Abstract
改善细胞移植的治疗功效，一个移植系统的转基因，可注射的球状体被开发。将细胞球粒上涂敷有热敏聚合物微图案板的培养体系制备。形成在板的一些球状体中，对应于直径100微米的细胞粘附区域被以二维方式规则地排列，由非粘合区所包围是由一个聚乙二醇（PEG）基体涂覆。所述球状体可容易地回收作为液体悬浮液通过降低板的温度，并且它们的结构是由具有足够大口径（超过27 G）将它们通过注射针良好的维护。遗传修饰是通过基因转染使用原始非病毒基因载体，多聚物纳米胶束，其能够将基因导入细胞，而不破坏球体结构的实现。对于PRIM转染了荧光素酶表达基因进制肝细胞的球状体，在萤光素酶是可持续在移植动物中获得，以及保存肝细胞功能，通过白蛋白的表达所指示的。该系统可应用于多种细胞类型，包括间质干细胞。
Introduction
细胞移植疗法已经引起了广泛的关注用于治疗各种顽固性疾病。是由移植的细胞分泌的活性和生物活性因子半衰期是用于细胞移植系统的改进的治疗效果是必不可少的。移植前细胞的遗传修饰是一个有利的技术规范和操纵细胞功能，包括的生物活性因子的分泌。同样重要的是保持一个有利的微环境的细胞，以避免细胞死亡或细胞活性的损失。三维（3D）球体细胞培养物，其中细胞 - 细胞相互作用被保存完好，是有希望的用于此目的，例如，用于改善从原代肝细胞的白蛋白分泌和促进从间质干细胞的多谱系分化（间充质干）1-7。
spheroi在这项研究中，一种新的组合系统ð培养和基因转染被用来作为遗传修饰的细胞移植的平台。用于创建球体细胞，在微图案化培养板一个球体培养系统被使用。在这些平板上，直径100微米的细胞粘附区域被规则地排列在一个二维的方式，并通过涂覆的PEG基质3的非粘合区所包围。由种子细胞的足够数量，100微米3D球体直径阵列形成对应于该微图案培养床。
所述球状体被回收而不破坏其三维结构通过使用热敏细胞培养板，涂覆有热敏聚合物，聚（异丙基丙烯酰胺），该（PIPAAm）8-10。该微图案架构上的热敏板构造（定制）。通过简单地降低所述板的温度，所述球状体从培养床分离并分散d。在磷酸盐缓冲盐水（PBS）中。因此，可以以可注射悬浮液的形式得到了大量的球体为100微米的大小均匀的。
图1中的球体培养系统上的微图案化板示意图。遗传修饰通过使用原始非病毒基因载体，多聚物纳米胶束基因转染来实现。它是由质粒DNA（质粒DNA）和聚乙二醇（PEG）-polycation嵌段共聚物11。这些有特点的核壳结构包括一个PEG外壳和浓缩质粒DNA的内芯，使安全有效的基因导入细胞用于治疗目的11。 请点击此处查看THI的放大版本。的身影。
图由核酸和PEG嵌段聚阳离子嵌段共聚物形成的复合物的多聚物纳米胶束的2.结构。在这项研究中，该技术的主要优点在于，球体结构不是由纳米胶束基因转染期间破坏。后大鼠原代肝细胞的球状体的纳米胶束介导的转染，可以得到延长的转基因表达对于一个多月与来自肝细胞连续白蛋白分泌的水平比得上未转染球状体12。从球状体的转基因表达和分泌白蛋白的热敏板恢复之后也保持不变。显而易见的是，纳米胶束可以安全地促进基因导入不损害熟知的先天功能atocytes。因此，球体细胞在微图案热敏板的使用纳米胶束基因导入是一种很有前途的平台，为转基因细胞移植体外培养的组合。 请点击此处查看该图的放大版本。
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Protocol
所有的动物进行了研究，东京大学的日本动物护理和使用委员会，东京的批准。
1.细胞的制备
- 对于原代肝细胞，通过改良的两步胶原酶消化过程13,14按照协议，从大鼠肝细胞分离。
- 麻醉只SD（SD）大鼠（雄性，5周龄）吸入麻醉下异氟醚。放置老鼠在连接到麻醉机，以提供异氟醚为所述腔室的腔室。取出鼠入睡后，并使用掩模通风设置在手术台上。控制异氟烷流大约为0.4 - 通过检查大鼠的条件0.7升/分。灌注只SD（SD）大鼠（雄性，5周龄）的从肝门静脉肝脏用特殊溶液8克/升的氯化钠组成（氯化钠），400毫克/升的氯化钾（KCl）中，78毫克/ L磷酸二氢钠二水合物（和NaH 2 PO 4·2H 2 O），151毫克/升磷酸氢二钠十二水合物（的Na 2 HPO 4·12H 2 O），2.38克/升的2- [4-（2-羟乙基）-1-哌嗪基]乙磺酸（HEPES），190毫克/升乙二醇四乙酸（EGTA），350毫克/升碳酸氢钠（ 碳酸氢钠 ），和900毫克/升葡萄糖。
- 循环通过肝脏胶原酶溶液。
注意：溶液由500毫克/升的胶原酶，9.8克/升Hank氏缓冲盐，2.38克/毫升HEPES，556毫克/毫升氯化钙水合物（氯化钙2·H 2 O），350毫克/升碳酸氢钠 ，和50毫克/升胰蛋白酶抑制剂，以将pH调节至7.2。 - 小心地取出肝，并轻轻剁碎它用手术刀刀片一个菜，添加的Dulbecco氏改良的Eagle氏培养基（DMEM），补充有10％胎牛血清（FBS），并通过100微米过滤细胞悬浮液尼龙网。以除去额外碎片，离心细胞悬浮液，在20×g下1分钟。在此步骤中，肝细胞在上清液中。
- 重复离心步骤两次（总共三个离心）。最后，离心肝细胞，在50×g下3分钟，以恢复它们以颗粒的形式。
- 重悬的肝细胞，以4×10 5个细胞/ ml在DMEM构成的特殊培养基中的浓度补充有10％FBS，1％青霉素-链霉素-戊二醛（PSQ），1％二甲基亚砜（DMSO），0.1微摩尔/ L的地塞米松，0.5微克/毫升的胰岛素，10毫摩尔/升烟酰胺，0.2毫摩尔/升磷酸抗坏血酸（ASC-2P），和10ng / ml人表皮生长因子（hEGF的）15。这个特殊的介质是强制性的在体外条件下保存肝功能。
- 为了获得大鼠MSCs，安乐死只SD（SD）大鼠（雄性，5周龄）由isoflur过度管理烷。切除股骨和胫骨，并通过插入一个22克针进入骨的轴冲洗出来，用10ml的DMEM补充有10％FBS的收集骨髓。通过100微米的尼龙筛收集细胞，通过过滤。
- 种子细胞上使用含有10％FBS和1％青霉素/链霉素的DMEM10厘米培养皿。对于球体的实验中，使用干细胞在5代。
2.准备三维细胞球体
- 市售获得微图案培养板，在其上的细胞粘附区域规则地排列在直径100微米的二维方式，通过涂布了的PEG基质的非粘合区所包围。
注：对于细胞移植，与热敏性聚合物PIPAAm一个附加的涂层是必要的，让细胞分离，通过冷却板（参见步骤5.1）。温度波动可以在该聚合物的化学诱导的变化8-10。在37℃，PIPAAm稍疏水的，使得在正常条件下被培养的细胞。的降低在低于32℃的结果在聚合物的快速水合的温度，从而导致细胞的自发脱离。 - 种子上的12孔微图案板的肝细胞或干细胞，在4×10 5细胞/孔andincubate它们在37℃下在含有5％的CO 2的潮湿气氛中的密度。细胞将积聚在微图案粘附区域逐步形成圆球状体在2天。
注意：对于在单层培养制备对照细胞，用一般的12孔板并如上所述种子细胞以相同的密度，按照类似的程序。
3.准备Polyplex公司纳米胶束的
- 合成的嵌段共聚物，PEG-的PAsp（DET）（聚[N' - [N - （2-氨基乙基）-2-氨基乙基]天冬酰胺]）（聚乙二醇的Mw = 12，000，聚合度的PAsp（DET）链段的（DP）= 59），以及仅由该阳离子段[的PAsp（DET）]（DP = 55）的，按照先前由作者11中描述的方法均聚物， 16，17。
- 通过调节聚合物浓度制备的PEG-的PAsp（DET）嵌段共聚物中的残留的氨基在10mM HEPES缓冲液（pH值7.3）等摩尔比的混合溶液和的PAsp（DET）均聚物33.3微克/毫升和19.1微克/毫升。
注意：上述的聚合物浓度可用于制备纳米胶束与残余摩尔总氨基的两种聚合物中的磷酸基团中的pDNA（N / P比）的10的N / P比比率可以变化的代表值根据不同的细胞类型和用途（详见讨论）。这两种聚合物的结合使用可同时实现有效的PEG屏蔽的PAsp（DET）的运作，以加强内体逃脱（详见讨论）18。 - 通过克隆表达各自基因导入pCAG-GS质粒段（http://www.cdb.riken.jp/pcs/protocol/vector/map/m36.html制备的质粒DNA编码Gaussia萤光素酶，GL4萤光素酶，或促红细胞生成素）下使用根据制造商的协议市售试剂盒的CAG启动子/增强子得到表达。扩增质粒DNA在主管大肠杆菌菌株，并用无内毒素的质粒DNA纯化系统纯化它。确定质粒DNA的浓度在260纳米的吸光度，得到150微克/毫升溶液在10mM HEPES缓冲液（pH7.3）中。
- 为了制备多聚物纳米胶束，彻底混合的pDNA溶液（在10mM HEPES缓冲液中150微克/ ml），将两种聚合物以2:1的比例预混合的溶液：1（体积比）。
4.基因转染到球体
- 孵育细胞（肝细胞或MSCS）播种到微图案板允许球体成熟，形成后72小时。对于基因转染，用1ml新鲜培养基更换培养基后添加100微升的polyplex纳米胶束溶液（含有10μg质粒DNA）到每个孔中。继续24小时的纳米胶束解决方案的孵化。
- 对于使用基于脂质的转染试剂对照，将混合的pDNA溶液与试剂在3重量比试剂/ pDNA的调整的pDNA的最终剂量为等于两个所述基于脂质的试剂和纳米胶束的方法。
5.恢复细胞球体和移植
- 替换用200μl冷冻的PBS的培养基中，然后将板在冰上。
注意：通常，球状体可以在约15分钟分离，并且可以在悬浮液中进行移植的形式被回收。 - 轻轻吸出细胞在200微升悬挂使用注射器用23 G或27G的针头在体内的注射。
6.评估转基因表达
- 正是24小时用新鲜培养基替换后100微升培养基的-为Gaussia萤光素酶分泌到培养基中的表达的体外评价，收集50个。估计使用商业海肾萤光素酶测定系统，并根据制造商的协议光度计的萤光素酶表达。
注：Gaussia荧光素酶保持稳定在培养基中超过一个星期。因此，为了评价转基因表达的实时效率，事先更换新鲜的培养基中收集的样品介质。介质变化的时间可以灵活。 - 为在宿主动物中的转基因表达以下细胞移植的体内评价，麻醉的BALB / c裸鼠（雌性;7周旧）吸入麻醉下异氟醚。
- 放置一个鼠标连接到麻醉机，以提供异氟醚为所述腔室的腔室。取出小鼠入睡后，并使用掩模通风设置在手术台上。控制异氟烷流大约为0.2 - 通过检查小鼠的条件0.5升/分。
- 注入200μl的含有球状体转染GL4荧光素酶表达质粒DNA（如在4.1中描述）到腹部区域的皮下组织的细胞悬浮液。
- （150毫克/公斤;静脉内途径）立即注射D-萤光素后，根据制造商的协议使用IVIS成像系统测量萤光素酶表达。
- 为了评价细胞移植的治疗效果，注入200μl的含有球状体转染的促红细胞生成素编码质粒DNA进入细胞悬液腹部区域的皮下组织。
- 采集血样 通过出血颌下获得约200微升血19。测量使用的血液试样分析仪的血红蛋白和血细胞比容。
注意：用于移植的细胞数量是由接种于板的数量调节。不幸的是，它是难以确定，因为内部的球体的数量不能测量准确的细胞数。
- 采集血样 通过出血颌下获得约200微升血19。测量使用的血液试样分析仪的血红蛋白和血细胞比容。
- 实验之后，放置在加热垫上有温度控制器相连的小鼠，直到从麻醉中苏醒。
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Representative Results
在通过使用多聚物纳米胶束或控制基于脂质的转染试剂12中的肝细胞或干细胞形成的球状体进行的Gaussia荧光素酶表达质粒DNA的基因转染。所述纳米胶束诱导球体结构几乎没有变化与非转染的球体上的微图案化板相比，而对照试剂显著转染（ 图3）后一天破坏的结构。使用纳米胶束，一致白蛋白分泌和转基因（Gaussia荧光素酶）的表达转染后进行很好的维护了将近一个月。然而，当控制试剂使用，无白蛋白分泌观察，虽然转基因表达的程度是相似的从纳米胶束（ 图4）12 中获得。
在使用热敏微图案化板中，3D s球体恢复所述球状体的tructure被很好保留这两个原代肝细胞和回收从冷却板（ 图5）后的MSC在悬浮液中。其结构也是公穿过注射针的球状体具有足够大的口径，如23（400微米）和27克（220微米）的针头后保持。
回收的肝细胞的球状体的皮下注射后，萤光素酶表达在动物中检测到超过数周（ 图6）20。从移植肝细胞的白蛋白表达观察到在宿主组织20，这表明细胞的功能是通过旋转椭圆体的回收和移植的过程中保留下来。为了测试它们的潜在治疗应用，肝细胞球状体也转促红细胞生成素编码的pDNA。促红细胞生成素表达的球状体皮下移植后ietin，在动物中获得的一个月（ 图7）20一显著造血效应。
肝细胞球体（A，B）和MSC球体（C，D）上的微图案板图3.显微图像每天基因转染后，用多聚物纳米胶束（A，C）或脂质试剂（B，D）。比例尺：100微米请点击此处查看该图的放大版本。
图4（A）转基因Gaussia荧光素酶的转染肝细胞球体表达后，（B）从分泌白蛋白肝细胞球状体或肝细胞在转染后的单层培养。球状体采用纳米胶束（●）或控制脂质体转染试剂（○），或裸质粒DNA（▲）转染。还示出从控制（未转染）的肝细胞的白蛋白分泌（在球状体（△）或单层培养（×））。结果表示为平均值±SEM; N = 4为球体单层培养和n = 6。 （转载自参考12的许可）。 请点击此处查看该图的放大版本。
图中的肝细胞的球状体的悬浮液中，通过（A）将它们传递后5.显微图像23-或（B）27G的注射针比例尺：100微米。
在宿主小鼠图6的萤光素酶表达肝细胞移植后，经过转染后24小时，用荧光素酶（GL4）-encoding质粒DNA，肝细胞球状体和单细胞悬液从单层培养物移植到腹部区域的皮下组织。使用IVIS成像系统（转载自参考20的许可）的荧光素酶的表达在宿主小鼠进行了评价。 请点击此处查看该图的放大版本。
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促红细胞生成素表达的肝细胞移植后图7.造血。肝细胞中的球体和单层培养转染的红细胞生成素编码的pDNA。转染后的24小时，从单层培养物的球状体和单细胞悬浮液皮下移植到小鼠腹部。在移植后22天，28天，（A）中的血红蛋白和（B）的血细胞比容水平从血液样品进行测量。数据表示为平均值±SEM; N = 12球体和单层团体和n = 6未经处理的控制。统计显着性是由双尾学生t检验（从20引用转载许可）。确定请点击此处查看该网络的放大版本。古尔。
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Discussion
在这个协议中，关键是要在基因导入和球体恢复的步骤保持球状体的三维结构。它是为了保持有利的微环境必需的细胞，以避免细胞死亡或细胞活性的损失。例如，白蛋白分泌，肝细胞的具有代表性的固有功能，保存完好，在肝细胞的球状体，而在常规的单层培养的肝细胞播种12后迅速失去其分泌能力几天。对于干细胞，所述球状体显著提高分化的效率为脂肪细胞或成骨细胞，与参与脂肪形成和成骨基因的增加的表达水平，和下调的基因即保持在MSC自我更新的表型4。
用于基因导入，各种转染试剂先前已进行测试，包括基于脂质的那些（ 图3，4）和基于聚合物的那些，例如聚乙烯亚胺。不幸的是，没有任何试剂，而不破坏球体结构提供了成功的基因导入。特别是，基于脂质的试剂趋向于引起球体的完全中断，虽然转基因表达是有效的，即使是在对微图案板的剩余细胞。它是可能的基于脂质的试剂诱导显著膜去稳定化，导致高的转基因表达，但通过使细胞与细胞间的相互作用不稳定扰乱球体。
与此相反，该阳离子聚合物打乱了球状体以比脂质在较小程度上，特别是在低的N / P比的条件下，以形成多聚物。这里显示的标准协议使用多聚物纳米胶束是拥有PEG屏蔽。可替代地，也可用于基因引入球体多聚物与阳离子均聚物，如聚乙烯亚胺，。事实上，cationiC时不所述PEG表面多聚物通常提供在体外转染高转基因表达，并且是依赖于细胞类型的球体移植和目的有吸引力的选择。
此协议的一个特点是使用涂有热敏高分子微图案培养皿。该微图案阵列可产生大量细胞球体的具有均匀的直径。该协议使用直径100微米的阵列，但这方面是灵活;然而，非常大的直径，如500微米，常常引起细胞坏死的球状体（未公布的数据）的核心。通过简单地冷却该板在冰上，所述球状体可在可注射的悬浮液通过温和抽吸用注射器的形式获得。这种技术的潜在限制在于用于注入的球状体的针的大小。据证实，27-G针可以安全地用于球体与100微米直径ETER。然而，窄的针不能适用于这些球状体。由于27-G的针太大，尤其是对于移栽球体到小鼠脊髓，一种可能的替代方法是使用支架来保持细胞内它们。
这个协议可以潜在地适用于细胞移植的几个目的。相比于悬浮球体培养系统中，微图案板具有可以很容易地获得球状体具有均匀直径的足够数量的优点。尽管基因导入的方法可以是柔性的，如前面所提到的，多聚物纳米胶束用PEG屏蔽对于避免球体破裂特别有效。我们希望，该系统将提高移植细胞的治疗效果。
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Acknowledgments
我们深深体会到池谷健博士和技术人员东洋合成，东京，日本提供热敏微图案培养板以及科学建议。我们也感谢小仓里美小姐，SAE铃木小姐，明日香三好女士和Katsue森井女士与动物实验的技术援助。这项工作是财务部分由日本学术振兴会KAKENHI格兰特 - 在急救科学研究的支持，创新（COI）计划的中心，并从日本科学技术振兴机构（JST）的S-创新项目，以及JSPS核心 - 到核心方案，A.高级研究网络。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Pen-Strep-Glut | GIBCO | ||
| Dexamethasone | Wako Pure Chemical Industries | 041-18861 | |
| Nicotinamide | Wako Pure Chemical Industries | 141-01202 | |
| Hank’s buffered salt and L-ascorbic acid 2-phosphate (Asc-2P) | Sigma-Aldrich | A8960 | |
| Human epidermal growth factor (hEGF) | Toyobo | PT10015 | |
| Cell-able multi-well plates | Toyo Gosei | PP-12 | |
| Thermosensitive cell culture plates (Upcell) | CellSeed Inc | The micropatterned architecture is constructed on the thermosensitive plates (custom-built by Toyo Gosei) | |
| Lipid-based transfection reagent (FuGENE HD) | Promega | E2311 | |
| Renilla Luciferase Assay System | Promega | E2810 | |
| pGL4 Luciferase Reporter Vector | Promega | E6651 | |
| pDNA expressing Gaussia luciferase | New England BioLabs | N8082S | |
| Mouse erhthropoietin-expressing vector | Origene | MC208445 | |
| pCAG-GS | Kindly provided by Laboratory for Pluripotent Cell Studies, Center for Developmental Biology, RIKEN | ||
| Escherichia coli DH5α competent cells | Takara | 9057 | |
| Endotoxin-free plasmid DNA purification system | Nippon Genetics | NucleoBond Xtra EF | |
| Collagenase | Wako Pure Chemical Industries | 639-00951 | |
| Trypsin inhibitor | GIBCO | R-007-100 | |
| Luminometer | Promega | GloMax™ 96 Microplate Luminometer | |
| IVIS Imaging System | Xenogen Corp. | Xenogen IVIS Spectrum in vivo imaging system | |
| Blood sample analyzer | Sysmex | pocH-100i Automated Hematology Analyzer |
References
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