尖绒头，可无所遁形。当在胞体测定其突触响应的幅度非常小，并且很可能在噪声消失（齐等人，2014年，在提交）。然而，这样的问题不限于成对的记录的方法，但也将发生与用于研究突触连接的其他技术。
在最近一年光致活化的神经元微电路（ 即通过光释放笼谷氨酸或通过活化channelrhodopsin的）已被用于研究神经连接性，即使在更大的规模42-52。然而，与这些光学方法是不可能识别突触前神经元的类型的结构特性。此外，通过一神经元的连接建立突触联系的数量和位置不能确定，至少不是最新的。配对记录，另一方面，允许前和突触后neur的表征在突触微电路类型。这是特别重要的，因为许多研究表明，这两个GABA能中间和兴奋性神经元是高度多样化相对于它们的形态和突触生理学53-56。因此，前和突触后神经元的鉴定为突触连接57的说明的前提条件。最后，配对录音允许的突触连接的不同配置（相互连接，共存间隙连接和化学突触）的记录。因此，成对的记录技术将保持为研究神经元微电路的重要途径。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Amplifier | HEKA | EPC 10 USB Triple | with 2 - 3 preamplifiers |
| Microscope | Olympus | BX51WI | with 2 camera ports, a 4X objective, and a 40X water-immersion objective |
| Camera | TILL Photonics | VX55 | infrared CCD camera |
| Workstation | Luigs & Neumann | Infrapatch 240 | with a motorized x-y stage and a motorized focus axis for the microscope |
| Micromanipulator | Luigs & Neumann | SM-5 | x-y-z manipulators for 2 - 3 preamplifiers |
| Faraday cage | Luigs & Neumann | ||
| Anti-vibration table | Newport Spectra-Physics | ||
| Patchmaster | HEKA | ||
| Microtome | Microm International | HM650V | |
| Micropipette puller | HEKA | Sutter P-97 | |
| Neurolucida system | Microbrightfield | with Neurolucida and Neuroexplorer softwares |
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