Introduction
Estudos de neurônios diferenciadas in vitro a partir de humanos células estaminais pluripotentes induzidas (hiPSCs) por nós 1 e outros 2,3 de expressão de genes indicam que os neurônios hiPSC assemelhar fetal em vez de adulto tecido cerebral. Actualmente, os modelos baseados em hiPSC pode ser mais adequado para o estudo da predisposição para, em vez de funções tardias da doença, neurológica. Nós já relataram que uma fracção significativa do gene assinatura de esquizofrenia neurónios derivados de hiPSC é conservado em células derivadas de esquizofrenia hiPSC progenitoras neurais (NPCs), indicando que NPCs pode ser um tipo de células útil para o estudo das vias moleculares que contribui para uma esquizofrenia . Nós e outros relataram migração aberrante, aumento do estresse oxidativo e espécies reativas de oxigênio, a sensibilidade a estresses ambientais sub-limiar e função mitocondrial prejudicada na esquizofrenia hiPSC NPCs 1,4-6, bem como a diminuição neuronal conectividade e função sináptica em neurônios esquizofrenia hiPSC 5,7-10. Se os factores moleculares que contribuem para a migração aberrante e / ou stress oxidativo na esquizofrenia hiPSC NPCs também estão na base da conectividade neuronal reduzido na esquizofrenia neurónios derivados de hiPSC, NPCs poderia ser uma população neural robusto e altamente replicativo com que para estudar os mecanismos responsáveis pela doença. Além disso, porque pode-se gerar rapidamente grandes números de células e não precisam de esperar semanas ou meses para maturação neuronal, ensaios baseados em NPC são adequados para o estudo de coortes de pacientes e maiores são mais passíveis de rastreio de alto rendimento. Acreditamos que hiPSC NPCs pode servir como um proxy para as vias de desenvolvimento potencialmente contribuem para a patogênese da doença, como já foi demonstrado em desordens tão diversas como a esquizofrenia 1 e doença de Huntington doença 11.
Para diferenciar NPCs hiPSCs, neural inicial emprodução é conseguida através da inibição de dupla SMAD (0,1 mM e 10 mM LDN193189 SB431542) 12. Antagonizando BMP e TGF sinalização com estas pequenas moléculas, endoderme e mesoderme especificação é bloqueado, acelerar a diferenciação neuronal e levando à formação de rosetas neurais visíveis dentro de uma semana de chapeamento. Padronização neural ocorre no início deste processo, presumivelmente, no período de formação de rosetas neural e imediatamente a seguir. Na ausência de outros sinais, estas células neurais primitivas assumir um destino prosencéfalo como anterior-13. Imediatamente após a formação de rosetas neural, e contínuo ao longo da expansão NPC, NPCs frontais do cérebro são cultivadas com FGF2 8,14. Eles têm potencial linhagem dupla e podem ser diferenciadas de populações neurais de 70-80% neurónios III-tubulina-positivos e 20-30% de proteína glial fibrilar ácida (GFAP) -positivas astrócitos (Figura 1). A maioria dos neurônios do cérebro anterior hiPSC são VGLUT1-positivo, E por isso são presumivelmente glutamatérgica e aproximadamente 30% dos neurónios estão GAD67-positivo (GABAérgica) 8.
NPCs são rotineiramente passadas mais do que dez vezes in vitro, mantendo ao mesmo tempo perfis de diferenciação consistentes, e sem acumulação de anormalidades do cariótipo. Grupos têm relatado NPCs Passaging mais de 40 vezes 15, no entanto, descobrimos que mais de dez passagens, NPCs mostram aumento da propensão para a diferenciação de astrócitos. NPCs bem tolerar múltiplas Freeze-descongela e pode ser transferida para crescer como neurospheres simplesmente o cultivo em placas não aderentes. NPCs são eficientemente transduzidas por vectores virais, permitindo uma rápida avaliação das consequências moleculares e celulares da perturbação genética, e facilmente expansível para se obter material suficiente para estudos bioquímicos. Além disso, porque os vectores virais permitir robusta sobre-expressão e / ou eliminação de genes relevantes a doença, em qualquer controlo ou paciente derivado neural células, pode-se usar esta plataforma para testar o efeito de fundo genético nessas manipulações. Apesar de não ser adequado para sináptica ou ensaios baseados em atividades que exigem neurônios maduros, NPCs pode ser uma alternativa prática para muitas análises moleculares e bioquímicas diretas de células neurais derivadas de pacientes.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. hiPSC Diferenciação de células progenitoras neurais
- Crescer e expandir hiPSCs em células estaminais embrionárias humanas (HES) mídia (Tabela 1) co-cultivadas em um fibroblastos de rato embrionárias (MEF) camada alimentadora até grandes (mas subconfluentes) colônias estão prontos para a diferenciação neural através de um organismo embryoid (EB) intermediário (Figura 2). Condições de rotina cultura hiPSC estão bem descritos em outros lugares 16,17; resumidamente, hiPSCs crescer em meios de HES em uma camada de alimentação MEF até à confluência, em seguida passagem por via enzimática com colagenase (1 mg / ml em DMEM) e expandir cerca de 1: 3 a cada 7 dias.
