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Chemistry

小型低聚物形成膜蛋白的沉降平衡:组氨酸质子对五聚体稳定性

Published: April 2, 2015 doi: 10.3791/52404

Abstract

分析超速离心(AUC),可用于研究大分子之间可逆的相互作用在宽范围的相互作用的优势和在生理条件下。这使得AUC选择的方法,以定量评估化学计量学和同和异的关联是短暂的,可逆的生化过程的热力学。在沉降平衡的模态(SE),扩散和沉淀之间的平衡提供了一种简档作为径向距离的函数的依赖于特定的关联模型。这里,详细的SE协议被描述来确定一个小的膜蛋白低聚物,使用分析超速离心机的大小和单体 - 单体关联的能量。 AUC-ES是无标记,仅根据物理原理,并能在两个水溶性和膜蛋白可以使用。一个例子示出了后者的,小疏水(SH)在人呼吸道合胞病毒的蛋白质(hRSV的),一个65个氨基酸的多肽与单个α螺旋跨膜(TM)结构域,其形成五聚体离子通道。基于NMR的结构数据显示,SH蛋白具有在其跨膜结构域2质子化His残基被定向朝向所述通道的内腔。 SE试验的目的是为了确定如何pH值影响缔合常数和SH蛋白的寡聚大小。而五聚体形式在所有的情况下保存,其缔合常数降低在低pH值。这些数据与观察SH通道活性类似的pH依赖性,在SH蛋白两种氨酸残基的腔的方向一致的协议。后者可在低pH值会遇到的静电斥力和降低的低聚物的稳定性。总之,这种方法适用于每当在生理条件微妙的蛋白质 - 蛋白质关联的变化的定量信息必须被测量。

Introduction

分析超速离心1-5是研究大分子相互作用的生理条件下,被访问既弱相互作用和强相互作用中最重要的方法之一。该方法是无标记,并使用光的吸收或干扰,并且甚至荧光光学系统可用于多级6几个数量访问浓度范围。

因为大多数生化过程取决于可逆的相互作用,此方法特别有用。这些相互作用的化学计量和强度必须被定量表征理解生物过程,以及用于此目的7,8许多方法存在的。然而,瞬时相互作用是难以研究9。

一个方法的选择来表征大分子相互作用取决于它的静态或动态性质。在第一种情况下,sedim entation速度(SV)的情况下,其中的径向传输的速率测量和复合物分馏的浮力质量和形状的差异的基础上。

与此相反,动态连接是可逆的实验的时间尺度,不能物理地分离。在这种情况下,自或杂相互作用导致的非共价相互作用以依赖于总蛋白浓度的平衡。这些动态的相互作用可以通过两个沉降平衡(SE)和沉降速度(SV)10进行研究。然而,第一种方法是简单地履行和这里进行说明。在SE,离心是在足够低的速度进行,使得扩散和沉淀之间达到平衡。在这一点上,一个光信号(UV-VIS)的作为径向距离的函数的平衡轮廓,可以使用预先设定的热力学模型协会11进行分析。

ve_content“>在本文件中,一个沉降平衡研究,提出一种病毒的膜蛋白,其形成由于其疏水性的离子通道。的自缔合的,实验运行在洗涤剂的存在下,以及在这种情况下,密度溶剂具有被匹配到该洗涤剂的,但是,该协议描述中的水溶性蛋白的情况下将是相同的,所不同的是将需要无溶剂的密度匹配。

使用的蛋白质被编码在人呼吸道合胞病毒(hRSV的),在副粘病毒科,导致下呼吸道疾病的婴幼儿,老年人和免疫受损人群全世界12有包膜肺病毒。每年高达6400万报hRSV的感染病例和16万死亡病例发生。

的hRSV的基因组转录11蛋白,包括三个膜蛋白F,G和小疏水性(SH)。 SH蛋白参与在RSV感染的发病机制。 RSV缺乏的SH基因(RSVΔSH)是可行的,导致形成合胞体和生长以及野生型(WT)病毒13-16。然而,RSVΔSH病毒复制在上呼吸道15,16 10倍效率较低比WT上。另外,RSVΔSH病毒减毒在体内小鼠和黑猩猩模型13,17。

该SH蛋白是64(RSV亚组A)或65(RSV亚组B)氨基酸长II型整合膜蛋白的积累主要是在高尔基体18的膜。 SH蛋白具有单个预测α-螺旋跨膜(TM)结构域19,其高度保守20,21。的C-和N-末端膜外结构域被定向lumenally /细胞外和细胞质,分别。

两个合成TM结构域(残基18-43)和全长的SH蛋白已经显示出,以形成在各种洗涤剂homopentamers。该homopentameric形式是负责平面脂质双层22,23通道活动。首先确定使用位点特异性的红外二色性23,其显示的His-22是在一个腔,靠近跨螺旋,取向在脂双层对TM单体的正确方向。相同的TM域取向用NMR研究,重建了五聚体的全长蛋白质的α-螺旋束中dodecylphosphocholine(DPC)胶束22证实。在这种“胶团”的模式中,单个的α-螺旋TM结构域侧翼的N-末端由一个螺旋,和C末端由一个扩展B-发夹。 SH蛋白的两个质子化的残基,的His-22和的His-51,分别位于在TM结构域(lumenally取向),并且在膜外C末端β发夹的尖端(远离通道孔),分别为。在一个bicellar ENVIRO的联邦政府,但是,对TMα螺旋延伸到的His-51,并且两个His残基可访问的信道24的内腔中。该信道结构采用漏斗状结构22,其中,窄的区域(丝氨酸29至Cys-45)22衬有疏水性侧链(岛-32,岛-36,岛-40和Leu-44),并ILE-36限定在通道管腔最窄处。他-22位于该漏斗的最大开口,而他的-51是在最小的开口的前端。

在本文件中,在一个沉降平衡模式分析离心已被用来确定是否他质子影响的SH蛋白五聚体的稳定性。在这种情况下,SH蛋白溶解于C 14甜菜碱洗涤剂,其先前已用于显示的SH蛋白形式的五聚体的低聚物22。

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Protocol

该协议是基于以下资源,这是被称为详细信息,并特别注意事项3,25-28。

洗涤剂胶束2小时 2 O 1.密度匹配

注意:该缓冲溶液的密度必须匹配于去污剂胶束的密度。常见的密度调节剂包括2 H 2 O,H 2 18 O,2 H 2 18 O,甘油和蔗糖29。的H 2 18 O具有相同的密度为2的H 2 O和可能是一个更好的选择,如果不希望在该蛋白质可交换质子的氘。在此过程中,将3-(N,N-二dimethylmyristylammonio)-propanesulfonate(C14SB)洗涤剂在50mM Tris pH值7.3的密度,100mM NaCl的将被用2 H 2 O匹配作为初始猜测以下浓度2小时 2 O将被使用:10,30,和50%体积/体积。

1.1。样品制备

  1. 制备下列储备溶液并过滤消毒用0.2μm注射器过滤:50毫升500毫摩尔Tris pH值7.3和1M NaCl的(10X缓冲液); 1毫升250毫C14SB(50X洗涤剂溶液)。
  2. 通过混合20微升10X缓冲液,4微升50X洗涤剂溶液,20微升2 H 2 O(99.9%),和156微升制备的200μl 样品溶液的去离子H 2 O.准备也将200μl的参考溶液通过混合20微升10X缓冲液,20微升2 H 2 O(99.9%),以及160微升的去离子H 2 O.
  3. 对于其他2小时 2 O浓度重复步骤1.1.2,即30%和50%,适当调整2小时 2 O和H 2 O数量。

1.2。 6通道A大会UC的细胞和样品装载到细胞中。

注意:有两种类型的AUC​​细胞取决于样品装载方法。细胞没有外部填充已被密封之前的细胞加载,而外部填充的细胞被密封后的细胞可以被加载。外部填充的AUC电池组件已经预先3所述。在这个协议中,6声道的AUC细胞没有外部填充的组装进行说明。的主要区别在于,它具有在两侧需要被单独地紧固的螺钉环,并且它不需要壳体插头(图1)。在装配步骤的差以下突出显示。

图1
图1.分解图,无需外部填充一个6通道AUC细胞,这个数字已经被修改Beckman Coulter公司安钛50和AN-60钛AnalytiCAL转子,细胞和动态平衡的用户手册。

  1. 准备两个窗口组件蓝宝石窗口 ,而不是石英窗口(图2),每个单元AUC。放置窗口垫圈到窗口保持架。稍微弯曲的窗口衬,并将其放置成使得该间隙形成相对于窗口支架键槽窗口保持架。放置蓝宝石窗口的窗口衬套内部,与窗架键槽对准标记。
    注:该石英窗是可压缩的,因此将产生更多的光折射在高速28,30因此对于干扰测量以上30000转,如在此密度匹配实验中,蓝宝石窗口被使用。蓝宝石窗口比石英窗口重并有一个“X”,蚀刻到其一侧。

图2
图2.分解图Øf显示窗组件,这个数字已经被修改Beckman Coulter公司安钛50和AN-60钛转子分析,细胞和动态平衡用户手册

  1. 放置在电池外壳与部件编号颠倒 。用与外壳键对准键槽,滑入电池壳体首先在6个扇区核心与斜口朝下,接着是一个视窗总成朝下的窗口(1图,左)。
  2. 轻轻大衣螺纹环螺纹和螺纹环垫圈spinkote。放置在窗组件的顶部上的螺纹环垫圈。安装螺纹环到窗口外壳词“OUT”朝外。通过使用电池对准工具手工拧紧螺丝环。
  3. 使用扭矩扳手,拧紧螺丝环只有60英寸磅
  4. 将与部件号直立放置在12中午细胞。 LOAD 120微升参考到左行和110微升样品进入右行。确保每个样品和参比被正确配对。
    注意:精确的样品量不是关键的,但参考需要具有比样品(5-10微升)略多卷,使样品液面将是不同的。
  5. 小心滑入电池外壳1的窗口组件与窗口朝下(图1,右图)。小心不要过分干扰细胞和溢出的内容。
  6. 重复步骤1.2 3和1.2。4,收紧第二螺杆环至120英寸-磅 。倒置细胞并重新拧紧所述第一螺纹环至120英寸-磅
  7. 加载细胞进入转子,所述转子安装到离心机,并根据制造商的说明28安装在单色。
    注:本ST详细EP也可以在该参考文献3中找到。

1.3。设置干扰测量

  1. 启动用于AUC仪器的用户界面的软件,并在3000rpm下进行激光设置和径向校准对于每个小区,根据制造商的说明,这将简要地总结为以下步骤。
  2. 1.3.1.1足够的真空后已经达到(<100微米),以3000rpm运行的离心机。预览在用户接口软件的干涉图案,并调整激光参数,以获得最高的对比度。
  3. 创建一个新的设置文件(文件|新建文件)指定“平衡”和“干扰”的测量。成立了沉降平衡法(“方法”按钮),在45000转或预期的蛋白质样品的最高速度,以较高者为准,在20℃运行,具有运行温度,并收集1扫描每15分钟一班。生产过程监控通过在HeteroAnalysis打开的数据文件和至少12小时后选择“匹配”函数r平衡进展(大约过夜,图3)。
    注:类似的功能也是SEDFIT(选项|加载选项|测试接近平衡)可用。

图3
图从HeteroAnalysis匹配功能3.结果的匹配功能可以通过连续扫描和上次扫描之间的比较RMSD监视均衡的进展。这个例子显示了实现平衡8小时后RMSD值渐近于X轴表示。

1.4。数据分析

  1. 对于每一个组样品,画出对2小时 2 O浓度的径向分布曲线的斜率。
    注意:分配将是一个很浅的指数即APproaches线性。 X轴截距对应于匹配的2小时 2 O浓度。
  2. 为了更准确的结果,进行实验的几个重复。可替换地,重复实验具有较窄范围的2小时 2 O浓度。

SH在C14SB胶束2.沉降平衡

2.1。运行参数

  1. 通过使用SEDNTERP计算缓冲器的密度和粘度,蛋白质部分比容和离心速度。计算缓冲器的密度和粘度,选择计算中的“缓冲器数据选择”部分,并相应地输入缓冲组件,包括D 2 O中的浓度。
  2. 2.1.1.1为了计算蛋白质部分比容,选择计算中的“V-栏”部分,并输入该蛋白质的氨基酸序列。指定“做低聚物从这个单体:N =”最高预期低聚大小字段,在这种情况下,N = 5由在主窗口在RPM字段输入值计算的速度,直到σ≈1;这是一个经验法则,以确保径向分布轮廓25的一个良好的指数形状。
    注意:计算该实验的值如下:ρ=1.03839克/ ml时,η= 1.0267厘泊=0.7569毫升/克,ω1 = 16000转。
  3. 随后的计算速度跟随,以确保在同一速度和未来25分布曲线之间有足够的差异。
    注意:这也可以从功能完成“估计平衡转子转速功能”在SEDFIT,其中考虑到了解决方案列(灌装量)。

2.2。样品制备

  1. 准备用5毫米C14SB1毫升对照品溶液32.3%,2小时 2 O从密度匹配实验(第1节),决定将100微升10X缓冲solutioN(步骤1.1.1),20微升50X洗涤剂溶液(步骤1.1.1),323微升2 H 2 O(99.9%)和527微升的去离子H 2 O.
  2. 溶解冻干,高效液相色谱法纯化SH肽(表达和纯化先前31描述的)在适当的溶剂如甲醇或50%体积/体积乙腈水溶液。测量溶解的肽的A280在微升尺度的UV / Vis分光光度计和等分对于三个样品以得到A 280,每个时稀释至12mm = 0.3,0.5和0.8(A 280为10mm = 0.25,0.417和0.67) 130微升。冻干样品过夜,并重新悬浮于130微升的参考溶液(步骤2.2.1),得到样品溶液。
    注意:SH蛋白可以从紫外/可见光吸收检测到在280nm处,因为它包含的Trp和Tyr残基。蛋白没有芳香族残基可以通过标记它们与合适的生色团,用含色氨酸突变体进行检测,或通过使用干扰NCE测量,而不是吸收。
  3. 按照第1.2节的步骤来组装一个6通道AUC细胞与石英窗 。加载最高浓度样品(A 280,12毫米 = 0.8)在渠道最接近的转子中心和最低浓度的样品(A 280,12毫米 = 0.3),最远的从转子中心。

2.3。设置测量吸光度

  1. 创建一个新的设置文件(文件|新建文件)指定“平衡”和“吸收”的测量。指定280纳米的检测器波长。
  2. 在3000rpm下通过检查“径向校准第一扫描之前”,在扫描选项,指定数据收集在分辨率低,例如,通过径向步长= 0.01厘米,重复= 3(分辨率低,速度快),并执行单次扫描执行径向校准。扫描完成后,取消选中该选项。
  3. 成立了沉降平衡法(“其实现方法具D“按钮),以在步骤2.1.3中计算出的第一速度运行,在20℃,并收集1次扫描,每30分钟。在每一个细胞的“详细信息”,在指定低分辨率的数据收集,如步骤2.3.2。至少18小时后在HeteroAnalysis打开数据文件并选择“匹配”功能监视均衡的进展(约一夜之间,图4)。
    注意:达到平衡可能需要相当长的时间的时间为第一速度,而随后的速度将花费更少的时间。

图4
图4. HeteroAnalysis匹配功能的结果,第一和第二速度(上左和右)似乎已经达到平衡,但最好是等待几个小时,以确保万无一失。相比较而言,在第三和第四速度(底部左侧和右侧)都明显地达到平衡在较短的时间。 请点击此处查看该图的放大版本。

  1. 一旦达到平衡,收集在高分辨率,例如,使用径向步长= 0.001厘米,重复= 10(高分辨率,慢)的单次扫描。
  2. 扫描完成后,重复步骤2.3.3和2.3.4下一个速度。
  3. 任选地,当所需要的时间,以达到平衡的每个速度是已知的(计算或根据经验),建立了沉积平衡法扫描,以包括所有在步骤2.1.3和计算出的速度的平衡时间为每个后收集1次扫描速度。在这种情况下,在每个细胞的“详细信息”指定的高分辨率数据收集。

2.4。在SEDFIT和SEDPHAT数据分析

注:有关详细信息,并考虑在数据分析读者参考吨Ø以下网站:www.analyticalultracentrifugation.com。

  1. 在SEDFIT开放高分辨率扫描(数据|负载沉降平衡数据)和分割数据转换成3个通道(这些对应于不同浓度的每种样品;选项|加载选项|减6声道原始数据在3亚群)。
  2. 重新打开属于在SEDFIT相同样品和相同浓度但不同速度的数据文件。调整半月板(垂直红线),电池底部(垂直蓝线)及配件的限制(垂直绿线),并在SEDPHAT导出数据的使用(数据|导出数据到SEDPHAT)。输入在步骤2.1.1按要求计算,以及转子型和核心类型的参数。重复为每个样品和浓度这一步骤。
  3. 在SEDPHAT打开从同一样品的所有数据(所有的浓度和速度),并填写实验参数;一个例子示于图。 5。
    注:当D 2 O缓冲区中,申加可交换的质子的关合作可以显著改变蛋白质的分子量,特别是对于水溶性蛋白质。膜蛋白,尤其是小的像SH的蛋白质,受到的影响较小,因为膜嵌入式地区免受交流。为了解决这个问题,输入“缓冲液D摩尔分数”。
    注:在这一步,建议单独保存编辑后的数据集,通过选择菜单数据|复制所有数据,并另存为新的配置。
  4. 选择一个模式,并填写该模型的全局参数。
    注意:作为一个例子,在“单体 - 正Mer的自协”模型和它的参数示于图。 6。

图5
图5.如何填写实验参数的一个例子。

文件/ ftp_upload / 52404 / 52404fig6.jpg“/>
图6.如何填写全局参数为单体-N-Mer的自我关联模型的一个例子。

  1. 运行一个全球飞度通过选择菜单飞度|全球飞度,等待合适的收敛。记下(或采取截图)的拟合结果,尤其是在全球减少卡方和日志K A值。提取其他数据,如数据拟合,并从菜单中的复制和显示拟合残差|显示热力学信息。
  2. 返回到全局参数,并检查M(1)以适合单体分子量和重复步骤2.4.5。记下拟合分子量和全球减少卡方。
  3. 重复步骤2.4.3至2.4.6每个模型进行测试和比较减少了全球卡方值和拟合残差比较每个模型的拟合质量。
    注:小和随机拟合残差通常表示一个不错的选择,而且最适合将模型拥有全球最小的降低卡方。拟合单体分子量和它的卡方值不应该从该固定的(理论)分子量的显着不同。
  4. 首先选择统计计算所值的置信区间为获得数家|关键卡方错误表面预测和输入所需的置信区间。接下来,进入统计|生成1维误差体表投影,并取消选择登录嘉在全局参数对话框,以获得日志嘉卡方值。
    注:建议读者咨询更多详细信息如下源(http://www.analyticalultracentrifugation.com/ sedphat / statistics.htm)这种方法33的方法32,以及插图。

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Representative Results

的C14SB去污剂胶束的径向分布曲线在50mM Tris,100mM NaCl的pH为7.3的形式,可以被安装到一个线性模型( 图7A)一个很浅的指数。这种分布的斜率成反比关系到D 2 O中的浓度( 图7B)。的点的斜率是零, 也就是,匹配D 2 O中的浓度,结果为32.3%。

参见图7所示

相同的实验重复进行不同的缓冲器:50mM磷酸钠,100mM NaCl的pH为5.5和50mM磷酸盐-柠檬酸盐,100mM NaCl的pH为3,以获得匹配D 2 O中的浓度为30.3%和41.0%之间。

SH野生型(wt)在洗涤剂的样品暴露于pH为3,5.5和7.3(总共6个样品),然后离心以15000,19000,23000,28000,34000和42000转。 ðATA得到在较低的速度不能被可靠地嵌合,可能是因为平衡尚未实现,因此被用于从四个更高的速度获得的数据。在pH 7.3,SH WT被发现以形成五聚体( 图8表1)与表观日志K A = 21.35( 见表2)。缔合常数未在pH5.5改变,但它被显著在pH 3。这是与以前的报道24,其中报告的降低电导在较低的pH值,为4.5的pK一致减小。

参见图8所示

见下面的表1。

图7
C14SB图7.密度匹配与D 2 O. (A)径向分布的Ñ ​​轮廓由C14SB去污剂胶束在50mM Tris形成,100mM NaCl的pH为7.3与25,30,和35%D 2 O.数据被分别安装在一个线性模型(黑色)。(B)中的斜率进行作图对D 2 O中的浓度(黑色正方形)和装配到线性模型(红线)。匹配D 2 O中的浓度表示(红色箭头)。

图8
图8.拟合的SH中C14SB以单体-五聚体模型。的SH的径向分布轮廓在C14SB在pH 7(空心圆)被发现,以适应最单体五聚体自关联模型(黑色实线)。拟合残差如下图所示。 请点击此处查看该图的放大版本。

模型(正体) 卡方(固定MW) 卡方(装有MW) 合身MW
3 15.444 1.0492 13477大
4 3.8094 1.0469 9889大
1.0499 1.0497 7822大
6 2.5994 1.547 6504大
7 6.1667 1.2112 5743大

表1.比较不同单体正聚车型全球减少卡方值。

pH值 下限(163;) 登录嘉 上限(1σ)
3 17.432 17.576 17.737
5.5 20.064 20.419 20.839
7.3 20.687 21.052 21.492

表2.比较明显登陆K A值在不同的pH值。

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Discussion

本文提供了一个实验方案样品制备和使用均衡沉降的小膜蛋白的洗涤剂齐聚分析。所描述的协议是同样有效-and simpler-为可溶性蛋白,作为密度匹配步骤是不需要的。实际上,该系统是由洗涤剂和蛋白质的混合​​物构成。进行沉降研究,该洗涤剂必须是不可见的引力场,使得它不向粒子浮选。因此,洗涤剂的密度,必须仔细地通过加入D 2 O中的到缓冲匹配,与限制,即如果所使用的洗涤剂是过于密集, 。,SDS不甚至100%D 2 O中能与之匹敌。与水溶性蛋白工作时由于样品不具有洗涤剂不是必需的密度匹配步骤。

在我们的申请中,小病毒蛋白,其形成离子陈荫罴ELS已被使用。像所有viroporins,SH蛋白具有α螺旋跨膜结构域,并且因此具有在洗涤剂,不会破坏其天然寡聚尺寸进行研究。

之前这些研究中,因此,合适的洗涤剂有被筛选。例如,在先前的研究SE的SH蛋白中形成的DPC,C8E5和C14甜菜碱五聚体的低聚物,和电泳过程中也观察到了温和的洗涤剂PFO 22五聚体。所有这些洗涤剂是适于SE,由于它们的密度可以通过加入D 2 O的匹配样品也应当通过沉积速度(SV),其提供本34种的最小数目进行测试。

此外,不适合洗涤剂会产生多个品种SV,以及多个乐队PFO电泳,表明多非特异性协会。前种的主要号码时获得来自SE有用信息在系统中发送的是不高于2;的SH蛋白的情况下,将数据拟合到单体和五聚体之间的平衡。

要注意的是选择适合在SE数据的模型,也应该尽可能地简单, ,单一品种的未知分子量应首先尝试是很重要的,其次是单体和增加尺寸的低聚物之间的可逆平衡。更复杂的模型相关联的更高的歧义。此外,不能检测其他的更小或更大的低聚物小种群,和模型将仅仅指示什么是存在的主要种类。在viroporins的情况下,这是尤其明显,因为这取决于微妙的实验条件下, 例如 ,洗涤剂使用的,pH值,蛋白质浓度,离心速度或突变, 例如 ,在丙型肝炎病毒P7 35低聚大小的变化,流感A M 2 36或SH蛋白24。

jove_content“>对于WT的SH蛋白中得到的结果清楚地表明,该五聚体的结合常数降低,在pH 3用在合成脂双层,其中,电导显着降低,在pH 3的SH蛋白获得这些结果匹配通道活性测量(PK 〜4.5),而它仍然pH为7和10 24。基于这些结果之间恒定的,有可能是SH通道活性在某种程度上受较低的pH在天然生物膜存在时调节。尽管在高尔基腔的pH值是唯一的一个单位低于细胞质的,囊内pH值在早期内涵体滴沿着所述内吞途径从pH值6.0-6.5至pH 4.5-5.5在晚期内涵体和溶酶体37,在受感染的细胞,所述的pK为电导变化或五聚体稳定性可能除此处与先前24 在体外获得的更高,因此pH值确实可以在过程中的生命周期调制信道的活动中发挥作用病毒。在被感染细胞的上下文中质子化His残基的突变是一个有趣的途径以后的实验38。

最后,SH蛋白的研究是由色氨酸在其序列中的存在容易,方便的紫外吸收测量。然而,该低聚物的结构的知识,可以使引入色氨酸的不敏感的位置, 例如 ,脂质-or溶剂-面向蛋白质的部分在膜-或soluble-蛋白质。可替代地,蛋白质可以具有标记的可见吸收或荧光标记。

总之,这个协议描述SE中的应用,以确定一个限定的病毒信道,当实验参数被改变的寡聚大小和结合常数。在这种情况下,pH值已被改变,以研究对他的质子化的稳定性的影响,但许多其它的假设进行检验,如突变对结构的影响这些完整性低聚物。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
3-(N,N-dimethylmyristylammonio)propanesulfonate Sigma T0807
Deuterium oxide 99.8% Cambridge Isotope DLM-4-99.8
An-50 Ti Rotor, Analytical, 8-Place Beckman Coulter 363782
An-60 Ti Rotor, Analytical, 4-Place Beckman Coulter 361964
Cell housing Beckman Coulter 334784
12 mm six-channel centerpiece, epon charcoal-filled Beckman Coulter 331376
Window holder Beckman Coulter 305037
Window gasket Beckman Coulter 327021
Window liner Beckman Coulter 362329
Sapphire window Beckman Coulter 307177
Quartz window Beckman Coulter 301730
Screw-ring washer Beckman Coulter 362328
Screw ring Beckman Coulter 301922
Spinkote Beckman Coulter 306812
Torque stand assembly Beckman Coulter 361318
Counterbalance Beckman Coulter 360219
Cell alignment tool Beckman Coulter 362340
SEDNTERP http://bitcwiki.sr.unh.edu/index.php/Main_Page
HeteroAnalysis  http://www.biotech.uconn.edu/auf/?i=aufftp
SEDFIT http://www.analyticalultracentrifugation
.com/sedfit.htm
SEDPHAT http://www.analyticalultracentrifugation
.com/sedphat/default.htm

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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小型低聚物形成膜蛋白的沉降平衡:组氨酸质子对五聚体稳定性
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Surya, W., Torres, J. SedimentationMore

Surya, W., Torres, J. Sedimentation Equilibrium of a Small Oligomer-forming Membrane Protein: Effect of Histidine Protonation on Pentameric Stability. J. Vis. Exp. (98), e52404, doi:10.3791/52404 (2015).

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