Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Developmental Biology

Fare Enterik Sinir Sistemi Geliştirme gözünüzde canlandırın için immün

doi: 10.3791/52716 Published: April 29, 2015

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Motilite, besin emilimini ve lokal kan akımını kontrol eden işleyen Enterik Sinir Sistemi (ENS), hayat 1 esastır. ENS, göç ve gangliyon içeren nöron ve glial hücreleri ayırt gut, kolonize çoğaltacak nöral tepe hücreleri (NCC) oluşturulmaktadır. Hirschsprung Hastalığı (Man HSCR Online Mendel Kalıtım), 1 4,000 canlı doğumda bir insidans ile multigeneic konjenital bozukluk, kesintiye ENS oluşumunu incelemek için prototipik hastalık olarak kabul edilebilir. HSCR yılında KKK göç ve distal hindgut 2 değişken uzunlukta kolonize başarısız. Ayrıca, diğer ortak gastrointestinal sistem (GİS) gibi anorektal malformasyon, bağırsak atreziler ve motilite bozuklukları gibi pediatrik popülasyonda gelişimsel bozukluklar, temel ENS fonksiyonları bozuklukları ile ilişkilidir ve muhtemelen ince, underappreciated, anatomik değişiklikler ve fonksiyonel değişiklikler ile ilişkilidirENS 3-6. Bu nedenle, bize ENS formasyonunun gelişimsel belirleyicilerini anlamak için izin teknikleri patogenez ve pediatrik GI bozukluklarının olası tedavisi ışık tutabilir.

Göç ve kolonizasyon sonrasında, KKK kendi nörotransmitter fenotip için özel işaretleri ile nöronların içine ayırır. Kolinerjik nöronlar, enterik nöronların 7, yaklaşık% 60 ihtiva eder ve kolin asetiltransferaz (ChAT), uyarıcı nörotransmiter asetilkolin için sentezleme enzimi için lekeleme ile tespit edilebilir. Tarihsel olarak, kolinerjik sinir hücreleri merkezi sinir sistemi karşı yönelik antikorların antijen özelliği farklı karmakarışık edildi görselleştirmek için çalışır (CNS) 8-10 ChAT periferal sinir sisteminin (PNS) karşı ChAT. Bununla birlikte, plasental ChAT'nin karşı yönlendirilen antikorlar, hem merkezi hem periferik ChAT 11-13 tanır, ve Visua izin en son tarif edilen teknikler varYüksek hassasiyetle ENS kolinerjik nöronların katmanlara ayrılmasına önceki gelişim ChAT raportör hatları 14 ile elde edilmiş daha.

Burada, biz, diseksiyon nöronlarda ENS nörotransmitter ifadesini görselleştirmek için fare embriyonik gastrointestinal sabitleme ve immün için bir teknik sunuyoruz. Üretmek için tdTomato hayvanlar ChAT-Cre; R26R: floxSTOP: Bu çalışmalar için, R26R ile birleşir ChAT Cre fareler kullanmışlardır floxSTOP (yazının içinde ChAT Cre tdTomato olarak tanımlanır) tdTomato fareler. Bu hayvanlar daha sonra ChAT ifadesini 14 tespit floresan gazetecilere hem ifade fareler elde etmek için, homozigot ChAT-GFP muhabiri fareler ile evlendirilen bulundu. Bu iki raportör hayvanlar, bir C57BL / 6J background ve ticari olarak (Jackson Laboratuarları, Bar Harbor, ME) mevcuttur.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Wisconsin Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi Üniversitesi bütün prosedürleri onayladı.

Çözümler 1. Hazırlanması

  1. Diseksiyon tamponu ve durulama çözeltisi olarak 1 x fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) kullanın.
  2. Bir şişeye, sükroz ve yeri 30 g ağırlığındaki% 30 sukroz hazırlayın. 1x PBS 99 ml ilave edilir ve 1 ml% 10 sodyum azit ilave edin. Sükrozun tüm çözünene kadar iyice karıştırılır. 4 ° C'de saklayın kadar gerekli.
  3. 1 x PBS,% 3 bovin serum albümini (BSA) ve% 0.1 Triton-X-100, karıştırılarak Bloke edici çözelti hazırlayın. İyice karıştırın ve gerektiği kadar buzdolabında saklayın.
  4. 1x PBS içine PFA uygun miktarda tartılarak 1x PBS içinde% 8 paraformaldehit (PFA) çözeltisi hazırlayın ve tamamen eriyene kadar sonra 65 ° C de inkübe edilir. -20 ° C dondurucu içinde 25 mi alikotlar içinde gerekli olana kadar saklayın. Kullanım gününde 1 PBS içinde% 4 PFA seyreltin.

2. Embriyo ve Gut Dissectiyon

  1. Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu uyarınca protokolleri onayladı, zaman aşımına gebe fare euthanize ve PBS 1x 60 mm Petri içeren buz soğuk içine rahim aktarın.
  2. Keskin bir makas kullanarak bir diseksiyon mikroskobu altında, embriyolar maruz açık rahim duvarına kesti. PBS 1x buz soğuk içeren temiz bir 60 mm Petri kabı içine rahim ve yerden embriyolar çıkarın.
  3. Buz gibi soğuk 1x PBS dekapitasyon her embriyo Euthanize. Eğer floresan proteinleri içeren transgenik fareler kullanıyorsanız, floresan aydınlatma altında, pozitif transgenik embriyolar tespit.
  4. Bir diseksiyon mikroskobu kullanarak her embriyo gastrointestinal sistem parçalara ayır. Ince forseps kullanarak, sol taraf yukarı bakacak ve sağ taraf Petri kabı tabanına karşı olacak şekilde embriyoyu yönlendirin. Iç organları ortaya çıkarmak için embriyo üst beden duvarı çıkartın. Dorsal vücut duvarı ve iç organlar arasında ince forseps yerleştirin. Crembriyo iç organları kaldırmak için bir makas gibi kesici eylem birbirlerine karşı forseps Öss.
  5. Bundan başka çevre organlara uzak gastrointestinal sistem alt incelemek ve sonra buz soğukluğunda 1x PBS içeren bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içine, her gastrointestinal sistem yerleştirin.

GI yolları 3. Sabitleme

  1. Buz gibi soğuk 1x PBS ile her GI 3 kez durulayın ve ardından% 4 PFA ile değiştirin. 1.5 saat boyunca oda sıcaklığında sallanan bir platform üzerinde bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüplerine GI yolları düzeltildi. Sallanan bir platform üzerinde 1 saat süre ile sonra da RT'de GI yollar 5 dakika boyunca 3 kez yıkayın ve. Bu aşamada, gerekli olana kadar 1 x PBS,% 0.1 sodyum azid ihtiva eden% 30 sukroz içinde 4 ° C de gastrointestinal yolları saklayın.
    NOT: Alternatif olarak, dokuların bütünlüğü üzerinde herhangi bir etkisi olmaksızın bir yıla kadar% 30 sakaroz embriyolar saklayın. % 30 sukroz içinde numunelerin depolama immün ya da Ekim içine kriyo-sectioni için, ya numune, daha sonra işleme izinng. Alternatif olarak, aşağıda ayrıntılı immün protokolü ile devam edin.

4. immün Protokolü

  1. Numuneler% 30 sukroz içinde depolanmış olursa, sallanan bir platform üzerinde onlara 1x PBS içinde 20 dakika boyunca 3 kez yıkayın.
  2. Oda sıcaklığında 1 saat için sallanan bir platform üzerinde çözüm engelleme içine GI yolları yerleştirin.
  3. Bloke çözeltisi çıkarın ve sallanan bir platform üzerinde 4 ° C'de oda sıcaklığında ya da O / N 4 saat ya da çözüm engelleme seyreltilmiş birincil antikor uygun miktarda gastrointestinal yolları inkübe edin. (Hastadan elde edilen serum) insan anti-Hu antikorun 1000 seyreltme, 1:, tavuk anti-yeşil flöresanlı protein (GFP), antikorun 1000 seyreltme 1: keçi anti-ChAT antikor 100 seyreltme 1 kullanın.
    NOT: bir hastadan elde lokal olarak elde edilen bir insan anti-Hu antikoru kullanan, ancak, anti-Hu, örneğin, ticari olarak temin edilebilir, fare anti-Hu, (1 de kullanımı: 500 seyreltme).
  4. 1x PBS GI yollarını durulayın3 kez 5 dakika boyunca ve daha sonra bir sallanan platform üzerinde oda sıcaklığında 1 saat karıştırıldı.
  5. 1 seyreltilmiş sekonder antikor ile 1X PBS yerine: 500, 4 ° C'de, oda sıcaklığında ya da O / N oranında ya da 4 saat için sallanan bir platform üzerinde çözüm engelleme. Örneğin DyLight, eşek anti-tavuk 2'ye ait ve eşek anti-keçi Cy5 olarak eşek anti-insan amin reaktif boya kullanın. Eşek anti-fare amin-reaktif boya 405: 500 oranında seyreltilmiş kullanılarak fare anti-Hu antikor, bir 1 kullanın.
    NOT: Endojen GFP ve tdTomato ifade ve gelişimsel yaşla birlikte artış immün açıklık yoğunluğu. Bu, tipik olarak dokuların etkin boyama sağlamak için de kullanılabilir antikorun hacmini azaltmak ve amacıyla tek tek boyama çözeltisi 150 ul 0.2 ml tüpler embriyonik bağırsaklar immunostain.
  6. 5 dakika boyunca 1 x PBS 3 kez GI yolları yıkayın ve daha sonra bir sallanan platform üzerinde oda sıcaklığında 1 saat karıştırıldı.
  7. Bir cam slayt üzerine DAPI ile, floresan montaj ortamına bir kaç damla yerleştirin. GI tra daldırınfloresan montaj ortamına ct ve doku üzerine direkt olarak cam kapak ekleyin. Orta -G monte floresans yarı kalıcı bir sızdırmazlık sağlayan, suda çözünebilir bir bileşiktir.
    NOT: Vectashield gibi kullanın floresan montaj orta solma ve antikorların photobleaching engelleyen orta montaj tabanlı bir gliserol olduğunu. Her iki ürün de dokular 4 ° C'de uzun bir süre boyunca saklanabilir olanak tanır.
  8. Konfokal mikroskop kullanılarak floroforun her görüntüleri yakalayın. Tablo 3'te sunulan fluorophores ve kullanılan filtreler için uyarım dalga boylarını kullanarak.
  9. Görüntü yakalamak için kullanılan konfokal türüne bağlı olarak uygun yazılım kullanılarak bilgisayar destekli görüntü analiz gerçekleştirin.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Biz daha önce ChAT ifadesini 14 tespit GFP ve tdTomato floresan gazetecilere hem ifade farelerin nesil tarif var. FloxSTOP: Kısaca, ChAT-Cre fareler R26R ile evlendirilen edildi üretmek için tdTomato hayvanlar ChAT-Cre; R26R: floxSTOP: (ChAT-Cre tdTomato denir) tdTomato fareler. Bu hayvanlar daha sonra homozigot ChAT-GFP muhabiri fareler ile evlendirilen bulundu. Embriyolar izole edildi ve dokular sabit edilmeden önce kesilir ve Tablo 1 'de listelenen antikorlar ile, yukarıdaki gibi immunosteyn edildi. Uzak ince barsak (SI) ve proksimal kolon E11, E13.5 ve E16.5 analiz edildi

E11 anda, Hu-pozitif nöronlar uzak SI içinde bulunan, ancak henüz NCC proksimal kolon (Şekil 1) ulaşmamıştır. Bu zaman noktasında, Hu-pozitif nöronlarının çoğunluğu ChAT immüno olarak GFP pozitif göstermektedir. İlginç bir şekilde, bu zaman noktasında, İfadeChAT Cre tdTomato yapısının salgılamanın saptanabilir değildir. E13.5 tarafından, Hu-pozitif nöronların çoğunluğu ChAT-IR ve ChAT-GFP pozitif ve ChAT-Cre tdTomato pozitif nöronların az sayıda görülen her ikisi de. E16.5 ile ChAT-Cre tdTomato pozitif nöronların sayısı arttıkça, ancak ChAT İR nöronların sayısında küçük bir kısmı olmaya devam etmektedir.

Şekil 1,
Distal SI (etiketli "SI") ve proksimal kolonda E11 At Embriyonik Gün 11'de Distal İnce Barsak ve Colon Kolinerjik Nöronlar Şekil 1. Temsilcisi görüntüleri, Hu-pozitif nöronlar (mavi) ("Co" etiketli) Bu aşamada SI içinde sadece bulunmaktadır. Çoğu Hu-pozitif nöronlar ChAT-IR (beyaz) ile boyanmış co-ve ChAT-GFP (yeşil) vardır. Bununla birlikte, bu zaman noktasında, bu nöronların yok ChAT Cre tdTomato pozitif (kırmızı) vardır. Ölçekbar = 100 um. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 2,
Embriyonik gün de Şekil distal ince Barsak kolinerjik nöronların 2. Örnek Çıkan ve Kolon 13.5 ve 16.5. Resim kolinerjik E13.5 distal ince bağırsakta nöronlar (üst panel) ve E16.5 (alt panel) gösterir. E13.5 Hu-pozitif nöronlarının çoğunluğu ChAT IR ChAT-GFP pozitif (üst panel) idi. Bu ko-eksprese ChAT Cre tdTomato az sayıda. E16.5 olarak, daha fazla ChAT Cre tdTomato nöronlar olgunlaşmamış gangliyon (alt paneller) bulundu. Ölçek çubuğu = 100 mikron. Bu figur büyük halini görmek için tıklayınıze.

Primer Antikorlar
Antijen Antijen Seyreltme Tedarikçi ve Ayrıntılar
Hu (insan nöronal protein) Hu proteini 1: 1000 Insan hastadan serum (Madison, Wl)
GFP (yeşil floresan protein) GFP proteini, IgY fraksiyonu 1: 1000 Aves Lab, Inc (Tigard, OR), Tavuk poliklonal, GFP-1020
ChAT (Kolin Asetiltransferaz) İnsan plasental enzimi 1: 100 Millipore (Billerica, MA), keçi poliklonal AB144P
İkincil Antikorlar
Isim Fluorofor Seyreltme Tedarikçi ve Ayrıntılar
Eşek anti-insan DyLight 405 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories (West Grove, PA), 709-475-149
Eşek anti-tavuk Cy2'nin 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories (West Grove, PA), 703-225-155
Eşek anti-keçi Cy5 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories (West Grove, PA), 705-175-147

Tablo 1. kendi satıcı ile çalışmada kullanılan birincil ve ikincil antikor Ayrıntılar. Bu çalışmada kullanılan birincil ve ikincil antikorlar ve kullanılan seyreltiler.

Primer Antikorlar
Antijen Seyreltme Satıcı İkincil antikor
Sox10 01:50 Santa Cruz Biotechnology, Dallas, Teksas Eşek anti-keçi
p75 1: 250 Promega, Madison, WI Eşek anti-tavşan
PGP9.5 1: 1000 Abcam, Cambridge, MA Eşek anti-tavşan
BFABP 1: 500 Millipore, Billerica, MA Eşek anti-tavşan
S-100 1: 500 DAKO, Carpinteria, CA Eşek anti-tavşan
GFAP 1: 500 DAKO, Carpinteria, CA Eşek anti-tavşan
nNOS 1: 500-1000 Emson, Cambridge, UK Eşek anti-koyun
VIP (vazoaktif bağırsak polipeptidi) 1: 500 Epstein ve Paulsen, Madison, Wl Eşek anti-tavşan
Madde P 1: 200-400 DiaSorin, Stillwater, MN Eşek anti-koyun
İkincil Antikorlar
Isim Seyreltme Tedarikçi ve Ayrıntılar Fluorofor
Eşek anti-insan 1: 500-1000 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA DyLight 488
Eşek anti-insan 1: 1000 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA Cy3
Eşek anti-tavşan 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA DyLight 488
Eşek anti-tavşan 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA Cy3
Eşek anti-koyun 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA Cy2'nin Eşek anti-koyun 1: 1500 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA Cy3
Eşek anti-keçi 1: 500 Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA Cy3

ENS gelişimini incelemek kullanım Tablo 2. Ek Primer ve sekonder antikorları içerir. Daha önce ENS gelişme eden çalışmalarda kullanılan birincil ve ikincil antikorlar.

Uyarma Emisyon
Lazer Hattı Fluorofor Tipi Örnekler Fotoçoğaltıcı Tüp Filtre Seçenekleri
408 nm Mavi Alexa Fluor 405, Cascade Mavi, Kumarin 30, DAPI, Hoechst, Pacific Blue, çoğu kuantum noktaları 1 BP 425-475 nm
488 nm Yeşil Alexa Fluor 488, ATTO 488, Kalsein, Cy2'nin, EGFP, FITC, Oregon Yeşil, YO-PRO-1 2 BP 500-550 nm
561 nm Kırmızı Alexa Fluor 546, 555, 568, ve 594, Cy3, DII, DsRed, MCherry, Fikoeritrin (PE), Propidyum İyot (PI), RFP, TAMRA, tdTomato, TRITC 3 BP 570-620 nm
638 nm Uzak Kırmızı Alexa Fluor 633 ve 647, alofikosiyanin (APC), Cy5, TO-PRO-3 4 BP 663-738 nm

Tablo 3. Konfokal görüntüleme uyarma dalga boyları, fluorophores ve filtreler. Uyarma dalga boyları, saptanabilir fluorophores ve istihdam filtreler sunulmaktadır. Bu bilgiler, çok renkli immunofluoresence için ikincil antikor kombinasyonu seçiminde kullanılabilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Laboratuvarımız ve diğerleri HSCR bağırsak kusurlar bile ganglionated ince bağırsağın 5,15,16 içine aganglionik kolon sınırlı ama proksimale genişletilmiş olmadığını göstermiştir. Bu değişiklikler ENS nöronal yoğunluğu ve nörotransmiter fenotip değişiklikleri içerir ve HSCR hastalarda gözlenmiştir dismotilite sorumlu olabilir. Biz ENS formasyonu belirleyicilerini anlamak için çabalarımızı yukarıdaki teknikleri kullanmış olurlar. Spesifik olarak, bu teknikler, nöronal nitrik oksit sintaz (nNOS) nöronları, vazoaktif intestinal polipeptidin nöronlar (VIP), hem de kolin asetiltransferazı (ChAT) nöronları (Tablo 2) 5 görselleştirmek için kullanılmıştır. Bu tekniğin önemli bir avantajı, immün ya da gömme ve cryosectioning ya, daha sonra işlenmek için% 30 sukroz içinde örnekleri saklamak için yeteneğidir.

Bağırsak NCC kolonizasyonu ilerleyen bir dalga cephesi f olarak ortaya çıkarE14.5 için rom E9.5. Nöronlar tanımlayan Hu ile hücreler, yukarıda tarif edildiği gibi, bilgisayar destekli görüntü analizi ile birlikte, nöronal yoğunluk kantitatif karşılaştırma sağlar. Nöronal yoğunluk azalma HSCR 5 ganglionated bağırsak kısımları, hem de intestinal motilite bozukluğu 13 diğer modelleri bulunmaktadır. Hand2 bir koşullu silinmesi olan fareler, farklı nörotransmitter olarak indirgenmiş nöronal sayıları ifade nöronların oranlarda değişiklikleri göstermektedir. Ayrıca, Noggin ya PTEN aşırı ifadesi ile hayvanlar bağırsak 6,17 boyunca nöronal yoğunluğu artmıştır işlemini göstermektedir.

ENS nöronlar arasındaki nörotransmitter fenotipleri dengesi sıkıca luminal içerikleri, kan akımı ve besin emilimi düzenlenmesi hareketi için bağırsak duvarının koordineli kasılması sonucu, düzenlenir. KKK nöronal kimlik kazanmak kez zaman dar bir pencere önünde olduğunuBir nörotransmitter fenotip 14 taahhüdünde. Biz son zamanlarda immün E10.5 bir ChAT nörotransmitter fenotip, genetik muhabiri modelleri (örneğin, ChAT-Cre veya ChAT-GFP) 14 ile gözlenen daha erken embriyonik aşamaya tanımlar olduğunu göstermiştir. Ayrıca, immünoreaktif nöronlar erken gelişme, ChAT nöronları ENS daha nöronal farklılaşma düzenleyen bir rolü olabileceğini düşündürmektedir Sonuç (tüm ENS nöronların bir oranı olarak) yetişkin seviyelere ulaşması ChAT.

Nitrik oksit sentaz (NOS) ENS bulunan primer gevşeme nörotransmiterdir ve orantılı HSCR 5 bağırsak boyunca ENS nöronlarda artar. Buna ek olarak, vazoaktif intestinal peptid (VIP) değişiklikler, aynı zamanda kas gevşemesi aracılık ve bağırsak duvarı boyunca kan akışını düzenleyen katılan bir nörotransmiter HSCR modellerinde 5 bulunur. Bu veriler sırayla nasıl comp anlamak için, düşündürmektedirENS ve onents işlevini düzenleyen, farklı nörotransmitterlerin sistematik muayene yapılmalıdır. Burada sunulan teknikler hali hazırda, uygun antikorlar kullanılarak, bu analiz izin verecek şekilde adapte edilebilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Bu çalışma, Amerikan Pediatrik Cerrahi Birliği Vakfı Ödülü (AG) ve Sağlık K08DK098271 Ulusal Sağlık Enstitüleri (AG) bythe desteklenmiştir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Phosphate buffered saline Oxoid BR0014G
Sucrose Fisher S2
Sodium azide Fisher BP9221
Bovine serum albumin Fisher BP1605
Triton X-100 Sigma X100
Paraformaldehyde Sigma 158127
60 mm Petri dishes Fisher FB0875713A
Fluorescence microscope Nikon SMZ-18 stereoscope
Dissection microscope Nikon SMZ-18 stereoscope
Fine forceps Fine science tools 11252-20
1.5 ml Eppendorf tubes VWR 20170-038
Fluoromount-G SouthernBiotech, Birmingham, AL 0100-01
Glass slides Fisher 12-550-15
Cover glass VWR 16004-330
Confocal microscope Nikon Nikon A1
Nikon Elements Nikon

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Gershon, M. D. Developmental determinants of the independence and complexity of the enteric nervous system. Trends Neurosci. 33, (10), 446-456 (2010).
  2. Amiel, J., Sproat-Emison, E., et al. Hirschsprung disease, associated syndromes and genetics: a review. J Med Genet. 45, (1), 1-14 (2008).
  3. Erickson, C. S., Barlow, A. J., et al. Colonic enteric nervous system analysis during parenteral nutrition. J Surg Res. 184, (1), 132-137 (2013).
  4. Erickson, C. S., Zaitoun, I., Haberman, K. M., Gosain, A., Druckenbrod, N. R., Epstein, M. L. Sacral neural crest-derived cells enter the aganglionic colon of Ednrb(-/-) mice along extrinsic nerve fibers. J Comp Neurol. 20, (3), 620-632 (2011).
  5. Zaitoun, I., Erickson, C. S., et al. Altered neuronal density and neurotransmitter expression in the ganglionated region of Ednrb null mice: implications for Hirschsprung's disease. Neurogastroenterol Motil. (2013).
  6. Margolis, K. G., Stevanovic, K., et al. Enteric neuronal density contributes to the severity of intestinal inflammation. Gastroenterology. 141, (2), 588-598 (2011).
  7. Qu, Z. -D., Thacker, M., Castelucci, P., Bagyánszki, M., Epstein, M. L., Furness, J. B. Immunohistochemical analysis of neuron types in the mouse small intestine. Cell Tissue Res. 334, (2), 147-161 (2008).
  8. Bian, X. -C., Bornstein, J. C., Bertrand, P. P. Nicotinic transmission at functionally distinct synapses in descending reflex pathways of the rat colon. Neurogastroenterol Motil. 15, (2), 161-171 (2003).
  9. Johnson, C. D., Epstein, M. L. Monoclonal antibodies and polyvalent antiserum to chicken choline acetyltransferase. J Neurochem. 46, (3), 968-976 (1986).
  10. Tooyama, I., Kimura, H. A protein encoded by an alternative splice variant of choline acetyltransferase mRNA is localized preferentially in peripheral nerve cells and fibers. J Chem Neuroanat. 17, (4), 217-226 (2000).
  11. Koga, T., Bellier, J. -P., Kimura, H., Tooyama, I. Immunoreactivity for Choline Acetyltransferase of Peripheral-Type (pChAT) in the Trigeminal Ganglion Neurons of the Non-Human Primate Macaca fascicularis. Acta histochemica et cytochemica. 46, (2), 59-64 (2013).
  12. Sang, Q., Young, H. M. The identification and chemical coding of cholinergic neurons in the small and large intestine of the mouse. Anat Rec. 251, (2), 185-199 (1998).
  13. Lei, J., Howard, M. J. Targeted deletion of Hand2 in enteric neural precursor cells affects its functions in neurogenesis, neurotransmitter specification and gangliogenesis, causing functional aganglionosis. Development (Cambridge, England). 138, (21), 4789-4800 (2011).
  14. Erickson, C. S., Lee, S. J., Barlow-Anacker, A. J., Druckenbrod, N. R., Epstein, M. L., Gosain, A. Appearance of cholinergic myenteric neurons during enteric nervous system development: comparison of different ChAT fluorescent mouse reporter lines. Neurogastroenterol Motil. 26, (6), 874-884 (2014).
  15. Teitelbaum, D. H., Caniano, D. A., Qualman, S. J. The pathophysiology of Hirschsprung's-associated enterocolitis: importance of histologic correlates. J Pediatr Surg. 24, (12), 1271-1277 (1989).
  16. Aslam, A., Spicer, R. D., Corfield, A. P. Children with Hirschsprung's disease have an abnormal colonic mucus defensive barrier independent of the bowel innervation status. J Pediatr Surg. 32, (8), 1206-1210 (1997).
  17. Puig, I., Champeval, D., De Santa Barbara, P., Jaubert, F., Lyonnet, S., Larue, L. Deletion of Pten in the mouse enteric nervous system induces ganglioneuromatosis and mimics intestinal pseudoobstruction. J Clin Invest. 119, (12), 3586-3596 (2009).
Fare Enterik Sinir Sistemi Geliştirme gözünüzde canlandırın için immün
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Barlow-Anacker, A. J., Erickson, C. S., Epstein, M. L., Gosain, A. Immunostaining to Visualize Murine Enteric Nervous System Development. J. Vis. Exp. (98), e52716, doi:10.3791/52716 (2015).More

Barlow-Anacker, A. J., Erickson, C. S., Epstein, M. L., Gosain, A. Immunostaining to Visualize Murine Enteric Nervous System Development. J. Vis. Exp. (98), e52716, doi:10.3791/52716 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter