Introduction
体内细胞应答的描述的技术允许可视化之后立即感应玫瑰红的photothrombosis在一个完整的小鼠。玫瑰红（4,5,6,7-四氯-2'，4'，5'，7'-四碘）是用于诱导在动物模型缺血性中风（小鼠和大鼠）的光敏染料。通过减薄头骨与564纳米的激光以下推注的RB的尾静脉和随后的照明，血栓诱导引起生理行程1。该方法最初是由布鲁姆和El-萨班在1977年描述，并通过华生在20世纪80年代中期以后1,2改编。简言之，玫瑰红照射绿色激发光（在我们的情况下，561纳米的激光），其产生产生活性氧种，随后激活组织因子，凝血级联的引发剂。凝血级联的诱导产生缺血莱离子是病理学相关的临床搏3。
行程具有复杂的病理生理由于许多不同的细胞类型，包括神经元，神经胶质细胞，内皮细胞和免疫系统的相互作用。选择最好的技术来研究特定的细胞过程需要多重考虑。实验技术大致可分为三类： 在体外 ， 体内和在计算机芯片与每一个具有优点和缺点体外研究有除去它们的天然环境中的细胞的主要缺点，因此可能无法再现见于一个完整的影响，。活的动物， 在体内技术提供对疾病状态具有增加的平移意义增强实验复制。 在硅片 ，一般是指一种疾病或细胞过程的计算机建模，并且同时日益用来研究对考试潜在的药物相互作用PLE，收集的任何信息仍然必须在活细胞或组织测试。
中风在实验室环境下的理想模式应该表现出类似的病理特征为那些出现在人群中。虽然有中风的人群中常见的生理特点，也有因受伤经历了种类繁多的差异。中风人群中发生的小的或大血管阻塞，出血性病变，和动脉 - 动脉或心栓塞导致在不同的梗死体积，以及在有关每一病理学机制的差异。利用动物中风模型的优点在于，模拟人类中风的特征再现的梗塞的产生。最常见的动物卒中模型包括动脉闭塞使用：大脑中动脉闭塞（栓塞血管内或长丝的方法），该模型远端缺血和photothrombosis模型。其优点是每个模型的D-缺点已在别处综述（参见图4和5）。全球局部缺血模型（MCAO），而相对容易地进行比是局灶性卒中模型不太相关人类中风。此外，这些方法都是在诱导可重复的脑梗塞病灶高度可变。该photothrombosis模型是高度可再现的，只要实验者控制他们的实验以及，提供了明显的优势MCAO模型。然而，由于微脉管损伤的模型已经描述，以显示一个最小的缺血半暗带，其中细胞被认为是挽救6,7的区域。此外，血管性水肿和细胞毒性水肿形成也可诱导的成像区域的下面照射。尽管有这些限制的技术中提供了新的认识以下中风8，9，10，11的许多生理过程。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
注：所有动物的程序批准了得克萨斯健康科学中心的圣安东尼奥大学的机构动物护理和使用委员会均与ARRIVE指南一致。
1.麻醉皮质准备
- 鼠标放置在一个感应室用2-3％异氟烷与氧混合以诱导麻醉。观察呼吸速率减小，鼠标感应。捏鼠标的爪子来确定鼠标是否准备好移动到鼻锥。注意：麻醉水平是在任何在体内制备中的关键步骤和应注意不要诱导的水平，这将导致全球缺血。
- 一旦老鼠被充分麻醉，动物转移到手术/影像平台，将鼠标的鼻子的鼻锥和应用1-1.2％异氟烷维持麻醉状态。确保鼠标躺在温度合作ntrolled加热垫在整个剩余的程序保持体温（37℃+/- 0.5°C）。将审核药膏过来的目光，以防止干燥，而在麻醉下。
- 监视使用使用提供与该系统的尾部或脚夹一个脉冲血氧定量系统鼠标的生理学。检查呼吸率维持50-65次/分钟之间。检查心脏速率保持在300到450 BPM和氧饱和度被保持在97％-98％，以确保动物的长期存活。
- 当鼠标充分麻醉，采用电动推剪剃光头发过头盖骨，去除残留的头发，干净的聚维酮碘，接着乙醇棉签。重复此过程直至三次，以确保一无菌手术环境。
2.手术过程
- 与充分清洗和剃头皮，制成5毫米的切口，在小鼠的头皮以显示颅fissu水库和定位前囟门。
- 使用无菌棉涂敷器以除去任何剩余的筋膜覆盖在颅骨。
- 胶水定制不锈钢环（ 图1）与组织粘合剂到骨上覆使用前囟的立体坐标顶叶：-1至-3毫米和横向：2-4毫米。注：通常胶水的位置环到骨头后设置在2分钟内。
- 加盖环到立体定位架（ 图2），以稳定的小鼠，并防止在成像期间移动。
- 在手术分级解剖显微镜，慢慢钻使用速度控制DREMEL状工具（Meisinger3.9毫米钻头），确保保持该地区的水平，因为它是在钻颅一个1-2毫米的部分。使用Z字形图案实现这一点。为了避免热量积聚，集钻速低，经常休息。
- 当颅头骨变得光亮美观，继续细化使用利用相同的Z字形图案的解剖刀刀片保持减薄表面水平颅骨，以便顺利去除薄层颅头骨的。使用手术刀刀片的一角做小的线性招用轻压一次删除薄层骨。继续此，直到血管显然是通过解剖显微镜可见。
- 如果实验者穿刺通过或中断期间薄型加工颅骨，安乐死的动物由于底层皮质可能损坏。
注意：小鼠头骨是大约300微米厚，并且包括两个薄层密质骨（一个外部，一个内部层）和一层松质骨的密质骨的两层之间。密质骨的外部层和大部分的松质骨的正导致紧凑骨其余的大致为50μm层5mm的钻孔区域内除去（ 见图2B）。 Visualiz脉管系统的通货膨胀将保证最终原封减薄颅骨是大约50微米厚。因此头骨是仍然存在的时候薄到这一厚度。
3.显微镜建立
- 使用倒置显微镜系统（常规的，共焦或双光子系统），其具有一个客观逆变器。注意：也可以利用一个标准直立显微镜。的限制因素将是该阶段与目标之间的空间。修改到阶段可能是必要的，以实现这种设置。
- 固定手术/成像平台，位于一旁的显微镜底座一个定制的阶段。注：该平台是用实验室插孔允许在客观手术/成像平台的垂直运动进行。实验室千斤顶被安装到固定到四个圆柱形磁极的板。 （参见图2）。
- 定位包含20X客观逆变器在客观颅窗口。使用外部光源通过寻找通过显微镜的目镜找到颅窗口和在成像区域定位目标。注意：成像区域将通过脉管系统的存在来表示。
- 用于水性目标，用人工脑脊髓液（ACSF）（130毫摩尔NaCl; 30毫氯化钾; 12毫KH 2 PO 4; 200mM的碳酸氢钠 ; 30毫米的HEPES;和100mM葡萄糖）作为介质，由于电势漏入颅腔成像期间（ 图3）。
4.玫瑰红染料的制备，管理和中风的感应
- 制备新鲜的20毫克/毫升溶液玫瑰红的人工脑脊髓液（ACSF）;筛选和给药前消毒。不要重复使用或存放玫瑰孟加拉一旦有好有坏。使每个实验新鲜溶液。
- 给0.1ml的尾静脉注射玫瑰红，而的S用561纳米激光罐头颅窗口以确保足够的注射溶液。注意：玫瑰红将5秒内注射在大脑的血管后可视化。整个容器应充满玫瑰红。
- 继足够的注射玫瑰红染料选择基于血管直径（40-80微米）血栓形成一个合适的容器，以确保特定的病变体积的可重复性。通过观察血液的流动方向的动脉和静脉之间区分：动脉会从较大直径移动到较小直径血管，静脉从较小移动到较大直径的血管。这是很容易实现可视化，一旦玫瑰红被注入。
- 如下更改设定显微镜：
- 增加的停留时间。注意：这将取决于显微镜系统上正在使用的不同而不同。
- 增加激光功率为100％。
- 在1帧/秒的使用时间采集图像序列最大扫描速度。
- 扫描鼠标，直到稳定的凝块是在容器内而形成。注意：这通常是在5分钟内连续扫描而实现（参见图4）。
- 以下的使用玫瑰红凝块形成的诱导，从摄像区域返回到解剖显微镜删除鼠标。小心地从颅头骨取下不锈钢环。检查颅窗口任何出血。如果发生出血，终止实验。
- 使用6.0单丝缝合关闭切口在颅骨。放置抗生素软膏沿缝合线，以防止感染。注入BUPRENEX（0.05毫克/千克）经皮下，每12小时对疼痛管理三天。
- 返回鼠标恢复室下去除麻醉，直到完全清醒和自由移动。
- 返回鼠标干净笼子进一步调查在以后的时间。
五。在随后几天的纵向成像
- 采用以下方法来在随后几天后photothrombosis进行纵向成像。
- 麻醉小鼠中的方法第1节中所述。
- 经充分的麻醉通过去除残留的缝线重新皮肤上覆之前钻出影像领域重新打开头皮。
- 使用无菌棉涂敷器以除去任何剩余的筋膜覆盖在颅骨。
- 胶水定制不锈钢环（ 图1）与组织粘合剂到骨头上覆先前拍摄视场。
- 加盖环到立体定位架（ 图2），以稳定的小鼠，并防止在成像期间移动。
- 找到血管先前颅骨变薄底层。使用尾静脉注射FITC-葡聚糖的验证先前诱导凝块的存在。
- 使用6.0单丝缝合关闭的在Cision公司的头骨。放置抗生素软膏沿缝合线，以防止感染。注入BUPRENEX（为0.05mg / kg）的皮下每12小时进行疼痛管理的三天。
- 返回鼠标恢复室下去除麻醉，直到完全清醒和自由移动。
6.确认行程感应（验尸）
- 在研究结束时，验证使用2,3,5-氯化三苯基四唑（TTC）染色， 如图5搏出量，完整的方法可以在12找到。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
该方法的目的是诱导在动物模型以下推注的RB的通过尾静脉变薄颅骨和随后的照明用561纳米激光的缺血性中风（小鼠和大鼠）。 图4中的图像表明凝块形成的进展在单个容器内之后的区域的0，1，1.5和2分钟的照射。此前凝块形成全船是白色的，由于自由流动玫瑰红。以下的容器的照射感应有在容器的部分明显变黑并且指示的凝块形成（帧1和1.5分钟）的诱导。以下完全闭塞有玫瑰红染料（白色区域）的容器内的凝块（黑色区域）前述的显着积累。 2分钟时帧表明动脉完全闭塞。
为了验证缺血性中风TTC染色的存在可加以利用。 TTC是共mmonly用于染色脑梗死由红甲TTC产品中的健康组织的形成的检测。甲生产（白色组织）的缺乏表明梗死区。在图5中由方框表示的区域表明以下的容器直径大约为80毫米内产生的凝块从两个单独的动物中获得1至5天的典型病灶大小。在平板扫描仪和使用ImageJ的软件进行图像分析。感兴趣的区域可以在ImageJ的被吸引到测量每搏量的每个大脑的区域。
图1：不锈钢戒指三个视图（俯视图，侧视图和底视图）是示出施加到鼠标将其固定到立体定位支架的头骨的不锈钢环保持器。
图2：显微镜成像平台设置为RB photothrombosis的外科/成像平台包含用于麻醉管与鼻锥和被固定到动物颅骨期间减少动物的运动为不锈钢环的立体定位支架的支架成像。该平台置于顶部并固定到实验室千斤顶，允许在显微镜物镜定位鼠标垂直移动。实验室千斤顶然后连接到显微镜的阶段，其允许水平移动。显微镜载物台被置于上方并固定到四个圆柱形磁极。
图3：在目标INV图片的成像/手术平台的设计和方向erter。（A）左边的面板展示了麻醉小鼠（麻醉鼻锥被删除简要地拍照）的定位的形象代表。注意：使用自定义钢环来连接鼠标头骨降低整个成像过程的呼吸文物的贡献。右边的图像展示在解剖显微镜下皮质窗口的图像。从冠状视图展示了头骨的各层相对于硬膜和减薄区域的相对于全颅骨厚度的厚度薄头骨制备（B）的示意图。
图4：图片的玫瑰红血块形成含有玫瑰红染料的单船那是通过尾巴注入VEI代表图像。n中的鼠标。图像表明凝块形成的进展在容器内之后的区域的0，1，1.5和2分钟的照射。注意玫瑰红染料（白色）在2分钟帧证明动脉的完全闭塞的凝块（黑色）前述的积累。
图5：RB所致损伤的2,3,5-氯化三苯基四唑（TTC）图像代表性的图像示出在第1天及5后photothrombosis感应。处死小鼠和大脑迅速按照标准方法除去，切成1毫米冠状切片并用TTC染色。 TTC是一种常用的染色为脑梗塞的由红甲TTC产品中的健康组织的形成的检测。甲生产（白色组织）的缺乏表明梗死区。该由方框表示的区域表明以下的容器内产生直径约为80μm的凝块获得的典型病灶大小。
图6：玫瑰红光化学过程的示意图。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
翻译实验中风的病理生理学从动物到人类应用的能力一直饱受失败。然而，使用动物模型，如photothrombosis模式，允许中风病理生理学认识的提高和新的治疗方法提供神经保护下面中风的探索。皮质小招的光化学模型制作microinfarctions是临床相关的亚临床或“沉默”中风13-15，因而具有较高的患病率和影响约4％的美国人口（约11万人），每年16。无声中风不具有经典卒中症状存在于较大的行程，如瘫痪，感觉丧失和说话困难，例如，在大脑中动脉（MCA）阻塞或短暂性脑缺血发作（TIA）17看到。此外，无声中风是腔隙性卒中，其中不同由单个穿透动脉阻塞在更深的大脑结构或脑干内引起的，临床上也有运动，感觉或混合赤字18体现。亚临床或“沉默”一般行程不显示任何外在的症状，往往不知道他们甚至中风。无声中风导致亚临床减少认知功能由赤字存储器，决策，和行为变化表现。随着时间的推移，多个无声中风导致称为血管或多发梗塞性痴呆的记忆丧失的临床显著迹象。然而，无声中风的脑损伤可以利用神经成像进行检测，并在未来19放置一个病人的风险TIA和主要行程。
该photothrombosis模型允许在血栓形成的体内模型再现的COMBI中使用光敏染料玫瑰红（RB）生产的一个完整的，麻醉鼠标全国共聚焦显微镜。有在体内 photothrombosis模型的许多优点。这种方法的一个优点是预定义使用立体定位坐标行程的位置的能力;允许一个跨越动物研究特定的细胞群。此外，病变的大小和体积的再现性良好的控制，通过改变激光的强度，并控制用于 血管大小被照射20利用此方法。这种方法还允许更改在梗死周围神经传递的详细研究，并对应对侧皮层4。虽然单个无声中风引起最小缺陷时，该模型的再现性允许以诱导多种沉默笔划在特定区域的能力，这可以被用来模仿各种脑机能障碍如血管性痴呆。多重静音中风和临床上明显缺陷之间的阈值可以开发特定中确定通过使用这种方法的脑的FIC领域为好。最后，该模型允许在同一动物的纵向研究允许被观察急性和慢性影响。
然而，有，在使用photothrombosis模型一些缺点。一个缺点包括生产被标注为相比焦点行程4的其他车型有一个小的缺血半暗带一个病灶。其次，血管性和细胞毒性水肿的形成是可能的，因为感应photothrombosis的，这更类似于创伤性脑损伤比焦行程4中可能发生的损害。
当使用photothrombosis模型有一个一些必须在整个实验过程进行监测的因素。该动物的生理状态在所有成像过程进行监控是至关重要的。它公知的是麻醉水平可影响生理圣动物，具有过麻醉引起的ATU心脏速率和氧气输送减少到动物体内。这是一个重要的考虑因素，因为这将减少氧气的可用性造成缺血的脑。因此，利用一个系统来监测动物的生理状况将允许的同时的非侵入性的记录：动脉血氧饱和度（SPO 2）;心脏率;呼吸频率;脉冲腹胀（局部血液流量和信号质量指示符）;呼吸腹胀（代用品intraplueral压力）;和核心温度在小鼠和大鼠。与任何动物模型中工作时，减少在翻译的实验结果在临床斯托克好处意外的困惑这正在成为控制麻醉越来越重要混淆。的选择，持续时间和麻醉深度可以在实验性卒中的动物模型产生极大的影响。研究表明，麻醉剂可以减少梗塞州市泽甚至可能提供脑缺血21-23,24一些保护。此外，在生产的活性氧的变化也被证明在比较使用氟烷，异丙酚25的研究。这变乱是重要的，因为在与中风相关的神经元死亡的主要假设之一是产生活性氧种。
利用体内显微镜来研究大脑笔划的响应的一个复杂因素是所述成像深度达到的限制。在使用共焦显微镜我们的实验室中，可以实现在成像深度在100-200微米的范围内，同时使用双光子显微镜可以增加这个深度之间400-500微米。这些的困惑正在缓解由目标与发展规模减小增加工作距离和。例如，梯度折射率（GRIN）的微透镜是microendoscopes机智和35-1,000微米h之间直径最小的可用日期。这种类型的探针不能插入到组织中，而不会引起侵入损伤并具有低的数值孔径。相比传统的光学显微镜目标26由于低NA的分辨率较差。
综上所述，玫瑰红photothrombosis模型诱导的小尺寸的梗塞和是研究在两个明确定义的细胞群体中的急性和慢性阶段的梗塞的细胞应答是有用的。该模型表明看到的局灶性缺血脑缺血如下细胞至关重要的特性，因此在评估神经保护/神经再生疗法有用。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
作者宣称，他们有没有竞争的财务权益。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagents | |||
| Rose Bengal | Sigma | 330000 | |
| Isoflurane Anesthetic | MWI Veterinary Supply | 088-076 | |
| Vetbond | 1469SB | 1469SB | |
| aCSF | 126 mM NaCl, 2.5 mM KCl, 1.25 mM NaH2PO4, 2 mM MgCl2, 2 mM CaCl2, 10 mM glucose and 26 mM NaHCO3 (pH 7.4). | ||
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Dissecting Scissors | Bioindustrial Products | 500-410 | |
| Operating scissors 14 cm | Bioindustrial Products | 12-055 | |
| Forceps Dumont High Tech #5 style, straight | Bioindustrial Products | TWZ-301.22 | |
| LabJack 132X80 | Optosigma Co | 123-6670 | |
| Platform for Labjack 8X 8 | Optosigma Co | 145-1110 | |
| Ear bar holder from stereotaxic setup | Stoelting/Cyborg | 51654 | |
| Dispomed Labvent Rodent anesthesia machine | DRE, Inc. | 15001 | |
| Tech IV Isoflurane vaporizer | DRE, Inc. | 34001 | |
| F Air Canister | DRE, Inc | 80120 | |
| Bain circuit breathing tube | DRE, Inc | 86111B | |
| Rodent adapter for bain tube | DRE, Inc | 891000 | |
| O2 regulator for oxygen tanks | DRE, Inc | CE001E | |
| Rodent induction chamber | DRE, Inc | 15004C | |
| Ethicon Silk 6-0; 18 in with P-3 needle | Suture Express | 1639G | |
| Objective inverter Optical Adapter | LSM technologies | ||
| Foredom drill Dual voltage 110/120 | Foredom | 134.53 | |
| Meisinger 3.9 mm drill bit | Meisinger | (Ref#310 104 001 001 009) | |
References
- Watson, B. D., Dietrich, W. D., Busto, R., Wachtel, M. S., Ginsberg, M. D. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Annals of Neurology. 17, 497-504 (1985).
- Rosenblum, W. I., El-Sabban, F. Platelet aggregation in the cerebral microcirculation: effect of aspirin and other agents. Circulation Research. 40, 320-328 (1977).
- Owens, A. P. 3rd, Mackman, N. Sources of tissue factor that contribute to thrombosis after rupture of an atherosclerotic plaque. Thrombosis Research. 129, Suppl 2. S30-S33 (2012).
- Carmichael, S. T. Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose. NeuroRx : the journal of the American Society for Experimental NeuroTherapeutics. 2, 396-409 (2005).
- Manual of stroke models in rats. , 332 CRC Press. (2009).
- Herz, R. C., Kasbergen, C. M., Hillen, B., Versteeg, D. H., de Wildt, D. J. Rat middle cerebral artery occlusion by an intraluminal thread compromises collateral blood flow. Brain Research. 791, 223-228 (1998).
- Brint, S., Jacewicz, M., Kiessling, M., Tanabe, J., Pulsinelli, W. Focal brain ischemia in the rat: methods for reproducible neocortical infarction using tandem occlusion of the distal middle cerebral and ipsilateral common carotid arteries. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism : Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 8, 474-485 (1988).
- Zheng, W., et al. Purinergic receptor stimulation reduces cytotoxic edema and brain infarcts in mouse induced by photothrombosis by energizing glial mitochondria. PloS One. 5, e14401 (2010).
- Zheng, D. M., Wewer, J., Lechleiter, J. P. 2Y. 1R. -initiated IP3R-dependent stimulation of astrocyte mitochondrial metabolism reduces and partially reverses ischemic neuronal damage in mouse. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 33, 600-611 (2013).
- Witte, O. W., Stoll, G. Delayed and remote effects of focal cortical infarctions: secondary damage and reactive plasticity. Advances in Neurology. 73, 207-227 (1997).
- Hagemann, G., Redecker, C., Neumann-Haefelin, T., Freund, H. J., Witte, O. W. Increased long-term potentiation in the surround of experimentally induced focal cortical infarction. Annals of Neurology. 44, 255-258 (1998).
- Kramer, M., et al. TTC staining of damaged brain areas after MCA occlusion in the rat does not constrict quantitative gene and protein analyses. Journal of Neuroscience Methods. 187, 84-89 (2010).
- Blinder, P., Shih, A. Y., Rafie, C., Kleinfeld, D. Topological basis for the robust distribution of blood to rodent neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, 12670-12675 (2010).
- Nishimura, N., Rosidi, N. L., Iadecola, C., Schaffer, C. B. Limitations of collateral flow after occlusion of a single cortical penetrating arteriole. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 30, 1914-1927 (2010).
- Nishimura, N., Schaffer, C. B., Friedman, B., Lyden, P. D., Kleinfeld, D. Penetrating arterioles are a bottleneck in the perfusion of neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences. 104, 365 (2007).
- Blum, S., et al. Memory after silent stroke: Hippocampus and infarcts both matter. Neurology. 78, 38-46 (2012).
- Heinsius, T., Bogousslavsky, J., Van Melle, G. Large infarcts in the middle cerebral artery territory Etiology and outcome patterns. Neurology. 50, 341-350 (1998).
- Wardlaw, J. What causes lacunar stroke. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry. 76, 617-619 (2005).
- Inoue, Y., et al. Ischemic stroke under anticoagulant therapy]. Rinsho shinkeigaku. Clinical Neurology. 50, 455-460 (2010).
- Tiannan Wang, W. C., Xie, Y., Zhang, W., Ding, S. Controlling the Volume of the Focal Cerebral Ischemic Lesion through Photothrombosis. American Journal of Biomedical Sciences. 2, 33-42 (2009).
- Head, B. P., Patel, P. Anesthetics and brain protection. Current Opinion in Anaesthesiology. 20, 395-399 (2007).
- Kirsch, J. R., Traystman, R. J., Hurn, P. D. Anesthetics and cerebroprotection: experimental aspects. International Anesthesiology Clinics. 34, 73-93 (1996).
- Koerner, I. P., Brambrink, A. M. Brain protection by anesthetic agents. Current Opinion in Anaesthesiology. 19, 481-486 (2006).
- Gelb, A. W., Bayona, N. A., Wilson, J. X., Cechetto, D. F. Propofol anesthesia compared to awake reduces infarct size in rats. Anesthesiology. 96, 1183-1190 (2002).
- Bhardwaj, A., Castro, I. A., Alkayed, N. J., Hurn, P. D., Kirsch, J. R. Anesthetic choice of halothane versus propofol: impact on experimental perioperative stroke. Stroke; A Journal Of Cerebral Circulation. 32, 1920-1925 (2001).
- Barretto, R. P., Messerschmidt, B., Schnitzer, M. J. In vivo fluorescence imaging with high-resolution microlenses. Nature Methods. 6, 511-512 (2009).
