Introduction
세포는 여러 조직에서의 기계적 하중을 실시하고,이 기계적 자극 유전자 발현, 성장 인자, 사이토 카인, 또는 세포 외 기질의 재 형성의 방출 패턴의 변화를 촉진하고 세포 골격 1-4 밝혀졌다. 기계적 자극에서 형질 세포 내 신호는 mechanotransduction 5-7의 과정을 통해 발생한다. 호흡계에서, mechanotransduction의 일 결과는, 반응성 산소 종 (ROS) 환상 인장 변형의 존재 폐 상피 세포에서 8,9 및 전 염증성 사이토 카인 (10)의 증가이다. 강력한 증거는 과도한 인장력이 11-14 세포의 생화학 적 반응에 더하여, 폐포 상피 부상을 직접 유도 것을 시사한다. 포커스 여기서 기계적 변형에 폐 세포의 반응에 주로이지만 mechanotransduction 의해 유도 경로는 BAS에 중요한 역할혈관 음 (15)의 조정 · 성장판 (16)의 개발을 포함하여 인체의 여러 조직의 IC 기능.
mechanotransduction에 대한 관심이 증가 배양 세포 및 조직 생리 학적으로 중요한 기계적 하중의인가에 대한 여러 장치의 발전을 가져왔다. 특히, 조직 경험 기계적 하중의 일반적인 형태 인 인장 변형을, 적용 장치 11,17-19 인기 있습니다. 그러나, 사용 가능한 장치의 대부분은 어느 조직 공학 응용 프로그램을위한 생물 반응기로 설계 또는 스트레칭 실시간 영상에 도움이 아니다. 이와 같이, mechanotransduction의 경로의 조사를 용이하게하기 위해 장력 세포와 조직을 시각화 도구와 방법의 개발이 요구된다.
여기서, 면내 기계적 연신 장치를 설계하고, 프로토콜은 m을 적용하기 위해 개발되었다ultiple 조직에 변형의 형태와 세포를 실시간으로 (그림 1A-D)의 생화학 적 및 기계적 응답의 영상을 허용하면서. 장치는가요 성 멤브레인을 잡고 약 20 % (도 1b)에 면내 방사형 팽창 위로 적용 원주 등 간격 배치 여섯 클램프를 사용한다. 모터 (도 1C)는 인큐베이터의 외측에 배치 된 모터 공급자 독점 소프트웨어에 의해 제어되는 동안 구동 장치는 장기간 세포 배양 용 인큐베이터에 배치 될 수있다. 모터는 긴장과 이완 균일 여섯 들것 클램프 구동, 내부 캠을 회전 선형 드라이버에 접속된다.
기계적인 장치 이외에, 맞춤형가요 성 멤브레인은 기계 시스템에 사용되는 시판되는 세포 배양 준비 막으로부터 만들어졌다. 약의 직경 그리고 원형 벽 (28mm)를 만들어 세포 만 잘 설명 변형 프로파일이 지역에서 배양 할 수 있도록 유연한 막에 부착 하였다. 구동 장치 내에서 이러한 막의 배치는가요 성 멤브레인의 중앙에 균일하고 등방 변형을 제공 할 수 있는지 여부를 확인하기 위하여, 유한 요소 분석은 시판되는 소프트웨어 (도 1E-F)를 수행 하였다. 플렉서블 멤브레인은 대칭 경계 조건으로 메시에 대한 모든 사변형 요소를 이용하여 모델링되었다. 그림 1 층에 표시된 최대 주 변형률의 윤곽 플롯에서 볼 동심 링은 변형의 등방성 분포를 나타냅니다.
막에 의해 경험 한 스트레인은 하중 (도 2)를 통해 표시의 화상을 기록하여 측정 하였다.도 2d는 반경 방향 및 축 방향으로 측정 된 평균 막 응력은 대략 선형임을 나타낸다적용된 모터에 대하여 20 %의 최대 선형 변형까지 카운트한다. 다시 정지 위치로 후퇴 동안 측정과 비교 팽창 동안 측정 균주 수준 사이에는 유의 한 차이가 없었다. 다음으로,가요 성 멤브레인에 정의 배양 인간 기관지 상피 세포 (16HBE) 및 그 핵의 변위를 측정 하였다. 전 세포 변위 디지털 현미경 기록 위상차 이미지를 측정 하였다 반면 16HBE 세포의 형광 표지 (DAPI) 핵은, 공 초점 현미경으로 20 배의 대물 렌즈를 사용하여 영상화되었다. 도 3에서 보듯이, 핵의 변위에 의해 측정 된 변형은 최대 ~ 20 %의 선형 변형에 막 마크의 변위에 의해 측정 된 것과 유사 하였다. 이는 멤브레인에 적용 균주 부착 세포에 전달되었음을 확인한다. 전통적인 현미경에 정의 디바이스의 사용을 기술하는 프로토콜 및 원자 힘 microscopE는 다음과 같이 제공된다.
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Protocol
보존 셀의 문화 매체에 대한 음의 벽 (최종 제품에 대한 그림 1D 참조) 멤브레인의 1. 건설
- 콜라겐 I로 코팅 된 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 시트를 사용하여, 메스 나 다이를가요 성 멤브레인의 윤곽을 잘랐다.
- 저장을위한 60mm 페트리 접시에 각각의 막 놓습니다.
- 벽의 창조 :
- B (경화제) 엘라스토머 엘라스토머의 중량비는 1 : 10 PDMS 섞는다.
- 50 ㎖ 튜브에 완전히 혼합 된 PDMS 5 mL를 따르십시오.
- 수평 하이브리드 오븐에서 경화 PDMS 50 ml의 튜브를 놓습니다.
- 경화 시간 동안 8 rpm에서 코팅 튜브의 내벽을 로터 함수를 사용한다. 실온에서, PDMS는 완전히 2 일 내에 완치됩니다.
- 무균 세포 배양 후드에 튜브에서 PDMS를 제거합니다.
- 새로운 면도날을 사용하여, 섹션의 높이에 대한 4mm의 PDMS 실린더 분할.
- 막 WA 될 것입니다 섹션을 배치LLS, 수없이 페트리 접시 용기에 벽이 접혔 될 수 있습니다.
- 페트리 접시에 두 가지를 유지하면서 하나의 막에 PDMS의 한 벽을 선택하고 센터.
- 접착제로 사용하는 벽의 바깥 둘레에 : (1 비율 10) 조심스럽게 경화 PDMS를 놓습니다. 이 액체를 유지하기 위해 존재하기 때문에 벽과 막 사이의 간격의 형성을 방지합니다.
- 각 페트리 접시 완성 된 멤브레인을 포함하고 치료하는 24 시간 동안 70 ℃의 오븐에서 덮여를 놓습니다.
교정 용 클램프 변위 또는 레이디 얼 성장 (그림 2)와 모터의 회전 2. 상관 관계
- 모터를 제어하는 소프트웨어를 시작합니다.
- 모터 소프트웨어의 수동 설정을 사용하여 장치의 클램프를 변위.
- 거리를 측정하고 클램프의 최소 및 최대 변위 모두에서 클램프를 반대 사이의 모터 카운트 위치를 기록한다.
- D의 변화율을 계산모터 카운트 (~ 0-75k 개수)의 함수로서 클램프 사이 istance. 이 막에 달성의 최대 잠재적 인 변형을 나타냅니다.
마우스 폐 상피 세포주에 스트레치 3. 응용 프로그램 (MLE12)
- 물론 당 유연한 막에 250 만 세포 (1 단계)에서 종자 MLE12 세포는 이틀 컨 플루 언트합니다. 파종 밀도는 다른 세포 유형에 따라 다를 수 있습니다.
- 기계 액추에이터는 완전히 편안한 위치에 있는지 확인합니다.
- 세포 배양 용지를 제거합니다.
- 여섯 클램프 각각의 두 펀치 구멍, 1.5 mm에게 생검 펀치를 사용하여 멤브레인의 탭 (도 1d 참조). 구멍의 반경 방향 위치는 멤브레인 경험 초기 사전 장력의 양을 결정한다. 어떠한 미리 장력이 요구되지 않은 경우 멤브레인 탭 20.5 mm의 반경 펀치 구멍.
- 펀치 구멍이 클램프 내에서 핀을 일렬로 들것에 막을 놓습니다.장소에 최고 클램프를 놓습니다. 나사 한 번 교류 측면에서 하나를 조입니다.
- 1 ml의 세포 배양 배지를 추가합니다.
- 빛의 경로와 멤브레인의 중앙을 중심으로 현미경의 무대 장치를 놓습니다.
- 무대에 장치를 고정하는 테이프 또는 자석 (가능한 경우)를 사용합니다. 일단 고정, 현미경의 스테이지 제어기와 기계 장치의 면내 (막으로 평행 한 방향) 및 수직 (Z 방향)을 제어한다.
- 수동 회전 모터 (20)의 위치 및 속도를 제어함으로써, 제조사에 의해 제공된 소프트웨어를 사용하여 연신을 적용한다.
미토콘드리아 활성 산소 종의 4. 측정 (ROS)
- 세포가 컨 플루 언트되면, 직접 세포에 미토콘드리아 초과 산화물 표시 등 (5 μm의 최종 농도)와 RT DMEM의 1-2 ml를 추가합니다.
- 37 ℃에서 10 분 동안 품어.
- 워시 세포는 부드럽게 버퍼와 세 번에 물을 욕조에 따뜻하게37 ° C.
- 즉시 똑바로 공 초점 현미경으로 이미 자리에 들것 (단계 2.2)에 유연한 막 놓습니다.
- 페놀 레드 무료 매체 HEPES 25 mm의 DMEM의 1 ML을 추가합니다.
- 580분의 510 nm의 여기 / 방출 필터를 설정합니다.
- 이미지 여러 필드는 매 15 분 미토콘드리아 슈퍼 옥사이드 생산의 원하는 시간 코스를 만들 수 있습니다.
- 캡처 된 이미지에서, 기록 형광 강도는 형광 강도를 정량화 가능한 소프트웨어를 사용하여 각 시간 간격 히스토그램.
스트레칭과 원자 힘 현미경 (5) 응용 프로그램 (AFM)
참고 :이 단계는 특정 원자 현미경과 광학 현미경 조합 (그림 4 및 재료 목록) 제공됩니다.
- 실험을위한 AFM을 준비합니다.
- Z 방향의 최대 위치로 AFM 헤드의 높이를 증가시킨다.
- AFM의 다리에 익스텐더를 넣어비행기를 해제하는 AFM은 캔틸레버 연락처 샘플을에서. 시험편 AFM 헤드는 기계 장치의 높이를 수용하도록 해제 될 필요가있다.
- (사용 가능한 경우) 광학 현미경을 준비합니다.
- AFM 스캐너 플레이트를 제거합니다. 원하는 목표를 제거합니다.
- 목적에 스페이서를 추가합니다. 스페이서의 높이는 대물과 특정 AFM 셋업에 달려 있지만, 관측 평면 들것 및 어댑터의 높이 (도 동일한 양만큼 z- 방향으로 이동되기 때문에 광학 이미징이 요구되는 경우에 필요하다 5A). AFM은 일반적으로 상기 장치 광로 저배율 이미징을 제공합니다.
- 그 위치에서 원하는 목표를 다시 마운트합니다. AFM에 다시 스캐너를 설치.
- AFM 소프트웨어를 시작합니다. 형광 측정을위한 광원을 포함한 모든 필요한 광원을 시작합니다.
- 캔틸레버 빔 칩을 탑재하는원하는 측정에 적합합니다. 생균의 탄성률을 측정 할 때 200 PN / nm 이하의 강성이 바람직하다.
- 레이저를 맞추고 장치에 장착 된 유리 커버 슬립에 제조업체의 제안에 따라 캔틸레버의 강성을 보정.
- 단계 1에서와 같이 막을 제조되지만 다음과 변형.
- 즉시 스트레칭 장치에 막을 설치하기 전에, 높이 약 1mm로 벽을 잘라. 이는 멤브레인 벽과로드 셀 간의 간섭 발생을 방지한다.
- 3.2.1-3.2.3 설명 된대로 기계 장치에 막을 마운트합니다.
- 유출시 AFM 스캐너의 손상을 방지하기 위하여 세포 배양 배지를 제거한다.
- 커플 어댑터 (도 5a)와 장치. 스캐너의 어댑터와 기계 장치를 놓습니다.
- 원하는 인장 변형 레벨 막을 스트레칭.
- 때문에 유출에 AFM 스캐너 또는 현미경 손상을 방지하기 위해 세포에서 미디어의 제한 (<0.5 ml)에 볼륨을 추가합니다.
- 멤브레인 외팔보를 작동.
- 관심 분야를 스캔하고 특정 AFM 장치의 프로토콜을 따르십시오.
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Representative Results
활성 산소 종 및 변형
이전의 연구는 환상 스트레칭 21에 응답기도 및 폐포 상피 세포에서 반응성 산소 종 (ROS)의 증가를 보여 주었다. 활성 산소는 분자와 지질, 단백질, 다당류, 핵산 22-24 높은 반응성 산소 분자에서 파생 된 활성 산소를 포함한다. ROS는 일반적인 세포 내 이온 채널의 기능을 조절하는 신호 단백질 키나제 / 포스파타제 활성 및 유전자 발현의 역할을하지만, 과도하거나 비 조절 생산 아폽토시스 및 괴사 세포 사망, 신경 변성, 동맥 경화증, 당뇨병, 암 (24, 25)에 기여할 수있다. 전자가 전자 전달 사슬로부터 누출 때 과산화물, ROS 다른 형태의 프리 커서는 미토콘드리아 호흡의 부산물로서 생성 될 수있다. 이전의 연구는 환상 기계적 스트레칭 슈퍼의 생산을 자극하는 것이 제안NADPH 산화 효소 시스템 (니코틴 아미드 아데닌 디 뉴클레오티드 인산 옥시 다제)과 미토콘드리아 전자 전달계 (복소 I 및 III)의 조합을 통해 산화물. 그것은이 자극으로 인한 세포 골격 연결로 인한 아마도 미토콘드리아 (21)의 직접 왜곡하는 것이라고 제안되었다. 이 가설을 테스트하기 위해 장치를 스트레칭 셀이 개발 한 우리가 할 수 있도록 기계적 스트레칭에 응답하여 살아있는 세포에서 활성 산소 생산에 이미지 변경. 여기서, 신축에 의한 기관지 상피 세포에 의해 생성 미토콘드리아 ROS는 사용자 장치 및 프로토콜을 사용하여 측정 하였다. 기계적 스트레칭 부재에서 ROS 생성은 현저 60 분 (도 4) 이상으로 증가하지 않았다. 하나의 17 % 신장이인가되고 유지 될 때, 또 다른 60 분 동안 지속 미토콘드리아 ROS의 증가가 있었다.
때문에 스트레칭에 직접 상피 단층 손상
곳이 심도있게 논의되었다 해친다하는 간접 메커니즘. 몇몇 연구는 폐 상피 세포의 과도한 기계적 스트레칭 세포 11,13,26,27 손상을 포함하는 직접 부상을 입을 수 있음을 시사한다. 이러한 종류의 손상은 기계적 팽창 동안 실시간 이미징없이 포착하기 어렵다. 이와 같이, 사용자 장치와 위상차 현미경 기계적 전에 기록 된 연신 된 세포 및 전 염증성 사이토 카인 (6 시간 동안 50 NG / ml의 TNF-α) (도 5)로 처리 한 후 연속 된 이미지를 이용. 셀의 동일한 필드의 이미지가 증가 변형률 수준에서 포획 하였다. 이미지는 적색 화살표로 표시된 바와 같이 셀 (10)과 15 % 변형 사이에 연신 된 갭의 형성을 보여준다. 이 스트레치의 단부 사이 <, 이러한 이미지는 거의 실시간으로 기록되었는지의 10 초 지연을 주목하는 것이 중요하다 시간 및 이미징, 세포가 늘어 동안. 신장 세포의 세포 이미징의 이전 연구에서, 이미지는 전과 연신되지 11,13,28 연신 조건에서 세포의 화상을 비교하여 얻었다.
신장 세포에 대한 AFM 나노 압입
기계 장치는 (도 6a 참조) 어댑터 플레이트의 사용과 AFM에 넣었다. 이전에 출판 된 방법 (13), 탄성 계수지도 전에 MLE12 세포 (전자지도), 10 % 후 인장 변형을 사용하여 (그림 6D-E)를 얻었다. 10 % 변형 (도 6D)에 위상차 이미지 스트레치의 10 초 이내에 수득되었지만,도 6D-E에 도시 된 E-맵은 40 μm의 X 40 μm의 위에 기록 (300)의 개별 힘 - 변형 곡선을 가진 약 22 분을 소비 Z 방향 선단의 2.5 μm의 / s의 속도로 구역.OM / 파일 / ftp_upload / 52737 / 52737fig1highres.jpg "대상 ="_ 빈 ">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 1. 세포 배양과 스트레칭을위한 맞춤 설계 장치. (A)는 장치의 기계적 디자인의 컴퓨터 생성 도면, (B) 완료 장치 (C) 1 차원 운동으로 모터 회전 변환 모터 및 리니어 드라이버에 연결된 장치의 사진의 사진 어느 (D) 실리콘 고무 막 클램프 축 연신을 제어한다. 기판은 각 클램프 게시물에 배치되는 각 클램프 탭에 두 개의 구멍이 포함되어 있습니다. 때문에 대칭 경계 조건의 사용으로 전체 구조의 사분의 일이다 유연한 막 (E) 치수 FEA 모델. (
도 2 (A)이 적용 스트레인을 측정하기 위해 적용될 표시와 플렉서블 멤브레인을지지하는 장치가 도시되어있다. 확대 (B) 전에 표시의 이미지, 후 (C) 스트레칭은 멤브레인에 표시의 변위를 나타냅니다 명확하게하기 위해 화살표로 표시 하였다. 모터의 함수로서 (D) 멤브레인 균주 접근과 후퇴 동안 카운트한다. 막 변형 수축이 약간 더 높은 균주를 생산에 모두 접근과 후퇴에서 유사했다. = "https://www.jove.com/files/ftp_upload/52737/52737fig2highres.jpg"대상 = "_ 빈"HREF>이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 3 멤브레인 변형 세포에 송신. (A - B) (A) 이전 10X 대물 렌즈를 이용하여가요 성 멤브레인에 인간 기관지 상피 세포 (16HBE)의 위상차 이미지 및 (B) 20 % 변형 후. (C - D) 16HBE 세포의 형광 표지 (DAPI) 핵 (C) 전에 및 (D)의 20 %의 변형 후, 공 초점 현미경으로 20 배의 대물 렌즈를 사용하여 영상화되었다. (E) 세포에 의해 경험 막 균주와 동질 선형이었다.T = "_ 빈">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 4 16HBE 세포의 ROS 생성에 단일 연신의 영향 공 초점 현미경으로 20 배의 대물 렌즈를 사용하여 누적 미토콘드리아 과산화물 센서를 이용하여 관찰되었다 (A - C). 스냅 시간 코스 (0, 60 분, 및 ~ 세포의 동일한 필드 스트레칭 동안 수퍼 옥사이드 생산의 65 분). (D) 첫 번째 시간 내 과산화물의 기본 생산에서 형광 강도가 50 % 증가 (A와 B)을 나타내는 시간에 16HBE 세포의 상대 형광 강도. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 증가 스트레칭에 폐포 상피 (MLE12) 단층 응답의 5 단계 콘트라스트 이미지 (- D)를. 모든 20X의 목적으로 디지털 현미경을 사용하여 기록 하였다. 화살표는 세포 간 분리가 발생한 위치를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
스트레칭 세포의 나노 압입에 대한 AFM에 표시된 그림 6. (A) 기계 장치. 스캐너는 목적 연장의 배치를 위해 제거해야합니다. 세 다리 연장 장치 있도록 AFM 헤드의 세 다리에 부착되고배치. 어댑터 플레이트는 AFM 스캐너 (검은 판)에에 들것을 탑재하기 위해 사용된다. 연신 전의 위상차 이미지 MLE12 셀 (B)에 도시 된 화살표 방향으로 외팔보 스캔. (나)와 (다) 스트레치 이미지 후 빨간색 사각형은 나노 압입 (40X 목적) 동안 캡처 된 영역을 묘사한다. 탄성 계수 맵은, (D) 전후 (E) 신축, 이전에 발행 된 분석 기술 (13)를 얻을 수있다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
기계적 스트레칭 동안 라이브 세포 이미징의 고유 장치가 개발되었다; 그리고이 장치는 폐 상피 세포 제어 공학을 연구 프로토콜에서 사용되었다. 예비 연구에서, 단일 개최 스트레칭 기관지 상피 세포에서 미토콘드리아 초과 산화물의 생산을 자극 한 것으로 나타났습니다. 또한, 기계적인 변형의 수준 증가는 폐포 상피 세포 단층의 무결성에 대한 직접적인 손상을 야기하는 것이 입증되었다.
이러한 예비 실험을 수행하기 위해, 장치는 먼저 교정하고,이어서,이를 막 균주 세포 (도 2-3)에 송신 한 것으로 나타났다. 도 3e에 도시 된 (막 마크에 의해 측정) 및 변형 막 (핵 사이의 거리에 의해 측정) 세포주 사이의 상관 관계에 의해 나타낸 바와 같이, 전체 장치는 잘 수행. 그러나, STRA 사이에 관찰 약간의 차이가 있었다도 2D에 도시 된 바와 같이, 접근 중 세포막과 마커 복귀 곡선상에서 측정. 이 장치에 백래쉬 가능성으로 인해 및 문제를 파지 관련 가능성이 있었다. 효율적 구성이 서로 다른 현미경에 사용될 수 있도록 또한, 범용 장치에 장착기구가 필요하다. 이것은 현미경에 견고한 연결을 유지하면서 장치 및 이미지 획득의 위치 사이에서 소비되는 시간을 줄이는 것이다. 세포막에 펀칭 구멍 인해 탄성 재료로 클램핑 초기 압축 상태의 형성을 방지하기 위해 작은 막 예비 변형을 적용하는 데 사용 하였다. 압축 상태는 최대 적용 변형의 감소로 이어집니다.
사용자 정의 장치는 기계적 스트레칭 동안 살아있는 세포의 나노 들여 쓰기를 할 수 있도록 정신 병원 MFP3D 원자 힘 현미경에 맞게 설계되었습니다. 우리는에서 할 수있는 다른 장치를 인식하지AFM에서 기능 할 수있는 결상면에 등방성 응력 상태를으로 줄. 장치는 또한 세포 배양 인큐베이터에서 연속 사용을 위해 설계되었다 (5 % CO 2로 습한 무균 환경에서 37 ° C로 유지). 인큐베이터 내에서 작동 할 수있는 능력은 장기 스트레칭 요법을받은 세포의 연구를 허용한다.
제시된 방법에 대한 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 우선, 막 뻗어 초점 필드 비록 최소한, 평면으로부터 이동 (~ 100 ㎛). 시야가 멤브레인의 팽창 과정 동안 변화하기 때문에, 연신 처방을 통해 세포의 필드를 추적 할 때 한정된다. 22mm 직경 내의 멤브레인 0.23-0.25 변형이 발생하더라도,이 내경 경험 이상의 가변 변형 장 이외의 영역. 영상 검사를 용이이 중앙 영역에 한정되어 있지만, 세포가 높은 수준의 변형에 대응하는 것이 가능하다외측 영역에서 중앙 영역 내의 세포의 응답에 영향을 미칠 수있다. 관심의 큰 면적에 걸쳐 균일 한 변형 분포는 막 설계의 개선을 달성 할 수있다. PDMS 막 일반적 형광 표시기에 사용되는 파장에서 자동 형광이며, 이것은 아래에서 막 세포에서 형광을 이미징 능력을 제한한다. 이 때문에 직립 현미경은 전술 활성 산소 생산의 우리의 연구에서 침수 목적으로 사용 하였다. 이는 AFM과 형광 이미징 조합 한 연구에 제한 될 수있다.
셀에 기계적 응력을인가하기위한 가장 일반적인 상업용 장치 (FX 5000 FlexCell 텐션 시스템)과 광 평면 밖으로 이동하는 동안 막에 인장 변형을 적용하는 제어 가능한 진공 시스템을 포함한다. 변형이 등방성 및 평면 allowin에 남아있는 경우 여기에 제공된 막과 클램프 디자인은 이중 축 변형 필드를 만들g 실시간 이미징. 멤브레인 설계에 대한 약간의 수정을 통해, 들것도 일축 연신 모드를 생성 할 수있다. 세포를 먼저 팽창 막에 접종하는 경우, 면내 압축 하중도 적용 할 수있다. 디바이스는 스트레인 모두 생리 병리학 수준에 도달 할 수있다. 요약하면, 새로운 장치 및 프로토콜은 형광 현미경과 AFM 나노 압입을 이용하여 묘화 될 수있는 셀을 살 기계적 변형을 적용하기 위해 사용될 수있는 개발되었다.
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Disclosures
저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.
Acknowledgments
저자는 그들의 지원을 위해 멤피스 대학의 기술 페덱스 연구소 감사 그 싶습니다. 저자는 멤피스 (데이비드 버틀러, 재키 카터, 도미닉 클리블랜드, 야곱 섀퍼) 대학에서 기계 공학 부서의 수석 디자인 프로젝트 그룹의 학생들을 인정하고 싶습니다, 모터 제어를위한 대학 멤피스의 공학 기술 부서의 다니엘 콘 세포 배양에서의 도움, 박사 빈 탱과 양 Charlean Luellen. 이 작품은 K01 HL120912 (ER) 및 R01 HL123540 (CMW)에 의해 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| SmartMotor NEMA 34: 3400 Series | MOOG Animatics | SM3416D | Integrated motor, controller, amplifier, encoder and communications bus |
| Flexcell Membrane (Collagen I coated) | Flexcell International Corp | SM2-1010C | 3.5" x 5.25" x 0.020" |
| Sylgard 184 | Dow Corning Corporation | 10:1 | |
| Hoechst 33342 | Sigma-Aldrich | H1399 | DAPI stain |
| MitoSOX | Sigma-Aldrich | M36008 | |
| Tiron | Sigma-Aldrich | D7389 | mitochondrial superoxide label |
| DMEM | superoxide inhibitor | ||
| FBS | |||
| HEPES | |||
| 50 ml tubes | Fisher Scientific | 06-443-19 | Any centriguge tube can be used to create an area for imaging. |
| Hybridization oven | Bellco Glass | ||
| MLE12 Cells | ATCC | CRL-2110 | Mouse Lung Epithelial Cells |
| 16HBE cells | ATCC | CRL-2741 | Human Bronchial Epithelial Cells |
| AFM Indentation Experiments | |||
| Cantilever Beams for Nano-indentation | Budget Sensors | Si-Ni30 | |
| AFM | Asylum Research | MFP3D | |
| Olympus microscope | Olympus | IX-71 | Inverted microscope with 20X and 40X objectives. |
| AFM Leg Extenders | Asylum Research | Not available | AFM microscope |
| Finite Element Analyses | |||
| ABAQUS | Simulia | 6.12 | |
| Software | |||
| ImageJ | NIH | ||
| Microscopes | |||
| Digital microscope | Life Technologies | EVOS XL Core | Initially a self standing company, now owned by Life Technologies. |
| Confocal microscope | Zeiss | LSM 710 | 2-photon upright microscope |
References
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