Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Dynamisch contrast versterkte MRI van een orthotope pancreaskanker Muis Model

doi: 10.3791/52641 Published: April 18, 2015

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Het algemene doel van deze methode is om dynamisch contrast versterkte MRI (DCE-MRI) gelden voor orthotopic pancreas tumorxenograften bij muizen. DCE-MRI is een niet-invasieve methode microvasculatuur in een doelweefsel evalueren door monitoring van de verandering van contraststof gedurende een bepaalde periode na injectie. DCE-MRI is gebruikt om kwaadaardige tumoren te diagnosticeren en tumor respons op verschillende therapieën 1-4 beoordelen. Kwantitatieve DCE-MRI heeft gepresenteerd hoge reproduceerbaarheid 5. Farmacokinetische parameters van een contraststof kwantificeren in een doelweefsel, moeten alle DCE-MRI verkregen op verschillende tijdstippen en T1 kaart verkregen vóór contrast injectie coregistered 6. Echter, als gevolg van de luchtwegen en de peristaltische bewegingen in de buikstreek, kwantitatieve DCE-MRI heeft beperkte toepassing voor gastro-intestinale tumoren hadden.

Orthotope pancreastumoren modellen zijn gebruikt beoordelenpancreas-tumor respons volgende biologische therapieën en chemokuren 7,8. Orthotope tumormodellen zijn superieur aan conventionele subcutane modellen leveren, aangezien de micro in de oorspronkelijke tumor wordt gereflecteerd en daardoor humane tumor respons op therapie kan nauwkeuriger worden voorspeld. De muis alvleesklier is gelegen in de linker bovenste kwadrant van de buik, dus kwantitatieve DCE-MRI van orthotope pancreas tumor xenotransplantaten bij muizen niet gemakkelijk geïmplementeerd.

We hebben een protocol van DCE-MRI van abdominale tumoren bij muizen die door de vaststelling van de tumoren met behulp van een orthogonaal gebogen plastic bord met motion transfer van de borst regio 9 voorkomen. De door deze raad uitgeoefende druk werd gelokaliseerd op de buikstreek, en heeft niet geleid tot ademhalingsmoeilijkheden. Een geautomatiseerde afbeelding coregistration techniek is gevalideerd voor DCE-MRI van buikorganen in een vrije-ademmode, maar hij presteert effectively alleen wanneer de doelgebieden bewegen langzaam en regelmatig 10. Snelheid van dieren luchtwegen is variabel tijdens de beeldvorming, zal dus fysieke terughoudendheid in de buikstreek nodig zijn om betrouwbare farmacokinetische parameters in orthotopische pancreastumor muismodellen te halen. We hebben met succes de farmacokinetische parameters van een MR-contrastmiddel gekwantificeerd in orthotopische pancreas tumorxenograften behulp van de orthogonaal gebogen plastic bord in DCE-MRI 11-13. Hier presenteren we de gedetailleerde procedure van orthotope pancreastumoren modellering, DCE-MRI van de tumor xenografts in muizen en kwantificering van farmacokinetische parameters.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Alle procedures werden goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite aan de Universiteit van Alabama in Birmingham.

1. Orthotope Pancreastumor Mouse Modeling

  1. Cultuur standaard humane pancreatische kanker cellijnen in Dulbecco's gemodificeerd Eagle's medium (DMEM) aangevuld met 10% foetaal runderserum. Handhaaf alle culturen bij 37 ° C in bevochtigde atmosfeer met 5% CO2.
  2. Gebruik 8-10 weken oude vrouwelijke ernstige gecombineerde immunodeficiëntie muizen. Plaats dierenkooien 12 uur licht en 12 uur donker cyclus bij kamertemperatuur (21 ± 2 ° C) en 60% vochtigheid.
  3. Verdoven alle dieren middels ventilatie met 2% isofluraan gemengd met zuurstof (2 l / min) gedurende chirurgie. Bevestig de diepte van de anesthesie door teen knijpen reflex. Plaats dieren op een verwarmingselement (37 ° C) om de lichaamstemperatuur te handhaven. Breng veterinaire oogzalf op ogen droog voorkomen terwijl onder verdoving. &# 160;
  4. Verwijder de haren in de linker bovenste kwadrant van de buik van elke muis en geven een pijnstiller (carpofen, 5 mg / kg lichaamsgewicht subcutaan) in het gebied. Breng een betadine oplossing voor de blootgestelde huid. Bereid geautoclaveerd chirurgische instrumenten.
  5. Maak een 1 cm incisie in de huid en het buikvlies met iris rechte schaar. Verwijder voorzichtig de alvleesklier uit de buik met behulp van chirurgische pincet.
  6. Breng 28 G naald van een 0,5 ml insulinespuit in de staart van de alvleesklier en dan langzaam infuseren een oplossing van 2,5 miljoen humane pancreatische kankercellen in 30 gl DMEM. Bevestigen dat een kleine blaar ontstaat in het hoofd van de alvleesklier door de oplossing.
  7. Plaats voorzichtig het pancreas terug in de buik met chirurgische pincet. Sluit het buikvlies en de huid in 1 laag met 2 onderbroken 5-0 Prolene hechtingen, en dan eindigen de narcose. Heeft een dier dat een operatie heeft ondergaan om het gezelschap van andere dieren tot volledig hersteld niet meer terug.60; Verwijder hechtingen op 7 ~ 10 dagen na de operatie.
  8. Geef een dosis van het analgeticum (carpofen, 5 mg / kg lichaamsgewicht subcutaan) bij 24 uur na de operatie.
  9. Controleer tumorgrootte door palpatie van de operatie gebied met behulp van twee vingers. Tumoren voelen typisch dichter en bumpier dan de omringende weefsels en organen. Meestal duurt het ~ 1-2 weken om te beginnen met het gevoel een tumor.
  10. Monitor dieren dagelijks op tekenen van ziekte. Wanneer dieren lijken ziek (gebrek normale verzorging en vermijdingsgedrag) beëindigden we ze met behulp van de nek te breken terwijl onder narcose.

