Abstract
成年鼠和人的脊髓神经干/祖在生长因子富集培养基中培养细胞（NSPCs）允许，自我更新的和具有发泡性的神经干细胞的多能增殖。在血清条件下，这些多能NSPCs将分化，产生神经元，星形胶质细胞和少突胶质。所收获的组织被酶促解离以木瓜蛋白酶-EDTA溶液，然后机械地分离，并通过一个不连续密度梯度分离，得到是镀在补充有表皮生长因子（EGF）的Neurobasal培养基，碱性成纤维细胞生长因子的单个细胞悬浮液（bFGF的），和肝素。成年大鼠脊髓NSPCs是生长的贴壁培养的自由浮动的神经球和成人脊髓NSPCs培养。在这些条件下，成人脊髓NSPCs增殖，前体细胞的明确标记，并在通道可连续展开。这些细胞可以bê研究在体外响应于各种刺激，而外部因素可以被用来促进谱系限制检查神经干细胞的分化。多能NSPCs或其后代也可以移植到各种动物模型来评估再生修复。
Introduction
NSPCs致力于能够自我更新和体外易于扩展神经系多能细胞。我们将这些细胞作为神经干/祖细胞的混合群，因为它们显示自我更新的多能干细胞和更限制性祖细胞的性质。 NSPCs被发现在胎儿和成人脑和脊髓1,2-两者。在成人中，NSPCs通常静态和驻留特定龛包括脑室下区衬侧脑室2-4，以及围绕脊髓5,6的中央管室周区域内。
通常情况下，NSPCs如在无血清培养基中自由浮动的神经球或以贴壁单层补充EGF和bFGF，这对于干细胞/祖细胞群选择分裂素中培养。最初由雷诺和Weiss 2开发的神经球测定中，是最常用的培养和扩大的神经干细胞。 NSPCs显示多能的时候都接种于生长因子 - 自由含培养基的血清，分化成神经元，星形胶质细胞和少突胶质。多能，自我更新NSPCs可以分离和培养从成年啮齿动物脊髓当培养组织包括中央管6,7的区域。使用从相对于其他区域产生的细胞在成人脊髓生成NSPCs的潜在的优点是，这些组织特异性细胞最相似的细胞在脊髓被丢失或损坏的以下的损伤或疾病。
以前的工作表明，从成人脊髓衍生神经球可能不会传播长期或传代来产生足够数量的细胞8,9。但是，在培养条件的修改中，我们报道了成人脊髓源性NSPCs膨胀和移植，这表明自我更新和多能NSPCs可以从器官移植供体10的成人脊髓中分离。首先，大多数的白质解剖和这些培养细胞中除去生长因子富含介质粘附基板上选择用于增殖成人脊髓NSPCs。在这个协议中，我们描述了从成年大鼠和人类器官移植的供体，脑室周围组织的解剖，并NSPCs的分离，培养和扩大了脊髓的收获。
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Protocol
所有动物的程序都是由大学健康网络的动物保健委员会，多伦多加拿大批准，按照既定的指南编制的加拿大委员会关于动物保护实验动物的护理和使用的政策。对于人类脊髓组织的收获，从大学健康网络研究伦理委员会，并从延龄-礼品生活基金会负责监督器官捐赠在加拿大安大略省获得批准。
1.准备解剖缓冲区和文化传媒
- 对于大鼠脊髓的隔离，制备100ml夹层缓冲液（1×PBS + 0.6％葡萄糖+ 2％青霉素 - 链霉素）和冷藏。对于人类脊髓制备100ml清扫缓冲液（1×HBSS + 0.6％葡萄糖+ 2％青霉素 - 链霉素），并冷藏。
- 制备100ml无血清培养基（SFM）和温暖的在37℃。为了制备SFM，加入2毫摩尔L-谷氨酰胺，100微克/立方米升青霉素 - 链霉素，2％B27，和10％的激素组合，以的Neurobasal-A培养基。为了制备激素混合，得到1：含0.6％葡萄糖1 DMEM / F12培养基，3毫碳酸氢钠 ，5mM的HEPES，25微克/毫升胰岛素，100微克/毫升脱辅基转铁蛋白，10μM腐胺，为30nM硒，和20nM的孕酮。
- 制备EFH生长因子富含电镀媒体（至SFM加入20毫微克/毫升的EGF，20纳克/ ml的bFGF，和2微克/毫升肝素）和温暖的在37℃。保证人体EFH包含人类重组生长因子（见表材料）。
2.收获和成年大鼠脑室周围脊髓组织的解剖
- 消毒解剖仪器在乙醇和冲洗在无菌盐水中，或高压釜文书提前。给老鼠-根据自己的机构（6〜8周龄）一个致命注射戊巴比妥钠（1毫升65毫克/毫升）或麻醉剂（ 即 4％异氟醚）的过量批准的动物协议。 D乌斯的大鼠的背部，用70％的乙醇，拆下上背表面的皮肤具有大夹层剪刀。
- 持垂直于背水面的剪刀，横向切割上面的后肢脊柱。使用更小剪刀纵向切割的背部肌肉覆盖脊柱的喙方向露出棘突。
- 开始在暴露的尾端，插入骨钳或小钝骨切割器械extradurally成在脊髓和脊柱之间的空间内的椎管的外侧面。使小切入薄片（左骨弓和棘突的上椎骨的每一侧右），并仔细剥离薄片以暴露脊髓（ 图1A-D）。确保叶片的角度是浅而平行于线这样的底层脊髓没有损坏。
- 继续在全椎板切除喙方向博览会Ë胸椎和脊髓型颈椎病。
- 轻轻地用生硬的组织钳和使用microscissors脊柱切除脊髓仔细切断根系释放线。将切除脊髓中含有4℃无菌鼠清扫缓冲区（1.1如上所述）培养皿。冲洗在新鲜制备的4℃解剖缓冲器组织并用剪刀横向切割脊髓1厘米的段（ 图1E）。
- 对于组织的每个部分，用一只手将与细镊子组织。另一只手，用microscissors小心取出覆脑膜，白质，和大多数的灰质与解剖范围的援助。或者，使用细镊子（杜蒙＃4），以剥离大部分的灰质和白质，而使脊髓它包括室管膜和少量周围灰质（ 图1F-H）的仅脑室区域。
- 池解剖脑室周围组织到含有冷解剖老鼠缓冲10cm的无菌培养皿。
3.采收和成人脑室周围人的脊髓组织的解剖
注意：人的脊髓组织从成年器官移植供体收获（供体年龄从2至60岁的年龄范围）的其他器官已被删除为器官移植后。生活计划的延龄，礼品获得同意切除组织以研究为目的，从病人家属，并通知我们收获的团队及时，使得我们已经能够在2小时以内主动脉阻断的收获线。男，女成年捐赠者的负面血清学和感染没有接受。
- 使用相同的前曝光收获组织在手术室无菌方式通过前路已解剖器官移除由器官运输兰特收割队。
- 暴露通过回缩脊髓前柱与大肋撒播和剩余的组织和器官，包括大血管的大桨拉钩。
- 使用安装有一个长叶片穿过椎间盘的脊柱的所需长度的喙和尾部端削减要切除胸骨锯。角锯约45°向内从椎体停止只是短暂椎管外侧部切开一个三角槽。
- 整块除去具有弯曲的骨凿和槌注意避免通过硬脑膜切割的帮助下的所需的段的椎体的内侧方面。然后轻轻抬起硬脑膜覆盖脊髓用有齿镊，尖锐地切开线的喙和尾椎末端。用长剪刀和镊子进行双边横切个人根源。
- 将脊髓的切除段在4°的温度不育缓冲液（1×HBSS + 0.6％葡萄糖+ 2％青霉素 - 链霉素）在大试管运输到组织培养室。
- 注意：通常，3 -脊髓从上部胸椎6厘米段和/或中到低胸椎水平在无菌条件下在手术室除去尽快停止流通后，置于冷的无菌缓冲。循环停止并除去脊髓之间所经过的时间随收获靶器官捐赠所需要的时间，并已介于45分钟至2小时。如果心脏和肺部也被拆除，夹层可以采取远吻侧收获下颈椎脊髓的一部分也是如此。
- 在3小时以内尽快解剖人类脊髓组织收获后，一般。取出硬脑膜和其他脑膜钳。在冲洗新鲜的4℃解剖缓冲脊髓组织横向切成1厘米的段。
- 随着解剖范围的帮助下，用组织钳，细镊子和microscissors每个组织切除段的覆脑膜，白质，和大多数的灰质。凝聚解剖脑室周围组织，其包括室管膜和少量的周围灰质，到含有冷人类解剖缓冲器10cm的无菌培养皿。
4.培养分离成年大鼠和人类脊髓NSPCs和
- 执行以下步骤在无菌条件下在层流罩。
- 剁碎的解剖老鼠或人类脑室周围组织成1mm的3个与microscissors。
- 酶分解使用的木瓜蛋白酶解离套件，在材料/试剂表中所示的蛋白水解酶的组织糜。注：试剂成分包括4瓶;瓶1：Earle氏平衡盐溶液（EBSS），小瓶2：木瓜蛋白酶containin克L-半胱氨酸和EDTA，小瓶3：脱氧核糖核酸酶I（DNA酶），小瓶4：卵类粘蛋白的蛋白酶抑制剂与牛血清白蛋白（BSA）。
注意：注意 ：木瓜蛋白酶是一种巯基蛋白酶具有广泛的特异性蛋白底物。木瓜蛋白酶本文从番木瓜植物的胶乳衍生并降低最蛋白质底物相比更广泛胰蛋白酶。在离解过程中存在一些细胞损伤引起DNA释放到解离介质，这将增加粘度和使移液困难。因此，DNA酶被包括在细胞分离过程中消化的DNA，而不会损坏完整细胞。 Ovomucoids被糖蛋白用于抑制解离步骤后，木瓜蛋白酶活性的蛋白酶抑制剂。
- 在第一次使用，重组白蛋白卵类粘蛋白的抑制剂混合物（瓶4）32毫升EBSS（瓶1），然后储存在4℃和用于后续隔离。注意：这产生以10mg卵类粘蛋白抑制剂和10mg每ml白蛋白的有效浓度的溶液。
- 添加EBSS（瓶1）5毫升，以木瓜蛋白酶小瓶（小瓶2），得到在20个单位的木瓜蛋白酶/ ml的溶液在1毫L-半胱氨酸用0.5mM EDTA中。检查时完全溶解的木瓜蛋白酶溶液出现清楚，否则将小瓶在37℃水浴中十分钟，直到木瓜蛋白酶完全溶解，以确保酶的全部活性。
- 添加EBSS（1瓶）的500微升到DNA酶小瓶（瓶3），轻轻混匀DNA酶敏感剪切变性。加入250微升DNA酶溶液到含有木瓜蛋白酶小瓶，导致大约20单位/ ml的木瓜蛋白酶和0.005％DNA酶的终浓度。保存DNA酶小瓶的平衡以后使用。
- 放置在木瓜蛋白酶溶液中的切碎大鼠或人的组织中制备的上面的步骤4.4。对于人体组织分离，分裂组织糜同样两者之间木瓜蛋白酶小瓶（约为0.2克/小瓶）。
- 孵育在37℃下与上摇杆平台恒定搅拌以解离组织中活化的木瓜蛋白酶溶液。孵育大鼠组织45分钟到1小时，和人体组织为取决于组织糜，约0.2的量为1〜2小时 - 分别0.4克。
- 用10毫升吸管研磨该混合物以分解任何残留的组织块以产生混浊的细胞悬浮液。转移的细胞悬浮液（不包括任何片未解离的组织）到无菌的15毫升锥形管中并离心，在300×g离心5分钟，在RT。
- 重悬沉淀的细胞在含有介质卵类粘蛋白，木瓜蛋白酶抑制剂。
- 通过混合2.7毫升EBSS（瓶1）用300微升重组白蛋白的卵类粘蛋白的抑制剂溶液（瓶4）的在15毫升的锥形试管制备的卵类粘蛋白溶液。加入150微升的DNA酶溶液（瓶3）保存在上面的步骤4.4。
- 丢弃上清该沉淀的细胞，并立即重新悬浮在稀释的DNA酶白蛋白抑制剂混合物的细胞沉淀。
- 分离完整细胞通过离心从细胞膜通过单一步骤不连续密度梯度。
- 通过加入5毫升白蛋白抑制剂溶液（瓶4）至15ml管中，并用5毫升吸管轻轻制备不连续密度梯度，缓慢层细胞悬浮液（其制备如步骤4.8所述）上的顶白蛋白 - 抑制剂溶液。
- 离心，在70×g离心6分钟，在室温。
- 注意：渐变的两个层之间的界面应清晰可见，尽管在此边界最小混合不会影响结果。膜碎片留在接口和脱落的细胞沉淀在试管底部。
- 对大鼠细胞，弃去上清，重悬在1ml大鼠EFH介质的细胞沉淀（预加热至37℃）。计数与血球活细胞密度和板的细胞进入一个T25培养烧瓶中，在10个细胞/微升EFH的密度。从大鼠组织细胞的典型产率为约2×10 6个细胞与约80％viability.If克隆培养物所需的，种子细胞在低于10个细胞/微升的密度。孵育烧瓶在37℃在5％CO 2，并允许培养物生长不受干扰1周，以避免球体的聚集。
- 对于人细胞，弃去上清，重悬细胞沉淀在10ml人类EFH培养基（预加热至37℃）。通过一个40微米尼龙细胞过滤器过滤该细胞悬浮液，接着用30ml EFH以除去髓鞘和细胞膜碎片。离心机在300×g离心5分钟，重悬细胞沉淀在1ml EFH培养基。
