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Medicine

내분비 및 외분비 리 프로그래밍과 대량 살상 무기 확산 모델로 췌관의 결찰을 통해 마우스 췌장 외과 부상

doi: 10.3791/52765 Published: August 7, 2015

Abstract

배아 또는 성체 줄기 세포에서 분화에 의해 생체 내 또는 생체, 또는 베타 세포의 생성에 췌장 베타 세포의 확장, 당뇨병에 대한 치료와 같은 인간의 췌장 이식의 기증자 부족을 완화하는 베타 세포의 새로운 확장 소스를 제공 할 수 있습니다. 최근의 진보는이 목적으로 이루어졌다하더라도, 줄기 / 전구 세포에서 베타 세포의 확장 및 분화를 조절하는 메커니즘을 특징으로하는 것으로 남아있다. 여기에서, 우리는 조직 리모델링 및 베타 세포의 증식과 분화의 메커니즘을 연구하는 도구로 기능 할 수 성인 마우스의 췌장에 손상 모델에 대한 프로토콜을 설명합니다. 부분 덕트 결찰 (PDL)은 췌장의 꼬리 부분 중 외분비 제품의 배수의 방해의 결과로 주 췌관의 수술 적 결찰을 포함하는 설치류 췌장의 실험적으로 유도 된 부상입니다. 입은 피해는 선포 위축, 면역 세포 infilt을 유도배급 심각한 조직 리모델링. 우리는 이전에 내인성 전구 세포와 같은 PDL 후 베타 세포 증식의 증가를 표현 Neurogenin (NGN) (3)의 활성화를보고했다. 따라서, PDL은 베타 세포 역학에 관련된 신호 및 성인 췌장 내분비 선조의 특성을 연구하는 기초를 제공한다. , 아직도 요인과 경로는 PDL의 베타 세포의 신생 및 확산에 기여하는, 크게 불분명하기 때문에, PDL에 대한 표준화 된 프로토콜은 실험실에서 비교하실 수 있습니다.

Introduction

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억명 이상의 사람들이 세계적 1,2- 영향을 당뇨병의 증가하는 유병률은, 결핍 베타 세포 질량을 보충하기 위하여, 시험 관내 및 생체 내 인슐린 - 생산 베타 세포의 새로운 소스에 대한 검색을 증폭했다. (3)가 키 확인 베타 세포 증식 및 베타 세포 신생, 즉, 비 - 베타 세포 또는 전구 세포에서 베타 세포의 분화를 조절하는 메커니즘과 인자는 당뇨병 치료의 회생 발전을위한 새로운 표적을 제공 할 수있다.

현상 쥐 췌장에서, 내분비 세포 유형은 모두 전사 인자 Neurogenin3 (Ngn3) 발현, 내분비 선조 세포의 일시적인 인구 차별화. 4,5 성인 쥐 췌장에서 정상적인 생리 학적 조건 하에서, 베타 세포 질량이고 최적의 수를 유지 대사 요구를 충족합니다. 베타 세포 크기 변화,베타 세포의 전위 정상적인 생리적 조건 하에서 증식하면서 아폽토시스 및 복제 모집단 전체에 균질 베타 세포의 팽창 및 젖혀. 6-8를위한 주요 메커니즘을 구성하고, 증식 속도가 낮으며, 다시 복제가 제한되고 연령 및 당 대사에 영향을 동적 정지 기간 또는 내화성 기간 6,7. 10 내분비 전구 세포가 원경 정상 성인 췌장에서 발견되지 않았으므로이 신생이없는 정상 성인 베타 세포 성장에 기여하는 것으로 생각된다. (8)

따라서, 팽창 및 신규 한 베타 세포의 가능한 소스를 무제한 제공 할 새로운 베타 세포를 수득 할 수있는 성인 췌장 내분비 통성 전구 세포의 동정.

덕트 부분 결찰 (PDL)의 베타 세포를 유도하는 neogenesi 설명 하였지만 동물 손상 모델이며성인의 췌장에서의.이 모델에서 11, 12, 췌장 꼬리를 배출의 주요 췌장 관은 수술 결찰한다. 외분비 배수의 결과 장애물이 염증 환경 내에서 염증 및 결찰에 말단 선포 위축. 12 ~ 14과 함께 주요 조직 리모델링을 유도 Ngn3 유도하는 내분비 전구 마커 및 베타 세포 부피의 재 발현은 두 배 증가 . 배아 형 내분비 전구 세포 및 "정지 기간"없이 중복을 다시하는 경향이 기존 및 새롭게 형성된 베타 세포의 증식을 발현 Ngn3 신규 베타 세포의 세대로부터 베타 세포 부피 결과에서이 두배. 11, 15

이러한 6,7,16-19 및 췌장 베타 세포 (20)의 선택적 제거와 같은 손상 모델에서 베타 세포 신생 및 복제는 광범위하게 설명되었다. 살전에 그러나 회생 결과E 모델 입은 손상의 정도에 의해 영향을 감소하고 초기 베타 세포 덩어리 (21)와 관련된다. PDL은 초기 베타 세포 질량의 영향을받지 않으므로 베타 세포 신생 증식 견고하게 활성화되는 수술 모델이다. 실제로, PDL을받은 생쥐의 췌장, Ngn3 발현 세포는 도관의 상피 라이닝 근처 식별된다. 이 세포들은 정렬 형광 활성 셀 (FACS)를 사용하여 Ngn3-GFP 형질 전환 마우스의 결찰 췌장에서 분리 E12.5 Ngn3의 췌장과 체외 문화에 생착 다음과 같은 기능 베타 세포으로 구별 할 수있다 할 수 - / - . 쥐 11 마찬가지로, Ngn3 CreERT 단계;. Ngn3 유전자를 활성화 세포 영구적 타목시펜 분사 라벨 양성 Ngn3 세포 유래 베타 세포가 PDL 후 검출 된 후에 표지 된 R26 YFP 마우스 (15)는 또한, 새로 형성된 베타 세포를 미리 희석 -exist대상별 짧은 헤어핀 RNA를 크게 베타 세포 질량과 베타 세포 증식 후 감소하여 Ngn3 식을 감소하기 때문에 베타 세포를 보내고 우선적으로 베타 세포 높은 증식 잠재력을 표시하는 내 작은 섬에 위치. 15 Ngn3는 PDL 후 베타 세포의 확장을위한 중요 PDL. (11)는 특히, PDL 후 Ngn3 세포 유래 베타 세포의 분획과 베타 세포 질량 비판적 Ngn3 유도 (15)의 레벨에 의존한다. R26 IDTR 마우스,. 이것은, Ngn3가 Ngn3 CreERT에 디프테리아 독소 관리에 의해 발현 세포의 선택적 제거 Ngn3 식의 높은 수준의 췌장 개발하는 동안 능성 췌장 전구 세포에서 내분비 노력을위한 중요한 단계입니다 관측에 따른 것이다 또한 (22) 특히 작은 아일렛의 인슐린 함유량 감소와 감소 된 베타 세포 증식을 초래한다. 15

Ngn3 식의 유도가 많은 11,15,16,23,24에 의해 확인되었지만 클래스 = "jove_content">, PDL의 결과에 섬 세포 (24, 25)과의 불일치에 Ngn3 표현은 우리의 초기 관찰 도전 증가 베타 세포 질량의 26, 27, Ngn3의 외관은 PDL 후 덕트 파생 내분비 전구 세포 24,26,28,29, 증가 베타 세포 증식 (27)을 표현. (30)

이러한 충돌 결과는 적어도 부분적으로, 가장 중요한 마우스, 수술 후 생리 및 환경 조건으로, 분석, 체중, 성별과 연령의 수술 - 후 시점의 변동 등 다양한 요인들의 조합에 기인 할 수있다 수술 기법의 차이. 우리의 손 (30), 베타 세포 증식, 인슐린 함량, β- 세포 부피와 작은 섬의 수는 지속적으로 PDL 후에 증가된다. 또한Ngn3의 mRNA는 지속적으로 증가하지만, 우리가 직접 설명이 없습니다있는 PDL 꼬리 췌장, 간 Ngn3 mRNA 발현에 큰 차이가 있습니다. 우리는 Ngn3의 mRNA 수준이 아닌 베타 세포에서 15 베타 세포 신생의 정도와 상관 관계가 있음을 가정 할 수 있지만, 이는 더 실증이 필요하다. 이 모든 실험 변형을 제거하지 않지만, PDL 수술을 수행하는 표준화 된 방법은 결과에 더 나은 균일 성을 허용하고 베타 세포의 증식과 신생 연구에 새로운 길을 엽니 다.

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Protocol

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모든 조작은 실험 및 기타 과학적인 목적으로 사용되는 척추 동물의 보호를위한 유럽 협약에 의해 발행 된 가이드 라인에 따라 (ETS 123과 및 63분의 2,010 / 유럽 연합 (EU)).

작업 영역 1. 준비

  1. 제제 전용 영역, 외과 영역과 복구 영역을 제공한다.
  2. 환경 적 오염을 최소화하기 위해 층류 캐비닛 전체 수술을 실시한다.
  3. 준비, 수술 및 복구 영역에 필요한 (재료 및 방법에 나와있는) 적절한 무균 기술을 사용하여, 공급 장치를 조립합니다.
  4. 수술 도구 수술에 앞서 멸균되어 있는지 확인합니다.
  5. 수술시의 온도 안정화를위한 38 ° C의 온도에서 재순환 물 가열 패드를 제공한다. 살균 방수 패드 가열 패드를 커버.
  6. 적어도 6.3 배의 배율 운영 현미경을 제공합니다.
  7. 악기 steri를 사용하여이러한 뜨거운 구슬 살균기 등 lizer는 수술 사이에 악기를 소독합니다.
  8. 평면 종이 침구 줄 지어 큰 케이지로 구성되는 복구 영역을 준비

2. 수술에 대한 동물 준비

  1. PDL과 가짜 수술 8 주 오래 된 남성 마우스, 표준 케이지에 보관 유지 12 시간 조명 / 12 시간 어두운주기 및 표준 설치류 다이어트 임의로 먹이를 사용합니다.
    참고 : 여기에, 우리는 BALB / cJrJ 마우스를 사용하지만 우리는 또한 성공적으로 다른 균주와 다양한 형질 전환 균주를 사용했다.
  2. (- 0.1 ㎎ / ㎏ 0.05) 수술 전에 30 분 선제 진통제로 Buprenophine를 사용합니다.
  3. 10 밀리그램 / kg의 자일 라진 - 케타민 100 ㎎ / ㎏과 5의 복강 내 주사하여 쥐를 마취.
  4. 자발적인 움직임과 근육 이완의 점진적 손실을 관찰하여 적절한 마취를 평가합니다. 발가락 핀치에 의한 반사의 손실을 테스트합니다.
  5. 이전에 안과 연고를 적용눈의 ENT 건조 마취하에있다.

3. 수술 부위 준비

  1. 살균 클로르헥시딘 용액과 흉부와 복부를 소독.
  2. 2.5 CM 복부의 X 1.5 CM의 영역을 면도.
  3. 다음 클로르헥시딘 용액, 알코올 용액 및 클로르헥시딘 용액의 최종 어플리케이션 적신 거즈를 이용하여 면도 영역 소독.
  4. 준비된 수술 부위가 위쪽으로 의사를 향하도록 외과 영역에서 동물을 배치합니다.
  5. 신체의 나머지 부분을 피복하는 멸균 작업 필드를 생성하는 동안 노출 소독 복부 잎 개구 방수 외과 드레이프를 이용하여 마우스 드레이프. 마취의 깊이 절차 이전에 마우스를 모니터합니다.

4. 췌장 관 내고

  1. 개복술
    1. 멸균을 사용하여 배꼽에 칼 모양의 과정에서 연장 피부의 상단 중간 선 절개를합니다수술 블레이드. 기본 원격 교육 알바 및 상부 복부 사분면을 노출하기 위해 멸균 가위를 사용하여 복막을 분리합니다.
    2. 멸균 0.9 % 염화나트륨과 정기적으로 뿌려 내부 장기의 건조 아웃을 방지합니다.
    3. 멸균 된 핀셋이나 면봉을 사용하여, 비장, 췌장, 비장의 로브 (꼬리 부분)을 노출 우량 위장 후퇴.
    4. 조심스럽게 내장 복막에 의해 덮여 췌장의 머리, 목 및 신체 영역을 노출 오른쪽 상단 복부 사분면에 상부 소장의 십이지장 및 부품을 철회.
  2. 결찰
    1. 췌장의 목 지역에서 췌장 메인 덕트의 해부학 적 위치를 찾습니다.
    2. 내장 복막과 gastrocolic 인대, 복막에 대한 액세스 권한을 부여 췌장의 몸통과 꼬리 부위를 노출을 절개. 넥 영역을 노출하기 위해, KOCHER 기동을 수행한다. 의 십이지장과 머리를 들어 올려복막 오프 췌장은 하대 정맥과 대동맥 아래에서 그들을 상승.
    3. 조심스럽게 목 영역 아래에 주걱을 배치합니다. 위장 십이지장과 비장 로브를 분리 포털 정맥의 왼쪽에 6-0 prolene의 스레드와 췌관을 결찰.
    4. 로브가 적절하게 분리되어 있는지 확인하는 최초의 결찰 부근에서 두 번째 결찰을 수행합니다.
    5. 기본 혈관, 즉 우수한 pancreaticoduodenal 동맥, 열등한 pancreaticoduodenal 동맥과 비장 동맥의 췌장 일부를 손상하지 않도록 매우 신중하게 결찰.
    6. 복강에 다시 장기를 놓습니다.
    7. 근육 / 복막 층 및 피부 봉합 불연속 패턴으로 연속 봉합 패턴 4-0 폴리 글리콜 필라멘트 실을 사용하여 절개를 닫습니다.

5. 위장 수술

  1. 드 등의 모든 단계를 수행4.1.4 단계 1 스크라이브. 췌장이 노출되는 동안, 췌관의 결찰을 수행하지 않는다.
  2. 단계 4.1.4의 끝에서, 다시 복강 내부 장기를 배치합니다.
  3. 4.2.7에 설명 된대로 절개를 닫습니다.

6. 사후 운영 관리 및 모니터링

  1. 수술 완료 후, 복구 영역에 마우스를 배치했다. 이것은 정상 체온을 유지하기 위해 가열 패드 배치 및 평면 종이 침구 늘어서 케이지로 구성된다.
  2. 케이지 바닥에 배치 적신 식품에 의해 수술 후 저혈당을 피하기 위해 영양 지원을 제공합니다. 그들이 부드럽게 될 때까지이 목적을 위해, 물에 담가 표준 설치류 다이어트 알약을 사용합니다.
  3. 적신 액체 식품에 의해 지원을 제공하고, 임의 량의 물을 제공한다.
  4. 수술 후 2 일 동안 하루에 두 번 - (0.1 ㎎ / ㎏ 0.05) 진통제로 Buprenophine를 사용합니다. 전체 실험 기간 동안, observ을 따라전자 상처에서, 또는 행동과 활동 수준을 정리 감소 특징 물리적 저하, 낮은 식욕과 체중 감소를위한 액체 또는 고름의 분비를 포함하여 감염의 가능한 징후의 발생에 대한 마우스.

성공적인 PDL 및 PDL 테일의 수확 및 가짜 꼬리 췌장 7. 평가

  1. 경추 탈구로 쥐를 안락사.
  2. 모피의 캐리 오버를 방지하기 위해 복부를 다시 면도.
  3. 복부 피부와 근육 층을 열고 췌장에 좋은 액세스를 얻기 위해 피부와 근육의 큰 영역을 제거합니다.
  4. 멸균 된 핀셋이나 면봉을 사용하여, 위장, 췌장, 비장 및 비장의 로브 (꼬리 부분)을 노출 우량 후퇴.
  5. 조심스럽게 췌장의 위장 십이지장 로브 (두부)를 노출하는 상부 소장의 십이지장과 부분을 빼냅니다.
    참고 : PDL 췌장의 결찰 부분은 지금 크기가 감소하고 거의되고있다반투명 섬 작은 하얀 점으로 보이도록. 췌장의 머리 부분은 불투명 분홍색 관찰 될 수 lobuli 구별 외분비이다.
  6. 멸균 가위를 사용하여 비장을 따라 절단함으로써, 비장, 췌장의 결찰 꼬리 부분을 분리한다. 내부 장기에 췌장의 꼬리 부분을 연결하는 결합 조직을 해치지.
  7. 합자 및 수확 조직의 IT에 바로 인접 조직을 제외하고, 바로 결찰 앞에 PDL 꼬리 부분을 잘라.
  8. 가짜 꼬리 조직을 분리하려면 단계 7.5을 통해 7.1을 따릅니다. 사용 멸균 가위는 비장을 따라 절단하여 비장에서 가짜 췌장의 꼬리 영역을 구분합니다. 내부 장기에 꼬리 췌장 접속 췌장의 목 부위로 절단 및 결합 조직을 절단하여 느슨한 꼬리 영역을 격리
    참고 : 가짜 췌장의 꼬리와 머리 지역 모두 불투명 한 분홍색 별도로 두 부분을 분리,목 영역의 췌장을 잘랐다.

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Representative Results

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PDL은 선포 위축 및 염증을 유발하지만 체중과 혈당에 영향을 미치지 않습니다

위장과 십이지장에 인접 장기의 머리가, 영향을받지 않은 상태로 유지하면서 8주 된 수컷 BALB / c 마우스에서 췌장의 꼬리에서 외분비 효소 배수 덕트 결찰된다. 나이, 성별, 체중 일치 남성 BALB / c 마우스의 췌장 관의 결찰을 제외한 부분 덕트 결찰 수술의 모든 단계를 recapitulating 가짜 수술을 받다. 췌장 조직은 14, 30 일 수술 후, 7, 3 수확했다.

PDL이 제대로 수행 될 때, 마우스는 건강한 나타나고 가짜로 작동하는 마우스에 비해 (그림 1B)를 상당한 체중의 차이 (그림 1A) 또는 혈당을 표시하지 않습니다. 외분비 선포 조직의 결찰 P 부의 크기와 중량의 감소의 결과로, PDL 수술 (도 2A-E) 후 서서히 상실 DL 췌장 (그림 3), 이에 관해서라는 PDL 꼬리에서. 사흘 게시 PDL, 선포 조직 형태를 중단하고 선포 세포가 세포 사멸 (그림 4)을 받아야하고 가능성이 CD45 + 면역 세포 (그림 5) 침투로 가득 채우고있다된다. 7 일 후 PDL, 많은 선포 소엽은 섬유 성 (그림 6)과 지방 조직 (그림 2C-E) 나머지 선포 세포가 선포 - 투 - 유관 상피화 생을받을 때로 대체됩니다. 14 일 후 PDL, 독도가 육안으로 볼 될 수 있도록 반투명 나타나는 PDL 꼬리 췌장을 선포 세포 (그림 2A-E)의 결여이다 lobuli 거의 모든 선포 (그림 3)에 의해. 선포 아폽토시스의 개시와 일치, 도관의 상피 세포주기 활성의 증가는 (도 7)이 관찰된다.

PDL은 인슐린 + 베타 세포 부피의 증가를 유도

ontent "> 비 결찰 가짜 꼬리에 비해 PDL 꼬리 총 베타 세포 부피가 두배 PDL 후에. 베타 세포 부피가 4 ㎛ 인 부분에서 INS + 영역을 측정하여 정량화 2 주, 36 ㎛의 간격 차지하는 전체 조직에 걸친 베타 세포 크기 때문에 자동화 전체 -tissue 광학 단층 촬영 (OPT). (15)에 의해 PDL 후 변경되지 도시 될 수있는 총 췌장 용적의 10 %. PDL 2 주 비 결찰 췌장에 비해 수술 후 인슐린 함량의 증가를 유도 베타 세포 부피의 증가는 베타 세포 수의 증가의 결과이다.

PDL은 베타 세포 증식의 증가와 Ngn3 발현의 활성화를 유도

pancreata가 가짜 또는 PDL 수술 후 7 일, 14 일 수확의 베타 세포 증식은 면역 조직 화학 (IHC) 염색으로 분석된다. 확산 마커 기-67에 대한 긍정적 인 베타 세포의 비율은에 의해 정량화비 자동화 된 방식으로 각 셀의 점 검. 7, 14 일째 PDL 수술을 게시 PDL 꼬리에서 베타 세포의 증식이 크게 비 결찰 췌장에 비해 증가된다.

PDL 비 결찰 췌장에 비해 상당히 Ngn3 PDL 꼬리 증가된다 배아 췌장 전구 세포 마커의 발현 후 3 일 이내. Ngn3 성적 증명서의 최대 수준 1 주일 이내에 도달하고 이후 서서히 감소 하였다. 우리는 일상적 십이지장 안정 Ngn3 레벨에 대해 PDL 췌장에서의 mRNA를 Ngn3는 부호화의 레벨을 표현함으로써 Ngn3 유전자 활성을 측정한다. 최근 우리는 PDL에 신생의 정도 Ngn3 유전자 활성화의 수준에 의존 할 수 있음을 제안 하였다. 15, 30

그림 1
그림 1. PDL은 체중이나 혈당에 영향을 미치지 않습니다. 체중 (G) (A)와 혈당 (mg의/ DL) 가성 동작 (흰색 막대에서 (B)) 및 PDL 마우스 (검은 색 막대)은 수술 후 상이한 시점들 (0 일, 7, 14, 30)에서 측정하고, 가짜 및 PDL 사이에 유의 한 차이를 보이지 않았다 임의의 시점에서 작동 쥐. 원래 쑤 외. 출판 그림, 2008 년 (11). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2
도 2는 PDL 선포 세포의 점진적인 손실을 이끈다. 모의 - 조작 꼬리 췌장 (A)에 비하여 일 3 (B)의 헤 마톡 실린 - 에오신 염색,도 7의 (C),도 14의 (D) 및 30 (E)의 수술 후 계시 PDL 꼬리 췌장의 형태 변화. 삼일 후 결찰에서 선포 조직의 미묘한 중단 O를 할 수 있습니다bserved (B). 칠일은 결찰을 게시에서 선포 조직이 심각하게 파괴되고 유관 단지는 (C)를 ​​형성했다. 십사일 게시물 결찰에서 몇 선포 세포 유지 및 유관 구조로 대체 lobuli 선포는 (패널 C와 E에서 별표 (*)로 표시) 섬유 네트워크 및 지방 세포는. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 .

그림 3
그림 3. 수확 PDL 꼬리. 위장 꼬리 (A) 및 14 일 수술 후 수확 PDL 꼬리 (B). PDL 꼬리가 극적으로 위장 꼬리에 비해 크기가 감소한다. 사진 (C)는 현장에서 14 일 후 수술에서 PDL 꼬리를 보여줍니다. 때문에 선포 세포의 손실, PDL의 꼬리주요 췌장 관이 명확하게 볼 수 있습니다, 반투명 나타납니다 (검은 색 화살표로 표시)와 독도가 작은 하얀 점으로 보이는 (흰색 화살표로 표시)입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4
그림 4. PDL은 선포의 사멸을 유도한다. 수술 후 하루 3과 7 일 후 수술에 선포 실에서 세포 사멸의 몸을 보여 3, 7, 14 일에 PDL 꼬리에 쪼개진 - 카스파 제 3 면역 염색, 선포 세포가 거의없는 반면 하루 14 배율 바에서 PDL 꼬리는 25 μm의 수 있습니다. 원래 쑤 외. 출판 그림, 2008 년 (11). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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도 5 PDL는 면역 세포 침윤을 유도한다. 가짜 췌장에 비해 수술 후 7 일째에 꼬리 PDL 면역 세포의 많은 수의 존재를 나타내는, 백혈구 마커 CD45에 대한 면역 염색. 배율 바는 50 μm의 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 6
도 6은 PDL 섬유화를 유도한다. 알파 평활근 액틴 면역 염색 가짜 췌장에 비해 십사일 수술 후 PDL 꼬리의 섬유 네트워크의 존재를 나타낸다. 배율 바는 50 μm의 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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도 7 PDL 덕트 세포 증식의 증가를 유도한다. 도관 세포 마커 Cytokeratin 19 (CK19)과 증식 마커 BrdU에 대한 이중 면역 염색 덕트 세포의 세포주기 활성의 증가를 나타낸다. 배율 바는 25 μm의 수 있습니다. 원래 쑤 외. 출판 그림, 2008 년 (11). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Supplies for preparation area 
Hibiscrub  Regent Medical 5601IE5F11 Chlorhexidin diglucon
Ketamin Ceva BE-V202526 anesthesia
Rompun(2%) (Xylazin) Bayer BE-V041815 anesthesia
Duratears Alcon 34335-8 ointment for eyes
Razor
Supplies for surgical area 
Leica Operating microscope Leica 10446320
Hot bead sterilizer Fine Science Tools (FST) 18000-45
autoclaved surgical instruments Fine Science Tools (FST)
Recirclulating water heating pad Gaymar Industries, Inc. TP702
Adhesive OP-towel BARRIER 706500-07
OP-tape BARRIER 381035-00
Stella 3/5 Compresse de gaze (Sterile) Lohmann&Rauscher International 35968
Mini Plasco 0.9% NaCl solution B.BRAUN 3521680
6-0 prolene suture Ethicon 8706H
4-0 polyglycol suture Ethicon SL-607
Supplies for recovery area
Paper bedding (paper towel)
Vetergesic ecuPhar BE-V342955
Materials for analysis
Taqman Ngn3 primer Integrated DNA technologies Mm.PT.56a.33574796.gs
Taqman CycloA primer Integrated DNA technologies Mm.PT.39a.2.gs
anti-Rabbit Cleaved Caspase 3 antibody (D175) Cell Signaling 5A1E
anti-mouse/rat Ki-67 antibody eBioscience 14-5698-82
monoclonal anti-actin alpha-Smooth muscle-Cy3 (mouse) Sigma 085K4889
anti-rat Cytokeratin 19  DSHB
monoclonal Mouse anti-BrdU Dako M0744
Hoechst Sigma 33342

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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  2. Danaei, G., et al. National, regional, and global trends in fasting plasma glucose and diabetes prevalence since 1980: systematic analysis of health examination surveys and epidemiological studies with 370 country-years and 2·7 million participants. Lancet. 378, 31-40 (2011).
  3. Borowiak, M., Melton, D. A. How to make beta cells. Current opinion in Cell Biology. 21, 727-732 (2009).
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De Groef, S., Leuckx, G., Van Gassen, N., Staels, W., Cai, Y., Yuchi, Y., Coppens, V., De Leu, N., Heremans, Y., Baeyens, L., Van de Casteele, M., Heimberg, H. Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation. J. Vis. Exp. (102), e52765, doi:10.3791/52765 (2015).More

De Groef, S., Leuckx, G., Van Gassen, N., Staels, W., Cai, Y., Yuchi, Y., Coppens, V., De Leu, N., Heremans, Y., Baeyens, L., Van de Casteele, M., Heimberg, H. Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation. J. Vis. Exp. (102), e52765, doi:10.3791/52765 (2015).

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