2. Magnetic Resonance Imaging

  1. Breng MRI wanneer de tumorgrootte is ongeveer 5-7 mm in diameter meestal 2 tot 4 weken na cel implantatie. Gebruik een MR-scanner gewijd aan beeldvorming van kleine proefdieren of een klinische MR-scanner uitgerust met een gespecialiseerde spoel voor beeldvorming van kleine proefdieren.
    OPMERKING: Wij gebruikten een 9.4T klein dier MR scanner met een combinatie van een 1H volume resonator/ Zender en een oppervlaktespoel ontvanger (30 mm diameter) (Bruker BioSpin Corp., Billerica, MA). Een oppervlakspoel een betere signaal-ruisverhouding (SNR) 14.
  2. Bereid een gadolinium MRI-contrastmiddel -0,1 injecteren - 0,2 mmol / kg elk dier in ~ 0,1-0,2 ml PBS (fosfaat gebufferde zoutoplossing).
    OPMERKING: We gebruikten gadoteridol en geïnjecteerd 0,2 mmol / kg in 0,15 ml PBS gedurende een periode van 15 sec (0,1 ml / sec).
  3. Bereid een micro-polyethyleen buis (lengte: 7,62 mm, binnendiameter: 0,28 mm, buitendiameter: 0,64 mm). Plaats een 30 G naald (12,7 mm lengte) in een uiteinde van de buis en een 30 G naald stompe punt (9,5 mm lengte) in het andere uiteinde. Sluit een 1 ml spuit met MR-contrastmiddel aan de stompe punt naald en de spuit te duwen langzaam te vullen van de gehele buis met de MR-contrastmiddel.
  4. Verdoven dieren middels ventilatie met ~ 1-2% isofluraan gemengd met zuurstof (2 l / min) gedurende bereiding en beeldvorming. Bevestig de diepte van anesthesia door teen knijpen reflex. Breng veterinaire oogzalf op ogen droog voorkomen terwijl onder verdoving. Verwijden de staart ader met behulp van een warmtelamp voordat de naald inbrengen. Pak het midden van de 30 G naald met behulp van Kelly tang en steek hem in de staart ader. Tape zowel de staart en de buis op een stuk plastic of karton papier (10 mm breedte x 100 mm lengte) aan de staart recht te houden.
  5. Plaats het dier in rugligging in een dier bed uitgerust met circulerende warm water (of warme lucht) om de lichaamstemperatuur te reguleren tijdens de beeldvorming. Stel de temperatuur van het bed tot 37 ° C. Plaats een rectale temperatuursensor om de lichaamstemperatuur tijdens beeldvorming bewaken.
  6. Breng een orthogonaal gebogen plastic bord in de buikstreek. Zorg ervoor dat de tumor bevindt zich achter het bovenste einde van de raad van bestuur, en trek dan naar beneden het bord licht (~ 2 mm) om de tumor te verzekeren wordt gevangen door het bestuur. Tape het bord om dierlijke bed stevig.
  7. Tape een ademhaling pad transducer (SA Instrument, Inc., Stony Brook, NY) op de borst gebied om dierlijke ademhaling te controleren tijdens de beeldvorming. Plaats een oppervlaktespoel boven op het tumorgebied en tape het dierlijke bed vast. Schuif het dier bed in de MR-scanner de tumorgebied in het middelpunt van het volume spoel (binnendiameter: 72 mm).
  8. Voeren matching en tuning voor zowel de ontvanger en zender, gevolgd door shimming.
  9. Begin met een anatomische MR sequentie de tumor te lokaliseren. Gebruik een T2-gewogen (T2W) turbo spin-echo volgorde om axiale beelden met de volgende acquisitie parameters te verkrijgen. Herhalingstijd (TR) / echo tijd (TE) = 3000/34 msec, 128 x 128 matrix, 30 x 30 mm gezichtsveld, aantal gemiddelden = 1, echo treinlengte = 4, en 20 aaneengesloten 1 mm dikke plakken in een interlaced modus om de gehele tumor regio (totale scantijd: 1.6 min).
    Opmerking: omdat orthotope pancreas tumoren moeilijker zich dan subcutaan die conventionele localizer beelden met een lagere resolutie kan niet nuttig zijn.
  10. Verwerven T1-gewogen (T1W) beelden met verschillende flip loodrecht op T1 kaart te halen. Hiervoor gebruikt u een gradiënt echo multiflip hoek aanpak met de volgende parameters: herhalingstijd (TR) / echo tijd (TE) = 115/3 msec, 128 x 128 matrix, een 30 x 30 mm gezichtsveld, aantal gemiddelden = 4, ~ 5-7 aaneengesloten 1 mm dikke plakken in een interlaced het tumorgebied bedekken en zeven flip hoeken van 10, 20, 30, 40, 50, 60 en 70 (totale scantijd per omslaghoek: 1 min).
    OPMERKING: Echter, multiflip hoek aanpak is efficiënt alleen wanneer B1 veldhomogeniteit is hoog. Zo niet, dan kan T1 kaarten worden verkregen met meerdere TR benadering plaats 15.
  11. Verwerven T1W beelden voor en na gadolinium gebaseerde MR contrast injectie. Gebruik dezelfde acquisitie parameters en geometrie voor T1 in kaart brengen, maar met de vaste flip hoek van 30. Gebruik lineaire codering om steady state te waarborgen bij het midden van k-ruimte wordt verkregen, especially wanneer een korte TR en een lage mate flip hoek worden gebruikt. Acquire 5 basislijn beelden voordat contrast injectie. Dan krijgen 40 beelden na het contrast injectie (totale scantijd: 45 min). Gebruik een injectiespuit pomp contrastmiddel te injecteren met een constante snelheid (0,01 ml / sec).
  12. Monitor dier ademhaling continu, en pas isofluraan concentratie op de ademhaling te houden tot 50 - 100 ademhalingen per minuut. Monitor dierlijk lichaam temperatuur in beeldvorming.
  13. Na het voltooien van DCE-MRI, haal de naald en andere sondes, en plaats het dier in een lege kooi bedden met keukenpapier. Masseer zachtjes de onderbuik. De kooi moet de helft worden geplaatst onder een warmtelamp om de dieren in en uit te gaan van de hitte verloop als het herstelt. Heeft een dier niet onbeheerd achter, totdat het voldoende weer bij bewustzijn is om borstligging behouden.

3. beeldverwerking en analyse

  1. Segment tumor regi de in T2W afbeeldingen. In T2W afbeeldingen, de signaalintensiteit in tumorgebied helderder is dan die van de omliggende weefsels zodat de tumor grens kan handmatig worden afgebakend.
    OPMERKING: Semi-automatische segmentatie technieken zoals de opwarming van drempelwaarden of actieve contouren kan worden gebruikt 16,17, maar ongelijke achtergrond intensiteit moet worden gecorrigeerd in het bijzonder wanneer een oppervlak spoel wordt gebruikt.
  2. Maak T1 en proton dichtheid kaarten. In T1W beelden die met een gradiënt echo sequentie, in de veronderstelling dat de echo tijd (TE) is veel minder dan T2 * waarde, de pixel waarde wordt bepaald door
    Vergelijking 1
    waarbij S 0 is proton dichtheid, T 1 T 1 relaxatietijdconstante, TR is herhaling tijd, en θ is een flip hoek. Vergelijking (1) kan worden herschreven
    641eq2.jpg "/>
    als S (θ) / sinθ wordt vervangen door Y, en S (θ) / tanθ wordt vervangen door X. Vergelijking (2) een lineaire vergelijking, en de helling en intercept kan worden gebruikt voor het ophalen T1 en S waarden 0, respectievelijk.
  3. Bereken MR contrast concentratie in DCE-MR-beelden. Wanneer gadolinium gebaseerde MR-contrastmiddel wordt ingespoten, wordt T 1 relaxatietijdconstante veranderd in de tijd. Dus, kan vergelijking (1) worden herschreven aan
    Vergelijking 3
    T1 (t) wordt als volgt verband met MR contrast concentratie C (t),
    Vergelijking 4
    waarin R1 longitudinale relaxatie van contraststof. Dus, door het combineren van vergelijkingen (3) en (4), is contraststof concentratie bepaald door
    "Vergelijking
  4. Kwantificeren de farmacokinetische parameters van contraststof. Cp (t) weer contraststof concentratie in bloedplasma op tijdstip t na aanvang contrastinjectie. Cp (t) heet arteriële invoerfunctie (AIF). Als AB beschikbaar is, kan de farmacokinetische parameters van MR-contrastmiddel worden berekend door
    Vergelijking 6
    waarin C t (t) is contraststof concentratie in een doelweefsel, v p fractioneel bloedplasma volume v e is fractioneel extravasculaire extracellulair volume en K trans is volume overdrachtsconstante. Flux snelheidsconstante k ep, is gelijk aan K trans gedeeld door v e. Als AB niet beschikbaar is, dan is de verwijzing regio model kan worden ipv 18,19 gebruikt. Het referentiegebied is gebaseerd op de stroming beperkt Kety model 20 en gebruikt contrast concentratie in een referentiegebied om de behoefte te verwijderen voor AB als volgt
    Vergelijking 7
    waarin Ct, ROI (t), K trans, ROI, en v e, ROI contrast concentratie, volume overdrachtsconstante en fractionele extravasculaire extracellulaire volume, respectievelijk in het gebied van belang (ROI), terwijl Ct, RR (t), K trans, RR en v e, RR zijn die het referentiegebied. Paravertebrale spier wordt vaak gekozen als het referentiegebied en v e, RR in muizen paravertebral spier wordt constant verondersteld op 0,08 21. We gebruikten het referentiegebied model.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Menselijke pancreatische tumorcellen groeien goed in muis alvleesklier creëren van een solide tumor. Figuur 1 toont foto's van (A) een normale pancreas waar tumorcel oplossing wordt geïnjecteerd, en (B) een representatieve muis daarop een orthotope pancreas tumor xenograft (MIA PaCa-2 ). Tumor is gelegen in de linker bovenste kwadrant van de buik, naast de milt. Het duurt meestal 2-4 weken voor de tumoren te groeien tot 5-7 mm in diameter na cel implantatie.