- 计数活细胞密度用血球计和在总体积板的人类细胞于6孔培养板，在10 5个细胞/孔的密度5毫升EFH /孔。从人体组织细胞的典型产量是约1×10 6个细胞用约70％的生存能力。预涂井粘附基材，如基质胶（参见下面的注释）。稀释在40微升基质胶的比率1毫升SFM。
- 注意：可替换地，也可以使用其他粘合基材如聚-D-赖氨酸/层粘连蛋白，纤连蛋白或胶原。
- 孵育所述板在37℃在5％CO 2，并允许培养物生长静置1周。
5.传代成年大鼠和人类脊髓NSPCs的
- 鼠NSPCs会形成小神经球约70微米直径1日当周首次接种的范围内;通道大鼠NSPCs每周收集细胞悬浮液，在300×g离心离心5分钟，并机械捣碎细胞沉淀以解离的神经球。
- 种子细胞分离到含有新鲜的大鼠中EFH T25烧瓶。或者，用50％的大鼠条件培养基传代。鼠NSPCs的典型产量在传代为约5×10 6个细胞，其与通道数呈指数地增加。
- 为人类文化，到初始电镀后一周，更换一半的新鲜EFH培养基每周两次，以允许细胞粘附到基质上。一般地，1 - 2周后，一旦细胞已经附着到衬底，每周用新鲜EFH替换培养基的整个体积的两倍。
- 8周 - 4之间达到汇合前传代细胞。
- 传代培养的细胞通过从基板酶促分离细胞（见表材料）用2ml酶每孔在37℃下温育约10分钟。收集细胞悬浮液，离心分离，在300×g离心5分钟，并轻轻重悬细胞沉淀在1ml新鲜制备EFH培养基。
- 计数活细胞用血细胞计数器和板将细胞于6孔培养板（预共如上在步骤4.12），在10 5个细胞的密度/孔在5毫升EFH的总体积/孔ated。人类NSPCs的典型产率在传代为约2×10 6个细胞，通常这将增加一倍与通路。通常，维持培养物用50％的空调EFH介质2 - 每周3次传代之间。
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Representative Results
在EFH培养基中生长在悬浮培养成年大鼠脊髓细胞将配成1日当周首次电镀内小神经球（未分化细胞的克隆）。在原代培养物，最镀细胞就会死亡和生长因子响应的干细胞会增殖，并选择用于EFH介质。由通道3，将有大量的自由浮动的神经球大约100微米的直径（ 图2A）。神经球是圆的和相高亮，并且在高的放大倍率，纤毛状microspikes被看见从细胞上球体它们是神经球不像细胞碎片（ 图2B）的团块的特性的外侧突出。从大鼠组织细胞的典型产率为约2×10 6个细胞与约80％的存活率。神经球不应在太高的密度接种，以避免细胞簇的聚集。此外，大型的神经球变得难以分离和细胞将成为坏死在球体的中心。如果文化留太长传代在此之前也将出现。在EFH培养，成年大鼠脊髓NSPCs增殖（ 图2C）和表达巢蛋白（ 图2D）的标志物的前体细胞和成熟神经低水平的标记物（数据未显示）。
成人脊髓NSPC文化不增长那样迅速老鼠NSPC文化。如果人类脊髓细胞培养最初悬浮，它们会形成聚集体和不规则集群的少量细胞结合碎片（ 图3A）的。随后这些文化的传代不提倡NSPC人口的富集。然而，当人细胞上的贴壁单层镀在EFH中，生长因子响应NSPCs粘附到衬底（ 图3B）和随后的媒体替换移除髓鞘和细胞碎片（ 图3C）。 C的典型产量从人体组织ELLS是约1×10 6个细胞用约70％的生存能力。当人NSPC培养成为确立作为贴壁单层，所述NSPCs然后也可以在悬浮培养物铺板以形成自由浮动的神经球。在EFH培养，成人脊髓NSPCs增殖（ 图3D）和表达巢蛋白（ 图3E）和Sox2（ 图3F），所示的转录因子通过神经干细胞和成熟神经标记物非常低的水平（数据来表示未示出）。
图1.椎板切除的大鼠脊髓和脑室周围区域的清扫。 （A）在脊髓的暴露尾端，咬骨钳插入extradurally进入椎管的外侧面。（B）中的小切口被制成各硅椎板椎骨和椎板去仔细剥离，露出脊髓。（C）椎板切除术后暴露的脊髓型颈椎病。胸椎横截面（D）示意图显示脊髓和做椎板切除术的切口位置（描绘用红色虚线）。薄层和棘突（阴影区）都被删除。（E） -脊髓被横向切成1厘米的段。（F）的上覆脑膜，白质，而且大部分的灰质小心使用microscissors除去。（G ）脑室周围糜组织。（H）横向大鼠脊髓沾满luxol快速蓝色和苏木和伊红与虚线轮廓显示脑室周围解剖区域的部分。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2.成年大鼠脊髓NSPCs。（a）由第3代，无数的神经球被当大鼠脊髓NSPCs生长在自由浮动悬浮培养见过。（B）神经球是相明亮，microspikes从神经球突起（箭头）是在高放大倍率显而易见。（℃）离解的神经球（第3代，第4天）接种在基质胶包被的孔中EFH介质，固定，并进行免疫染色并用Hoechst形象化细胞核（蓝色）。在EFH条件，成年大鼠脊髓NSPCs增殖（如与Ki67免疫染色），和（D）主要快递巢。 请点击此处查看该图的放大版本。
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图3.成人人类脊髓NSPCs。（甲）当最初接种在培养瓶中，成人脊髓NSPCs不生长良好。在EFH介质初级自由浮动培养（接种后13天）的细胞和碎片显示聚集体。（B）中与此相反，在EFH初级粘附培养，NSPCs已附着到基质胶基质（箭头），后第17天显示电镀，和（C）在体外 41天。（D）在EFH介质，成人脊髓NSPCs增殖，如图与Ki67免疫染色（ 体外 26天示出），并且主要快递（E）的巢蛋白（ 在 26天示出体外 ）和（F）Sox2的（ 体外 66天示出）。细胞核用Hoechst（蓝色）。/ftp_upload/52732/52732fig3large.jpg“目标=”_空白“>点击此处查看该图的放大版本。
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Discussion
在大鼠脊髓组织护理的解剖应采取在执行椎板切除不要损坏脊髓。这是比较容易分离脑室周围组织时的脊髓节段都完好无损。的组织片段应全部浸入夹层缓冲器和上覆脑膜和白质可以被切掉为的纵向条带microscissors。另外，精细组织钳可以用来剥白质离开。
为隔离程序NSPCs，我们使用了木瓜蛋白酶EDTA解离法结合机械研磨以解离的大鼠和人的脊髓组织。相比于其他蛋白酶，木瓜蛋白酶是损害较小但有效的，如前面产后大鼠皮层神经元11的离解所示。我们发现，离解，只有机械研磨，常与胎儿组织所用，不是很有效与来自成人组织。第后Ë酶解，机械研磨重要的是打破了剩余的组织碎片。研磨带用移液器反复细胞分散应当这样进行，以有导致混浊细胞悬浮液没有保持完整的组织碎片。然而，研制不应执行太强烈以避免细胞悬浮液和所得的细胞死亡的气泡。
传代，大鼠神经球被离解成通过机械研磨单细胞悬浮液，如最初描述的2。然而，神经球，也可以使用酶的方法，如胰蛋白酶-EDTA由不会损伤细胞表面受体或球形成干扰，只要酶曝光是短暂12解离。
有许多优点在利用神经球测定培养NSPCs。这是比较简单的，重复性好，可对神经干CEL快速扩张LS 2,12。然而，神经球是异质主要包含是更受限制，只有少量的干细胞祖细胞。几个因素，如细 胞密度和传代技术可以影响培养物的表型，和神经球也可以从祖细胞13形成。神经球都高度能动和可能熔化，即使在低细胞密度14的条件。因此，神经球在培养的数目并不代表的干细胞的数量。从祖细胞区分神经干细胞，应该使用神经集落形成细胞测定15,16。
成年大鼠脊髓NSPCs增长以及在EFH悬浮培养神经球补中，很容易扩展。与此相反，我们已发现，成人脊髓NSPCs长得更好作为贴壁单层10。人脑源性神经干细胞能持续长期单层崇拜茜在促分裂原可促进其增殖能力17,18的存在下，化学上确定的培养基。如在此协议中所述，NSPCs可以从器官移植供体的成人脊髓中分离和传代和扩大作为贴壁单层中的EGF，bFGF的存在下，和肝素10。这是比较容易隔离年轻的比老的捐助者NSPCs的细胞膨胀得更快，虽然NSPCs仍然可以从供体分离到我们最大的60岁10岁。我们已研究了各种粘合基片如基质胶，纤连蛋白，I型胶原和聚-D-赖氨酸/层粘连蛋白的，并发现这些是有效用于成人脊髓粘附NSPCs 10。最初两个神经球贴壁培养含有细胞聚集，碎片和死细胞。然而，这种碎片逐渐与传代培养和要素富集的neurobasal中选择成长为增殖NSPCs删除。还碎片和髓鞘污染可以减少与小心剥离和去除白质从脊髓组织片段。通过一个过滤电镀前也除去髓鞘过滤所得细胞悬浮液。
我们培养的成人脊髓NSPCs以贴壁单层为至少9个月，涉及约10次传代，虽然在较旧的培养物有增加的风险为核型异常。我们进行对人NSPCs 4个月培养核型分析，并发现了一个正常二倍体核型，无染色体异常（数据未显示）。我们还发现，细胞增殖和能力分化为少突胶质细胞，在培养增加时间减少。例如，O4阳性细胞的相对比例从1.3％在培养10下降1个月时在培养到0.01％，在4个月。大鼠和人类NSPCs适合进行冷冻保存使用标准满足冻结部门首长，并显示在表型轮廓没有显著差异。
多能NSPCs在文化的分离和扩增允许有几个体外应用，包括各种因素对成体神经干细胞分化的检查。可以在体外产生，并移植到动物模型如脊髓损伤，中风和神经变性疾病，以检查这些神经干细胞在体内的修复反应NSPCs数量增加。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1x PBS | Life Technologies | #10010023 | Dissection buffer |
| 1x HBSS | Life Technologies | #14175095 | Dissection buffer |
| D-glucose | Sigma | # G-6152 | Prepare 30% glucose stock solution for dissection buffer and hormone mix |
| Penicillin-Streptomycin | Life Technologies | #15140-148 | Dissection buffer and culture medium |
| Neurobasal-A | Life Technologies | #10888-022 | Culture medium |
| L-glutamine, 200 mM | Life Technologies | #25030-081 | Culture medium |
| B27 | Life Technologies | #12587010 | Culture medium |
| DMEM | Life Technologies | #11885084 | Hormone mix |
| F12 | Life Technologies | #21700-075 | Hormone mix |
| NaHCO3 | Sigma | # S-5761 | Prepare 7.5% NaHCO3 stock solution for hormone mix |
