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Medicine

Rat eterotopico addominale Cuore / Trapianti Single-polmone in una configurazione del volume-caricato

Published: May 29, 2015 doi: 10.3791/52418

Protocol

Tutti gli animali sono stati alloggiati e curati in conformità con le linee guida istituzionali per la cura e l'uso di animali da laboratorio nazionale e. Approvazione etica per questo protocollo è stato concesso dalla University of Comitato Animal Care della Columbia Britannica. Maschio, ratti Sprague-Dawley di peso compreso tra 300-450 g sono stati utilizzati per questo protocollo.

1. donatori Operazione

  1. Hanno circa 100 ml di cardioplegia (RT) in vaso cilindrico collegato alla (IV) tubi catetere endovenoso lungo da un rubinetto a 3 vie. Utilizzare un supporto per elevare il matraccio a circa 80 centimetri al di sopra della superficie operativa, consente la distribuzione cardioplegia per gravità.
  2. Per visualizzare in modo adeguato le strutture, utilizzare un paio di occhialini per la chirurgia o un microscopio da dissezione.
    NOTA: Al momento stiamo utilizzando un microscopio operatorio binocolo con 3.4 - 21.3X ingrandimento.
  3. Posizionare il donatore in una camera anestetico e indurre l'anestesia con 4-5% isoflurano. Trasferire il topo di una piattaforma operativa e mantenere l'anestesia da naso-cono con 1-2% isoflurano. Applicare veterinario unguento per gli occhi degli animali per prevenire la secchezza. Somministrare midazolam (2 mg / kg) intra-peritoneally con un ago da 25 G.
  4. Utilizzando tagliatori chirurgici, radere il donatore da xiphisternum a mandibola. Radere una piccola regione inguinale sinistra (per il successivo accesso IV). Applicare un prodotto depilazione per le superfici operative, attendere circa 5 minuti, e rimuovere i capelli con un pezzo di garza.
  5. Prep i siti chirurgici con una soluzione basata su clorexidina povidone-iodio o (usiamo solo clorexidina). Infiltrati i siti incisionali con 0,1-0,5% lidocaina per via sottocutanea.
  6. Fissare gli arti anteriori e degli arti posteriori a sinistra per la piattaforma operativa con del nastro adesivo, lasciando il arti posteriori destro libero per il monitoraggio della profondità dell'anestesia e dei segni vitali.
  7. Dopo aver verificato appropriato profondità dell'anestesia dal pedale pizzico, fare un'incisione nell'inguine piega a sinistra conun bisturi 22-blade. Per via smussa, esporre la vena femorale comune sinistra e ottenere l'accesso IV come segue:
    1. Ritrarre delicatamente il tessuto sovrastante la vena femorale, e cannulate la vena con un 24 G IV. Collegare il IV ad un breve tratto di tubo soluzione salina IV, e fissare il tubo in posizione con nastro adesivo.
      NOTA: La procedura per l'incannulamento venoso femorale nei ratti è descritto altrove da Jespersen e colleghi 14.
    2. Collegare una siringa da 10 ml di soluzione salina-riempita al tubo IV, e delicatamente aspirare sangue per assicurare il corretto posizionamento del IV.
    3. Iniettare 300-500 UI di eparina non frazionata attraverso il tubo IV, e successivamente lavare il tubo con 3 - 5 ml di soluzione fisiologica.
  8. Successivamente, tracheotomize il donatore come segue:
    1. Eseguire un'incisione mediana nei tessuti molli tra la tacca giugulare e della mandibola utilizzando un bisturi 22 pale. Penetrare la capsula della ghiandola tiroidea sulla linea mediana con Metzenforbici Baum, e separati i suoi lobi utilizzando scollamento.
    2. Utilizzando smussa, separare i muscoli cinghia del collo sulla linea mediana per esporre la superficie anteriore della trachea.
    3. Utilizzare una pinza curve per sezionare senza mezzi termini di un piano circonferenziale attorno alla trachea. Circondare la trachea con una cravatta di seta 4-0.
    4. Usando forbici iris, fare una incisione trasversale nella trachea anteriore, circa 5 millimetri inferiore alla cartilagine tiroidea. Introdurre delicatamente la cannula tracheale (a 14 G IV) e fissarlo con la cravatta di seta 4-0.
    5. Collegare la cannula tracheale di un ventilatore meccanico. Reindirizzare il flusso di ossigeno e isoflurano attraverso il circuito del ventilatore, e ventilare il donatore ad una velocità e il volume corrente previsto dal suo peso 13.
  9. Fare un'incisione sulla linea mediana del torace (con un bisturi 22-lama), estendendo l'incisione alla giugulare al di sotto del xipisternum.
  10. Rimanendo sulla linea mediana, Eseguire una sternotomia mediana con un cutter osso. Ritrarre i bordi dello sterno con un divaricatore autoritenuta. Inserisci il pericardio e cavità pleuriche.
  11. Eseguire un timectomia. E 'più facile per dividere prima senza mezzi termini il timo sulla linea mediana, e poi separarla dalle strutture circostanti utilizzando una combinazione di scollamento e tagliente.
    NOTA: L'origine delle arterie toraciche interne può essere ferito quando sezionare il timo dai bordi sternali superiori. Per prevenire il sanguinamento, clip emostatici possono essere applicate prima di rimuovere il timo in questi punti.
  12. Utilizzando forbici Metzenbaum e / o di un forte Lauer, sezionare peri-cavale grasso dalla vena cava inferiore (IVC). Assicurarsi che la IVC è relativamente priva di grassi e tessuto connettivo dalla giunzione cavo-atriale superiormente, inferiormente al diaframma.
  13. Utilizzando un forte Lauer, circonferenzialmente libera vena cava superiore (SVC) e circondare con una cravatta 4-0 seta.
  14. Avanti, sezionare ilsinistra vena cava libera da strutture circostanti, e legare esso prossimale e distale con 4-0 cravatte di seta. Resecare la parte intervenendo di cava per esporre l'arteria succlavia sinistra.
  15. Circonferenzialmente libera i vasi dell'arco aortico con un forte Lauer. Applicare clips chirurgiche prossimale e distale della arteria anonima, e dividerlo tra i clip. Lasciare l'arteria carotide comune sinistra e succlavia sinistra arteria un-ritagliato.
  16. Successivamente, cannulate la SVC con un catetere 24 G IV. Fissare il catetere con la precedentemente posizionato 4-0 cravatta di seta.
  17. Preparati per un raccolto trapianto ripiego, ma gentile.
  18. Utilizzando forbici affilate, dividere la IVC appena superiore alla superficie diaframmatica. Divide la SVC superiore al suo sito incannulazione, assicurando che le strutture delle vie aeree nei dintorni non sono feriti.
  19. Spegnere il ventilatore e staccare la cannula tracheale. Transetto la trachea prossimale.
  20. Afferrare la trachea sezionato con una pinza, e togliere il cuoree polmoni en-bloc. Ciò richiederà una leggera trazione con dissezione tagliente come il trapianto cuore-polmone è stato rimosso. Separare la trachea dall'esofago sottostante. Evitare lesioni dell'aorta discendente, in modo che una porzione lunga di esso rimane intatto dopo la raccolta.

2. Preparazione del cuore-polmoni Graft

NOTA: mentre il completamento di questa parte della procedura, un assistente dovrebbe essere anestetizzare il roditore destinatario e la preparazione per trapianto impianto.

  1. Posizionare il trapianto cuore-polmoni su garza chirurgica con la superficie anteriore del cuore rivolto verso il basso. Utilizzando dissezione tagliente, rimuovere eventuali residui di esofago, evitando lesioni alle vie respiratorie posteriori.
  2. Individuare l'aorta toracica discendente e inserire una punta smussata cannula 16 G. Fissare la cannula in posizione con un pareggio 4-0 in seta.
  3. Individuare i vasi dell'arco aortico, e applicare una clip chirurgico al succlavia sinistra. Lasciare la carotide sinistra un-tagliati per subsequent de-aerazione.
  4. Somministrare la prima dose di cardioplegia collegando il tubo cardioplegia alla cannula aortica 16 G. L'arteria carotide deve essere occluso temporaneamente con una pinza per garantire un'adeguata fornitura di cardioplegia.
    NOTA: Un vantaggio di avere la cannula aortica allegato è che cardioplegia può essere somministrato in modo continuo e / o periodicamente, se lo desideri. Per il dosaggio intermittente, di solito consegniamo cardioplegia ogni 10 - 15 minuti in 5 ml boli over 30 - 45 sec.
  5. Usando forbici Metzenbaum e / o un forte Lauer, sezionare grasso peri-aortico lontano dall'aorta. Assicurarsi che l'aorta è relativamente priva di grassi e tessuto connettivo della succlavia sinistra (arco distale) al suo sito cannulazione.
  6. Avanti, esporre il bronco principale di sinistra con un forte Lauer, e legare è prossimale con un pareggio 4-0 in seta. Transetto il bronco distale sinistra per la legatura con forbici iris. Eseguire un pneumonectomy lasciato legando polmonare sinistraarteria e vena con 4-0 cravatte di seta. Transect distale alla legatura e rimuovere il polmone sinistro.
  7. Come sopra, rimuovere tutte le altre lobi polmonari con l'eccezione del diritto lobi superiori e medie. Evitare ferendo la IVC nel processo di esecuzione lobectomie.
  8. Collegare il tubo cardioplegia alla cannula aortica e amministrare cardioplegia continuo mentre il destinatario è in preparazione. Posizionare il trapianto cuore-polmone in un contenitore sterile (ad esempio, un becher).

3. Destinatario Operazione

  1. Anestetizzare il destinatario secondo l'operazione donatore, sopra. Utilizzare veterinario pomata per proteggere gli occhi dell'animale da secchezza. Confermare anestesia spesso a pedale pizzico.
  2. Posizionare l'animale come per l'operazione del donatore, questa volta lasciando la zampa anteriore destra libera di monitorare i segni vitali e profondità dell'anestesia.
  3. Radere l'addome da xiphisternum a pene. Radere una piccola regione inguinale sinistra (per il successivo accesso IV). Applicare unaagente depilating le superfici operative, attendere circa 5 minuti, e rimuovere i capelli con un pezzo di garza.
  4. Prep i siti chirurgici con povidone-iodio o soluzione basata clorexidina-. Infiltrati i siti incisionali con 0,1-0,5% lidocaina per via sottocutanea.
  5. Tracheotomize e ventilare il destinatario come indicato sopra. In alternativa, mantenere il destinatario in anestesia naso-cono.
  6. Introdurre un catetere nella vena femorale come descritto sopra. Iniettare 300-500 UI di eparina non frazionata attraverso il tubo IV, e successivamente lavare il tubo con 3 - 5 ml di soluzione fisiologica.
  7. Eseguire una laparotomia facendo una incisione addominale mediana con un bisturi a lama da 22 xiphisternum a pene. Ritrarre la parete addominale con un divaricatore di auto-mantenimento. Avanti, ritrarre le viscere superiormente e per il lato sinistro del topo. Avvolgere in caldo, garza imbevuta di soluzione salina.
  8. Esporre l'aorta addominale IVC e da forte dissezione attraverso la sovrastante regrasso tro-peritoneale.
  9. Avere un morsetto nave curvo disponibili e pronti.
  10. Circonferenzialmente liberare l'IVC e dell'aorta prossimale e distale e circondare con 4-0 cravatte di seta. Ci dovrebbe essere di circa 2-3 cm di spazio tra questi siti.
  11. Applicare con cura il morsetto nave curvo, in modo che una porzione sufficiente sia IVC e dell'aorta sono esposti sopra le ganasce del morsetto.
  12. Fare un'incisione nella parete anteriore della IVC con un ago 25 G collegato ad una siringa di soluzione salina 1 ml. Estendere l'incisione con le forbici Potts in base alla lunghezza del donatore IVC orifizio.
  13. Rimuovere il trapianto cuore-polmone dal suo contenitore e scollegarlo dalla cardioplegia. Posizionare l'innesto nell'addome del destinatario in una posizione ottimale per eseguire l'anastomosi venosa.
    NOTA: L'innesto cuore-polmone alla fine sarà orientata leggermente obliquo, con la punta apice verso l'addome di sinistra quadrante inferiore.
  14. Fissare il taccoe punta estremità della anastomosi con 9-0 sutura in nylon. Fare un nodo sicuro ad ogni estremità, lasciando l'ago di un lungo braccio di sutura, e una breve fine di sutura per essere legato a un secondo momento. Somministrare una dose di cardioplegia.
  15. In modo esecuzione, completa la metà della linea di sutura e cravatta al braccio di sutura breve opposte. Somministrare una dose di cardioplegia.
  16. Completa l'altra metà della linea di sutura e legarlo giù. L'anastomosi venosa è completo. Somministrare una dose di cardioplegia
  17. Orientare il trapianto cuore-polmone con puntamento apice del cuore verso l'addome di sinistra quadrante inferiore. Assicurarsi che l'anastomosi venosa non sia piegato o attorcigliato.
  18. Valutare la lunghezza dell'aorta donatore che sarà richiesto per raggiungere l'aorta destinatario, mantenendo sia IVC e anastomosi aortica in configurazioni tension-free e non-piegati.
  19. Dividete l'aorta discendente (distale succlavia sinistra) con una forbici iris.
  20. Fai incision nella parete anteriore dell'aorta destinatario con un ago da 25 G collegato ad una siringa di soluzione salina 1 ml. Estendere l'incisione con le forbici Potts in base alla lunghezza dell'orifizio aortico donatore.
  21. Ancorare la punta (aspetto superiore) dell'aorta donatore al ricevente aorta usando una sutura 9-0 nylon. Quindi, passare l'ago al mediale dell'aorta e completare la metà delle anastomosi in esecuzione moda.
  22. Al tallone del anastomosi aortica, invertire l'orientamento della linea di sutura (una transizione nella direzione di cucitura), e completare la metà laterale della anastomosi in esecuzione moda.
  23. Rimuovere lentamente il catetere IV nel SVC, e legare l'SVC con una clip chirurgica.
  24. De-air l'aorta individuando il non-ritagliato sinistra arteria carotide comune. Tenere aperta l'arteria, in posizione verticale che permetterà all'aria di essere liberamente evacuato.
  25. Brevemente aprire le ganasce della pinza vaso curvo e consentire l'arteria carotide sanguinare (de-air) per 2-3 sec. Riapplicare il morsetto nave.
  26. Applicare una clip chirurgica alla carotide. Rimuovere la fascetta vaso curvo.
  27. Verificare la presenza di emorragie alle linee di sutura. Se presente, applicare lieve compressione con garza o riparazione con una lunghezza di 9-0 sutura di nylon (a seconda della gravità del sanguinamento).
  28. Il cuore del donatore dovrebbe riprendere battendo in pochi minuti.
  29. Prestare particolare attenzione ai segni vitali del destinatario, profondità dell'anestesia, e amministrare il volume rianimazione, se necessario.
  30. A seconda dei punti finali sperimentali, o chiudere l'addome dell'animale e farlo recuperare da anestesia, o prepara l'animale per la valutazione cardiovascolare.
    NOTA: Gli esempi di valutazione del trapianto sono in misure in vivo di emodinamica in funzione del carico e indipendente dal carico, misure in vitro della funzione in Langendorff e modalità di lavoro, e il cuore (in chirurgia sopravvivenza) ecocardiografici o indagini di risonanza magnetica.
  31. Alfine degli esperimenti terminali acuti, gli animali sono eutanasia per dissanguamento.

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Representative Results

La tecnica HAHLT sopra descritta è molto tecnico e richiede grande attenzione ai dettagli. Tabella 1 evidenzia alcuni dei fattori chiave associati con successo contro le procedure fallimentari, e può essere utilizzato come una guida per la risoluzione di problemi tecnici.

Dopo l'aorta destinatario è sbloccata, l'innesto arterie coronarie dovrebbero essere considerati a riempirsi di sangue ossigenato. Di conseguenza, il miocardio dovrebbe diventare rosa e ben irrorato. Negli esperimenti tecnicamente successo, il cuore inizia a battere poco dopo trapianto riperfusione. L'innesto deve essere lasciato in uno stato scaricato (con ricevente IVC bloccato) per un periodo di almeno 20 - 30 minuti per consentire il recupero funzionale. In seguito a questo, le condizioni di carico del innesto può essere modificato per soddisfare scopi sperimentali. Ulteriori misure quantitative della funzione del trapianto (e un esito positivo) possono essere impiegate, se lo desideri. Come indicato nel protocollo, in vivo in vitro funzionali, nonché ecocardiografica e ricerche MRI può fornire tali informazioni. figure 1 e 2 sono esempi di base in vitro e dati pressione-volume che possono essere derivate acutamente con questa metodologia-occlusione precaricare. Dati emodinamici di questi studi in grado di fornire agli investigatori la gittata cardiaca, stroke volume, volume della camera, la frequenza cardiaca, frazione di eiezione, elastanza telesistolico, e precarico lavoro ictus recruitable. Diversi altri parametri possono essere quantificati, come desiderato.