Motie van orthotopische pancreas tumorxenograften werd aanzienlijk onderdrukt, hoewel bewegingsartefact aanwezig in MR-beelden was om een ​​zekere omvang. In T2W MRI, de standaardafwijking van MR signaal in de lucht boven het tumorgebied was ongeveer 2,5-voudig groter wanneer pancreas tumorcellen orthotopically werden geïmplanteerd dan wanneer een subcutane tumormodel werd toegepast. Figuur 2A toont het schema van een opstelling voor DCE -MRI van een orthotopic pancreatic tumor xenograft. De oranje cirkel de tumor, onder het boveneinde van een orthogonaal gebogen plastic bord. Figuur 2B toont het schema van de plastic bord met afmetingen. De plaatbreedte (30 mm) werd ontworpen om hetzelfde met de breedte van het dier bed muizen. Het bestuur lengte is ontworpen lang genoeg om tape stevig van toepassing te zijn. De diepte van het bestuur tip (4 mm) is ontworpen voor 20 g muizen. Figuur 2C toont de T2W MR-beelden (sagittale weergave) van een vertegenwoordiger van de muis voorzien van een orthotoop pancreas tumor xenograft (MIA PaCa-2). Tumor wordt aangegeven in een gestippelde rode cirkel, en de insprong veroorzaakt door het plastic bord wordt aangeduid met een witte pijl.

Kwantitatieve DCE-MRI is succesvol toegepast orthotope pancreas tumor xenotransplantaten met het referentiegebied (RR) model, zoals beschreven in vergelijking (7). Figuur 3A toont daarentegen kaarten in tumorgebied (kleurenschaal) 1 minuut voordat MR c ontrast (gadoteridol) injectie en op 5 en 40 minuten na de injectie, respectievelijk, overlapt met T2W MR-beelden (grijstinten). De muis is voorzien van een MIA PaCa-2 tumor xenograft orthotopically. Figuur 3B toont contrastversterking krommen gemiddeld in het tumorgebied (3 x 3 venster) en paravertebrale spieren omgeving (9 x 9 venster) aangeduid met twee witte vierkanten respectievelijk figuur 3A. Figuren 3C en 3D tonen K trans en k ep kaarten, respectievelijk.

Figuur 1
Figuur 1. Foto van (A) een normale pancreas geïnjecteerd met tumorcellen oplossing en (B) een orthotope pancreatische tumor xenograft in een immunodeficiënte muis. Tumor ligt in de linker bovenste kwadrant van de buik, aangeduid met witte gestippelde cirkel.es / ftp_upload / 52641 / 52641fig1highres.jpg "target =" _ blank "> Klik hier om een ​​grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Figuur 2
Figuur 2. Schema's in DCE-MRI van een orthotopic pancreas tumor xenograft. (A) Schematische voorstelling van een setup voor DCE-MRI van een orthotopic pancreas tumor xenograft (oranje cirkelvormig gebied). Een katheter wordt in de staartader ingebracht contraststof trekken. (B) Schematische voorstelling van een orthogonaal gebogen plastic bord met afmetingen. (C) T2W MR beelden (sagittaal beeld) van een muis waarop een orthothopic pancreas tumor xenograft aangeduid met een gestippelde rode cirkel, wanneer een orthogonaal gebogen plastic bord werd toegepast (aangegeven met een witte pijl). Klik hier om een grotere versi bekijkenop van dit cijfer.

