Abstract
基因表达及其调控是了解细胞在不同条件下的行为非常重要。使用各种技术现今研究基因表达，但大部分是在提供全转录的表达的总体图象方面受到限制。 DNA微阵列提供了快速和经济研究的技术，这给全局基因表达的全面概述，并且具有的大量应用，包括鉴定新基因和转录因子结合位点，该细胞的转录活性的表征以及在分析数千个帮助基因（在单次实验）。在本研究中，从细胞收获到DNA微阵列分析细菌转录组分析的条件进行了优化。考虑到时间，成本和实验的精度，该技术平台被证明是非常有用的和普遍applicabale用于研究细菌transcriptoMES。在这里，我们通过对比S的转录反应进行DNA微阵列分析与肺炎链球菌作为一个案例研究肺炎生长在不同的L-丝氨酸的浓度在培养基中的存在。分离总RNA通过使用使用RNA分离试剂盒和RNA的质量Macaloid方法通过使用RNA质量检查试剂盒检查。制备cDNA用逆转录酶和该cDNA样品使用两个胺反应性荧光染料1标记。自制DNA微阵列载玻 片用于标记的cDNA样品和微阵列数据的杂交通过使用cDNA微阵列数据前处理框架（Microprep）进行了分析。最后，网络-T是用来分析使用Microprep为统计学显著差异表达的基因的识别生成的数据。此外，在公司内部建立软件包（辣椒，FIVA，披露，检察官，Genome2D）被用来分析数据。
Introduction
整套的mRNA的丰度（转录组）的在特定时间或在特定条件下的编码通过单细胞生物体或真核细胞的基因组中，包括基因过表达或敲除的研究中，被称为转录。转录使我们能够观察到什么程度的基因都在一个时间点X的特定条件下进行表达，并给了我们如何强烈的基因表达相对于参考信息。
微阵列是在固体基材上的二维阵列（通常是载玻片或硅薄膜电池），它可以被用于使用高通量筛选以测定大量的生物材料，和小型化，复用和并行处理和检测方法。芯片有各种型号，包括DNA，基因芯片，蛋白质芯片，芯片肽，组织芯片，抗体芯片，细胞芯片等。 DNA微阵列是基本上微观DNA斑点的组件固定在固体表面上，通常是玻璃。 DNA微阵列被用于测量的基因的表达水平或一组基因的同时或基因型基因组2,3的多个区域。探针的皮摩尔（10 -12摩尔）的每一个DNA斑点代表特定的DNA序列，也被称为记者中存在。从样品中所述标记的mRNA分子被称为“目标”。荧光团可用于测量探针 - 靶杂交和检测的荧光团标记靶确定靶核酸序列的相对丰度。微阵列实验可以完成多个基因测试在并行，因为数组可能包含探头数以万计。一个简单的微阵列实验的布局示于图1。最近，它建立在我们和其他实验室，这些阵列是可重复使用的，这使得该技术相当高性价比即
不同的RNA的分离和纯化技术已开发多年，包括C-TAB，SDS和GT方法4 - 8。此外，一些商业工具包也可提供。用于基因表达的高品质的RNA是非常重要的。因此，RNA分离方法被修改，以获得RNA的最大数量。同样，步骤进行cDNA制备cDNA的和标签被最小化。还通过内部内置软件包和工具进行9有效扫描后的数据正常化。
肺炎链球菌是一种革兰氏阳性的人类病原体是定植鼻咽和是多重感染，如肺炎，败血症，中耳炎的病因和脑膜炎10。该细菌可以利用各种所需的生长和存活11,12的营养素。大量的研究已经进行了对肺炎球菌氮代谢和调节强调氨基酸的重要性及其在毒力13,14作用。在这项研究中，S的转录反应肺炎改变L-丝氨酸，氨基酸大量存在的人血浆中的浓度，使用DNA微阵列的报道。 S的 转录反应肺炎在L-丝氨酸（150μM）的最低浓度生长进行比较，在最大浓度（10毫米）的丝氨酸的生长。化学上确定的培养基（CDM或基本培养基）15被用于该研究，以控制丝氨酸的浓度。本研究的焦点是使该技术的用户友好的，并提供对数据归一化和分析不同的工具。因此，许多工具用于分析和数据解释被开发。 FIVA（函数信息查看器和分析器）提供了包含在集群有基因的信息处理平台相似的基因表达模式和构建功能简16。检察官是另一个软件包，有助于推测功能和基因17的注解标识。通过利用聚类方法公开提供了一种DNA结合位点的检测算法。基因的顺 -regulatory图案可以通过使用这种算法18进行投影。 Genome2D通过提供不同颜色范围来表征上的基因组中的地图19中的变化，基因表达水平提供了一个基于Windows的平台，可视化和转录组数据的分析。辣椒Web服务器提供，除了所有功能于一身的分析方法，一个工具箱开采调节子，推动者和转录因子结合位点20。间区域中的细菌基因组完整注释可以通过使用这个包来实现。生物学家可以大大辣椒中受益，因为它为他们提供了一个平台，设计性实验S以便虚拟信息可以在体外 20来确认。这些软件包显著有助于微阵列分析，其中大部分都是免费提供的，使数据标准化和分析非常可靠。
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Protocol
1.制备媒体，以及细胞培养
- 成长S.如先前所描述的11 肺炎 D39野生型菌株21。接种储存在-80℃下在10％的甘油（以1/100的比例在50毫升无菌试管中）的50ml化学定义的培养基（CDM）为6.4 15最终pH的细胞，但是从氨基酸省略L-丝氨酸混合。
注：两个不同的是存款机使用;一种含含L-丝氨酸（10毫米）的最大浓度的L-丝氨酸（150μM），而另一个的最小浓度。该最小浓度基本上是L-丝氨酸在人血浆中的浓度，目的是比较S的基因表达这两个条件下，肺炎 D39应变。
2.提取总RNA
- 物料
- 使用酸性酚，核糖核酸级总RNA的分离。
- Macaloid：
- 暂停2克macaloid在100毫升TE煮5分钟。冷却至RT，并声处理直至macaloid gels.Centrifuge在50毫升的TE pH为8，并储存在4℃下将溶液在2000×g下5分钟，在室温，重悬。
- 解决方案：
- 治疗用焦碳酸二乙酯（DEPC）所有的解决方案。添加100微升DEPC / 100ml的溶液，孵育O / N在37℃和高压釜15分钟。
- 方法
- 增长50毫升S.在50毫升管肺炎 D39细胞培养在37℃（无抖动），直到指数中期阶段（OD〜0.3）。离心培养物在4℃下10,000×g下 2分钟。丢弃媒体并立即冷冻在液氮中的细胞沉淀。
- 预混物加入300μl氯仿：IAA（24：1）和300μl的苯酚（酸苯酚，RNA级）。用500微升的有机相在步骤2.2.3。
- 预先在无RNA螺旋盖管中制备下列混合物：00.5克玻璃珠，50微升10％SDS，500微升酚/氯仿：IAA（如制备步骤2.2.2），macaloid层（150-175微升，不准确的，因为它是非常粘稠）。悬浮于400μl的TE（DEPC）的细胞沉淀并加入再悬浮细胞进入螺旋帽试管中。
- 以破碎细胞，将螺旋帽试管中一个珠打浆机为2×60“的脉冲（'均质'）用1分钟的时间间隔在冰上。离心机的样品在10000×g下（4℃）10分钟。
- 上层相转移至新管中，加入500μl氯仿：IAA（24：1）和离心5分钟，以10,000×g下（4℃）。
- 转移500μl的上层相的至新管中，添加的裂解/结合缓冲液2倍体积（1ml）中，并通过上下抽吸混合。分离总RNA使用RNA分离试剂盒，并按照制造商推荐的协议。
3. RNA清理
< OL>RNA 4.分析
- 确定的分光光度计RNA的浓度。通过使用分析如下（ 图2）确定RNA的质量。
- 稀释1μl的样品用50微升DEPC水来获得20-200纳克/微升的浓度。
- 使用1微升稀释的RNA试样根据制造商的说明来检查质量上的生物分析仪。
- 注：23S的比例约为2.0 16S被认为是好的1 A260单位RNA相当于40微克/毫升。推荐的量标注为10-20微克。
5. cDNA的制备和标签
ntent“>注：以下协议之后进行的cDNA的准备和标签。- 退火
- 进行退火反应在300微升的PCR管，保持总RNA 10-15微克的浓度为自制幻灯片或5微克为公司制造的幻灯片。混合的RNA与2微升随机九（1.6微克/微升），并添加无核酸酶水，如果必要，以保持退火混合物的终体积为18微升。
- 保持在退火混合物在70℃下5分钟。此后，冷却该混合物至室温10分钟（退火）和如果需要的话，降速反应到管的底部。将反应管在冰上至少1分钟。
- 反转录
- 准备逆转录酶结构如下：18微升退火混合，加入12微升主结构（包括6微升5X第一链缓冲液，3微升0.1M的DDT，1.2微升25X AA-的dUTP /核苷酸混合物和1.8微升倒Transcriptase（1微升的公司制造的幻灯片）。保持反应混合物为2-16小时，在42℃。
6.降解mRNA和cDNA的纯化
- 以从反应混合物中降低的mRNA，加入3微升的2.5M NaOH和地点，在37℃下进行约15分钟。接着，加入15微升2M HEPES游离酸，以中和氢氧化钠。
- 通过PCR清理列净化的cDNA混合，并按照制造商的协议。
7.测量基因浓度
- 衡量一个分光光度计的cDNA浓度。要继续使用标签，检查的cDNA的浓度至少为60纳克/微升（自制幻灯片）或20毫微克/μL（公司制作的幻灯片）。
8.标签的cDNA与胺活性染料与纯化
- 使用胺反应性染料来标记的cDNA。直接混合的cDNA用的一个等分试样（5微升）胺反应性染料。
- 在RT孵育该混合物中，在黑暗中，60至90分钟，并直接进行染料标记的cDNA的纯化。通过使用PCR净化柱并按照生产商的方案纯化染料标记的cDNA。在50μl的洗脱缓冲液洗脱的cDNA。
9.测量标记的cDNA的
- 使用分光光度计来测量的胺反应性染料入的cDNA掺入。检查的胺 - 反应性染料的浓度为至少0.5皮摩尔/微升在50微升的总体积。
10.混合标记的基因样品
- 自制幻灯片，使用所有的标记cDNA杂交在cDNA的浓度不大于30％的差异。对于公司制造的幻灯片，使用基因与不低于基因浓度为2倍的差异等等。
注意：通常情况下，约300纳克的cDNA，需要对公司制造的幻灯片，相比于REQ这是非常小uired cDNA的量自制的幻灯片。
11.杂交和洗涤
- 使用以下试剂：半幅水，乙醇99％，SHY缓冲（自制;用40微升酵母RNA）。准备最多1毫升害羞。
- 设备和解决方案的准备
- 干燥前打开真空浓缩和加热器至少1小时。接通杂交炉，用调整到正确的杂交温度设定点（对于肺炎链球菌 DNA微阵列，使用45℃）。同样，预热杂交录像带和烤箱30-60分钟。
- 预热SHY缓冲器在68℃至少30分钟。
- 样品制备（标记的cDNA）
- 结合等量标记的cDNA（最多30％差）。使用真空浓缩，在高温（约40分钟），直到体积小于7微升干燥样品。
- 升降滑
- 用干净的升降杆单。注意：±30微升可以在滑动加载。
- 清洁挺杆-卡瓦用肥皂，大量的自来水和100％的乙醇。注：脏升降机单给予很高的背景。
- 空气干燥升降，单用气手枪吹走灰尘颗粒。广场上，在两侧的白色聚四氟乙烯衬里朝下幻灯片干净的升降滑。
- 加入杂交缓冲液（以标记的cDNA）
- 溶解在干燥的染料样品在7微升的H 2 O和孵育在94℃进行2分钟。
- 随即，加入35微升预热SHY缓冲液（68°C），轻轻混匀，在最大速度为1分钟摆脱沉淀。预热探针在68℃，大约5分钟，直到加载。
- 上滑升降滑装配和预热。
- 将热块的杂交幻灯片固定在50℃。将DNA微阵列载玻片上加热杂交滑座和P的升降滑再热与升降滑了一分钟的幻灯片。执行下面的步骤，尽快。
- 添加40微升样品靶到滑动的末端。允许流体通过毛细力在玻璃表面之间流动。缓慢而仔细地执行所有的移液。
- 保持与升降滑水平的幻灯片在任何时候，慢慢地移动，确保了升降滑不动了。
- 就拿预热杂交纸盒拉出杂交炉并关闭机器。代替滤纸浸泡用3ml 2×SSC（标准柠檬酸盐）中的杂交盒。
- 轻轻将杂交滑套与杂交录像带的幻灯片。关闭杂交录像带，并把在杂交炉试（约16-18小时）。
- 滑洗
- 制备新鲜洗涤缓冲液I，II和III（每次洗涤步骤750毫升）中。对于500毫升洗缓冲I，用2×SSC / 0.5％SDS。对于500毫升洗的buff呃II，使用1×SSC / 0.25％SDS。对于500毫升洗缓冲III，使用1×SSC / 0.1％SDS（可选）
- 将洗涤缓冲剂在30℃下（以确保SDS溶解）。
- 淹没的幻灯片尽快，但很平缓，在Falcon管填充用50ml洗涤缓冲液I，直到玻璃靠在管的圆锥形底部。
- 几秒钟后，当升降器滑汇到管的底部，取出用镊子滑动而不刮伤阵列和放入所述洗涤台的齿条之后。继续没有时间差的清洗。
- 为5分钟，在500洗载玻片毫升洗涤缓冲液I（同一个清洗站）。给它的第二洗涤20-30分钟在500毫升洗涤缓冲液II（在洗涤站）。同样，在500洗幻灯片5分钟毫升洗缓冲III（可选）（在清洗站）。
- 干燥载玻片2分钟以2000rpm。
12.微阵列分析
- 扫描图像在扫描仪的各波长和保存文件夹“朱庇特工程”。
- 使用软件最初分析扫描文件如前所述22.运行该软件后，选择“打开图像”选项卡中的红色映像文件（-.550）加载为“红色”和绿色的图像文件（-.635）作为“绿色”。通过选择“加载数组列表”选项卡22载有图像文件肺炎链球菌数组列表中的文件加仑（.gal）。
注：此数组列表包括48格的，对每个网格有16列和15列。在网格上每个点代表一个单独的基因和现货信息，包括基因名是通过现货描述文件添加。当场号码从左边给出向右，从上到下。 - 经过仔细察觉的网格，选择选项卡“查找阵列，查找模块，对齐功能”对齐点。对准所有功能后，分析图像通过选择“分析”TAB。创建具有效果，直方图和散射图的新文件。保存从标签文件“保存结果”作为.gpr文件作进一步的分析。
- 所描述的9与内部开发Microprep软件包进行进一步正常化和数据处理。
- 使用独立的生物复制的DNA微阵列数据这是染料交换。执行CyberT实施T-test1的一个变种，并计算假发现率（一级亲属）所描述的9。
- 差异表达基因，以P <0.001和FDR <0.05为标准。
- 上传NCBI上提交页面DNA微阵列数据得到GEO（基因表达总括）登录号。
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Representative Results
RNA，基因隔离和分析
L-丝氨酸是必需的氨基酸之一，其在人类血浆浓度从60-150微米的儿童和成人不相同。其中嘌呤和嘧啶的生物合成作用凸显其重要性在代谢和它的前体，以数个氨基酸（甘氨酸，半胱氨酸和色氨酸）。以研究L-丝氨酸对S的全转录的影响肺炎 D39野生型菌株，生长在CDM与针对该中的最大浓度（10毫米），在相同的培养基中生长的L-丝氨酸的最小浓度（150μM）的D39 菌株的微阵列分析进行。首先，从两种浓度下生长的细胞分离总RNA。 RNA样品的浓度列于表1中 。使用该质量检查测定总RNA的质量进行了检查。的RNA进行该前用DNA酶I处理检测，以除去可能的基因组DNA 图2示出的RNA的质量。;泳道L表示阶梯，泳道1和2表示从150μM丝氨酸和泳道3和4代表的RNA从10mM丝氨酸的核糖核酸。对应于两个RNA亚基2清晰的条带的存在表明RNA的质量好，可进行实验的下一个步骤。
测定RNA的质量后，cDNA合成完成的。的cDNA用随机nanomers和逆转录酶而形成。的cDNA样品的浓度在表1中给出。将该cDNA标记与胺-反应性染料和标记的cDNA的浓度和染料标记在表1中给出。标记后，将样品相应地混合，然后杂交。在洗涤后，将载玻片用扫描器扫描，并用Gene Pix的Pro软件进行分析。 图3示出了散射积分析的胺 - 反应性染料的比率。初步分析之后，数据被进一步使用PicroPrep软件包（PrePrep，准备，PostPrep）9，以减少噪音和Cyber-T被用于最终分析进行分析。 表2总结了应用标准的≥2.0后的微阵列研究的结果倍的差异和 P -值<0.001。一些基因相比，最大（ 表2）中差异表达的最小L-丝氨酸的存在。
图1的DNA微阵列技术。核糖核酸的概述从控制和靶样品中分离和标记的cDNA，然后杂交。
图2。RNA的质量检查，从S.隔离肺炎 D39细胞生长在最低（150μM）和最大（10毫米）的丝氨酸浓度存在。泳道L表示的大小阶梯而通道1和2代表的RNA样品从在最小丝氨酸浓度的存在下生长的细胞中分离出来。同样，泳道3和4代表的RNA样品从在最大丝氨酸浓度的存在下生长的细胞中分离。该乐队代表23S和16S rRNA基因。只有两个带的存在表明，不存在基因组DNA污染和RNA的质量是好的。
图3.阵列比较分散的样品混合物的曲线图。在图中的每个点代表一个基因的一个实验，用在y轴和染料2上的x轴的染料1的平均表达值（LOG2）。
| 样本 | RNA样品 | 描述 | RNA浓度（ng /微升） | 基因浓度（ng /μL） | 标记的基因（纳克/微升） | DyLight-550（皮摩尔/微升） | DyLight-650（皮摩尔/微升） | 杂交方案 |
| S1 | R1 | D39野生型的CDM +最低L-丝氨酸成长 | 2057 | 255 | 225 | 0.8 | R1 + R3 | |
| R2 | D39野生型的CDM +最低L-丝氨酸成长 | 2566 | 201 | 179 | 1.2 | R2 + R4 | ||
| S2 | R3 | 在CDM +最大的L-丝氨酸D39野生型增长 | 2831 | 292 | 276 | 2.3 | ||
| R4 | D39野生型的CDM +最大增长imum L-丝氨酸 | 1867年 | 172 | 150 | 1 |
在微阵列分析中使用的样品的表1杂交方案。
| 基因 | 函数 B | 比C | |||
| SPD0600 | 细胞分裂的蛋白质DivIB | 4 | |||
| SPD0445 | 磷酸激酶 | 3.5 | |||
| SPD0646 | 假设蛋白 | 3.4 | |||
| SPD0873 | 假设蛋白 | 3.3 | |||
| SPD1223 | 假设蛋白 | 3.3 | |||
| SPD0980 | 核糖磷酸pyrophosphokinase 2.8 | ||||
| SPD1628 | 黄嘌呤磷酸 | 2.7 | |||
| SPD1011 | 甘油酸激酶 | 2.4 | |||
| SPD0645 | 假设蛋白 | 2.3 | |||
| SPD0564 | 假设蛋白 | 2.2 | |||
| SPD0641 | 甘露糖-6-磷酸异构酶，I类，MANA | 2.1 | |||
| SPD1333 | 假设蛋白 | 2.1 | |||
| SPD1384 | 阳离子外流家族蛋白 | 2.1 | |||
| SPD1432 | UDP葡萄糖4-差向异构酶，大风-1 | 2.1 | |||
| SPD1866 | N-乙酰氨基葡糖-6-磷酸脱乙酰酶，NAGA | 2.1 | SPD0104 | LysM结构域蛋白 | 2 |
| SPD0140 | ABC转运，ATP结合蛋白 | 2 | |||
| SPD0261 | 氨肽酶C，PEPC | 2 | |||
| SPD1350 | 假设蛋白 | 2 | |||
| SPD1822 | 核糖体大亚基假尿嘧啶合成酶，RluD亚科蛋白 | 2 | |||
| SPD0453 | I型限制 - 修饰系统，S-亚单位 | -2 | |||
| SPD0459 | 热休克蛋白GRPE | -2 | |||
| SPD1006 | 葡萄糖-1-磷酸腺苷酰转移酶 | -2 | |||
| SPD1799 | 传感器组氨酸激酶，假定 | -2.1 | </ TR>|||
| SPD0387 | 的β-hydroxyacyl-（酰基 - 载体 - 蛋白）脱水FabZ | -2.2 | |||
| SPD1494 | 糖ABC转运蛋白透 | -2.2 | |||
| SPD0974 | I类谷氨酰胺酰胺转移酶，假定 | -2.4 | |||
| SPD1600 | 邻氨基苯甲酸磷酸 | -2.5 | |||
| SPD1472 | 异亮氨酰-tRNA合成 | -2.6 | |||
| SPD0681 | 假设蛋白 | -2.7 | |||
| SPD0501 | 转录抗终止，Lict | -3.4 |
表2.基因S的转录调控比较列表在CD中的肺炎菌株D39 野生型生长男性15与L-丝氨酸的最小浓度和CDM 15与L-丝氨酸的最大浓度。 一个基因数字指D39轨迹标记。B D39注解/ TIGR4注释21。C比表示倍增加/减少的基因的表达在CDM-最大相比，CDM-最低（减号表示下调）。
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Discussion
我们描述了可应用到执行的细菌的全转录组分析一个用户友好的协议。有关此特定技术的关键点是，在其下收获细胞的情况会有所不同。后收获细胞并分离RNA，该技术变得等于对所有类型的细菌的样品，并遵循完全相同的步骤，因此，可以适用于任何类型的细菌培养物。该协议是很简单的，方便的，并开始从RNA分离。我们的RNA分离协议（使用Macaloid和RNA分离试剂盒）是时间效益，因为相比于传统的苯酚 - 氯仿和Trizol试剂的方法。在接下来的步骤中，进行cDNA的制备用酶III酶。接着，cDNA的标记是通过cDNA的第一混合与胺 - 反应性染料进行，然后纯化标记的cDNA。标签也简单，并不需要很多时间作为样品需要被培养约1小时在黑暗中。所有这些步骤可以在任何标准的实验室中进行，因为它不要求任何特别的设备。微阵列扫描仪需要扫描的幻灯片。幻灯片扫描和分析，GenePix Pro程序被使用时，这是一个非常简单的和用户友好的程序22。
做所有的实验后，用MicroPrep和CyberT进行分析。该MicroPrep包，由三个模块组成， 即 PrePreP，准备和PostPreP 9。此数据预处理框架减少的时间数据的归一化，也降低了丢弃的数据量。与该软件可用于便于它使研究者能够在最短的时间中的DNA微阵列数据的理解。它只需几分钟后滑动图像分析完成的原始信号数据转换成高质量的数据转换成用于进一步处理。关于基因在MICR调节池进一步分析oarray可以使用不同的内部软件包来完成。它们包括花椒20，FIVA 16披露18，检察官17和Genome2D 19。这些基于Windows的工具和软件是用户友好的，并在进一步的调查提供了深入了解的数据。这些软件包使得它非常容易和方便的研究人员的数据变得更加有意义和相关使用这种技术。
在微阵列中使用的染料是已知的易受臭氧的效果，其中，染料变得不稳定臭氧和信号强度的存在是如此之低，它不能由扫描仪识别。胺反应性染料是对臭氧的影响较不敏感的用于标记的cDNA。解决臭氧作用将使这种技术甚至更好。
名单被创造的基因，是上调还是下调，在最小的L-SER的存在INE浓度相比，最大（ 表2）。在上调的基因可以根据自己的产品的功能进行分类。其中七编码假定蛋白，四参与碳水化合物的运输和代谢，细胞分裂蛋白DivIB，和某些氨基酸转运和代谢的基因。同样地，也有被下调中的测试条件的某些基因。一个BglG家族转录调节LicT，一些碳水化合物的基因和一些氨基酸特异性基因都属于下调基因。一种热休克蛋白GRPE也是其中的下调的。因此，这项研究提供了测试条件下差异表达的基因的完整概述。分析的结果后，有时验证的结果是必要的。通过qPCR或β半乳糖苷酶测定法使用lacZ启动子融合体，它可以是完成的。
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Disclosures
作者宣称，他们有没有竞争的财务权益。
Acknowledgments
我们感谢安妮·德容和西热Holsappel的帮助，DNA微阵列幻灯片制作。安妮·德容的生物信息学分析的支持表示赞赏。我们也感谢耶勒Slager审查的文件。穆罕默德·阿夫扎尔和伊尔凡曼苏尔是由GC大学，费萨拉巴德，巴基斯坦在巴基斯坦HEC的师资队伍建设项目的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acid phenol | SigmaAldrich | P4682 | |
| Roche RNA isolation kit | Roche Applied Science | 11828665001 | |
| Glass beads | 105015 | ||
| Chloroform | Boom | 92013505.1000. | |
| IAA | 106630 | ||
| Nanodrop | Nanodrop | ND-100 | |
| Agilent BioAnalyser | Agilent | G2940CA | |
| Superscript III | Life technologies Invitrogen | 18080044 | |
| AA-dUTP | Life technologies Invitrogen | AM8439 | |
| DDT | Life technologies Invitrogen | 18080044 | |
| First Strand buffer | Life technologies Invitrogen | 18080044 | |
| NaOH | SigmaAldrich | S8045-1KG | |
| HEPES | SigmaAldrich | H4034-500G | |
| DyLight-550 | Thermoscientiffic | 62262 | |
| DyLight-650 | Thermoscientiffic | 62265 | |
| SHY Buffer | SigmaAldrich | H7033-125ML | |
| Speedvac cooler | Eppendorf | RUGNE3140 | Speedvac concentrator plus |
| Hybridization oven | Grant Boekel | Iso-20 | |
| Lifter-slips | Erie Scientific | 25x60I-M-5439 | |
| Wipe | KIMTECH | ||
| SDS | SigmaAldrich | L3771-100g | |
| SSC | SigmaAldrich | W302600-1KG-K | |
| Genpix autoloader 4200A1 | MSD analytical technologies | Microarray scanner | |
| Sodium bicarbonate | SigmaAldrich | 104766 |
References
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