Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Environment

Оптимизированная Техника по обогащению для изоляции doi: 10.3791/52781 Published: April 9, 2015

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Широкое распространение Arthrobacter видов почвенных условиях предлагает огромное количество и разнообразие фагов, способных быть изолированы от этого вида бактерий-хозяев. Бактериальные члены семьи Acintobacteriaceae являются наиболее заметным за их катаболических путей деградации непокорных соединений, таких как атразина и других различных пестицидов и гербицидов 1,2,3. Хотя большинство исследований было сделано с помощью экологических штаммов Arthrobacter, клинические изоляты этого рода находится в крови, моче, глаз и многих других человеческих источников все отображения филогенетическое неоднородность 4.

В то время как есть, а многочисленные исследования по Arthrobacter бактерий, всего в нескольких исследованиях сообщается на фагов, способных инфицировать членов этой разнообразной рода. Интересно, хотя, работа ранее на Arthrobacter фагов штрихи на нескольких ключевых отдельные темы, такие, как печатать почвы <EM> Arthrobacter видов 5, промышленного применения с целью уменьшения вредного пены в активированных обработки осадка растений 6, и работа выделив сайт-специфическое рекомбинации и интегразы гены 7.

Различные протоколы обогащения техника были использованы для создания чистого фага изолирует в Arthrobacter видов. Ранние процедуры включают инкубацию почвы с добавленными токсичных веществ, таких как никотин солей для периодов, превышающих один год 8, послуживших основанием для фагов, способных только заражает А. globiformis. Исследования, проведенные с помощью почву просачивается с лабильные органические появился для производства обнаруживаемыми фагов с помощью зубного налета методов анализа, опуская длинные периоды инкубации 8. Интересно, хотя, техника, напоминающие прямой металлизации был использован в прошлом, давая начало нескольким фагов в то время как все еще ​​имея в частности, низкий уровень успеха в деятельности следователей 5, ссылаясь на прошлые исследования с низким уровнем успеха

В целом, методы изоляции, используемые в прошлом отличались за то, что мало эффективность в практике, несмотря на Arthrobacter рода, представляющих наиболее распространенные аэробные почву изолировать в природе 4,9, Ван Twest и Кропински 10 современные методы обогащения для выделения фагов из воды и почвы адаптировано из ранних методов, используемых для обогащения экологических бактериальных изолятов, но эти методы обогащения оказалась неэффективной в изоляции Arthrobacter фагов. Целью способа, описанного здесь, чтобы показать "доказательство концепции", что ранние способы обогащения может быть приспособлен, чтобы последовательно и эффективно изолировать фаги Arthrobacter, преодолевая прежние технические проблемы, связанные с выделением фагов из этой бактериальной рода.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. Подготовка Arthobacter Клетки для фага изоляции

  • Культура Arthrobacter Sp. KY3901 колонии штрихом на Лурии Bertaini (LB) агаром инкубировали при 30 ° С в течение 2-3 дней. Выберите колонию и использовать стерильную петлю, чтобы добавить его к 250 мл LB бульоне в экранированной культуры колбу и инкубировать в дрожащей инкубаторе при 225 оборотах в минуту при температуре 30 ° C.
  • Разрешить примерно 24 ч роста, чтобы получить поздно показательные / начале стационарной фазы клетки для фаговой инфекции экспериментов. Мониторинг состояния бактериального роста тесно, чтобы предотвратить клетки от ввода в середине и конце стационарного состояния роста.
    ПРИМЕЧАНИЕ: рост клеток должен состоять из оптической плотности OD 600 от 0,5-.0.7 для изоляции процедур фага и очистки / шагов, описанных ниже.

2. Сбор фага из почвы Образцы

  1. Соберите 200-400 г почвы от нужное место. Примечание: Поскольку бактерии, в Arthrobacter род являются общими почвенных бактерий они и фаги, которые заражают их можно найти в и широко распространены в большинстве типов почв.
  2. Добавить по крайней мере, 400 мл фага буфера (PB) [68 мм NaCl, 10 мМ MgSO 4, 10 мМ Трис-CL (рН 7,5)] в почву и смешать в достаточно большом колбу так, чтобы по крайней мере 200 мл PB является в надосадочной жидкости и может быть извлечена.
  3. Смешать аккуратно помешивая или вращая до тех пор, почва не приостанавливается и позволяют осадка почвы для урегулирования, как правило, 30 мин.
  4. Пропустите "экстракт почвы" через фильтровальную бумагу под действием силы тяжести фильтрации для удаления почвы осадка мусора.
  5. Добавить LB порошок и смешать, чтобы сделать 2% раствор (4 г LB порошок в 200 экстрактом мл почвы).
  6. Пропускают раствор через 0,22 мкм фильтр с помощью вакуумной фильтрации, чтобы получить стерильный фильтрат. Если это возможно, по-прежнему, чтобы сразу же выйти 2,7. В случае необходимости, магазин фильтруют образцы при температуре 4 ° С в течение одной недели, прежде чем продолжить, однако, количество жизнеспособных фаговых частицбудет сокращено.
  7. Алиготе несколько порциями по 50 мл с фильтром стерилизовать LB / почвы экстракта смеси на отдельные 250 мл стерилизованные пожимая недоумение культуры колбы с использованием асептических методов. Добавить стерильной 2,0 M CaCl решение 2 от конечного значения требуемой концентрации (0-50 мм), так как различные фаги Arthrobacter расти оптимально при различных CaCl 2 условиях.
    Примечание: Мы обнаружили, что большинство из Arthrobacter фагов, определенных нами находятся в диапазоне от 1 мМ-2,5 мМ CaCl 2. Тем не менее, некоторые из изолированных фагов вырос на нас исключительно на 0 мМ CaCl 2 .or при очень высоких концентрациях CaCl 2. Немедленно приступить к шагу 3.1.

3. фага Изоляция

  1. Добавить 1 до 2,5 мл конце экспоненциальной / начале стационарной фазы бактерии культуры в каждую из колб. Для OD 600 от 0,5-0,7, используйте 1 мл клеток. Для OD 600 выше, чем наружный диаметр 0,7 использовать 2,5 млклетки.
    Примечание: Клетки в логарифмической фазе роста, как правило, дают более фагов и более высокие титры, чем клеток в стационарной фазы роста.
  2. Колбах на 250 оборотов в минуту при 30 ° С в течение приблизительно 24 ч в инкубаторе со встряхиванием.
  3. После инкубационного периода 24 ч удалить обогащению колбы с трясущейся инкубатора и разбавления проб обогащения в десять раз в фага буфера.
  4. Установка культуры трубки с 0,5 мл конце экспоненциальной / начале стационарной фазы бактериальной культурой и добавить различные количества культуры обогащения (5 мкл до 500 мкл разведения в 10 -1 в Pb) к культуре труб.
    Примечание: Желательно, чтобы проверить широкий диапазон концентраций, так как каждый образец почвы создает различные титры фагов после обогащения.
  5. Добавить CaCl 2 в пробирках с культурой, чтобы конечная концентрация равна концентрации в исходном колбу обогащения. Использование диапазона различных концентрациях CaCl 2, чтобы выбрать для многих фагов шIth различной CaCl 2 зависимостей.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Большинство фаги будут изолированы в пределах CaCl 2 диапазона 1-2,5 мм, но есть фаги, выделенные наиболее оптимально в пределах от 0-50 мМ концентраци CaCl 2. Из-за этого лучше всего проверить ряд CaCl 2 концентрацией, чтобы максимизировать количество уникальных изолированных Arthrobacter фагов.
  6. Смешайте 4,5 мл LB верхнего агара в пробирку и налейте смесь на чашки с агаром LB. Вихревой аккуратно, чтобы распределить по всей пластине равномерно и позволяют верхнего агара для отверждения в течение примерно 15 мин.
    Примечание: Лучшие агар, могут быть получены в больших партий (250 мл) и дополнительной агар верхней можно хранить при комнатной температуре и использовать повторно для последующих экспериментов по меньшей мере, две недели. Хотя существуют различные формулы, используемые, чтобы сделать верхнюю агар, мы делаем верхнего агара с помощью 7g / л агара, смешанного с ЛБ Место верхнего агара в водяной бане при 60 °, чтобы сохранить жидкое состояние в ходе эксперимента.
  7. Обратить тОн пластины и инкубировать при желаемой температуре (температура 30 ° С) O / N до 48 ч. Вары эти условия для оптимизации фагов, присутствующих. Большинство изолированных фагов приходят от планшеты инкубировали при 30 ° С в 1-2,5 мМ CaCl 2 концентрацией после инкубационного периода 24 ч.

4. фага Очистка

  1. После проверки инкубации 24 ч для образования бляшек на пластинах. Продолжить инкубации в течение 72 ч, если нет таблички не очевидны или, чтобы определить, на экране появятся дополнительные таблички. При необходимости, хранить пластины с Предполагаемые бляшки на срок до недели при 4 ° С до судебного разбирательства.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это не редкость, чтобы найти множество различной морфологии бляшек на одной пластине. Обнаружение бляшки после 3 дней инкубации можно, но редко.
  2. Очищают нужные фагов из четко выделенных бляшек с использованием метода подряд налета. Нажмите мемориальную доску со стерильным деревянной палкой. Серия доска, запустив деревянную палочку через пламя, allowinг палку кратко остыть, а затем потирая палку на агар пластины в нежные движения, как показано на рисунке 1. Повторите это с помощью чистой палку для каждого прохода.
  3. Кроме того, использование традиционных доска титр анализа для выделения отдельных бляшек фага. Доска титр анализа требует использования более реагентами, такими как LB-агар и агар LB верхней и материалов, таких как чашки Петри для изоляции фага бл шек. Мы были весьма успешными с помощью метода подряд налета, но это технически легче изолировать отдельные бляшки с помощью доска титр анализа.
  4. После того, как агар пластины LB Полосы по меньшей мере, три раза, выделить участок с самой низкой концентрации предполагаемых фаговых частиц и осторожно применять 0,5 мл Arthrobacter и 4,5 мл расплавленной верхней LB-агар (содержащий ту же концентрацию хлорида кальция в качестве родительского пластины ) и дайте ему равномерно по всей пластине.
  5. Обратить и инкубировать пластины O / N. Повторите Убийств подряд налетТехника по крайней мере, трех итераций, чтобы обеспечить чистые виды фагов выделяют. Храните пластины при 4 ° С в течение одной недели при необходимости между полосами без существенной потери фага жизнеспособности.
  6. После получения желаемого бляшки были выращены и изолированные на заключительном разводов пластины, нажмите один хорошо изолированы доску с наконечником микропипетки и вновь приостановить в 100 мкл PB. Серийно разбавить этот раствор 10 0 к разбавлению 10 -8 пропусканием 20 мкл образца в 180 мкл свежей PB.
  7. Добавить 10 мкл каждого разбавления в 0,5 мл выращенной Arthrobacter в пробирку 5 до 10 мин при комнатной температуре и пластины путем смешивания инфицированных бактерий с 4,5 мл расплавленной верхней LB-агар, содержащий ту же концентрацию CaCl 2, используемый для изоляции фага от первоначального образца почвы. Сохраните все разведения Сделано в 4 ° C до следующего дня.
  8. Определить фага серийное разведение необходимое, чтобы сделать веб-шаблон с использованием традиционного зубного налета титр каксказать. Цель доска титра анализа является определение титра фага, необходимых для получения веб-шаблон пластины. Определить узор веб пластины в основном лишенный бактерий, но содержащий остатки бактерий, которые еще не были лизированы фагов. Добавить 5 мл конце экспоненциальной / начале стационарной Arthrobacter культуры в стерильную 50 мл культуральной колбы.
    1. Добавить 100 мкл разведения (что дало веб-шаблон к Arthrobacter культуры) в культуральной колбы и позволяют фаги заразить клетки бактерий от 5 до 10 мин при комнатной температуре. Смешайте с расплавленным LB верхнего агара, содержащего такую ​​же концентрацию CaCl 2, используемый, чтобы первоначально определить фага и пластины 5 мл этой смеси на 10 свежих LB пластинах. Дать застыть и инкубировать перевернутые тарелки при 30 ° C.
  9. На следующий день, наводнение веб-шаблонов пластины с 5 мл ПБ и хранения O / N при 4 ° С или 4 ч при комнатной температуре.
  10. Фильтр фага лизата через шприцевой фильтр 0,22 мкми хранить при 4 ° С. Используйте этот заключительный фага для дополнительных экспериментов, таких как электронная микроскопия изображений фаговых частиц, фага геномной выделения ДНК для анализа ограничение ДНК фермента и геномной последовательности с использованием стандартных процедур. Для длительного хранения фаговой наличии, добавляют равное количество лизата фага с стерильным глицерином в небольших пробирках для фондовой архивирования при -80 ° С.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для тех, кто не испытал с этими методами фагов, большой ресурс доступны в режиме онлайн сайт www.phagesdb.org.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Чтобы продемонстрировать воспроизводимость улучшенную методику обогащения для Arthrobacter фагов, 30 различных образцов почвы были в разное время и местах в течение весны и лета 2014 года из этих образцов 30 почвенных уникальные Arthrobacter фаги, полученных из 22 собранных проб почвы с помощью этого обогащения Процедура. Стандартная процедура обогащения были получены уникальные фагов из 3 одинаковых образцов почвы. Образцы обогащения может иметь очень высокую фага титр нуждающихся начальное разбавление, чтобы изолировать бляшки или относительно низкий титр фага, требующее большего объема обогащенного Arthrobacter для успешного обнаружения бляшек. Мы используем метод доска Убийств подряд, чтобы изолировать чистых популяций фагов после начального обогащения и покрытия на LB-агар (рисунок 2). Кроме того, традиционный стандартный доска титр анализ может быть использован для выделения чистого фага изолят, хотя этот способ требует больше времени, реагентов и материаловс. Как уже упоминалось ранее, мы используем бляшки титр анализа эмпирически определить фагов число титра и число бляшкообразующих единиц (PFUS) с образованием лямки рисунок на тарелке. Рисунок 3 показывает набор последовательных разведений для фага банан и демонстрирует для одна из пластин, что хороший веб-картина должна выглядеть. Рисунок 4 изображает электронные микрографические изображения 20 Arthrobacter фагов изолируют, используя технику обогащения. Из 25 фагов в настоящее время изолированы, 23 из них siphoviruses с довольно длинными хвостами. Два изолированных фагов myoviruses, содержащие диаметры головы, сходные по длине, что их хвосты.

Фигура 1
Рисунок 1. подряд техника пластина схематично используется для изоляции отдельных бляшек фага. Желтая звезда представляет собой область, выложить на тарелку, LBВерхняя агара плюс раствор бактерии должны быть осторожно выливают на пластинку после фага доска полос была завершена.

Фиг.2
Рисунок 2. Примеры технике полоса пластины, используемой для выделения бляшек на один фага (Dylan) при трех различных температурах. Следует отметить, что фаг Дилан производит аналогичные бляшки при комнатной температуре, 30 ° C и 37 ° C. Красные круги на двух пластинах окружают четко выделенные бляшки.

Рисунок 3
Рисунок 3. Налет титр анализ. Arthrobacter фага Банан был серийный разводят в ПБ и высевали на чашки с агаром, как описано в разделах 4.6 и 4.7 Протокола текста. Показаны последовательные разведения Т-4 Т-8 (сверху). Обратите внимание, что ее Т-5 разбавления (снизу вверх) дает веб-шаблон с только небольшим количеством бактерий газон еще остающегося. Нижние серийные разведения (Т-1 до Т-3), созданных четкие пластины со всеми бактерий лизировали фаговых частиц продемонстрировали отсутствие какого-либо бактериального роста.

Рисунок 4
Рисунок 4. Электронные микрографические изображения 20 Arthrobacter фагов выделяли с использованием техники обогащения. Снимки были сделаны с использованием FEI Морганьи ПЭМ. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Несмотря на многие предыдущие попытки изолировать фаги, способные заражать Arthrobacter хозяев, мы не имел большого успеха, используя стандартные процедуры по обогащению. Обобщенный метод бактериального обогащения разработаны и адаптированы ван Twest и Кропински 10 обогатить фагов из образцов окружающей среды остается основой для большинства обогащению процедур. Данные из предыдущих исследований позволяют предположить, что методы прямого посева дали обнаруживаемых бляшки на штаммах Arthrobacter хотя и с очень низкой результативности изоляции 5. При непосредственном методом металлизации, фаги экстрагировали из образцов почвы в буфере фага и фильтруют для удаления загрязняющих бактерий. Отфильтрованный экстракт, содержащий фаговые частицы добавляют к нужному хосту бактерий, чтобы позволить инфекции клетки-хозяина и высевали без дополнительных этапов роста бактерий и фага амплификации.

Наша методика обогащения является надежной и опtimized для относительно легкой изоляции из Arthrobacter фагов из Arthrobacter Sp. KY3901. При использовании традиционных процедур по обогащению, фагов, наряду со многими различными типами бактерий, присутствующих в образцах почвы, извлекаются из почвы в фага буфере и добавл ют к свежей питательной среды с заданными бактериальных клеток, используемых в качестве хозяина для фаговой инфекции. С помощью способа обогащения, все почвенные бактерии удаляются из почвы экстрагируют фаговые образцы путем фильтрации через фильтр 0,22 мкм. В стерильной фильтрации лизата, содержащего частицы фага, но не почвенные бактерии, которые разводили в 2 раза LB бульоне с желаемыми бактерий, используемых в качестве хозяина для размножения фага. Основное различие между нашей процедуры обогащения и других в том, что нет НИКАКИХ загрязняющие почвенные бактерии, конкурирующих за роста с принимающими бактерий в течение периода времени инкубации обогащения. Только хозяин почвы извлекается фага может заразить в том, что из требуемых бактерий-хозяев и поэтому MaximiЗЭС потенциал роста бактерий-хозяев и усиления желаемых-специфичных фагов.

При разработке процедуры, описанной здесь, мы попытались учесть селективного смещения, присущего в любой процедуре обогащения путем тестирования диапазон концентрации CaCl 2 11. Что стало очевидным, что некоторые фагов изоляты показать физиологические различия, зависящие от параметров, таких как концентрация ионов кальция и температуры. Для будущих Arthrobacter фага выделений мы планируем на тестировании такие ключевые факторы, как, как рН, температуры, солености, питательных веществ, ионов двухвалентных металлов изолировать фаги, способные воспроизводить в своих хозяев оптимально при различных условиях окружающей среды.

Мы используем свежевыращенных Arthrobacter клеток в этом эксперименте. Мы не используем клетки, которые достигают среднего до конца стационарной фазы роста, так как мы столкнулись с трудностями изолирующий фага или имеющий достойных титры с известными фагов в гоэто период роста. Другие показали ингибирование фаговой инфекции в стационарной фазе Achromobacter клеток 12, которые могут объяснить отсутствие успеха выделения фагов с помощью бактериальных клеток в середине до конца стационарной фазе роста. Мы имели успех, используя культур для этих экспериментов с плотностью клеток в любом месте от OD6 00 от 0,5 до 0,9. Выращенные культуры хранили при 4 ° С и может быть использован для изоляции фага до семи дней. Тем не менее, тем больше Arthrobacter клетки хранили при 4 ° С ниже, титр и размер пакета инфекционных фаговых частиц. Аналогичные результаты были получены с использованием кишечная палочка для заражения phageT4 13. Поэтому с помощью бактериальных клеток как можно скорее после того, как они достигнут желаемый рост увеличивает шансы на получение нового фага из образца почвы.

Вообще говоря, использование этого метода обогащения с LB СМИ, должны доказать, что едва лиисключительно для изоляции Arthrobacter фагов. В то время как LB был промышленным стандартом для культивирования E. штаммы кишечной палочки и другие члены семейства Enterobacteriaceae, он поддерживает рост широкого спектра бактерий в аэробных условиях 14. Питательная композиция среде LB. вероятно, могут быть использованы в этом способе, чтобы распространить фагов в невероятно разнообразной группой аэробных бактерий, предотвращающих технические проблемы с препятствуя открытие фага.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют никакого конкурирующие финансовые интересы.

Acknowledgments

Финансирование развития этого протокола была предоставлена ​​Юго-Восточной Пенсильвании консорциума по высшему образованию и Департаментом Cabrini вузовской науки. Дополнительное финансирование и поддержка пришла от Аркадия университета и Непорочной университете. Мы особенно благодарны доктору Карен Snetselaar в Санкт-Иосифа университета за любезно принимая электронно-микроскопических изображений наших изолированных фагов. Дополнительная поддержка была оказана охотников Медицинского института Говарда Хьюза Наука Образование Альянс фага наступающих геномика и эволюционная наука программы (SEA-фаги).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
LB Broth powder Fisher BP9722-2 It's best to order these in bulk.
Granulated Agar Fisher BP1423-2 It's best to order these in bulk.
0.22 um syringe filters Fisher 09-719A
0.22 um buchner filters Fisher 430320 More than 50 ml of liquid can be obtained by carefully swapping the receiving tube.
Eppendorf Tubes Fisher 05-408-129
5 ml pipets individual Fisher 13-678-11D
50 ml conical tubes Fisher 76002844
15 ml conical tubes Fisher 76002845
10 ml pipets individual Fisher 13-676-10J
25 ml pipets individual Fisher 13-676-10K
Whatman qualitative filter paper Fisher 1001-824

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Shapir, N., Mongodin, E. F., Sadowsky, M. J., Daugherty, S. C., Nelson, K. E., Wackett, L. P. Evolution of Catabolic Pathways: Genomic Insights into Microbial s-Triazine Metabolism. J Bacteriol. 189, (3), 674-682 (2007).
  2. Qingyan, L., Ying, L., Xikun, Z., Baoli, C. Isolation and Characterization of Atrazine Degrading Arthrobacter sp. AD26 and Use of this Strain in Bioremediation of Contaminated Soil. J Environ Sci. 20, 1226-1230 (2008).
  3. Wang, J., Zhu, L., Liu, A., Ma, T., Wang, Q., Xie, H., Wang, J., Jiang, T., Zhao, T. Isolation and characterization of an Arthrobacter sp. Strain HB-5 that Transforms Atrazine. Environ Geochem Hlth. 33, 259-266 (2011).
  4. Mages, I. S., Frodl, R., Bernard, K. A., Funke, G. Identities of Arthrobacter spp. And Arthrobacter-Like Bacteria Encountered in Human Clinical Specimens. J Clin Microbiol. 46, (9), 2980-2986 (2008).
  5. Brown, D. R., Holt, J. G., Pattee, P. A. Isolation and Characterization of Arthrobacter Bacteriophages and Their Application to Phage Typing of Soil Arthrobacters. Appl Environ Microbiol. 35, (1), 185-191 (1978).
  6. Petrovski, S., Seviour, R. J., Tillett, D. Prevention of Gordonia and Nocardia Stabilized Foam Formation by Using Bacteriophage GTE7. Appl Environ Microbiol. 77, (21), 7864-7867 (2011).
  7. Le Marrec, C., Moreau, S., Loury, S., Blanco, C., Trautwetter, a Genetic Characterization of Site-specific Integration Functions of phi AAU2 infecting “Arthrobacter aureus” C70. J Bacteriology. 178, (7), 1996-2004 (1996).
  8. Casida, L. E., Liu, K. C. Arthrobacter globiformis and Its Bacteriophage in Soil. J Appl Microbiol. 28, (6), 951-959 (1974).
  9. Einck, K. H., Pattee, P. A., Holt, J. G., Hagedorn, C., Miller, J. A., Berryhill, D. L. Isolation and Characterization of a Bacteriophage of Arthrobacter globiformis. J Virol. 12, (5), 1031-1033 (1973).
  10. Twest, R., Kropinski, A. M. Bacteriophage Enrichment from Soil and Water. Methods Mol Bio. 501, 15-21 (2009).
  11. Fullner, K. J., Hatfull, G. F. Mycobacteriophage L5 Infection of Mycobacterium bovis BCG: Implications for Phage Genetics in the Slow-growing Mycobacteria. Mol Microbiol. 26, (4), 755-766 (1997).
  12. Robb, S. M., Woods, D. R., Robb, F. T. Phage Growth Characteristics on Stationary Phase Achromobacter cells. J Gen Virol. 41, (2), 265-272 (1978).
  13. Bolger-Munro, M., Cheung, K., Fang, A., Wang, L. T4 Bacteriophage Average Burst Size Varies with Escherichia coli B23 Cell Culture Age. Journal of Experimental Microbiology and Immunology. 17, 115-119 (2013).
  14. MacWilliams, M. P., Liao, M. K. Luria Broth (LB) and Luria Agar, Media and Their Uses Protocol. ASM MicrobeLibrary. Available from: http://www.microbelibrary.org/library/laboratory-test/3020-luria-broth-lb-and-luria-agar-la-media-and-their-uses-escherichia-coli (2013).
Оптимизированная Техника по обогащению для изоляции<em&gt; Arthrobacter</em&gt; Бактериофаг Виды из образца почвы изолирует
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Cross, T., Schoff, C., Chudoff, D., Graves, L., Broomell, H., Terry, K., Farina, J., Correa, A., Shade, D., Dunbar, D. An Optimized Enrichment Technique for the Isolation of Arthrobacter Bacteriophage Species from Soil Sample Isolates. J. Vis. Exp. (98), e52781, doi:10.3791/52781 (2015).More

Cross, T., Schoff, C., Chudoff, D., Graves, L., Broomell, H., Terry, K., Farina, J., Correa, A., Shade, D., Dunbar, D. An Optimized Enrichment Technique for the Isolation of Arthrobacter Bacteriophage Species from Soil Sample Isolates. J. Vis. Exp. (98), e52781, doi:10.3791/52781 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter