Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Behavior

适度的产前酒精暴露在成年大鼠社会行为的量化

Published: December 14, 2014 doi: 10.3791/52407

Introduction

儿童估计有1-5%被诊断患有胎儿酒精谱系障碍(FASDs)2,其中包括胎儿酒精综合症(FAS),部分FAS(疫区),与酒精相关的神经发育障碍(ARNDs)3。在社会行为和认知赤字之间的儿童FASDs 4-7观察到的最常见的不良后果。消极后果不限于重产前酒精暴露(PAE),中度PAE不导致FAS的显眼形态,行为和认知缺陷特性可引起比较微妙,但仍然持续存在,缺陷在人类与FASDs 8-10和大脑发育11在非人类的动物暴露于乙醇。理解适度PAE的行为和相应的神经生物学后果的重要性是由这表明绝大多数的胎儿酒精中毒综合症病例属于少秒内目前的估计强调艾威范围频谱12。

几个独立的实验室报告了啮齿类动物的社会行为改变大脑发育过程中乙醇暴露相关,包括减少调查和互动1,13-15,改变打法14,16,17,增加响应积极的互动17,18,改建为社会刺激19-21,和赤字在社会上获得的食物的喜好和社会的认可存储器22。社会行为缺陷已观察暴露于重(血液乙醇浓度(BEC中)〜300毫克/分升)22,23或乙醇更温和的水平(BEC中〜80毫克/分升)1,并在广泛的范围内的其他显著参数因素,包括曝光定时,曝光的持续时间,并在行为测定时的年龄。

以前的研究已经证明,改变社会INT的具体方面eraction在成年大鼠歧视暴露在中等水平的酒精从控制动物暴露于糖精1,18。特别是,适度PAE一直被与强劲增长的摔跤,这表明增加的攻击行为,并在成年后社会调查( 例如 ,嗅探合作伙伴)水平较低有关。因为在社会行为改变是PAE的可靠的后果,以下的PAE社会行为的量化可以保持为前进朝向PAE相关的改变中的社会行为的神经基础的更完整的理解和介入方法的发展的重要性。本文和相关视频的目标是提供指令的温和PAE协议和方法,用于在成年子女社会行为具有的量化可靠地分辨产前醇暴露从非暴露鼠后代。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

在这里和在所附的视频中描述的所有程序已经批准的健康科学中心的机构动物护理和使用委员会和新墨西哥大学的主校区。

1.产前乙醇暴露

  1. 获得所有需要的材料和化工产品:糖精钠盐水合物,190证明乙醇(95%的酒精体积比),玻璃珠饮水管,天然橡胶白色#4塞一个孔,1个“弯管球点,纸统治者从WWW印刷.vendian.org / mncharity / DIR3 / paper_rulers /。
  2. 获得成熟的成年大鼠饲养员从供应商或替代来源。使用长埃文斯饲养者在该协议提出的方法和代表性的数据。雌性体重125-150克,并到达使得它们大约9-10周的繁殖时老时6-7周龄(步骤1.5)。确保所有的准水坝都是首次母亲。确保男性是12周龄的到来和15周龄在养殖协议的开始。
  3. 房子单独塑料笼中的动物,在22°C在反向12小时亮/暗时间表(灯从21:00到09:00小时)。为获得食物和自来水随意在整个研究中,包括所有的饮用水会议期间。进到步骤1.4之前允许至少1周驯化至设施。
  4. 获得基线体重对每个雌性鼠。
  5. 评价在雌性大鼠孕前饮用水平2周。按照步骤1.5.1-1.5.6秩序。
    1. 天1和2填写包含在自来水中0.066%糖精溶液(无酒精)饮用水管。为了量化消费贴上一纸尺,毫米精度的饮水管之前,加油吧。使用这种方法,因为它与重管量化乙醇消费相关的测量误差降低。填充管标尺上20mm的大关。开始四小时drinki纳克会话(步骤1.5.1-1.5.6和1.7)在黑暗阶段(10:00小时)时的活性和饮酒水平是最高的发病后1小时。
    2. 在每次饮用会议结束量化被消耗的糖精溶液的体积。为了便于测量,确定每毫米的解决方案在标尺上的提前量和转换毫米到卷。对于这里推荐的管子每个MM对应0.366毫升。
    3. 天3和4填充有2.5%的乙醇(体积/体积),并在自来水中0.066%糖精溶液的管。在每届会议结束量化的乙醇溶液(每公斤体重的重量),这是消费量。
    4. 第5天,然后填充管,用5%乙醇(V / V),并在自来水中0.066%糖精溶液。在每届会议结束量化的乙醇溶液(每公斤体重的重量),这是消费量。
    5. 在孕前饮酒阶段完成权衡大鼠和计算平均乙醇消费ption并为整个组的标准偏差。除去大鼠的量意味着消耗大于1个标准差以上或以下基团从研究意味着减少怀孕期间在自愿饮用的可变性。
    6. 分配剩余的大鼠要么使得孕前饮酒水平匹配尽可能为两组糖精控制或PAE的条件。
  6. 在1-14天对每个雌性大鼠与一个成熟的男性饲养员。雌性大鼠在繁殖期不消耗乙醇。确认妊娠阴道塞的存在下,权衡雌性大鼠,并分别容纳她。这被定义为妊娠天1.(可选)离开雌性大鼠与男性饲养员长达5天,之后从研究去除女性。
    注:由于怀孕期间乙醇消费始于妊娠期第1天的检查10:00小时的阴道塞的存在应该执行在此之前的时间。
  7. 提供乙醇或糖精溶液为每天4小时(1000到1400小时),进行妊娠的持续时间。
    1. 自妊娠第1天提供的雌性大鼠与0%或5%的乙醇和基于该组指配在自来水0.066%糖精溶液。确保0%乙醇溶液提供到糖精对照大鼠的体积相匹配的由乙醇大鼠消耗5%乙醇溶液的平均体积。在每届会议结束量化的乙醇溶液(每公斤体重重)或糖精被消耗的数量。
    2. 称取大鼠水坝每周评估孕妇体重增加。
    3. 提供食物和自来水在任何时候,包括饮用水会议。
    4. 停止乙醇暴露过程时,后代是天生的。录制现场幼崽和短重的数量在出生。指定诞生之日起为0日龄。
    5. 剔除垃圾约2-3日龄10只。尝试吨Ø维持男性与女性的动物在每个垃圾相等比例。如果这是不可能的,剔除至10幼仔与男性和女性的不等号。
    6. 记录的小狗出生的权重后2-3天。
    7. 在断奶约21-24日龄和房屋同性配对的动物从相同的产前治疗条件的动物。不要使用超过1-2只从每个实验每窝以限制潜在的垃圾影响。

2.社会行为

  1. 获取和准备所有必要的材料和设备。
    1. 获得社会互动的装置。用的腔室与材料构成一个敞开的顶部,易于清洗和消毒。该装置的前部,应覆盖有刚性透明塑料(〜2毫米的厚度)进行拍摄。行的内壁和地板用透明塑料(〜2毫米厚),以帮助清洁和气味控制。代替反射镜沿着背面内部わLL以帮助分析。
      注意:对于该代表性数据这里报告的自定义腔室(95厘米长×47厘米宽×43厘米高),具有开放的顶部和刚性透明塑料(2毫米厚)覆盖所述装置的内部侧面和地面使用。镜子被置于沿后壁。的具体尺寸和材料都没有对社会行为的测量关键的,然而,我们建议的尺寸足够大,以确保真正的社会互动可以从其他的行为区分开来。也就是说,该装置应足够大,使动物并不总是接近彼此。
    2. 获取摄像机能低或无光照条件下拍摄,因为所有的拍摄时,很少或没有环境光在可见光谱范围内进行的。确保相机具有高分辨率的红外光谱范围内,但是,能够记录所有的相机在其本土黑暗条件下夜间模式或用另外的红外照明就足够了。
    3. 该装置的周围的位置的红外照明器,以改善该视频记录装置的照明。
    4. 获得实验室级木片(白杨芯片)。
    5. 得到一种刷子,簸箕,二氧化氯和异丙醇(70%)用于清洁会话和气味控制之间的装置。
  2. 设备驯化和社会行为
    1. 在实验的这一阶段,使成年大鼠是年龄至少90天测量。
    2. 此前每一届删除任何树林芯片,擦拭干净设备用异丙醇控制会话之间的气味,并提供新鲜的木屑。确保该木片完全覆盖该装置的底部。用适当的试剂清洗和消毒的装置中,诸如二氧化氯,是必要的。
    3. 连续三天,把动物和笼子的队友进入腔室30分钟,以适应动物到装置。在适应会议室的所有灯都关掉。
    4. 在第三次会议驯化的房子年底分别在新笼子新鲜的床上用品,食物和水24小时的动物来激励社会交往。
    5. 在动物后,次日24小时创纪录的社会交往分离。
      1. 从该装置中删除木屑,清洁和消毒用二氧化氯,用异丙醇擦拭,以控制气味,并取代在会议之前的木片。
      2. 定位一个或多个摄像机来记录的相互作用。位置的至少一个照相机,在装置的前部,以便在该装置的后壁的反射镜可以提供用于分析的其他视角。
      3. 检索动物一次并保持动物在摄像机前面,使得皮毛图案的独特功能可以注意到。这些识别特征毛发可用于在分析过程中,而不是人为地标记的动物区分的影响。
        注:由于啮齿动物社会交往的许多方面涉及嗅觉信号和闻到的合作伙伴,无论应避免可能引进国外气味。 Long-Evans大鼠通常具有可被利用来区分任何给定的一对动物的皮毛图案的一些特征。对于其它菌株( 例如 ,Sprague-Dawley大鼠)的替代方法,如标记用无味染料尾部也可以使用。认识到,许多感兴趣的行为是朝向具体的目标是非常重要的( 例如 ,肛门生殖器嗅探定向尾部的根部附近,冲着颈部,或朝向侧面或腹部侵略性攻击的颈背嬉戏攻击)。标志着动物接近尾部远离感兴趣这些目标的前端被推荐。
      4. 至少12分钟的社会互动的录像。
      5. 监测动物的整个会话战斗。如果可能的话,观看经由显示器或窗口中的动物,以便实验者是不是在会话期间的房间。
        注:战斗一直与成年大鼠的研究很少观察到的,但是,动物应该在整个会话监测。会议应,如果有过多的打斗或者不再有伤害或伤害的迹象的动物。
  3. 行为编码和分析。
    1. 找出感兴趣的下列行为按照以前的工作与PAE 1,18。量化的持续时间,频率和延迟下列行为之一的第一次出现;摔跤(包括钉扎),拳击,爬行(渡)过/合作伙伴下,肛门生殖器嗅,合作伙伴的身体(身体嗅探)等嗅探,相互理(伙伴的修饰),饲养和嗅探/挖木片。每种行为的例子是说明D在这篇文章中的视频组件。
    2. 量化来自视频感兴趣的社会行为。获得的频率,总的持续时间和延迟,以第一个实例为每个感兴趣的行为。
      注:获得这些措施可以手动实现,然而,使用数字化视频的计算机化分析这些措施量化值得推荐。一个MATLAB(www.mathworks.com)脚本播放视频和行为的定量是作为补充本文。
    3. 编码被结束对所有的大鼠后生成的持续时间,频率和延迟数据与统计软件包进行分析。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

以上的许多育种轮的过程中雌性大鼠的乙醇条件一致喝平均约2.1克/公斤的每4小时饮用会话乙醇。鼠水坝引入饮用管后的第一个15至30分钟期间消耗大约一半的四个小时的总的,产生了峰值母体血清乙醇浓度为约60毫克/分升,在45分钟的时间点测量。在剩余3.5小时的饮用期间,他们继续消耗5%乙醇0.4克/公斤体重/小时的低,但相对稳定的速率。自愿乙醇消费的这种水平和模式,对孕妇体重增加,后代出生体重,产仔数,孕产妇保健,胎盘湿重,重的后代在行为测试,或全脑,海马或小脑湿重没有显著影响。

代表性的手段和男性saccharin-和乙醇暴露大鼠中小企业对每个行为衡量一个再以表1所示,这些数据是从现有的实验合并并包括16男性为每个产前处理条件。所有动物配对与来自相同产前处理条件的合作伙伴。在雌性动物的社会行为的鲁棒酒精相关的改变并没有在使用这些程序1,然而,在雌性社会行为醇相关的差异已经使用其它程序15,23记载我们的研究中被观察到。方差(方差分析)的独立单因素分析在SPSS版本进行。 21适用于Macintosh透露,男性酒精暴露大鼠有摔跤的显著高于时间[F(1,30)= 19.12]和频率[F(1,30)= 6.80]和延迟降低摔跤的第一个实例[F( 1,30)= 9.41]。乙醇暴露老鼠也花了更少的从事生殖器时间嗅[F(1,30)= 5.17]。

1A。频率 SAC PAE
摔跤* 2.00(0.58) 8.00(2.23)
拳击 1.81(0.80) 3.56(1.47)
跨越上/下 1.06(0.48) 1.00(0.29)
肛门嗅探 6.25(1.20) 3.75(0.73)
身体嗅探 19.75(1.64) 18.56(2.06)
相互理 2.31(0.93) 0.75(0.27)
饲养 56.50(5.39) 56.06(5.40)
挖/嗅嗅床上用品 32.06(6.03) 30.06(5.27)
1B。持续时间(秒) SAC PAE
摔跤** 9.14(2.31) 39.81(6.62)
拳击 2.55(1.43) 3.81(1.62)
跨越上/下 0.83(0.39) 1.03(0.27)
肛门嗅探* 11.21(2.10) 5.69(1.22)
身体嗅探 27.21(2.33) 27.09(3.73)
相互理 13.50(5.68) 3.82(1.79)
饲养 120.31(13.32) 121.48(12.13)
挖/嗅嗅床上用品 119.59(24.45) 109.15(21.41)
1C。潜伏期(秒) SAC PAE
摔跤** 430.75(50.51) 209.98(51.25)
拳击 569.52(48.14) 525.63(74.75)
跨越上/下 544.4(65.21) 429.01(75.78)
肛门嗅探 107.68(39.35) 164.31(44.09)
身体嗅探 22.77(6.14) 16.80(3.21)
相互理 471.44(70.82) 588.52(48.47)
饲养 20.92(7.65) 11.94(1.20)
挖/嗅嗅床上用品 76.78(25.78) 117.66(44.64)

表1:平均值(+ SEM)频率(1a)中 ,持续时间(1b)和延迟到第一次出现(1c)中的社会互动会话saccharin-(SAC)中定量每种行为和产前醇暴露(PAE)大鼠( N =每次产前治疗1组6)。 [* P <0.05,** P <0.005]

18。在本示例中,箱M的测试,检验等方差无法计算,因为自变量的数量大于病例数(5:1的比例通常推荐)。判别函数透露群体和预测之间有显著的关联,占集团变异性74%。结构矩阵的分析表明摔跤(0.470),而延迟的时间,以摔跤的第一次出现(-0.330)的显著的预测。摔跤(0.280)和生殖器的持续时间嗅探(-0.244)计数(频率)小幅走软的预测。交叉验证的分类结果显示,总体而言,例的71.9%被正确分类。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

此处所描述的产前酒精暴露范例涉及在妊娠期间的乙醇自愿食用(5%V / V)的大鼠水坝。有许多用于在文献中,这相对于乙醇给药时间,剂量,时间和路线,以及所研究的物种不同表示脑发育过程中暴露的非人类的动物到乙醇的协议。虽然这里不提供彻底治疗各种暴露协议的优点,自愿饮用方法PAE的几个优点在本协议中描述的高亮显示。以前我们使用的流质饮食协议,常用于研究这方面的做法,在大鼠水坝消耗5%的乙醇作为主要的食物来源24的一部分。对这种方法的控制条件包括一对馈送基团,其中的热量摄入被轭到该乙醇消耗水坝和一组具有随意访问州城。在这里描述两组大鼠水坝(乙醇和糖精)消耗相同的大鼠饲料组变异性降低的营养和热量的摄入,并最大限度地减少压力的潜在变乱一个陌生的食物来源的强迫消费相关的自愿饮酒模式25。自愿饮用范例的这个特征也省去了一对馈控制与该液体的饮食方法,它提供了一些实用和伦理好处,包括减少在实验组的数目(从三个两个),数在研究中使用的动物,以及相关的成本来执行研究。自愿乙醇消费量超过产量的5%乙醇的流质饮食的协议,这可能合理预期同样减少变异在PAE后代观察观察指标观察变少饮酒水平的4小时的间歇曝光模式。由于血液乙醇conce实现了与任何协议ntrations是重要的量化和进行通信,母体血清的乙醇浓度的测量应定期进行( 例如 ,每年一次),以确保可比较的BACs正在跨越育种轮来实现。由于对产前应力和乙醇曝光之间相互作用的可能性应在女性的量,后代在随后的研究中不使用的一个独立的队列来执行这些措施(见参考文献26)。重要的是要认识到,峰血清的乙醇浓度的饮用管被引入后会发生约45-60分钟。代替从生产实验后代的水坝BAC的,要与相关成果的措施是最有用的措施是在怀孕期间大鼠大坝的日常消费的乙醇。然而,限制饮酒大鼠水坝的范围内,平均为集团的一个标准偏差可能会限制任何有意义的相关betwEEN乙醇消耗和给定的测量结果。最后,孕前饮酒评价是用来识别老鼠喝的饮用水协议后续阶段所需的水平。乙醇曝光模式这方面也保证了所有母鼠怀孕,这更准确地模拟在饮酒人的行为是不太可能在怀孕期间开始有饮酒的经验之前。

几个额外的方法问题,并涉及到酒精暴露范式告诫应予以考虑。此处所描述的自愿饮用PAE范例发生在整个妊娠发展,这在大鼠大致对应于妊娠发展在人体中的前两三个月。在曝光期间出生后早期发展是由许多实验室用来模拟孕晚期人类等价(见例如 ,参考文献27)。此外,我们注意到,这里介绍的方法代表了一种慢性曝光协议(大鼠水坝每天喝)。重要的是,正是定时暴露于较高水平的醇的(〜287毫克/分升)限制在15天的妊娠也已经显示出改变的社会行为15。这里提出的范例涉及自愿酒精消费由鼠水坝,因此,存在可以使用这种方法来实现血液乙醇浓度的范围有限。实现更高的血液酒精浓度需要接触其他方法( 灌服,注射,蒸汽曝光)。重要的另外一点是关于潜在的孕产妇保健的改变,可能复杂化与产前乙醇暴露相关行为影响的解释。为了解决这个问题,孕产妇保健孕期评估应当定期进行评估。用在这里的长埃文斯大鼠28中描述的程序已经发现适量饮酒对孕产妇护理期间没有影响。评估是否在产妇护理(见参考文献29)的行为指标的变化,然而,最初应,此后定期评估,尤其是当来自该方法的偏离这里描述,包括被利用的物种和动物的菌株,或更高浓度的乙醇。

此处所描述的行为的程序已产生可靠的改变在成年雄性大鼠胎儿大脑发育1,18,30期间暴露于醇的中等水平的社会行为(摔跤和调查)的具体方面。这里定量行为基于一个大的身体现存文献31到目标伙伴定向行为( 例如 ,摔跤,调查)和其他行为朝向环境( 例如 ,饲养,挖掘),可以由的方式很容易地测量被选定视频分析。判别分析表明,增加摔跤提供人之间的最佳歧视cohol暴露和糖精暴露鼠之间的广泛的社会和非社会行为变量18。重要的是要指出的是,还没有被使用这里描述1所述的方法观察到的PAE的雌性大鼠在社会行为的作用是很重要的,虽然性的主效应已经报道了数依赖的措施,包括肛门生殖器嗅探(雌性>雄性),身体嗅探(男>女),摔跤(男>女),拳击(男>女)。

虽然摔跤已被证明是由温和的PAE改变社会行为的主要方面中,包含其他行为的是用于建立的行为影响的选择性和排除广义行为缺陷重要。该组的行为这里量化的决不是详尽的。应在前期工作中选择感兴趣的行为,以捕捉在一组给定数据的观察到的作用的整体图案。这是意料之中ticularly重要的,如果不同的酒精暴露范式,或参数,被用作变化过程可以合理地预期产生不同的行为结果。除了 ​​这里描述,初步评估一组行为,包括咬,抓(个体经营),全面梳理序列,截断疏导序列(表示焦虑)的更广泛的行为,“侧方”显示器32,33,身体摇晃,追逐,并游戏行为34-37建议。观察在6-12成对动物应足以确定何为区分醇暴露从非暴露的动物。

同样重要的是要考虑到摔跤,取决于年龄测量时,可以反映真正的攻击行为或播放行为。腹外侧额叶皮层的大鼠,其已被链接到中度的社会行为1,18,30 PAE的影响,导致increa的早期病变SED游戏行为38。在大鼠,期间断奶后各地日龄30-40 33,34的发展起到的行为峰和下降的动物接近成年。当到成年6,16,23前测量,并可能影响在其中起随着年龄的行为,降低利率大脑发育过程中酒精暴露改变游戏行为。由于打法和攻击行为的形貌相似明确的区分可能是难以实现的。在以前的研究中,突出的行为指标侵略,如战斗或咬,没有在中等PAE大鼠观察。然而,更多的行为指标可以提供关于这些行为18分的线索。例如,攻击冲着颈背,俏皮攻击的主要目标,很少发生在成年大鼠PAE 18。与此相反,攻击朝向臀部,非顽皮攻击39靶,观察莫尔ê频繁,这表明PAE有关增加摔跤反映的侵略,而不是发挥。如果社会行为到成年或播放行为是突出在成年动物的行为之前测游戏行为应该被纳入分析。对于游戏行为分析的详细方法由希姆莱等人 35描述

最后,要注意使用这里描述可由伴侣动物的选择的影响的方法,社会行为是很重要的。在这里提出的有代表性的结果动物配对与来自相同产前处理条件1,18-熟悉动物(笼配合)。对于该选择的理由主要是根据数据表明外壳的对照动物用乙醇暴露大鼠改变在对照大鼠14社会行为,以及来自我们实验室类似可靠未发表的观察结果。这些影响可能会complic在社会行为吃了识别和解释PAE相关改动。此处描述的用于社会行为的量化方法可以,但是,被施加到社会的伙伴,其中有几个可能性,包括使用非治疗伴侣是来自既不处理条件1的源的任何变化,使用伙伴动物从相同的处理条件(如这里所述),或从不同的处理条件的伴侣动物。此外,伙伴动物的熟悉程度可以被操纵以影响社会互动1。的对方的条件和有关公共住宅,性别和曝光范例其他变量的选择可以根据最符合的特定实验室科学目标,同时仍然利用的基本程序对这里所描述的社会行为的定量。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Saccharin sodium salt hydrate Sigma S1002
190 proof ethanol Sigma 493538
Beaded glass drinking tubes Fisher 14-955K
Natural rubber white #4 stopper one hole Plasticoid LSG4M181
1" bend tubes-ball point Ancare TD-199-3"
Paper rulers N/A N/A www.vendian.org/mncharity/dir3/paper_rulers
Apparatus for social interaction Custom built N/A 95 cm X 47 cm X 43 cm
Video cameras N/A N/A Capable of recording low/no light conditions
Infrared illuminators Vitek VT-IR1-12
Teklad laboratory grade sani-chips Harlan 7090A
Brush and dustpan N/A N/A
Isopropyl alcohol Sigma W292907
Chlorine Dioxide (1.5 mg Tablets) Quiplabs N/A Prepare per manufacturer's recommendation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Hamilton, D. A., et al. Prenatal exposure to moderate levels of ethanol alters social behavior in adult rats: Relationship to structural plasticity and immediate early gene expression in frontal cortex. Behav. Brain Res. 207 (2), 290-304 (2010).
  2. May, P. A., et al. Approaching the prevalence of the full spectrum of Fetal Alcohol Spectrum Disorders in a South African population-based study. Alcohol. Clin. Exp. Res. 37 (5), 818-830 (2013).
  3. Chasnoff, I. J., Wells, A. M., Telford, E., Schmidt, C., Messer, G. Neurodevelopmental functioning in children with FAS, pFAS, and ARND. Journal of Developmental and Behavioral Pediatrics. 31 (3), 192-201 (2010).
  4. Disney, E. R., Iacono, W., McGue, M., Tully, E., Legrand, L. Strengthening the case: Prenatal alcohol exposure is associated with increased risk for conduct disorder. Pediatrics. 122 (6), E1225-E1230 (2008).
  5. Kelly, S. J., Goodlett, C. R., Hannigan, J. H. Animal models of fetal alcohol spectrum disorders: Impact of the social environment. Dev Disabil Res Rev. 15 (3), 200-208 (2009).
  6. Kelly, S. J., Day, N., Streissguth, A. P. Effects of prenatal alcohol exposure on social behavior in humans and other species. Neurotoxicol. Teratol. 22 (2), 143-149 (2000).
  7. Thomas, S. E., Kelly, S. J., Mattson, S. N., Riley, E. P. Comparison of social abilities of children with fetal alcohol syndrome to those of children with similar IQ scores and normal controls. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 22 (2), 528-533 (1998).
  8. Conry, J. Neuropsychological deficits in Fetal Alcohol Syndrome and fetal alcohol effects. Alcohol. Clin. Exp. Res. 14 (5), 650-655 (1990).
  9. Streissguth, A. P., et al. Fetal Alcohol Syndrome in adolescents and adults. JAMA-Journal of the American Medical Association. 265 (15), 1961-1967 (1991).
  10. Streissguth, A. P., Barr, H. M., Sampson, P. D. Moderate prenatal alcohol exposure: effects on child IQ and learning problems at age 7 1/2 years. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 14 (5), 662-669 (1990).
  11. Valenzuela, C. F., Morton, R. A., Diaz, M. R., Topper, L. Does moderate drinking harm the fetal brain? Insights from animal models. Trends Neurosci. 35 (5), 284-292 (2012).
  12. May, P. A., et al. Prevalence of children with severe Fetal Alcohol Spectrum Disorders in communities near Rome, Italy: New estimated rates are higher than previous estimates. Int. J. Env. Res. Public Health. 8 (6), 2331-2351 (2011).
  13. Tunc-Ozcan, E., Ullmann, T. M., Shukla, P. K., Redei, E. E. Low-dose thyroxine attenuates autism-associated adverse affects of fetal alcohol in male offspring's social behavior and hippocampal gene expression. Alcohol. Clin. Exp. Res. 37 (11), 1986-1995 (2013).
  14. Middleton, F. A., Varlinskaya, E. I., Mooney, S. M. Molecular substrates of social avoidance seen following prenatal ethanol exposure and its reversal by social enrichment. Dev. Neurosci. 34 (2-3), 115-128 (2012).
  15. Varlinskaya, E. I., Mooney, S. M. Acute exposure to ethanol on gestational day 15 affects social motivation of female offspring. Behav. Brain Res. 261, 106-109 (2014).
  16. Meyer, L. S., Riley, E. P. Social play in juvenile rats prenatally exposed to alcohol. Teratology. 34 (1), 1-7 (1986).
  17. Royalty, J. Effects of prenatal ethanol exposure on juvenile play-fighting and postpubertal aggression in rats. Psychol Rep. 66 (2), 551-560 (1990).
  18. Hamilton, D. A., et al. Effects of moderate prenatal ethanol exposure and age on social behavior, spatial response perseveration errors and motor behavior. Behav. Brain Res. 269, 44-54 (2014).
  19. Kelly, S. J., Dillingham, R. R. Sexually dimorphic effects of perinatal alcohol exposure on social interactions and amygdala DNA and DOPAC concentrations. Neurotoxicol. Teratol. 16 (4), 377-384 (1994).
  20. Lugo, J. N., Marino, M. D., Cronise, K., Kelly, S. J. Effects of alcohol exposure during development on social behavior in rats. Physiology and Behavior. 78 (2), 185-194 (2003).
  21. Lugo, J. N., Marino, M. D., Gass, J. T., Wilson, M. A., Kelly, S. J. Ethanol exposure during development reduces resident aggression and testosterone in rats. Physiology and Behavior. 87 (2), 330-337 (2006).
  22. Kelly, S. J., Tran, T. D. Alcohol exposure during development alters social recognition and social communication in rats. Neurotoxicol. Teratol. 19 (5), 383-389 (1997).
  23. Mooney, S. M., Varlinskaya, E. I. Acute prenatal exposure to ethanol and social behavior: Effects of age, sex, and timing of exposure. Behav. Brain Res. 216 (1), 358-364 (2011).
  24. Savage, D. D., Becher, M., de la Torre, A. J., Sutherland, R. J. Dose-dependent effects of prenatal ethanol exposure on synaptic plasticity and learning in mature offspring. Alcohol. Clin. Exp. Res. 26 (11), 1752-1758 (2002).
  25. Rasmussen, D. D., et al. Chronic daily ethanol and withdrawal: 1. Long-term changes in the hypothalamo-pituitary-adrenal axis. Alcohol. Clin. Exp. Res. 24 (12), 1836-1849 (2000).
  26. Savage, D. D., et al. Effects of a Novel Cognition-Enhancing Agent on Fetal Ethanol-Induced Learning Deficits. Alcohol. Clin. Exp. Res. 34 (10), 1793-1802 (2010).
  27. Goodlett, C. R., Johnson, T. B. Neonatal binge ethanol exposure using intubation: Timing and dose effects on place learning. Neurotoxicol. Teratol. 19 (6), 435-446 (1997).
  28. Staples, M. C., Rosenberg, M. J., Allen, N. A., Porch, M. W., Savage, D. D. Impact of Combined Prenatal Ethanol and Prenatal Stress Exposure on Anxiety and Hippocampal-Sensitive Learning in Adult. 37 (12), 2039-2047 (2013).
  29. Champagne, F. A., Francis, D. D., Mar, A., Meaney, M. J. Variations in maternal care in the rat as a mediating influence for the effects of environment on development. Physiol. Behav. 79 (3), 359-371 (2003).
  30. Hamilton, D. A., et al. Patterns of social-experience-related c-fos and Arc expression in the frontal cortices of rats exposed to saccharin or moderate levels of ethanol during prenatal brain development. Behav. Brain Res. 214 (1), 66-74 (2010).
  31. Barnett, S. A. A study in behaviour: Principles of ethology and behavioural physiology displayed mainly in the rat. , (1963).
  32. Pellis, S. M., Pellis, V. C. Play-fighting differs from serious fighting in both target of attack and tactics of fighting in the laboratory rat Rattus-Norvegicus. Aggressive Behav. 13 (4), 227-242 (1987).
  33. Meaney, M. J., Stewart, J. A descriptive study of social-development in the rat (Rattus-Norvegicus). Anim. Behav. 29 (1), 34-45 (1981).
  34. Pellis, S. M., Pellis, V. C. The prejuvenile onset of play fighting in laboratory rats (Rattus norvegicus). Dev. Psychobiol. 31 (3), 193-205 (1997).
  35. Himmler, B. T., Pellis, V. C., Pellis, S. M. Peering into the dynamics of social interactions: measuring play fighting in rats. J. Vis. Exp. (71), e4288-e4288 (2013).
  36. Panksepp, J., Siviy, S., Normansell, L. The psychobiology of play : Theoretical and methodological perspectives. Neurosci. Biobehav. Rev. 8 (4), 465-492 (1984).
  37. Siviy, S. M., Panksepp, J. Sensory modulation of juvenile play in rats. Dev. Psychobiol. 20 (1), 39-55 (1987).
  38. Pellis, S. M., et al. The effects of orbital frontal cortex damage on the modulation of defensive responses by rats in playful and nonplayful social contexts. Behav. Neurosci. 120 (1), 72-84 (2006).
  39. Blanchard, R. J., Blanchard, D. C., Takahashi, T., Kelley, M. J. Attack and defensive behavior in albino-rat. Anim. Behav. 25 (3), 622-634 (1977).

Tags

神经科学,第94,侵略,酒精畸变,酒精相关的神经发育障碍,ARND,胎儿酒精谱系障碍,胎儿酒精中毒综合症,胎儿酒精综合症,FAS,社会交往
适度的产前酒精暴露在成年大鼠社会行为的量化
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Hamilton, D. A., Magcalas, C. M.,More

Hamilton, D. A., Magcalas, C. M., Barto, D., Bird, C. W., Rodriguez, C. I., Fink, B. C., Pellis, S. M., Davies, S., Savage, D. D. Moderate Prenatal Alcohol Exposure and Quantification of Social Behavior in Adult Rats. J. Vis. Exp. (94), e52407, doi:10.3791/52407 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter