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Medicine

Contraste dynamique amélioré imagerie par résonance magnétique d'un modèle orthotopique cancer du pancréas de souris

doi: 10.3791/52641 Published: April 18, 2015

Introduction

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L'objectif global de cette méthode consiste à appliquer un contraste amélioré imagerie par résonance magnétique dynamique (DCE-MRI) pour des xénogreffes de tumeurs pancréatiques orthotopiques chez la souris. DCE-MRI est une méthode non invasive pour évaluer microvascularisation dans un tissu cible en contrôlant la variation de contraste MR sur une certaine période de temps après l'injection. DCE-MRI a été utilisée pour diagnostiquer des tumeurs malignes et pour évaluer la réponse de la tumeur à divers traitements 4.1. Quantitative DCE-MRI a présenté une reproductibilité élevée 5. Pour quantifier les paramètres pharmacocinétiques d'un agent de contraste pour MR dans un tissu cible, toutes les images DCE-RM acquises à différents points dans le temps et T1 carte obtenues avant l'injection de contraste doivent être recalées 6. Toutefois, en raison de mouvements respiratoires et péristaltiques dans la région abdominale, quantitative DCE-MRI a eu une application limitée pour les tumeurs gastro-intestinales.

Des modèles de tumeurs du pancréas orthotopique ont été utilisées pour évaluerréponse pancréatique-tumorale après des thérapies biologiques et chimiothérapies 7,8. Des modèles de tumeur orthotopique sont considérés comme supérieurs aux modèles sous-cutanés classiques, étant donné que le micro-environnement dans le site de la tumeur d'origine est réfléchie et de ce fait la réponse tumorale à la thérapie humaine peut être prédit de façon plus précise. Cependant, le pancréas de souris se trouve dans le quadrant supérieur gauche de l'abdomen, de sorte quantitative DCE-MRI de xénogreffes de tumeurs pancréatiques orthotopique chez la souris n'a pas été mis en oeuvre facilement.

Nous avons établi un protocole de DCE-MRI des tumeurs abdominales chez la souris en fixant les tumeurs en utilisant une carte en plastique orthogonalement plié pour empêcher le transfert de mouvement à partir de la région de la poitrine 9. La pression appliquée par ce forum a été localisé sur la zone abdominale, et n'a pas donné lieu à des difficultés respiratoires. Une technique image coregistration automatisé a été validée pour DCE-MRI des organes abdominaux dans un mode libre-respiratoire, mais il effectue effectively seulement quand les régions cibles se déplacent lentement et régulièrement 10. La fréquence respiratoire des animaux est variable au cours de l'imagerie, de retenue afin physique dans la région abdominale sera nécessaire de récupérer les paramètres pharmacocinétiques fiables dans les modèles de souris de tumeurs pancréatiques orthotopiques. Nous avons quantifié avec succès les paramètres pharmacocinétiques d'un agent de contraste IRM dans les xénogreffes de tumeurs pancréatiques orthotopiques utilisant la carte en plastique orthogonalement plié dans DCE-MRI 11-13. Ici, nous présentons la procédure détaillée de la modélisation de la tumeur du pancréas orthotopique, DCE-MRI des xénogreffes de tumeurs chez la souris, et la quantification des paramètres pharmacocinétiques.

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Protocol

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Toutes les procédures ont été approuvées par le soin et l'utilisation des animaux Commission institutionnelle à l'Université d'Alabama à Birmingham.

Modélisation 1. Orthotopique pancréatique tumeurs Souris

  1. Culture des lignées cellulaires cancéreuses humaines pancréatiques-standard dans du milieu de Eagle modifié par Dulbecco (DMEM) supplémenté avec du sérum bovin fœtal à 10%. Maintenir toutes les cultures à 37 ° C dans une atmosphère humidifiée avec 5% de CO 2.
  2. Utilisez 8-10 souris femelles graves semaine-vieux combinés immunodéficients. Placez les cages des animaux à 12 heures de lumière et le cycle de l'obscurité de 12 heures à température ambiante (21 ± 2 ° C) et 60% d'humidité.
  3. Anesthésier les animaux en utilisant une ventilation avec 2% d'isoflurane mélangé avec de l'oxygène (2 L / min) pendant toute la chirurgie. Confirmer la profondeur de l'anesthésie par pincement de l'orteil réflexe. La place des animaux sur un coussin chauffant (37 ° C) pour maintenir la température du corps. Appliquer une pommade ophtalmique vétérinaire sur les yeux pour prévenir la sécheresse sous anesthésie. &# 160;
  4. Enlever les poils dans le quadrant supérieur gauche de l'abdomen de chaque souris, et de donner un médicament analgésique (carpofen, 5 mg / kg de poids corporel sous-cutanée) dans la région. Appliquer une solution de bétadine sur la peau exposée. Préparer instruments chirurgicaux autoclave.
  5. Faire une incision de 1 cm dans la peau et du péritoine en utilisant l'iris ciseaux droits. Retirez délicatement le pancréas de l'abdomen en utilisant des pinces chirurgicales.
  6. Introduire 28 G aiguille d'une seringue 0,5 ml d'insuline dans la queue du pancréas et infuser ensuite lentement une solution de 2,5 millions de cellules cancéreuses pancréatiques humaines dans 30 pl de DMEM. Assurez-vous que une petite cloque se forme dans la tête du pancréas par la solution.
  7. Placez délicatement le pancréas dans l'abdomen en utilisant des pinces chirurgicales. Fermez le péritoine et la peau dans une couche avec deux interrompu 5-0 sutures Prolene, puis mettre fin à l'anesthésie. Ne retournez pas un animal qui a subi une intervention chirurgicale à la compagnie d'autres animaux jusqu'à guérison complète.60; Retirer sutures à la chirurgie de poste 7 ~ 10 jours.
  8. Donner une autre dose du médicament analgésique (carpofen, 5 mg / kg de poids corporel sous-cutanée) à 24 h après la chirurgie.
  9. Vérifiez la taille de la tumeur en palpant la zone de la chirurgie en utilisant deux doigts. Les tumeurs se sentent généralement plus dense et plus bosselée que les tissus et organes environnants. Habituellement, cela prend ~ 1-2 semaines pour commencer à se sentir une tumeur.
  10. De surveiller les animaux quotidiennement les signes de la maladie. Lorsque les animaux apparaissent (comportements de toilettage et d'évitement normales manque) malades, nous les résilié par dislocation cervicale sous anesthésie.

2. imagerie par résonance magnétique

  1. Appliquer IRM lorsque la taille de la tumeur est d'environ 5-7 mm de diamètre en général à 2 ~ 4 semaines après l'implantation des cellules. Utilisez un scanner RM dédiée à l'imagerie du petit animal ou un scanner RM clinique équipée d'une bobine spécialisé pour l'imagerie du petit animal.
    NOTE: Nous avons utilisé un petit animal MR scanner 9.4T avec une combinaison d'un volume résonateur 1 H/ Émetteur et un récepteur de bobine de surface (30 mm de diamètre) (Bruker BioSpin Corp., Billerica, MA). Une bobine de surface offre une meilleure rapport (SNR) 14 signal-sur-bruit.
  2. Préparer un agent de contraste IRM à base de gadolinium à injecter ~ de 0,1 à 0,2 mmol / kg à chaque animal dans ~ 0,1 au 0,2 ml de PBS (tampon phosphate salin).
    NOTE: Nous avons utilisé gadotéridol, et injecté 0,2 mmol / kg dans 0,15 ml de PBS sur une période de 15 sec (0,1 ml / sec).
  3. Préparer un tube micro-polyéthylène (longueur: 7,62 mm, diamètre intérieur: 0,28 mm, diamètre extérieur: 0,64 mm). Insérez une aiguille 30 G (longueur de 12,7 mm) dans une extrémité du tube, et une aiguille de 30 G émoussée de pointe (9,5 mm de longueur) dans l'autre extrémité. Connecter une seringue de 1 ml contenant MR agent de contraste à l'aiguille de pointe émoussée, et poussez lentement la seringue pour remplir le tube entier avec l'agent de contraste MR.
  4. Anesthésier des animaux à l'aide de la ventilation avec ~ 1 - 2% d'isoflurane mélangé avec de l'oxygène (2 L / min) tout au long de la préparation et de l'imagerie. Confirmer la profondeur de anesthesia par pincement de l'orteil réflexe. Appliquer une pommade ophtalmique vétérinaire sur les yeux pour prévenir la sécheresse sous anesthésie. Dilater la veine caudale en utilisant une lampe de chaleur avant l'insertion de l'aiguille. Prenez le milieu de l'aiguille de 30 G en utilisant une pince Kelly, et l'insérer dans la veine de la queue. Bande fois la queue et le tube sur un morceau de plastique ou de papier de carton (10 mm de largeur x 100 mm de longueur) pour garder la queue droite.
  5. Placez l'animal en position couchée dans un lit de l'animal équipé d'une circulation d'eau chaude (ou air chaud) pour réguler la température du corps pendant l'imagerie. Régler la température sur le lit à 37 ° C. Insérer une sonde de température rectale à surveiller la température du corps lors de l'imagerie.
  6. Appliquer une carte en plastique orthogonalement plié dans la région abdominale. Assurez-vous que la tumeur est située derrière l'extrémité supérieure de la planche, puis déroulez le bord légèrement (~ 2 mm) pour assurer la tumeur est pris par le conseil. Collez le conseil au lit animal fermement.
  7. Tape à transduce pad de la respirationr (SA Instrument, Inc., Stony Brook, NY) sur la région de la poitrine de surveiller la respiration de l'animal lors de l'imagerie. Placez une bobine de surface sur le dessus de la région de la tumeur, et la bande au lit animal fermement. Appuyez sur le lit animal dans le scanner MR de placer la région de la tumeur à l'axe de la bobine de volume (diamètre intérieur: 72 mm).
  8. Effectuer adaptation et d'accord à la fois pour l'émetteur et le récepteur, suivi par calage.
  9. Commencer avec une séquence d'MR anatomique pour localiser la tumeur. Utilisez une séquence d'écho de spin (T2) turbo T2 pour obtenir des images axiales avec les paramètres d'acquisition suivantes. temps de répétition (TR) / temps d'écho (TE) = 3000/34 ms, 128 x 128 matrice, le terrain de 30 x 30 mm de vue, nombre de moyennes = 1, écho longueur du train = 4, et 20 contiguës 1 mm tranches épaisses dans un mode entrelacé pour couvrir toute la région de la tumeur (durée totale du balayage: 1,6 min).
    Remarque: Comme les tumeurs pancréatiques orthotopique sont plus difficiles à se trouver que celles sous-cutanées, locali conventionnelzer images ayant une résolution inférieure peuvent ne pas être utile.
  10. Acquérir (en T1) images pondérées en T1 avec différents angles bascules pour récupérer T1 carte. A cet effet, utiliser un écho de gradient approche angle multiflip avec les paramètres suivants: temps de répétition (TR) / temps d'écho (TE) = 115/3 ms, 128 x 128 matrice, un terrain de 30 x 30 mm de vue, nombre de moyennes = 4, ~ 5-7 contigus 1 mm d'épaisseur des tranches en mode entrelacé pour couvrir la région de la tumeur, et sept angles de bascule de 10, 20, 30, 40, 50, 60, et 70 (temps total de balayage par angle de bascule: 1 min).
    NOTE: Cependant, l'approche de l'angle multiflip ne est efficace que lorsque le champ B1 homogénéité est élevé. Si non, cartes T1 peut être obtenu avec l'approche de TR multiples au lieu de 15.
  11. Acquérir des images en T1 avant et après injection de contraste MR à base de gadolinium. Utilisez les mêmes paramètres d'acquisition et de la géométrie pour la cartographie de T1, mais avec l'angle de bascule fixe de 30. Utiliser le codage linéaire pour assurer l'état d'équilibre lorsque le centre de l'espace k est obtenu, especially lors d'un court TR et un angle de bascule de faible degré sont utilisés. Acquérir cinq images de référence avant l'injection de contraste. Puis acquérir 40 images après injection de contraste (durée totale du balayage: 45 min). Utilisation d'une pompe à seringue pour injecter l'agent de contraste à une vitesse constante (0,01 ml / sec).
  12. Contrôler la respiration animale continue, et ajuster la concentration de l'isoflurane pour maintenir le taux respiratoire de 50 à 100 respirations par minute. Surveiller la température du corps des animaux tout au long de l'imagerie.
  13. Après avoir terminé DCE-MRI, enlever l'aiguille et d'autres sondes, et placer l'animal dans une cage vide lits avec des serviettes en papier. Masser doucement la zone inférieure de l'abdomen. La cage doit être placée moitié sous une lampe chauffante pour permettre à l'animal de se déplacer dans et hors du gradient thermique tel qu'il récupère. Ne pas laisser un animal sans surveillance tant qu'il a repris conscience suffisante pour maintenir décubitus sternal.

3. Traitement et analyse d'images

  1. REGI Segment tumorales dans les images T2. Dans images pondérées en T2, l'intensité du signal dans la région de la tumeur est plus brillante que celle de tissus environnants, de sorte que la limite de la tumeur peut être délimitée manuellement.
    REMARQUE: techniques de segmentation semi-automatiques comme seuil global ou contour actif peuvent être utilisés 16,17, mais l'intensité de fond inégale doivent être corrigées surtout quand une bobine de surface est utilisé.
  2. Créez des cartes T1 et densité de proton. En pondération T1 images acquises avec une séquence d'écho de gradient, en supposant que le temps d'écho (TE) est bien inférieure à la valeur T2 *, la valeur de pixel est déterminée par
    Equation 1
    S 0 est la densité de protons, T 1 T est une constante de temps de relaxation, TR est le temps de répétition, et θ est un angle de bascule. L'équation (1) peut être réécrite à
    641eq2.jpg "/>
    lorsque S (θ) / sin est remplacée par Y et S (θ) / tanθ est remplacé par X. L'équation (2) est une équation linéaire, et sa pente et l'interception peut être utilisé pour récupérer T1 et S 0 valeurs, respectivement.
  3. Calculer M. concentration de contraste des images DCE-MR. Lorsque le gadolinium à base d'agents MR de contraste est injecté, T 1 de relaxation constante de temps est modifié au fil du temps. Donc, l'équation (1) peut être réécrit pour
    Équation 3
    T 1 (t) est en relation avec la concentration de contraste RM, C (t), comme suit,
    Equation 4
    r 1 est la relaxivité longitudinale d'agent de contraste RM. Ainsi, en combinant les équations (3) et (4), MR concentration de contraste est déterminée par
    "équation
  4. Quantifier les paramètres pharmacocinétiques de l'agent de contraste MR. C p (t) présente MR concentration de contraste dans le plasma sanguin à l'instant t après le début de l'injection de contraste. C p (t) est appelée fonction d'entrée artérielle (AIF). Si AIF est disponible, les paramètres pharmacocinétiques de l'agent de contraste RM peuvent être calculées par
    Equation 6
    C t (t) est la concentration de contraste MR dans un tissu cible, p v est le volume de plasma sanguin fractionnée, V e est le volume fractionnel extravasculaire extracellulaire, et K est trans constante de transfert de volume. Flux constante de vitesse, k ep, est égale à K trans divisé par v e. Si AIF ne est pas disponible, alors le modèle de région de référence peut être utilisé à la place 18,19. Le modèle de zone de référence est basé sur le modèle Kety écoulement limité 20 et utilise concentration de contraste dans une région de référence pour supprimer la nécessité d'AIF comme suit,
    Equation 7
    C t, ROI (t), K trans, ROI, et v e, ROI sont la concentration de contraste, le transfert de volume constant, et le volume de extravasculaire extracellulaire fractionnée, respectivement, dans la région d'intérêt (ROI), tandis que C t, RR (t), K trans, RR, et v e, RR sont ceux de la région de référence. Musculaire paravertébrale est souvent choisi comme région de référence, et v e, RR dans murin paravertebral musculaire est supposé être constant à 0,08 21. Nous avons utilisé le modèle de région de référence.

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Representative Results

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Des cellules tumorales pancréatiques humaines se développer avec succès dans le pancréas de souris créant une tumeur solide. La figure 1 représente des photographies de (A) un des pancréas normal où la solution de cellules tumorales est injecté, et (B) une souris représentant portant une xénogreffe de tumeur du pancréas orthotopique (MIA PACA-2 ). Tumeur est située dans le quadrant supérieur gauche de l'abdomen, à côté de la rate. Il prend habituellement 2-4 semaines pour que les tumeurs de croître jusqu'à 5-7 mm de diamètre après l'implantation de cellules.

Motion de xénogreffes de tumeurs pancréatiques orthotopiques a été substantiellement supprimée, même si l'artefact de mouvement était présent dans les images IRM d'une certaine ampleur. Dans images T2W MR, l'écart type des signaux MR dans l'air au-dessus de la région de la tumeur était d'environ 2,5 fois plus grande lorsque les cellules tumorales pancréatiques ont été orthotopique implantés à celle quand un modèle de tumeur sous-cutanée a été employée. La figure 2A représente le schéma d'une installation pour DCE -MRI d'une pancréatite orthotopiquec xénogreffe de tumeur. Le cercle orange représente la tumeur, pris par l'extrémité supérieure d'un panneau en plastique orthogonalement plié. Figure 2B montre le schéma de la carte en plastique avec des dimensions. La largeur de la planche (30 mm) a été conçu pour être identique à la largeur du lit pour animal souris. La longueur de la carte a été conçue pour être suffisamment longue pour appliquer le ruban fermement. La profondeur de la pointe du conseil d'administration (4 mm) a été conçu pour 20 g de souris. La figure 2C montre les images T2 MR (vue sagittale) d'une souris représentant portant une xénogreffe de tumeur du pancréas orthotopique (MIA PACA-2). Tumeur est indiqué dans un cercle rouge en pointillé, et l'indentation induite par le conseil de plastique est indiqué par une flèche blanche.

Quantitative DCE-MRI est appliquée avec succès pour des xénogreffes de tumeurs pancréatiques orthotopiques utilisant la région de référence (RR) de modèle, comme décrit dans l'équation (7). Figure 3A montre des cartes de contraste dans la région de la tumeur (échelle de couleurs) à 1 minute avant MR c ontrast (gadotéridol) injection et à 5 et 40 minutes après l'injection, respectivement, se chevauchent avec des images IRM T2 (échelle de gris). La souris a été munis d'une PACA-2 xénogreffe de tumeur MIA orthotopique. La figure 3B montre des courbes de rehaussement de contraste moyennées dans la région de la tumeur (3 x 3 de la fenêtre) et la région musculaire paravertébrale (9 x 9 de la fenêtre) indiquée par deux carrés blancs, respectivement, sur la figure 3A. figures 3C et 3D montrent K cartes ep trans et k, respectivement.

Figure 1
Figure 1. Des photographies de (A) un de pancréas normal reçu une injection de solution de cellules de tumeur et (B) une xénogreffe de tumeur du pancréas orthotopique chez une souris immunodéficiente. Tumeur est située dans le quadrant supérieur gauche de l'abdomen, indiquée par un cercle en pointillé blanc.es / ftp_upload / 52641 / 52641fig1highres.jpg "target =" _ blank "> Se il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Figure 2
Figure 2. Schéma de DCE-MRI d'une xénogreffe de tumeur du pancréas orthotopique. (A) Schéma d'une installation pour DCE-MRI d'une xénogreffe de tumeur du pancréas orthotopique (région circulaire orange). Un cathéter est inséré dans la veine de la queue d'insuffler MR agent de contraste. (B) Schéma d'un panneau en plastique orthogonalement plié avec des dimensions. (C) images T2 MR (vue sagittale) d'une souris portant une xénogreffe de tumeur pancréatique orthothopic indiqué avec un pointillés cercle rouge, quand une carte en plastique orthogonalement plié a été appliquée (indiqué par une flèche blanche). Se il vous plaît cliquer ici pour voir un plus grand versisur ce chiffre.

Figure 3
Figure 3. images DCE-MR et cartes paramatric d'une xénogreffe de tumeur du pancréas orthotopique. (A) des cartes de contraste à 1 min avant ou à 5 et 40 min après M. contraste (gadotéridol) injection. (B) courbes de rehaussement de contraste en moyenne dans la région de la tumeur (3 x 3 de la fenêtre) et la région musculaire paravertébrale (9 x 9 de la fenêtre) indiqué par deux carrés blancs, respectivement, sur la figure 3A. (C) K carte trans. (D) k carte ep. Se il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

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Discussion

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Nous avons introduit les méthodes détaillées de la modélisation de tumeur pancréatique orthotopique utilisant des souris immunodéficientes, DCE-MRI des tumeurs abdominales chez la souris, et la quantification de ses paramètres cinétiques. Dans la modélisation de tumeur pancréatique orthotopique, il faut prendre soin lors de l'insertion d'une aiguille dans la queue du pancréas. En cas de succès, les cellules seront transférées à la tête du pancréas créer une petite bulle. Lors de l'application d'une carte en plastique orthogonalement plié, il est essentiel de confirmer que la tumeur est située sous l'extrémité supérieure de la planche. Depuis la tumeur pancréatique est à proximité de la membrane, le conseil peut-être pas en mesure de tenir fermement, en particulier lorsque la taille de la tumeur est inférieure à 5 mm de diamètre. Après l'imagerie, la région abdominale devrait être massé doucement jusqu'à ce que l'animal est conscient. Il est recommandé de ne pas dépasser la imagerie et la préparation temps total pour chaque animal plus de 90 minutes afin d'éviter douleurs abdominales.

La dimension de la matière plastiqueconseil peut nécessiter un réajustement en fonction de la taille des tumeurs ou des animaux. Si la taille de la tumeur est inférieure à 5 mm, les tumeurs ne peuvent pas être fermement pris par le conseil orthogonalement plié ayant 4 mm de profondeur et ainsi artefact de mouvement peut se produire dans les images IRM. Aussi, si la taille de l'animal est plus grand que 20 g, la profondeur de 4 mm peut-être pas assez pour tenir la tumeur. Cependant, trop haute pression dans l'abdomen peut endommager le système nerveux abdominale paralyser le bas du corps de l'animal.

La modélisation de la tumeur du pancréas orthotopique chez la souris en utilisant des lignées cellulaires humaines standards du cancer du pancréas a été utilisé pour étudier la réponse thérapeutique des tumeurs du pancréas. Toutefois, la tumeur prendre taux (pourcentage de ce un animal aura une tumeur palpable après l'implantation) et le taux de croissance était fortement dépendante des caractéristiques de cellules tumorales, il est donc recommandé de commencer avec deux fois plus d'animaux et sélectionnez la moitié d'entre eux portant taille similaire tumeurs. Les tumeurs de forme irrégulière devraient être exclus,car ils pourraient réagir à une thérapie différente; l'irrégularité de forme peut être détectée par la palpation de routine, mais l'imagerie par ultrasons fournira une meilleure évaluation 9. Certaines lignées de cellules peuvent développer des métastases habituellement dans le foie. métastases hépatiques (MET) peuvent être détectés en utilisant l'imagerie bioluminescente couramment lorsque les cellules de luciférase-positif ont été implantées ou par la dissection du foie après les animaux morts. MET hépatiques raccourcissent la durée de vie des animaux, de sorte que le plan de l'étude devraient être établies en conséquence.

Quantitative DCE-MRI a été mis en œuvre avec succès pour un modèle de souris de tumeur pancréatique orthotopique. Pour quantifier les paramètres pharmacocinétiques de M. agent de contraste basé sur le modèle Kety débit limité à 20, la fonction d'entrée artérielle (FIA) doit être disponible. Dans cette application, l'aorte abdominale se situe dans le champ de vision, de sorte AIF peut être obtenue directement en mesurant la variation de la concentration MR de contraste dans l'aorte abdominale. Cependant, til diamètre intérieur de l'aorte abdominale de la souris est inférieur à 1 mm (0,5 au 0,7 mm) 22, et de façon empirique la taille du pixel doit être au moins quatre fois plus petit que le diamètre (0,125 mm) pour éviter l'effet de volume partiel sévère. En outre, le taux d'échantillonnage idéal de notice annuelle est de 1 à 2 sec 23. En IRM, les résolutions spatiales et temporelles compromis avec SNR. Par conséquent, il est difficile d'obtenir un AIF fiable dans DCE-MRI de souris. En variante, la région de référence (RR) modèle peut être utilisé. modèle de RR emploie les données de rehaussement du contraste dans une région de référence (généralement des tissus musculaires) pour supprimer le besoin de AIF dans la pharmacocinétique-quantification des paramètres. Toutefois, le volume extracellulaire extravasculaire fractionnée dans la région de référence doit être assumé, qui a causé l'erreur d'environ 35% dans une étude (n = 9) 21. Néanmoins, le changement du système microvasculaire de la tumeur suite à la thérapie peut être mesurée avec précision, si la même région de référence est sélectionnée à chaque fois.

24,25.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM Invitrogen 11965-118
Fetal bovine serum Harlan Laboratories BT-9501
Betadine Purdue products 67618-153-01
5-0 Prolene sutures Ethicon 8720H
9.4T MR scanner Bruker Biospin Corporation BioSpec 94/20 USR
Gadoteridol Bracco Diagnostics Inc NDC 0270-1111-03
Micro-polyethelene tube Strategic Applications, Inc #PE-10-25
30 G blunt tip needle Strategic Applications, Inc 89134-194
Monitoring and gating system SA instruments, Inc Model 1030 This is an MR compatiable system to measure resiratory rating and body temperature of small animals at the same time.
Syringe pump New Era Pump Systems, Inc. NE-1600

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References

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Contraste dynamique amélioré imagerie par résonance magnétique d'un modèle orthotopique cancer du pancréas de souris
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Kim, H., Samuel, S., Totenhagen, J. W., Warren, M., Sellers, J. C., Buchsbaum, D. J. Dynamic Contrast Enhanced Magnetic Resonance Imaging of an Orthotopic Pancreatic Cancer Mouse Model. J. Vis. Exp. (98), e52641, doi:10.3791/52641 (2015).More

Kim, H., Samuel, S., Totenhagen, J. W., Warren, M., Sellers, J. C., Buchsbaum, D. J. Dynamic Contrast Enhanced Magnetic Resonance Imaging of an Orthotopic Pancreatic Cancer Mouse Model. J. Vis. Exp. (98), e52641, doi:10.3791/52641 (2015).

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