Figuur 3
Figuur 3. DCE-MRI en paramatric kaarten van een orthotopic pancreas tumor xenograft. (A) Contrast kaarten op 1 min vóór of op 5 en 40 minuten na de MR contrast (gadoteridol) injectie. (B) Contrastverbetering bochten gemiddeld in de tumor regio (3 x 3-venster) en paravertebrale spieren regio (9 x 9 venster) aangeduid met 2 witte vierkantjes, respectievelijk in figuur 3A. (C) K trans kaart. (D) k ep kaart. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

We hebben de gedetailleerde methoden van orthotopic alvleeskliertumor modellering met immunodeficiënte muizen, DCE-MRI van abdominale tumoren in muizen, en kwantificering van de kinetische parameters geïntroduceerd. In orthotopische alvleeskliertumor modelleren, moet erop worden gelet bij het plaatsen van een naald in de staart van de alvleesklier. Als dat lukt, zullen de cellen worden overgedragen aan de kop van de alvleesklier het creëren van een kleine blaar. Bij de toepassing van een orthogonaal gebogen plastic bord, is het essentieel om te bevestigen dat de tumor bevindt zich onder de bovenkant van het bord. Aangezien de pancreas tumor nabij het membraan, kan de boord niet kunnen stevig vast te houden, vooral wanneer de tumor kleiner is dan 5 mm. Na beeldvorming, moet de buikstreek zacht worden gemasseerd totdat het dier bij bewustzijn is. Aanbevolen wordt niet op het totale beeldvorming en voorbereidingstijd voor elk dier langer dan 90 min overschrijden teneinde buikpijn voorkomen.

De afmeting van de kunststofmoet wellicht worden aangepast volgens de grootte van tumoren of dieren. Als de tumor kleiner is dan 5 mm, de tumoren niet goed onder het orthogonaal gebogen plaat met 4 mm diepte en daardoor bewegingsartefacten optreden in MR beelden. Ook als het dier groter is dan 20 g, kan de 4 mm diepte niet genoeg om de tumor vast te houden. Echter, te hoge druk in de buik van de abdominale zenuwstelsel verlamt het onderlichaam van het dier beschadigen.

Orthotope pancreastumoren modellen bij muizen met behulp van standaard humane pancreatische kankercellijnen werd gebruikt om de therapeutische respons pancreatische tumoren te bestuderen. Echter, tumor neemt percentage (percentage dat een dier een voelbare tumor na implantatie zal hebben) en groeisnelheid waren sterk afhankelijk tumorcel eigenschappen, zodat het wordt aanbevolen om te beginnen met twee keer meer dieren en selecteer helft lager vergelijkbare grootte tumoren. Tumoren met onregelmatige vorm moeten worden uitgesloten,aangezien zij zouden kunnen uitvoeren therapie anders; de vorm onregelmatigheid kan worden gedetecteerd door routine palpatie, maar echografie zal betere beoordeling 9 bieden. Sommige cellijnen kunnen metastase ontwikkelen zich gewoonlijk in de lever. Levermetastasen (MET's) kan vaak worden gedetecteerd met behulp van bioluminescentie beeldvorming bij luciferase-positieve cellen werden geïmplanteerd of door lever dissectie nadat de dieren gestorven. Lever MET's verkort de levensduur van de dieren, zodat het onderzoeksplan moeten dienovereenkomstig worden vastgesteld.

Kwantitatieve DCE-MRI is met succes geïmplementeerd voor een orthotopische alvleeskliertumor muismodel. Farmacokinetische parameters van contraststof basis van de stroming beperkt Kety model 20 kwantificeren, dient de arteriële invoerfunctie (AIF) beschikbaar. In deze toepassing, de abdominale aorta binnen het gezichtsveld, zodat AB kan worden verkregen door direct meten van de verandering van de contraststof concentratie in de abdominale aorta. Echter, thij binnendiameter van de muis abdominale aorta minder dan 1 mm (0,5-0,7 mm) 22 en empirisch de pixelgrootte ten minste vier maal kleiner is dan de diameter (0,125 mm) tot ernstige partial volume effect voorkomen. Bovendien is de ideale bemonsteringsfrequentie van AIF is 1-2 sec 23. In MRI, ruimtelijke en temporele resoluties compromis met SNR. Daarom is het een uitdaging om een ​​betrouwbare AB verkrijgen DCE-MRI muizen. Alternatief kan het referentiegebied (RR) model gebruikt worden. RR model gebruikt de gegevens van contrastversterking in een referentiegebied (gewoonlijk spierweefsel) de noodzaak van AB in de farmacokinetische parameters kwantificering verwijderen. Wel moet de fractionele extravasculaire extracellulaire volume in het referentiegebied worden aangenomen, dat ongeveer 35% fout in één studie (n = 9) 21 veroorzaakt. Toch kan de verandering van tumor microvasculatuur na behandeling nauwkeurig worden gemeten als dezelfde referentiegebied wordt gekozen elke keer.

24,25.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM Invitrogen 11965-118
Fetal bovine serum Harlan Laboratories BT-9501
Betadine Purdue products 67618-153-01
5-0 Prolene sutures Ethicon 8720H
9.4T MR scanner Bruker Biospin Corporation BioSpec 94/20 USR
Gadoteridol Bracco Diagnostics Inc NDC 0270-1111-03
Micro-polyethelene tube Strategic Applications, Inc #PE-10-25
30 G blunt tip needle Strategic Applications, Inc 89134-194
Monitoring and gating system SA instruments, Inc Model 1030 This is an MR compatiable system to measure resiratory rating and body temperature of small animals at the same time.
Syringe pump New Era Pump Systems, Inc. NE-1600

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ergul, N., et al. Assessment of multifocality and axillary nodal involvement in early-stage breast cancer patients using 18F-FDG PET/CT compared to contrast-enhanced and diffusion-weighted magnetic resonance imaging and sentinel node biopsy. Acta Radiol. (2014).
  2. Park, J. J., et al. Assessment of early response to concurrent chemoradiotherapy in cervical cancer: value of diffusion-weighted and dynamic contrast-enhanced MR imaging. Magn Reson Imaging. (2014).
  3. Nguyen, H. T., et al. Prediction of chemotherapeutic response in bladder cancer using K-means clustering of dynamic contrast-enhanced (DCE)-MRI pharmacokinetic parameters. J Magn Reson Imaging. 10, (2014).
  4. Teo, Q. Q., Thng, C. H., Koh, T. S., Ng, Q. S. Dynamic Contrast-enhanced Magnetic Resonance Imaging: Applications in Oncology. Clin Oncol (R Coll Radiol). (2014).
  5. Zhang, X., Pagel, M. D., Baker, A. F., Gillies, R. J. Reproducibility of magnetic resonance perfusion imaging. PLoS One. 9, (2), e89797 (2014).
  6. Kim, H., et al. Pancreatic adenocarcinoma: a pilot study of quantitative perfusion and diffusion-weighted breath-hold magnetic resonance imaging. Abdominal imaging. (2014).
  7. Derosier, L. C., et al. Combination Treatment with TRA-8 Anti Death Receptor 5 Antibody and CPT-11 Induces Tumor Regression in an Orthotopic Model of Pancreatic Cancer. Clin Cancer Res. 13, (18), 5535s-5543s (2007).
  8. Derosier, L. C., et al. TRA-8 anti-DR5 monoclonal antibody and gemcitabine induce apoptosis and inhibit radiologically validated orthotopic pancreatic tumor growth. Mol Cancer Ther. 6, (12), 3198-3207 (2007).
  9. Kim, H., et al. Early therapy evaluation of combined anti-death receptor 5 antibody and gemcitabine in orthotopic pancreatic tumor xenografts by diffusion-weighted magnetic resonance imaging. Cancer Res. 68, (20), 8369-8376 (2008).
  10. Klein, S., Staring, M., Murphy, K., Viergever, M. A., Pluim, J. P. elastix: a toolbox for intensity-based medical image registration. IEEE Trans Med Imaging. 29, (1), 196-205 (2010).
  11. Kim, H., et al. Early therapy evaluation of combined cetuximab and irinotecan in orthotopic pancreatic tumor xenografts by dynamic contrast-enhanced magnetic resonance imaging. Mol Imaging. 10, (3), 153-167 (2011).
  12. Kim, H., et al. Antagonistic effects of anti-EMMPRIN antibody when combined with chemotherapy against hypovascular pancreatic cancers. M Mol Imaging Biol. 16, (1), 85-94 (2014).
  13. Kim, H., et al. Dual combination therapy targeting DR5 and EMMPRIN in pancreatic adenocarcinoma. Mol Cancer Ther. 11, (2), 405-415 (2012).
  14. Moyher, S. E., Vigneron, D. B., Nelson, S. J. Surface coil MR imaging of the human brain with an analytic reception profile correction. J Magn Reson Imaging. 5, (2), 139-144 (1995).
  15. Voigt, T., Nehrke, K., Doessel, O., Katscher, U. T1 corrected B1 mapping using multi-TR gradient echo sequences. Magn Reson Med. 64, (3), 725-733 (2010).
  16. Liu, H., Liu, Y., Zhao, Z., Zhang, L., Qiu, T. A new background distribution-based active contour model for three-dimensional lesion segmentation in breast DCE-MRI. Medical physics. 41, (8), 082303 (2014).
  17. Sarkar, S., Das, S. Multilevel image thresholding based on 2D histogram and maximum Tsallis entropy--a differential evolution approach. IEEE Trans Image Process. 22, (12), 4788-4797 (2013).
  18. Yankeelov, T. E., et al. Quantitative pharmacokinetic analysis of DCE-MRI data without an arterial input function: a reference region model. Magn Reson Imaging. 23, (4), 519-529 (2005).
  19. Cardenas-Rodriguez, J., Howison, C. M., Pagel, M. D. A linear algorithm of the reference region model for DCE-MRI is robust and relaxes requirements for temporal resolution. Magn Reson Imaging. 31, (4), 497-507 (2013).
  20. Tofts, P. S., et al. Estimating kinetic parameters from dynamic contrast-enhanced T(1)-weighted MRI of a diffusable tracer: standardized quantities and symbols. J Magn Reson Imaging. 10, (3), 223-232 (1999).
  21. Yankeelov, T. E., et al. Comparison of a reference region model with direct measurement of an AIF in the analysis of DCE-MRI data. Magn Reson Med. 57, (2), 353-361 (2007).
  22. Cao, R. Y., Amand, T., Ford, M. D., Piomelli, U., Funk, C. D. The Murine Angiotensin II-Induced Abdominal Aortic Aneurysm Model: Rupture Risk and Inflammatory Progression Patterns. Front Pharmacol. 1, (9), (2010).
  23. Parker, G. J., et al. Experimentally-derived functional form for a population-averaged high-temporal-resolution arterial input function for dynamic contrast-enhanced MRI. Magn Reson Med. 56, (5), 993-1000 (2006).
  24. Tseng, W., Leong, X., Engleman, E. Orthotopic mouse model of colorectal cancer. J Vis Exp. (10), 484 (2007).
  25. Bhullar, J. S., et al. A true orthotopic gastric cancer murine model using electrocoagulation. J Am Coll Surg. 217, (1), 64-70 (2013).
Dynamisch contrast versterkte MRI van een orthotope pancreaskanker Muis Model
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kim, H., Samuel, S., Totenhagen, J. W., Warren, M., Sellers, J. C., Buchsbaum, D. J. Dynamic Contrast Enhanced Magnetic Resonance Imaging of an Orthotopic Pancreatic Cancer Mouse Model. J. Vis. Exp. (98), e52641, doi:10.3791/52641 (2015).More

Kim, H., Samuel, S., Totenhagen, J. W., Warren, M., Sellers, J. C., Buchsbaum, D. J. Dynamic Contrast Enhanced Magnetic Resonance Imaging of an Orthotopic Pancreatic Cancer Mouse Model. J. Vis. Exp. (98), e52641, doi:10.3791/52641 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter