Introduction
肝類洞内皮細胞（のLSEC）は、高度の肝正弦波の壁を覆う内皮細胞を分化されます。のLSECを非diaphragmedある穿孔で穿孔され、経細胞は、直径50〜250 nmの細孔。のLSECの表面の最大20％が篩板1-3（ 図1）と呼ばれる数十〜数百のグループに通常は穿孔によって覆われています。開窓は非常に効率的限外濾過システムを作成し、血液と肝細胞との間にプラズマとnanosubstratesの転送を可能にします。開窓は動的構造である - それらのサイズおよび/または数の両方は、種々の生理学的状態、薬物、および疾患に応じて変更することができます。例えば、開窓は摂食状態4よりも絶食が大きいです。 2ジヨードアンフェタミンは開窓の数を増加させ、5,6および細胞あたり穿孔のサイズおよび数の減少は、加齢および多くの疾患状態7-13で起こります1を開窓を調節。
開窓の研究は困難です。開窓の直径は、両方の無傷の肝臓組織または培養のLSECに電子顕微鏡を用いて、先にのみ観察が可能であった、従来の光学顕微鏡の解像度の下にあります。走査型電子顕微鏡（SEM）は、最も頻繁に、SEMは、数千の内皮表面と測定の大部分の観察を可能にするために開窓サイズ、周波数及び気孔率（開窓によって穿孔さLSEC膜の割合）を研究するために使用されていますそうでない場合は数十開窓の何千もの。その有用性にもかかわらず、結果がために、SEMベースの研究から報告されますこのような開窓大きさ、数、周波数および多孔性などのLSECのパラメータは、文献（ 表1）に大きく異なります。
開窓とふるい板は、契約、ブレーク拡張または試料調製中に合体壊れやすい構造であり、このように慎重な処理は、それらの整合性を維持するために必要とされます。上昇灌流圧14;固定液およびバッファ15の誤った浸透圧;不十分な固定または固定時間。とポストの固定、脱水、乾燥の速度は超微細構造の保存（ 図2）と干渉アーティファクトを生成することができるSEMのための処理のすべての領域です。開窓の損失（「窓外放出 '）と開窓収縮が減少し開窓径および細胞間隙率で、その結果、貧困層の固定の結果として発生する可能性があります。 SEM分析のための試料の保存性を向上させる方法は、先に15-17に記載されていると説明されますここでは、試料の保存性を改善する方法についての追加のヒントを。試料保存の主な目標は、LSECの表面を可視化することができるように、正弦波から血液を除去し、高圧または遅延固定のいずれかからLSECの損傷を回避するためです。門脈を介して固定液の全肝灌流は、肝臓固定するための好ましい方法です。詳細に説明したように他の場所で16,18灌流が低圧で行われなければならない（例えば、H 2 0 10 cm）のLSECに圧力関連灌流遺物や損傷を回避するためには、典型的には、細胞膜における内などの大きなギャップを明らかに。他の箇所19で詳細に説明したようしかし、合理的な固定は、多くの場合、ヒトおよび動物の肝生検の針灌流を使用して得ることができます。血液試料からフラッシュされるまで、この技術は、直接組織に固定液を注入することを含むと組織がしっかりと固定されています。電子顕微鏡用試料の固定はPERFする必要があります肝臓極めて迅速自己分解プロセスの結果として生じる微細構造の変化を防止するための血流の停止後、できるだけ速やかにormed。
我々は、アーチファクトの混入を最小限に抑え、かつ開窓の測定を標準化する画像解析の方法をも提供します。多孔性および開窓周波数について顕微鏡写真用正弦波の選択の変化、アーティファクトの画像解析、およびセル面積の測定は、公表された結果の主な相違につながっています。開窓とデータ表示のための最小要件の評価および測定のための標準化されたアプローチは、明らかに以前4,10,20-31文献で 扱われていません。
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Protocol
注：動物の使用を含むすべての手順は現地の法律に従って行われます。私たちの仕事はシドニー現地保健地区動物福祉委員会によって承認されています。許可された手順は、プロジェクトのライセンスのドキュメントに記載されており、すべての回で、動物の福祉を確保するためのガイドラインに従っています。作業が行われている国の動物実験に関する法律の遵守を確認してください。
EM固定剤を調製するための1プロトコル
- 固定液100mlを、磁気撹拌機で絶えず撹拌しながら、三角フラスコに蒸留水25ミリリットル、65ºCの熱パラホルムアルデヒド粉末2gを添加することによって、パラホルムアルデヒドを準備します。
注：グルタルアルデヒド、パラホルムアルデヒドおよびカコジル酸ナトリウム緩衝液は、すべての有害物質であり、常に換気フード内で処理する必要があります。 - 2分間65ºCの熱は、その後冷却します。必要に応じて、水酸化ナトリウム溶液を加えるdropwISE完全に透明な溶液に、撹拌しながら。
注：水酸化ナトリウムは危険です、取り扱いに注意して。 - EMグレードの株式のグルタルアルデヒドの10ミリリットル、50の0.2Mカコジル酸ナトリウム緩衝液mlのショ糖の2グラムを追加し、マグネチックスターラーで攪拌します。 1.0 M CaCl 2を2ミリリットルを追加します。
- 蒸留水で100mlにソリューションを構成するに先立ってpHを7.4に調整します。最終的な固定液は、2.5％のグルタルアルデヒド、2％パラホルムアルデヒド、2ミリモルのCaCl 2、0.1 Mカコジル酸緩衝液中の2％スクロースを含有します。総浸透圧が440ミリオスモル/ Lであることを確認してください。準備の24時間以内に使用してください。
肝臓の2灌流固定
- 37ºC - 35ウォーム灌流緩衝液および固定液。放血バッファおよび固定液の正確な温度は、組織の整合性を確保するのに役立ちます。
- を50mg / kgのケタミンおよび5mg / kgのキシラジンの単回腹腔内注射で動物を麻酔し。
- 動物は、下になったら後肢の引っ込めと尾のピンチによって評価深麻酔は、Yの切開は、肝臓と門脈を露出させるために、動物の腹部の平滑末端のはさみで作られています。
注：その機器が容易にSEMで見られます微生物や一般破片と試料の汚染を回避するために、クリーンであることを確認してください。 - 他のより遠位の肝臓に、肝臓に門脈の周りに1近位に2つの非常に緩い縫合糸を結びます。
- （マウス用のラットで18 G、22 G）適切なサイズIVカニューレとカニューレを確保する.Tighten縫合糸を門脈にカニューレを挿入。
- リン酸緩衝生理食塩水で灌流を開始37ºCに加温し、そしてH 2 Oの10cmの圧力で行われます。 PBSの5〜20mlを、通常肝臓に放血するために必要とされます。
注：気泡は、彼らが塞栓と圧力に二次的アーティファクトを誘導するようにカニューレに接続されたチューブを介して肝臓に入力できるようにしないでください。肝細胞の損傷、SI灌流圧が高すぎるnusoidsとLSECの開窓が発生します。 - バッファは肝臓から自由に出ることができるように、腹部と胸部大静脈を切断。これは、のLSECに高い背圧による損傷を防止します。
- 肝臓は血液の自由になると、EM固定剤を含むPBSを交換し、肝臓が硬化して非常に薄いされるまで、約5分間灌流。
- 灌流を中止し、1に固定された肝臓をカット-鋭いメスを用いて2mmの3ブロック。
- 4ºCで72時間 - 24 EM固定剤でポストフィックス組織。
注：一般的に、underfixationはoverfixation以上のアーティファクトを引き起こします。 - 4ºCで保存、0.1Mカコジル酸ナトリウム緩衝液に接尾期間以下の固定液に変更します。
注：この方法で保存された試験片は（12ヶ月まで）かなりの時間のために保存されます、しかし、タイムリーな二次固定と検査は最良の結果を得るために推奨されています。
3.ニードルPerfusion
注：ニードル固定は、直接生検肝組織に固定液を注入することを含む灌流固定の変形です。目的は、それらを放血し、固定液に組織ブロックのすべてを露出させるために、血管を通ってフラッシュする固定剤のためのものです。ケアは、圧力傷害18,19を回避するために低い注入圧力を保つように注意しなければなりません。
- 動物または被験体から肝臓の小片を除去し、血液や破片を除去するために生理食塩水ですすいでください。
- ファインゲージの針（典型的にはインスリン注射器）を取り付けたシリンジに通常の生理食塩水を描画します。
- 血液が組織の外にフラッシュされるまで、肝臓に非常にゆっくりと生理食塩水を注入します。複数回の注射が必要な場合があります。
- ファインゲージの針（典型的にはインスリン注射器）を取り付けた別のシリンジにEM固定剤を描画します。
- それはハードで色は黄褐色になるまで肝臓に非常にゆっくりと固定液を注入します。頻回注射sが必要とされ得ます。
- 鋭いメスを用いて2mmの3ブロック- 1に固定された肝臓をカット。 72時間4℃ - 24のためのEM固定剤でインキュベートします。二次固定を開始する前に、0.1Mカコジル酸ナトリウム緩衝液中で3回洗浄します。
走査型電子顕微鏡4.準備
- 洗浄サンプル、0.1Mカコジル酸ナトリウム緩衝液中で3回。脂質を修正するには、ポストは2時間、0.1Mカコジル酸ナトリウム緩衝液中の2％四酸化オスミウムのサンプルを修正します。
注：グルタルアルデヒドと四酸化オスミウムの交差反応し、SEMのアーティファクトを生成するように完全な洗浄は非常に重要です。 - 脱水を開始するために、エタノールの濃度を増加さでサンプルをすすぎます。 5分間、50％エタノールで洗い流し、その後、70％エタノールで5分間3回、 90％のエタノールで5分間、3回すすぎ、 100％エタノールで5分間2回リンス。そして最後に100％エタノール（分子篩）中で10分間2回リンス。
- サンプルからすべてのエタノールを除去と換気フードにヘキサメチルジシラザン（HMDS）と交換し、10分間のままにします。組織サンプルからHMDSを削除し、蒸発させます。
注：したがって、最終脱水工程のために使用する前に室温に到達させるときに冷たいHMDSは非常に吸湿性です。 - 必要に応じて、すぐにサンプルをマウントするか、SEMのためにマウントする準備ができるまでデシケーターに入れます。
5.取り付け
注：正しい試料取付は、SEMで分析のために利用可能な明確に線引き正弦波の数を最大化します。
- 金属SEMスタブのベースにラベルを付け、スタブの先頭に両面導電性カーボンテープを適用します。
- 後続のSEMのための最良の正弦波で表面を識別するために、解剖顕微鏡を用いて試料を可視化。スタブのカーボンテープ表面に上向きにその表面を置きます。
- スティック片をしっかりとスタブに、標本は今スパッタコーティングの準備ができています。
注：スパッタコーター敷地内に試料を導電性金属（金、プラチナ）の緻密な膜で試料を塗布し、電子ビームによる損傷から保護します。コーティングが厚すぎると、目的の構造が隠されてもよいです。
- 回転および45秒間自動スパッタコーティングにモードを設定する自動微細スパッタコーターの真空チャンバ内に配置スタブ。しかし、金にも適しており、細かいディテールのためにプラチナコーティングを使用してください。
- 被覆するために、正弦波の表面を注意していないながら、取り付けられ肝臓検体の外部表面にカーボン塗料の薄い層を適用します。
- 標本はプラチナでコーティングされており、炭素塗料が乾燥した後、彼らは、SEMの観察の準備ができています。サンプルをデシケーター中で保存することができます。
前記走査型電子顕微鏡を使用して
- 場所は、走査型電子顕微鏡に標本や真空に顕微鏡を返します。</ LI>
- 低倍率で開始することによって試料の可視化のための標準的な顕微鏡の操作手順を使用して、徐々に倍率を増加させます。
- 顕微鏡は、距離、スポットサイズと非点収差を操作するための適切に調整されていることを確認。
- 固定の整合性をチェックします。 LSECは、隙間からほとんどが無料で、30測定開窓が含まれている場合 - これは、一般的に試料作製に成功したことを示す250 nmの直径を。
- 正弦波は、ギャップの完全または開窓を欠いている場合には、試料調製は成功していないか、重大な病状があります。この場合には、非常に微細なかみそりの刃でサンプルをスライスし、切断面は、重ね塗りし、正常に固定された正弦波を分析しました。
- 約15,000〜20,000倍の倍率で良好な定着と開窓が明確に（表示されている場合に典型的には、少なくとも10開窓を含むとデブリのない平らなLSECの表面を選択）。
- 肝臓あたり少なくとも二つのブロックを使用して、ブロックの異なる領域から、肝臓あたり少なくとも10正弦波の画像を保存します。 15,000で10顕微鏡写真をサンプリング - 開窓の定量化は、肝臓全体の代表であるために、動物あたり20,000倍の倍率は、一般的に十分です。
8.分析
注：NIHから無償でダウンロードすることができますImageJソフトウェアは、開窓径と周波数（定量化するために利用されるwww.imagej.nih.gov/ijを ）。
- 画像を開くJと（ 画面は、1ショット ）画像に埋め込 まれたスケールバーを使用してスケールを設定します。
- ImageJの中のポリゴンツールを使用して、有窓とdefenestrated領域を含むLSECの全体の平坦な領域の周りにトレース。これは誤って気孔率を膨らまれるように、単にふるいプレートをトレースしません。 obscuriかもしれない細胞表面にあるデブリのいずれかの大規模な作品を除外NGの開窓。
- 、開窓径を測定ラインツールを選択することにより、各開窓の最大直径を通る線をトレースして、ラインを測定するために「M」を押し、「D」永久に画像上に線を描画する（描きます）。この行は、開窓の直径として定義されます。線の長さは、現在のImageJ（ スクリーンショット2）の結果ボックスで利用できるようになります。
- 250 nmのオーバーLSEC細胞質内で大きく穴であるすべてのギャップを測定し、同様に開窓。ギャップはギャップがまた、疾患および毒性の結果として発生する可能性がありますが、多くの場合、貧しい灌流または固定を反映した工芸品です。ギャップのデータは、後の分析における開窓パラメータの計算から除外されます。
- 円形でないギャップの面積は、ギャップの周りトレースとImageJの上での面積を計算することによって計算されるべきです。
- furtheためのExcelスプレッドシートにはImageJに結果ボックスからデータを貼り付けR解析。
9.計算
- （ギャップは≥250 nmであるギャップを含まない）、すべての開窓径の平均開窓径=平均。
- 開窓面積=πR2、R、半径は、ギャップを含まない、個々の穿孔の直径（R = D / 2）から計算されます。
- 気孔率（％）=（Σ（πR2）/分析総面積-ギャップのΣ（面積=））（μmの2））×100。
- 開窓周波数=ギャップの（面積）（μmの2） - Σ分析開窓/（総面積の合計数。
開窓データの10プレゼンテーション
注：開窓データの定量化を含め、可能な限りの資料は、以下の情報を含める必要があります。
- 使用境界の直径は、典型的には、（開窓を定義するために何を確認するステートメントと開窓直径、NM 250）、開窓周波数（数個/μm2）と空隙率（％） - 50との間。
- ギャップが分析に含まれているかどうかを確認するステートメント、開窓直径肝臓、ブロック、イメージおよび穿孔の数の度数分布のグラフは、分析に含まれるべきです。
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Representative Results
走査電子顕微鏡による低倍率での初期の可視化は、多くの大規模な肝血管および正弦波（ 図1A）を観察するのに十分な大き露出面積と肝臓試料の平らな面を明らかにする。実装スタブの正しい肝臓ブロック配置を確保することが、この理由（ 図1B）のために避けるべきである正弦波と肝臓のグリソン鞘の鮮明な画像を得るために必須です。倍率を大きくすると、肝臓の密な血管構造の精密検査を可能にし、血管（ 図1C）を分割し、肝細胞の単一細胞プレートを明らかにする。悪い画質、血液細胞および残骸における肝結果の悪い固定肝臓（ 図1D）の視野を不明瞭。
また、倍率を大きくすると、LSECの開窓（ 図2A）の観察を可能にします。これは、正弦波がCORRていることが不可欠です ectly特定さ-肝細胞のプレートは、ある状況下で、このような姿勢（ 図2B）を支援細管胆汁などの血管が、機能のように見えることができます。高い灌流圧はLSEC篩板の合体によって引き起こされると考えられ、そのような内皮における大きなギャップとしてアーティファクトを引き起こす可能性があります。これらは簡単にSEM（ 図2C）の下で識別されます。核の上に直接、細胞膜を回避することは開窓密度と気孔率の計算（ 図2D）の精度を支援します。
ImageJのでLSECの分析は、LSEC開窓径、密度と周波数（ 図3A）の定量化を可能にします。これらの寸法は、開窓の経験的な測定を提供し、老化、疾患、毒素または治療（ 図3B）によって誘導される変化の測定を可能にします。
ファイル/ ftp_upload / 52698 / 52698fig1.jpg "/>
SEMと肝臓の可視化図1。 （B）グリソン鞘は、正弦波のすべての詳細を説明し;（C）肝臓の密な血管系と（A）SEMの下で最初の検査では、肝臓の正弦波とポータル道と中央静脈のものを含むより大きな血管を明らかに血管の間にある肝細胞の単一細胞プレート;崩壊した正弦波と超微細工芸品の開発における（D）悪い定着結果、この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
図2.肝臓の超微細構造。（A）LSECの開窓を簡単に確認されています Nウェル固定組織で、（B）よく保存毛細胆管と肝細胞の表面;高灌流圧による内皮における（C）大きなギャップ;（D）LSEC核矢印で示した表面の下に膨らみます薄いLSECと気孔率の分析のための領域に含まれるべきではない。 この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
ImageJのでLSECの図3.分析。イメージJ分析から得られたデータによって生成された周波数ヒストグラム（B）、（A）多角形ツールは、測定のための全体の面積の測定を可能にし、ラインツールは開窓の直径を測定するために使用されます。2698fig3large.jpg「ターゲット= "_空白">この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
| 直径（nm）と | 周波数（UM2あたり） | 気孔率（％） | リファレンス |
| ナ | ナ | 60±12 | 20 |
| 127±4nmで | 6.5±0.5 | 4.6±0.4 | 21 |
| ナ | ナ | 40.5 | 22 |
| ナ | 0.6±1.4 | 0.01±0.03 | |
| ナ | 2.5±0.5 | 0.047±0.012 | 24 |
| 87.25±1.4 | ナ | 9.22±0.7 | 25 |
| 100-200 | 4.49±0.69 | 2.55±0.54 | 26 |
| ナ | ナ | 23±2 | 27 |
| 85±17 | 11±0.4 | 6.6±0.2 | 28 |
| ナ | 2.7±1.1 | 4.1±2.3 | 10 |
| 68±1 | 8±0.6 | 3.4±0.2 | 29 |
| ナ | ナ | 3.9±0.2 | 30 |
| 73.3±0.4 | ナ | 2.2±0.2 | 31 |
| 90.7±11.7 | 8.45±2.43 | 5.93±2.05 | 4 |
| 110.7±0.25 | 9 | 6 | 3 |
| 104.8±0.22 | 13 | 8 | 3 |
表1。 貧しい検体と画質表2.トラブルシューティングのヒント。 コンポーネント アーチファクト 固定液の浸透圧と低すぎるバッファ（低張） 細胞膨張 固定液の浸透圧と高すぎるバッファー（高張） 細胞収縮 試料サイズが大きすぎます 固定剤は、インキュベーション=自己融解/不十分な定着時に十分に浸透することはできません 固定液のpHおよびオスミウムの前にバッファ未満7.2以上7.4 タンパク質の変性と構造変形 固定時間が短すぎます 自己消化 固定時間が長すぎます 細胞収縮を引き起こす可能性があります 高温 定着速度がしかし、タンパク質を変性することができる増加 低温 不十分な固定 灌流圧が高すぎます ギャップ、Disse拡大、肝細胞における空胞、篩板の損失、開窓径の拡大の空間 機械的損傷ミンチおよび/または鉗子を使用している場合 組織は固定液によって十分に硬化されていない場合、細胞構造の破砕 死後固定、試料生検、または瀉血に長時間 虚血、自己消化、ギャップ形成、窓外放出 低固定剤インキュベーション容量 20倍未満の検体量=ブロックの中央に固定剤と自己分解の不十分な浸透。 Fixative濃度が高すぎます 濃度は、固定および固定液の浸透速度に影響を与えます。アーチファクトの形成。 固定剤の濃度が低すぎます 定着処理の前に固定液の枯渇は、細胞ブレブ形成およびその他の工芸品を生産完了です。 肝臓での不完全な固定の兆候 細胞ブレブ形成（腫れ微絨毛や細胞質に由来する）、窓外放出、ギャップ、微絨毛の消失、腫れミトコンドリア、細胞膨張、崩壊または圧縮正弦波ルーメン、正弦波管腔内の血液、不規則な形状の肝細胞核 固定剤の血液汚染 固定液を無効にします 汚れた灌流と準備機器 破片や細菌による汚染を試料 塗布後の乾燥剤なしの標本やストレージの不完全な脱水 具体男性はチャージアップSEMに。ブロックにカーボン塗料を追加すると、電荷を減らすことができます
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Discussion
正確かつ再現肝類洞内皮の状態を測定する能力は、これらの非常に特殊化した細胞の生物学を理解する上で重要なステップです。このような構造化照明顕微鏡32などの新しい技術、原子間力顕微鏡33とD-STORM（直接確率光学Reconstrucion顕微鏡）34は、 インビトロでこれらの細胞の形態に関する重要な情報を付与しますが、SEMはにその構造を視覚化し、測定するために主要な方法論のままその場で 。
最も重要と技術的に困難なステップは、初期固定である：肝臓がよく保存されている場合は後続のステップは、肝臓の正弦波の画像を容易に観察し、確かに、美しい生成されます。肝臓全体の灌流は良好な定着性を確保するための最も有効な方法であるが、同等の結果はすぐに修正されている針灌流サンプルが可能です低圧下で。脱水肝臓サンプルによる水の吸収が悪いSEM像のための別の一般的な理由ですが、これは簡単に乾燥剤とのデシケーター内のサンプルを適切に保管することによって回避することができます。
異なる研究グループからの研究は、比較して解釈することができるように穿孔の定量の標準化が必要です。過去には、これらの値が得られたかについてはほとんどの方法論的な情報を公表された値には大きなばらつきがありました。ここでは、開窓の超微細構造を記述する値を決定し、提示するための標準化されたアプローチを提供しています。
可能な限り、開窓データの定量化を含む資料は、以下の情報が含まれている必要があります境界直径はどこ開窓定義するのに使用したものを確認するステートメントで、開窓径（典型的には50の間 - 250 nm）を。開窓周波数（数/＆＃181; m 2）とし、気孔率（％）;ギャップが分析に含まれているかどうかを確認する声明。開窓直径の周波数分布グラフ。また、肝臓、ブロック、画像、開窓の数は、分析に含まれるべきです。
開窓直径、周波数及び気孔率は、肝臓の状態の重要な指標であり、このデータの収集を標準化するフィールドに有益であろう。ここで説明する方法は、LSECと開窓の超微細構造の研究が行われ、別の研究グループ間で比較可能な方法で提示されていることを保証するためのフレームワークを提供します。方法論は、容易に単離及び培養のLSECに開窓を測定するように適合されます。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 25% EM grade Glutaraldehyde | ProSciTech | C001 | Store stock at -20 C until needed, avoid refreeze |
| Paraformaldehyde powder | Sigma Aldrich | 158127 | Always prepare Paraformaldehyde fresh |
| Sodium Cacodylate powder | Sigma Aldrich | C0250 | Prepare 0.2 M stock, pH 7.4 by dissolving powder in dH2O, used mostly at 0.1 M by preparing 1:2 dilution |
| Calcium Chloride | Sigma Aldrich | C1016 | Prepare 1 M CaCl2by dissolving powder in dH2O |
| Osmium tretroxide | ProSciTech | C011 | Wash ampoules in weak acid prior to use to avoid contamination. Prepare 2 % stock in glass bottle |
| Ethanol- Absolute | Sigma Aldrich | 459836 | 100 % Ethanol must be high grade and stored with Molecular Sieve |
| Other grades of Ethanol | Labtech | EL5 | Prepare graded Ethanols with dH2O |
| Hexamethyldisilazane | Sigma Aldrich | 52619 | Allow to reach room temperature before use |
| Cannulas | Terumo | TSROX1832C, TSROX2225C, TSROX2419C | 18 G is suitable for most rats, 22 G is suitable for most mice, but it is good to have a few 24 G on hand in case of very small mice |
| Conductive Carbon tape | ProSciTech | IA0201 | |
| Carbon Paint | ProSciTech | I003 | |
| Ketamine | Must be obtained under license | ||
| Xylazine | Must be obtained under license | ||
| Molecular Sieve | Sigma Aldrich | 208647 | Removes water from the 100 % Ethanol |
References
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