- Para preparar as placas revestidas com poli-L-ornitina / laminina, placas de revestimento com 10 g / ml de poli-L-ornitina em água estéril para as superfícies de plástico (50 g / ml para as superfícies de vidro) e incubar a temperatura ambiente durante 3-24 h. Lavar pelo menos uma vez com água estéril e, em seguida, cubra com 5g / ml Laminin em PBS estéril a TA durante 3-24 horas.
NOTA: Se envolvido em plástico, as placas podem serarmazenados por até seis meses a -20 ºC. - No Dia 1, enzimaticamente levantar hiPSCs confluentes (geralmente cultivadas em MEFs, ou hiPSCs cultivadas em meios definidos como em Matrigel TeSR 18) a partir da placa de grandes colónias utilizando 1 mg / ml de colagenase IV em DMEM / F12.
NOTA: após 1-2 horas de incubação a 37 ºC, as colônias serão flutuando no prato. - Delicadamente, lave colônias hiPSC (por sedimentação, não centrifugação) 1-2x com DMEM / F12, ressuspender em 2 mL / poço de N2 / media B27 (Tabela 1) e transferir para pratos não-aderente de 6 poços (combinar 3 poços em 1 -bem) 19.
NOTA: Durante a noite, irá formar colônias flutuantes aglomerados esféricos denominados "corpos embrióides" (EBS). Esperar a morte celular substancial. - No dia 2, placas de inclinação e permitir EBS para resolver. Retire cuidadosamente a mídia e lavar uma vez com DMEM / F12 para remover detritos. Alimente com N2 / B27 meios suplementados com inibidores SMAD duplos (0,1M LDN193189 e 10M SB431542) 12
- Nos Dias 3-7, neuralization ocorrerá no contexto de dupla inibição SMAD; verificar que a EBS são redondos, mas não cística. Alimente EBs cada segundo dia com a mídia N2 / B27 suplementadas com 0,1 M LDN193189 e 10M SB431542.
- Nos dias 7-14, a seguir ao plaqueamento de EBs poli-L-ornitina / laminina placas revestidas, veja utilizando um microscópio de campo claro que rosetas neurais começam a aparecer dentro de poucos dias (caracterizado como aglomerados redondos de células neuroepiteliais com polaridade APICO-basal; A Figura 1). Continuem a alimentar EBs aderentes a cada segundo dia, com media N2 / B27 suplementado com 0,1 M LDN193189, 10M SB431542 e 1 g / ml laminina.
2. Harvest of Neural Rosetas
NOTA: Recomendamos que rosetas neurais ser enzymatically colhidas utilizando Reagente de Selecção Neural Rosette 20 ou reagente seleção similar. Embora rosetas neurais podem ser colhidos manualmente em 6 poços de poli-L-ornitina / laminina placa revestida, this metodologia leva treinamento intensivo para mestre, e, dependendo da habilidade do usuário, pode requerer uma segunda rodada de picking no dia 20 para enriquecer ainda mais para NPCs e empobrecem os tipos de células não-neuronais.
- Para selecção enzimática de rosetas neurais no dia 14, os meios de aspirado de EBs aderidas e adicionar 1 ml de reagente de selecção roseta neural por poço para uma placa de 6 poços. Incubar a 37 ºC durante 1 hora.
- Com uma pipeta P1000, remover suavemente enzima de cada poço. Adicionar 1 ml de DMEM / F12 por poço para lavar.
- Com um P1000, recolher o 1 ml de DMEM / F12 e rapidamente expelir o DMEM / F12 de volta para dentro do poço, separando assim as rosetas da placa. Recolha as rosetas em um tubo falcon.
- Pipetar mais 1 ml de DMEM / F12 e rapidamente em expulsar o mesmo para separar bem rosetas restantes. (Não triturar. Tente não quebrar agregados roseta). Recolha as rosetas neurais em um mesmo tubo falcon.
- Repita o passo 2.4, se necessário. Se rosetas não retirar prontamente, adicione more enzima e repetir o processo (passos 2,1-2,4)
- Girar células a 300 xg durante 3 min. Aspirar a lavagem, e re-suspender rosetas em 2 ml de meio de NPC (Tabela 1). Transferência de células (1: 1) em um poli-L-ornitina / laminina revestido placa de 6 poços.
- A partir Dias 15-21, as rosetas neurais irá expandir; rosetas de alimentação a cada segundo dia, com media NPC.
- Avaliar a qualidade das rosetas neurais e assegurar que as células do tipo fibroblasto planas não estão a expandir dentro da cultura.
NOTA: Se não-rosetas persistirem, a cultura NPC às vezes pode ser reaproveitado por picking o manual, selecionando apenas os melhores das rosetas escolhidos em Accutase. Dissociar 15 min a 37 ºC. Pellet, lavar e placa em meios NPC para 24 poços de poli-L-ornitina / laminina placa revestida.
3. Ampliação da Neural células progenitoras
NOTA: hiPSC NPCs podem ser cultivadas em qualquer Matrigel- ou poli-L-ornitina / laminina placas revestidas. Normalmente usamos Matrigel-placas de como eles podem ser preparados de forma mais rápida e com menor custo.
- Para preparar as placas revestidas com Matrigel, descongelar rapidamente e ressuspender uma alíquota congelada de 1 mg em 24 ml de Matrigel frio DMEM / F12 e distribuir imediatamente 2 ml para cada poço de duas placas de seis poços. Incubar durante pelo menos 1 h a 37 ºC.
NOTA: Matrigel necessita apenas de ser aspirado, não lavadas, imediatamente antes da utilização. - Alimente NPCs cada segundo dia e manter a densidade muito elevada ou eles vão diferenciar espontaneamente aos neurônios.
NOTA: NPCs Embora mais estabelecidas são tipicamente divididas 1: 4 a cada semana, NPCs muito baixos de passagem podem ser divididas 1: 2 como com pouca frequência quanto uma vez a cada duas semanas. - Para dividir, media primeiros aspirado e adicione 1 ml quente Accutase (1x) por poço de 6 poços. Incubar a 37 ° C por 10-15 min.
- Suavemente transferir células destacadas para um tubo de 15 ml contendo DMEM / F12 com tão pouco quanto possível a tensão mecânica. Não titulação em células enquanto enzima. Células de pellets por spinning a 1000 xg durante 5 min.
- Aspirar a lavagem, e re-suspender NPCs em ~ 1 ml de meio por poço original NPC de 6 poços.
NOTA: Esperar que um bem confluente de um de 6 poços prato tem 5-10.000.000 células; isto pode ser confirmado por contagem de uma aliquota de células 10l usando um hematocytometer antes da re-deposição. - Após re-suspensão, NPCs re-placa como NPCs, neurônios ou neurospheres. Para manter NPCs, placa aproximadamente 1-2 milhões de células por poço de uma placa de 6 poços. A eficiência de formação de neuroesferas podem variar entre experiências e as linhas celulares, mas em geral ocorre melhor se entre 200.000 e 1.000.000 células são semeadas por poço de um não-aderente placa de 6 poços; se ocorrer aglutinação das neuroesferas, reduzir o número de células semeadas. Para diferenciar a neurônios, placa de cerca de 200.000 células por poço de uma placa de 6 poços, substituindo media NPC com a mídia neurônio.
- Immunohistochemically validar cada linha NPC estabelecida. Uma vez que o material celular suficiente tenha sido expanded, NPCs de etiqueta com anticorpos para Nestin e SOX2. Linhas Validated NPC também devem ser diferenciadas em neurônios durante 4-6 semanas, e marcadas com anticorpos para III-tubulina e MAP2AB.
- Fixar as células em 4% de paraformaldeído em PBS a 4C durante 10 min. Permeabilizar NPCs à TA durante 15 min em 1,0% de Triton em PBS e, em seguida bloquear em 5% de soro de burro com 0,1% de Triton à TA durante 30 min.
- Incubar com anticorpo primário em 5% de soro de burro com 0,1% de Triton, durante a noite a 4C.
NOTA: Recomendamos os seguintes anticorpos: cabra anti-Sox2, 1: 200; nestina de murganho anti-humano, 1: 200; de coelho anti-βIII-tubulina, 1: 500; de ratinho anti-βIII-tubulina, 1: 500; de ratinho anti-MAP2AB, 1: 200. (Figura 2). - Após uma lavagem com PBS, as células incubar com anticorpos secundários conjugados com o anticorpo secundário adequado para cabra, ratinho ou coelho a 1: 300, em em 5% de soro de burro com 0,1% de Triton durante 1-2 horas à temperatura ambiente. Para visualizar os núcleos, células mancha com 0,5 ug / ml de DAPI (4 ', 6-diamidino-2-fenilindol) e, em seguida, montar com Vectashield.
4. NPC Transdução
- Use spinfection (centrifugação das placas de cultura de células na presença do vírus a 1.000 xg durante 1 hora) para aumentar a percentagem de células transfectadas 21. Aspirar media e substituir com a superexpressão relevante (ou controle) lentivírus (ou retrovírus), titulado para a multiplicidade desejada de infecção (MOI) (normalmente 1-10), diluída em meio NPC. Utilizar 1,5 mL de volume por poço de uma placa de 6 poços (ou um volume de escala apropriada para outros tipos de placas de cultura de tecido). Giram em 1000 xg e 37 ºC durante 1 hora em uma placa de centrífuga.
NOTA: O ideal é que a transdução de NPCs com lentivírus ou vetores retrovirais dentro de 1-2 dias de divisão. Seja usando vírus comerciais ou obtidos em laboratório, pode ser útil para titular adequadamente lotes de vírus com antecedência por diluição em série. (Figura 3). - Para reduzir celmorte lular, substituir a mídia dentro de 8 horas de spinfection.
NOTA: a integração virai e a expressão do transgene deve ser detectável dentro de 24 horas por meio de fluorescência de gene repórter. (Se o vírus não tem um repórter fluorescente, isso é mais difícil de avaliar; transfecção de sucesso pode ser melhor validada por immunoblot, imuno-histoquímica ou qPCR para produtos superexpressão.) Expressão completa pode demorar 3-7 dias; spinfections repetidas com vírus adicional pode ser necessário para aumentar a percentagem de células transfectadas. Spinfections recorrentes podem ocorrer diariamente, mas não precisa ser tão freqüente. Idealmente, se estiver usando um repórter fluorescente,> 80% das células devem ser rotulados.
5. Neurosphere Migration Assay
NOTA: As neuroesferas forma espontaneamente, após a dissociação enzimática de NPCs (por uma maneira idêntica à utilizada na expansão NPC - passos de 3,3-3,6), se as células são cultivadas em suspensão em meio de NPC.
- Em resumo, crescem dissociarNPCs d em media NPC para 48 horas em placas não aderentes, a fim de gerar neurospheres. (Figura 4).
- Para a migração neuroesfera, para preparar as placas de Matrigel frescos usando meios NPC frio, em vez de DMEM, numa placa de 96 poços, 1-2 h antes da colheita de neuroesferas. Não aspirar Matrigel dos poços.
- Conforme publicado originalmente para estaminais embrionárias derivadas de células neurospheres 22, escolher manualmente neurospheres NPC-derivados sob um microscópio, depois de lavar uma vez na mídia NPC para remover os restos celulares. Transferir uma neuroesfera a cada poço de uma placa revestida Matrigel de 96 poços.
- Adicionar mais 0,5 mg adicionais de Matrigel, diluiu-se em meios frios NPC, para as neuroesferas em cada placa de 96 poços.
- Centrar cada manualmente neuroesfera individual no meio da cavidade utilizando uma ponta de pipeta.
Nota: É importante escolher neurospheres de tamanho semelhante, a fim de reduzir a variabilidade nos resultados. - Permitir que a migração ocorra durante 48 horas e, em seguida, corrigir células wom paraformaldeído 4% e mancha com marcadores imunoistoquímicos desejados.
- Se a migração radial deve ser determinado, neurospheres fotografia em sua inteiramente usando um objetivo 4x microscópio. Excluir qualquer neuroesferas contacto com a borda do poço ou uma segunda neuroesfera a partir da análise.
NOTA: Se ocorrer a migração por mais de 48 horas, a migração radial resultante provavelmente vai ser muito grande para a imagem usando uma objetiva de 4x. - Medir a migração média de cada neuroesfera usando software NIH ImageJ (Figura 5). Isto pode ser feito usando qualquer um dos métodos de análise descritos abaixo:
- Migração radial:
- Traçar manualmente a aresta da migração de células usando a ferramenta de seleção à mão livre, em seguida, usar a função Measure (Ctrl + M) para calcular a área da forma resultante. Antes de medir a área de certificar-se de que a área está marcada na janela Definir Medidas encontrada na guia Analisar. Use avalor da medição da área e a equação para a área de um círculo (A = πr 2) para determinar o raio (exterior).
- Seguir a borda da neuroesfera original, medir a área e calcular o raio (interior) da mesma maneira. Calcular o total de migração radial como a diferença entre os raios interno e externo.
- A grande migração celular:
- Meça a distância percorrida dos cinco células mais afastadas da borda da neurosphere interior usando a ferramenta de seleção linear seguido pela Medida função (Ctrl + M).
- Migração radial:
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Rosetas neurais podem ser identificadas morfologicamente, utilizando um microscópio de campo claro, pela sua aparência característica como aglomerados redondos de células neuroepiteliais com polaridade APICO-basal (Figura 1). Embora NPCs são tipicamente cultivadas a uma densidade celular muito alta, imediatamente após a passagem em, ligeiramente soma em forma piramidal, e estrutura de neurites bipolar é visível (Figura 1D). NPCs validados expressam nestina e SOX2 na maioria das células, apesar de coloração III-tubulina é também visível em todas as populações de NPC, o que indica que alguma proporção de NPCs estão constantemente a iniciar a diferenciação neuronal dentro da cultura (Figura 1F). Os marcadores de células estaminais neurais, tais como SOX2 e PAX6, e progenitores neuronais do cérebro anterior, tal como TBR2, também são expressos em NPCs, enquanto que os marcadores do mesencéfalo, tais como Lmx1a Foxa2 e não são (Figura 1G-I). Uma proporção significativa de células de fibroblastos-like grandes e planas dentro uma população NPC indica que NPCs de baixa qualidade foram gerados, que não são susceptíveis de produzir grandes números de neurónios seguintes diferenciação neuronal (Figura 2).
Após a transdução de sucesso com um lentivírus de título elevado ou vector retroviral, maior do que 80% das células devem ser marcadas por o repórter fluorescente incluídas no vector (Figura 3). Geração Neurosphere deve produzir uma população de neuroesferas de tamanho relativamente homogéneo (Figura 4), que, com a alimentação regular, podem permanecer saudável em cultura durante aproximadamente uma semana. Migração Neurosphere ocorre robustamente em neuroesferas saudáveis (Figura 5), e NPCs hiPSC sofrer diferenciação rápida durante o curso de um ensaio de migração neuroesfera 1.
Figura 2. Validando NPC Lines. A alta qualidade (canto superior esquerdo) hiPSC NPCs Nestin express (vermelho) e SOX2 (verde). na maioria das células (núcleos corados com DAPI (azul)), enquanto a baixa qualidade (esquerda inferior) NPCs têm manchas de células SOX2-negativos e Nestin-negativos (à direita). Neurônios 4 semanas de idade diferenciadas de NPCs de alta qualidade expressar MAP2AB (verde) e III-tubulina (vermelho) (canto superior direito), mas aqueles diferenciada de NPCs de baixa qualidade não (canto inferior direito). 100x, bar escala de 100 m. Por favor, clique aqui para ver um maior version desta figura.
Figura 3. Transdução Viral de NPCs. Brightfield (topo) e fluorescente GFP (baixo) imagens de hiPSC NPCs antes (esquerda) e depois spinfection viral. 100x, bar escala de 100 m. Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4. Neurosphere Formação. Imagens de campo claro de NPCs aderentes (à esquerda) e neurospheres recém-formados (direita). 100x, bar escala de 100 m. Por favor, clique aqui para ver um larger versão desta figura.
Figura 5. Neurosphere Migração. AB. Imagens de campo claro de neurospheres antes (A) e depois (B) 48 horas de migração em Matrigel. 100x, bar escala de 100 m. CG. Imagens de captura de tela que demonstram a metodologia de análise de migração neural radial utilizando software NIH ImageJ. Clique em 'seleções à mão livre' na barra de ferramentas ImageJ (C). Seguir a extremidade mais distante das células migradas em torno das neuroesferas (D). Certifique-se de que a área está marcada na janela Definir Medidas (E). Use a função de Medida (Ctrl + M) (F). Trace a borda das neurospheres originais (G) e use a função Measure (Ctrl + M). As medições podem ser exportados para o Excel para análise. Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
| Mídia | Componentes |
| Media HES | DMEM / F12 (Life Technologies # 11330) |
| 20% KO-Serum Replacement (Life Technologies # 10828) | |
| 1x Glutamax (Life Technologies # 35050) | |
| 1x NEAA (Life Technologies # 11140) | |
| 1x 2-mercaptoetanol (1000x 55mm) (Life Technologies # 21985-023) | |
| 20ng / ml FGF2 (Life Technologies 13256-029) | |
| Meios de N2 / B27 | DMEM / F12 (Life Technologies # 10565) |
| 1x N2 (Life Technologies # 17502-048) | |
| 1x B27-RA (Life Technologies # 12587-010) | |
| Media NPC | DMEM / F12 (Life Technologies # 10565) |
| 1x N2 (Life Technologies # 17502-048) | |
| 1x B27-RA (Life Technologies # 12587-010) | |
| 20 ng de FGF2 / ml (Life Technologies) | |
| 1 mg / ml de rato natural laminina (Life Technologies # 23017-015) | |
| Media Neurônio | DMEM / F12 (Life Technologies # 10565) |
| 1x N2 (Life Technologies # 17502-048) | |
| 1x B27-RA (Life Technologies # 12587-010) | |
| 1 mg / ml de rato natural laminina (Life Technologies) | |
| 20 ng / ml BDNF (Peprotech # 450-02) | |
| 20 ng / mL de GDNF (Peptrotech # 450-10) | |
| 500 ug / ml de dibutiril-AMP cíclico (Sigma # D0627) | |
| 200 nM de ácido L-ascórbico (Sigma # A0278) |
Tabela 1. Meios receitas.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Nós descrevemos métodos pelos quais a diferenciar hiPSCs em NPCs, um tipo de célula neural em que uma fração significativa da assinatura gene de neurônios hiPSC derivados é conservada e que pode servir como um proxy para as vias de desenvolvimento potencialmente contribuem para a patogênese da doença 8, 11. Além disso, como já detalhado, NPCs são uma população neural robustamente replicativo e facilmente transduzidas, que acreditamos que pode ser adequado para estudos moleculares e bioquímicos da predisposição doença.
Embora tenhamos métodos detalhados para diferenciar e cultura NPCs modelado-cérebro anterior, que pode ser facilmente adaptada para gerar NPCs modelado para outros destinos celulares. Por exemplo, se EBs flutuantes são primeiro tratados com 0,5 mg / ml de DKK1, SB431542 10 mM, 0,5 mg / ml e Noggin ciclopamina 1 mM, NPCs hipocampo vai ser gerada, o que pode ser expandida em meio NPC e diferenciadas em meios neuronais suplementadas com 20 ng / ml Wnt3a 7 12,23. Dado que os protocolos de diferenciação neuronal específicos mais subtipo proceder através de um NESTIN- e SOX2-positve intermediária, nós prevemos que métodos semelhantes podem ser adaptável para GABAergic- 2,24 e glutamatergic- 3,25,26 populações NPC específicos.
Há vários passos críticos no âmbito do protocolo de notar. Primeiro, se o excesso de expressar ou derrubando a expressão do gene endógeno, o melhor é usar um vetor de controle expressar uma proteína fluorescente do mesmo backbone viral, como temos observado diferenças substanciais na florescer quando os repórteres são expressos de vetores de tamanho variável (devido a diminuição da eficiência do empacotamentocom o tamanho do vetor) ou com os promotores de diferença (devido a diferenças na eficiência promotor). Em segundo lugar, é recomendável concluir transdução viral antes neurosphere formação, como temos observado pobre penetrância de vetores virais para a estrutura neurosphere densa. Em terceiro lugar, como o número passagem dos NPCs aumenta além passagem dez, muitas vezes observamos migração substancialmente prejudicada no ensaio neurosphere. De facto, dada a propensão de NPCs, para se obter uma maior percentagem de astrócitos com passagem, é crucial para coincidir com a passagem de linhas NPC em cada experiência.
Finalmente, é importante considerar as limitações biológicas e técnicas das técnicas descritas. Embora NPCs pareceu ser morfologicamente similares por olho, eles são uma população heterogénea constituída por células capazes de gerar tanto glutamatérgicos e neurónios GABAérgicos. Enquanto observamos padronização forebrain notavelmente consistente de linhas NPC entre indivíduos usando este metod 1, este é apenas ao comparar linhas NPC totalmente validados de alta qualidade - existem diferenças substanciais entre bons e maus linhas NPC qualidade. Além disso, os rendimentos virais de transdução de células geneticamente heterogéneas, cada uma com uma integração do vector viral em local genómico original; portanto, as células individuais podem variar tanto na localização e no número de locais de integração genómicos. Mudanças mais consistentes na expressão gênica sempre ocorrerá quando a manipulação genética é direcionado para uma localização precisa e definida, se ocorre por dedo de zinco, TALEN ou estratégias baseadas em CRISPR.
HiPSC derivado NPCs paciente pode ser usado para estudar tanto a perturbações da expressão do gene globais que ocorrem na doença neurológica e também os / ou efeitos celulares e moleculares de manipulação de genes candidatos ou microRNAs no contexto da utilização de células neurais derivadas de pacientes saudáveis ou doentes. Deste modo, as consequências de manipulação de uma ou mais teclasalelo (s) risco pode ser caracterizado no contexto de diferentes origens genéticas.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DMEM/F12 | Life Technologies | #11330 | for HES media |
| DMEM/F12 | Life Technologies | #10565 | for neural media |
| KO-Serum Replacement | Life Technologies | #10828 | Needs to be lot tested |
| Glutamax | Life Technologies | #35050 | |
| NEAA | Life Technologies | #11140 | |
| N2 | Life Technologies | #17502-048 | Needs to be lot tested |
| B27-RA | Life Technologies | #12587-010 | Needs to be lot tested |
| FGF2 | Life Technologies | #13256-029 | Resuspend in PBS + 1% BSA |
| LDN193189 | Stemgent | #04-0074 | |
| SB431542 | Stemgent | #04-0010 | |
| BDNF | Peprotech | #450-02 | Resuspend in PBS + 0.1% BSA |
| GDNF | Peprotech | #450-10 | Resuspend in PBS + 0.1% BSA |
| Dibutyryl cyclic-AMP | Sigma | #D0627 | Resuspend in PBS + 0.1% BSA |
| L-ascorbic acid | Sigma | #A0278 | Resuspend in H20 |
| STEMdiff Neural Rosette Selection Reagent | Stemcell Technologies | #05832 | |
| Accutase | Innovative Cell Technologies | AT-104 | |
| Collagenase IV | Life Technologies | #17104019 | |
| CF1 mEFs | Millipore | #PMEF-CF | |
| Poly-L-Ornithine | Sigma | P3655 | |
| Laminin, Natural Mouse 1 mg | Life Technologies | #23017-015 | |
| BD Matrigel | BD | #354230 | Resuspend on ice in cold DMEM at 10 mg/ml, use 1 mg per two 6-well plate equivalent |
| Tissue culture treated 6-well plates | Corning | 3506 | |
| Ultra low attachment 6-well plates | Corning | 3471 | |
| goat anti-Sox2 | Santa Cruz | sc17320 | use at 1:200 |
| mouse anti-human Nestin | Millipore | MAB5326 | use at 1:200 |
| rabbit anti-βIII-tubulin | Covance | PRB435P | use at 1:500 |
| mouse anti-βIII-tubulin | Covance | MMS435P | use at 1:500 |
| mouse anti-MAP2AB | Sigma | M1406 | use at 1:200 |
| Plate centrifuge | Beckman Coulter | Beckman Coulter Allegra X-14 (with SX4750 plate carrier) |
References
- Brennand, K., et al. Phenotypic differences in hiPSC NPCs derived from patients with schizophrenia. Mol Psychiatry. , (2014).
- Nicholas, C. R., et al. Functional maturation of hPSC-derived forebrain interneurons requires an extended timeline and mimics human neural development. Cell Stem Cell. 12, 573-586 (2013).
- Mariani, J., et al. Modeling human cortical development in vitro using induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 12770-12775 (2012).
- Hashimoto-Torii, K., et al. Roles of heat shock factor 1 in neuronal response to fetal environmental risks and its relevance to brain disorders. Neuron. 82, 560-572 (2014).
- Robicsek, O., et al. Abnormal neuronal differentiation and mitochondrial dysfunction in hair follicle-derived induced pluripotent stem cells of schizophrenia patients. Mol Psychiatry. 18 (10), 1067-1076 (2013).
- Paulsen, B. D., et al. Altered oxygen metabolism associated to neurogenesis of induced pluripotent stem cells derived from a schizophrenic patient. Cell Transplant. 21 (7), 1547-1559 (2012).
- Yu, D. X., et al. Modeling hippocampal neurogenesis using human pluripotent stem cells. Stem Cell Reports. 2, 295-310 (2014).
- Brennand, K. J., et al. Modelling schizophrenia using human induced pluripotent stem cells. Nature. 473 (7346), 221-225 (2011).
- Wen, Z., et al. Synaptic dysregulation in a human iPS cell model of mental disorders. Nature. , (2014).
- Zhang, L., Song, X., Mohri, Y., Qiao, L. Role pf Inflammation and Tumor Microenvironment in the Development of Gastrointestinal Cancers: What Induced Pluripotent Stem Cells Can Do. Current stem cell research & therapy. , (2014).
- An, M. C., et al. Genetic Correction of Huntington's Disease Phenotypes in Induced Pluripotent Stem Cells. Cell Stem Cell. 11 (2), 253-263 (2012).
- Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nat Biotechnol. 27, 275-280 (2009).
- Pankratz, M. T., et al. Directed neural differentiation of human embryonic stem cells via an obligated primitive anterior stage. Stem Cells. 25, 1511-1520 (2007).
- Marchetto, M. C., et al. A model for neural development and treatment of rett syndrome using human induced pluripotent stem cells. Cell. 143, 527-539 (2010).
- Sareen, D., et al. Chromosome 7 and 19 trisomy in cultured human neural progenitor cells. PLoS One. 4, e7630 (2009).
- Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
- Cowan, C. A., et al. Derivation of embryonic stem-cell lines from human blastocysts. N Engl J Med. 350, 1353-1356 (2004).
- Ludwig, T. E., et al. Derivation of human embryonic stem cells in defined conditions. Nat Biotechnol. 24, 185-187 (2006).
- Coufal, N. G., et al. L1 retrotransposition in human neural progenitor cells. Nature. 460, 1127-1131 (2009).
- Xia, G., et al. Generation of human-induced pluripotent stem cells to model spinocerebellar ataxia type 2 in vitro. Journal of molecular neuroscience : MN. 51, 237-248 (2013).
- Aasen, T., et al. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nat Biotechnol. 26, 1276-1284 (2008).
- Delaloy, C., et al. MicroRNA-9 coordinates proliferation and migration of human embryonic stem cell-derived neural progenitors. Cell Stem Cell. 6, 323-335 (2010).
- Kriks, S., et al. Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson's disease. Nature. 480, 547-551 (2011).
- Maroof, A. M., et al. Directed differentiation and functional maturation of cortical interneurons from human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 12, 559-572 (2013).
- Shi, Y., Kirwan, P., Smith, J., Robinson, H. P., Livesey, F. J. Human cerebral cortex development from pluripotent stem cells to functional excitatory synapses. Nat Neurosci. 15, 477-486 (2012).
- Espuny-Camacho, I., et al. Pyramidal neurons derived from human pluripotent stem cells integrate efficiently into mouse brain circuits in vivo. Neuron. 77, 440-456 (2013).