| HEPES | Sigma | #H9136 | Prepare 1M HEPES stock solution for hormone mix |
| Insulin | Sigma | #I-5500 | Hormone mix |
| Apo-transferrin | Sigma | #T-2252 | Hormone mix |
| Putrescine | Sigma | # P7505 | Hormone mix |
| Selenium | Sigma | #S-9133 | Hormone mix |
| Progesterone | Sigma | #P-6149 | Hormone mix |
| EGF, mouse | Sigma | #E4127 | Prepare 100 μg/ml stocks in B27 and aliquot; EFH medium |
| EGF, human recombinant | Sigma | #E9644 | Prepare 100 μg/ml stocks in B27 and aliquot; EFH medium |
| bFGF, human recombinant | Sigma | #F0291 | Prepare 100 μg/ml stocks in B27 and aliquot; EFH medium |
| Heparin, 10,000 U | Sigma | #H3149 | Prepare 27.3 mg/ml stocks in hormone mix and aliquot; EFH medium |
| Papain dissociation kit | Worthington Biochemicals | #LK003150 | Contains EBSS, papain, DNase, ovomucoid protease inhibitor with BSA |
| Sodium Pentobarbital | Bimeda – MTC Animal Health Inc | DIN 00141704 | |
| Tissue Forceps: Addisons | Fine Science Tools | #11006-12 | Serrated standard tip; micro-tip also available |
| Fine Forceps: Dumont #4 | Fine Science Tools | #11241-30 | |
| Microscissors | Fine Science Tools | #15024-10 | Round-handled Vannas |
| Rongeurs | Bausch & Lomb | N1430 | |
| 10 mm Petri dishes | Nunc | 1501 | |
| T25 Culture flasks | Nunc | 156367 | |
| 40 μm nylon cell strainer | VWR | CA21008-949 | |
| 6 well plates | Nunc | CA73520-906 | |
| Matrigel, growth factor reduced (100x) | Corning | 354230 | Thaw according to directions and freeze aliquots; use diluted at a ratio of 40 μl Matrigel: 1 ml SFM |
References
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