Figura 1
Figura 1. basali di pressione-volume di dati. Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.

La figura 1 mostra stampa di basedati ure volumi da una valutazione cuore in vitro di lavoro della funzione cardiaca. EDV, volume telediastolico; EDP, pressione telediastolica; ESV, volume telesistolico; ESP, pressione di fine sistolica.

Figura 2
Figura 2. precarico-occlusione pressione-volume di dati. Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.

La figura 2 mostra precaricare-occlusione dati pressione-volume da una valutazione del cuore in vitro di lavoro della funzione cardiaca. EDPVR, relazione pressione-volume telediastolico; ESPVR, relazione pressione-volume telesistolico.

Procedura di successo Procedura non riuscita
Donatore
Donatori di stabilità Stabile Instabile
Preparatorio Dissection Efficiente, Limited Inefficiente, eccessiva
Perdita di sangue Minimo Eccessivo
Tempo di espianto Ridotti al minimo Prolungata
Arresto cardioplegica Veloce Ritardato
Trapianto
Totale ischemica tempo <90 min > 90 min
Arresto cardioplegica Mantenuto Periodicamente Incompleto
Destinatario
Stabilità del destinatario Stabile Instabile
Preparatorio Dissection Efficiente Inefficiente
Pinza Volte <45 min > 45 min
Anastomosi Tempo <30 min > 30 min
Perdita di sangue Minimo Eccessivo
Graft De-aerazione Adeguato Insufficiente
Volume Rianimazione Adeguato Insufficiente
Riperfusione successo No
Ritorno di Stabile funzione cardiaca No

Tabella 1. Caratteristiche del successo Versus procedure HAHLT senza successo.

Tabella 1 </ Strong> fornisce esempi di fattori associati con successo e insuccesso donatore, trapianto, e le operazioni di destinatari.

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Discussion

Il successo con la tecnica descritta qui basarsi su diversi fattori. Key tra i quali sarà garantire la stabilità di entrambi i donatori e riceventi, adottando meticolosa tecnica operatoria che è sicuro e associata con una minima perdita di sangue, garantendo completo arresto cardioplegico con raffreddamento trapianto uniforme, riducendo al minimo il tempo ischemico totale, e adeguatamente de-onda l'innesto. Come riconosciuto in precedenza, la complessità tecnica della tecnica è il suo limite principale.

Abbiamo avanzato le tecniche HAHLT precedenti sotto diversi aspetti. Le modifiche descritte nelle operazioni di donatore e ricevente sono un mezzo di esecuzione necessarie fasi operative in modo controllato ed efficiente. Il protocollo di protezione miocardica descritto è un mezzo ideale di ridurre al minimo pregiudizio durante il periodo ischemico. Il risultato finale è un innesto HAHLT in cui geometria è stata ottimizzata, il pregiudizio è stato ridotto al minimo, e la funzione del trapianto intrinseca è stato preservito nella maggior misura possibile.

La tecnica sopra descritta produce un innesto HAHLT con condizioni ventricolare a caricamento dinamico e potenzialmente quasi fisiologici. Una volta che la tecnica è stato masterizzato, i permessi di configurazione trapianto completo di caratterizzazione vivo di funzione del trapianto. Come notato, le condizioni di precarico e postcarico possono essere modificati acuta o cronica, e del polmone del donatore possono essere acutamente nuovamente ventilato. Gli investigatori possono facilmente e in generale applicare questo modello allo studio di molte condizioni mediche, pur mantenendo la capacità di studiare la struttura e la funzione del trapianto.

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Disclosures

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Acknowledgments

Mark J. Kearns riceve sostegno da parte del personale medico del programma UBC Investigator (aggiudicati attraverso il Royal College dei Medici Chirurghi del Canada), e la UBC 4YF Dottorato Fellowship.

John H. Boyd è un Sanitorium associazione nazionale e Michael Smith Fondazione per la ricerca sulla salute Scholar. Finanziamenti attraverso CIHR. Gli autori desiderano ringraziare il Dr. M. Allard e Richard Wamboldt per la loro assistenza con l'installazione e manutenzione di apparecchiature di perfusione.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Celsior Cardioplegic Soution Genzyme The solution is kept on ice throughout the procedure. We prepare our own solution, with slight modifications.
Rodent Ventilator Harvard Apparatus Model 683
Vital Sign Monitor Nonin Model 9847V Displays SpO2 and heart rate.
IV Cannulae Jelco 3063 24 - 26 G x 3/4" cannulae.
IV Tubing CareFusion MP9259-C Short-length connector tubing (18 cm).
Surgical Clips Teleflex Medical 001204 Horizon titanium ligating clips.
Sutures Ethicon, Sharpoint LA54G, AK-0107 3-0 silk reel, and 9-0 prolene suture (single-armed, DR5 needle).
Surgical Instruments Not Applicable Not Applicable The instruments used are generic, and can be purchased from any surgical supply company.

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References

  1. Abbott, C. P., Lindsey, E. S. A technique for heart transplantation in the rat. Arch Surg. 89 (1964), 649-652 (1964).
  2. Ma, Y., Wang, G. Comparison of 2 heterotopic heart transplant techniques in rats: cervical and abdominal heart. Exp Clin Transplant. 9 (2), 128-133 (2011).
  3. Wiedemann, D., Boesch, F., Schneeberger, S., Kocher, A., Laufer, G., Semsroth, S. Graft function after heterotopic rat heart transplant with an isolated reperfused working heart: a methodic consideration. Exp Clin Transplant. 10 (2), 154-157 (2012).
  4. Chen, Z. H., Xia, S. S. The technique of heterotopic heart-lung transplantation in the rat. J Tongji Med Univ. 6 (2), 67-70 (1986).
  5. Ibrahim, M., Navaratnarajah, M., et al. Heterotopic abdominal heart transplantation in rats for functional studies of ventricular unloading. J Surg Res. 179 (1), e31-e39 (2013).
  6. Asfour, B., Hare, J. M., et al. A simple new model of physiologically working heterotopic rat heart transplantation provides hemodynamic performance equivalent to that of an orthotopic heart. J Heart Lung Transplant. 18 (10), 927-936 (1999).
  7. Figueiredo, J. -L., Nahrendorf, M., Sosnovik, D. E., Weissleder, R. MRI of a novel murine working heart transplant model. Circ Heart Fail. 2 (3), 272-274 (2009).
  8. Wen, P., Wang, X., et al. A simple technique for a new working heterotopic heart transplantation model in rats. Transplant Proc. 45 (6), 2522-2526 (2013).
  9. Didié, M., Biermann, D., et al. Preservation of left ventricular function and morphology in volume-loaded versus volume-unloaded heterotopic heart transplants. A.Am J Physiol Heart Circ Physiol. 305 (4), H533-H541 (2013).
  10. Galiñanes, M., Zhai, X., Hearse, D. J. The effect of load on atrophy, myosin isoform shifts and contractile function: studies in a novel rat heart transplant preparation. J Mol Cell Cardiol. 27 (1), 407-417 (1995).
  11. Yokoyama, H., Ohmi, M., Murata, S., Nakame, T., Tabayashi, K., Mohri, H. Proposal of a working left heart model with a heterotopic transplantation technique in rats. J Heart Lung Transplant. 14 (4), 706-712 (1995).
  12. Maruyama, T., Swartz, M. T., McBride, L. R., Pennington, D. G. Working heart model of heterotopic heart-lung transplantation in rats. J Thorac Cardiovasc Surg. 107 (1), 210-215 (1994).
  13. Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Bátkai, S., Kass, D. A. Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats. Nat Protoc. 3 (9), 1422-1434 (2008).
  14. Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements. J Vis Exp. (59), 3496-3410 (2012).
  15. Habertheuer, A., Kocher, A., et al. Innovative, simplified orthotopic lung transplantation in rats). J Surg Res. 185 (1), 419-425 (2013).

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