Protocol
1. Die Herstellung einer Masterform für die hydrodynamische Fokussierung Mikrofluidik-Gerät (HFMD) durch Lithografie
- Entwerfen Sie eine Photomaske für die HFMD (Abbildung 1a) unter Verwendung von computergestützten Konstruktion (CAD) Software gemäß dem Protokoll des Herstellers.
- Spülen eine 4 'Siliciumwafer mit Aceton, Isopropylalkohol (IPA) und deionisiertes (DI) Wasser zu organischem und anorganischem Staub von dem Wafer zu entfernen.
- Reinigen der Siliciumscheibe mit O 2 -Plasma bei 100 W Leistung für 5 min , um die Bindungsfestigkeit zwischen dem Wafer und SU-8 zu erhöhen.
- Spin-coat 4 ml des negativen Photoresist, SU-8 2150, auf den Wafer bei 3000 Upm für 30 sec mit einer Dicke von 150 um (b1 in Figur 1b) zu erreichen.
- Legen Sie die SU-8 beschichtete Wafer auf einer Heizplatte für 5 min bei 65 ° C, die Temperatur auf 95 ° C, und dann lassen Sie den Wafer auf der Heizplatte 30 min zu weich backen.
- Setze dasentworfen Photomaske über dem Wafer und setzen mit UV - Licht (260 mJ cm -2, 26 sec für 10 mW cm -2) in einem Mask Aligner (b2 in Abbildung 1b).
- Führen der Nachbelichtung auf einer Heizplatte Backen (65 ° C für 5 min und dann 95 ° C für 12 min).
- Entwickeln Sie die Wafer durch Eintauchen in ein SU-8-Entwicklerbades für 10 min und dann übertragen sie in frischen Entwickler für 5 Sekunden um eine saubere Oberfläche zu erhalten.
- Spülen Sie den Wafer für 20 Sekunden mit DI - Wasser und trocknen Sie sie 10 Sekunden lang mit N 2 -Gas (b3 in Abbildung 1b). Verwenden Sie die hergestellte Wafer als Masterform für Polydimethylsiloxan (PDMS) Gießen in Abschnitt 2.
2. Die Herstellung des HFMD durch PDMS Casting
- Verwenden Sie die strukturierten Wafer in Abschnitt 1 als Master-Form erhalten für PDMS Guss.
- Mischen Sie die PDMS Vorpolymer und ein Härtungsmittel homogen in einem Gewichtsverhältnis von 10: 1; beispielsweise verwendet werden 1 g Härter 10 g PDMS vorge Polymer.
- Gießen Sie die PDMS - Pre-Polymer in die Urform und entgast es für 1 Stunde in einer Vakuumkammer (b4 in Abbildung 1b).
- Platzieren Sie die Mutterform mit der PDMS Vorpolymer in einem Ofen bei 65 ° C für 3 Stunden.
- Schneiden Sie die gehärtete PDMS in der Größe eines einzelnen Chips ein scharfes Skalpell. das gehärtete PDMS Replik aus der Urform mit der Hand vorsichtig abziehen.
- Wiederholen Sie die Schritte 2.2 bis 2.5 eine identische PDMS Replik zu erhalten.
- Stanzen Einlass- und Auslasslöcher in eine der Repliken einen Locher mit einem etwas kleineren Durchmesser als der Außendurchmesser der Verbindungsrohrleitung verwendet wird.
- Bewerben Luft Plasmabehandlung auf die Klebefläche jedes Replikat eine Corona Anlage verwendet wird . 34
Achtung: Verwenden Sie die Corona Anlage in einem Bereich mit guter Belüftung Ozon Ablagerungen zu verhindern. - Drop-5 ul Methanol auf die Luft-Plasma-behandelten Flächen. Fein ausgerichtet zwei identische PDMS Repliken der HFMD von Hand Manipu- herzustellen nung und Ausrichtung prüfen über ein Mikroskop (b5 in Abbildung 1b).
Hinweis: Die Luft-Plasma-behandelten PDMS Repliken ziemlich klebrig und schwer zu manipulieren. So wurden 5 ul Methanol wird an die Luft plasmabehandelte Oberfläche hinzugefügt als Schmiermittel fungiert. - Legen Sie die HFMD in einem Ofen auf 65 ° C über Nacht um die Bindung zwischen zwei PDMS Repliken (b6 in Abbildung 1b) zu stärken. Bond zwei identische PDMS Repliken, die Höhe des Mikrokanals des HFMD zu erhöhen und in dem mikrofluidischen Kanal während des Betriebs ein Verstopfen von Mikrotröpfchen zu vermeiden.
Abbildung 1: Überblick über die HFMD Herstellungsverfahren (a) Design - Parameter der Photomaske für die HFMD.. (B) Abbildung des Herstellungsverfahrens für die HFMD.ftp_upload / 52813 / 52813fig1large.jpg "target =" _ blank "> Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
3. Herstellung von NIPAAm reichen (N-reich) und NIPAAm-armen (N-arm) Phasen durch Phasentrennung von Supersaturated NIPAAm
- Auflösen NIPAAm Monomer in entionisiertem Wasser bei aw / w-Verhältnis von 1: 1 unter Verwendung eines Vortex-Mischers; beispielsweise 10 g von NIPAAm in 10 ml DI - Wasser (erstes Bild von Figur 2a) aufzulösen.
Hinweis: Wenn der NIPAAm Monomer vollständig bei Raumtemperatur gelöst, die Lösung trüb erscheint (zweites Bild von Figur 2a). Dieses Phänomen ist der erste Hinweis, dass die Löslichkeit induzierte Phasentrennung des übersättigten NIPAAm Monomer erfolgreich stattgefunden hat. - Erlauben die Monomerlösung in einer vertikalen Position bei Raumtemperatur für mindestens 15 min ruhen. Die obere Phase ist die N-reiche Phase und die dichtere untere Phase ist die N-armen Phase (drittes Bild von Abbildung 2a). Die Dichten von the N-reiche und N-armen Phasen sind 0,93 ± 0,01 und 0,99 ± 0,01 g cm -3. 15
- Wenn die Schnittstelle der beiden Phasen trennt klar wird, extrahiert man vorsichtig 2 ml Monomerlösung aus den N-reichen und N-armen Phasen ohne diese Schnittstelle zu stören, indem mit Hilfe einer Pipette.
- Hinzufügen 4 mg N, N 'Methylenbisacrylamid (MBAAm) als Vernetzer und 4 mg 4- (2-hydroxyethoxy) phenyl- (2-hydroxy-2-propyl) keton als Photoinitiator zu dem extrahierten N-reiche und N -arme Monomerlösungen zur Herstellung von Kernflüssigkeiten 1 und 2 für die niedrige Vernetzerkonzentration (2 mg ml -1) Probe (b1 und b2 in Abbildung 2b).
- Wiederholen vorherigen Schritt 3.3 und fügen 80 mg MBAAm und 4 mg 4- (2-hydroxyethoxy) phenyl- (2-hydroxy-2-propyl) keton in jede der extrahierten N-reiche und arme N-Monomerlösung Kernflüssigkeiten herzustellen 1 und 2 für die hohe Vernetzerkonzentration (40 mg ml -1) Probe (b3 und b4 in Figure 2b).
- Man löst 10 Gew% des Tensids in Öl Mineralöl die Hüllflüssigkeit (b5 in 2b) herzustellen.
Fig . 2: Materialvorbereitung für Janus Microhydrogel Synthesis (a) Herstellung von N-reiche und N-armen Monomerlösungen durch Phasentrennung von übersättigten NIPAAm. (B) Einzelheiten zu den Materialien und Versuchsaufbau im Protokoll verwendet. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
4. Synthese von Janus Microhydrogels die HFMD Verwendung
- Last 2 ml Kernflüssigkeiten 1 und 2 (b1, b2 oder b3, b4 in Bild 2b) und der Hüllflüssigkeit (b5 in 2b) in drei separate 3 ml Spritzen. Montieren Sie die Spritzen in die Spritzenpumpen und schließen jede Spritze mit dem entsprechenden Fluideinlass des HFMD mit Schlauch (Abbildung (b). Schlauch Verwenden Sie den Fluidauslass der HFMD zu einem Sammelbehälter zu verbinden.
- Stellen Sie die Spritzenpumpen und infundieren Kernflüssigkeiten 1 und 2 und Hüllfluid mit Strömungsgeschwindigkeiten von 2, 2, und 10 & mgr; l min -1.
- (Optional) Tune die Strömungsgeschwindigkeit des Kern Fluide 1 und 2 die relativen Volumenverhältnisse von jeder Seite des Janus Mikrotröpfchenpropofol einzustellen.
- Positionieren Sie die UV-Lichtquelle senkrecht etwa 1 cm entfernt von der Sammelreservoir. Einschalten der UV-Lichtquelle und optisch überwachen die kontinuierliche Herstellung von Janus microhydrogels.
Achtung: Verwenden Sie UV - Schutzbrille , wenn microhydrogel Produktion zu überwachen. - Sammeln Sie die hergestellt Janus microhydrogels in eine konische Röhre und waschen Sie sie IPA verwenden. Zentrifuge dann das konische Röhrchen (780 g für 5 min) zu regeln diemicrohydrogels.
- Wiederholen Sie Schritt 4.6 mehrmals das Mineralöl rund um die Janus microhydrogels vollständig zu entfernen.
- Wiederholen Sie Schritt 4.6 aber die Verwendung DI Wasser mit einem Wasser-Tensid von 0,005% (v / v) anstelle von IPA die übrig gebliebenen IPA um die Janus microhydrogels zu entfernen.
- Lagern Sie vollständig gewaschen Janus microhydrogels in einem 10 ml-Fläschchen mit VE-Wasser.
5. Analyse der anisotropen Thermo-Ansprechempfindlichkeit von Janus Microhydrogels
- Verwenden Sie eine Pipette Janus microhydrogels aus Abschnitt 4 in einer 24-Well-Platte synthetisiert zu platzieren. Lassen Sie die microhydrogels für 15 Sekunden absetzen, bis eine Monoschicht an der Bodenfläche der Vertiefung gebildet ist.
- Erhalten Sie ein Bild des Janus microhydrogel bei 24 ° C ein aufrechtes Lichtmikroskop mit einem 5fach Objektivlinse verwendet wird.
- Stellen Sie ein thermoelektrisches Modul unter der Well-Platte und steuern die Spannung dieses Moduls die Temperatur der Lösung, die Janus Mikro zu erhöhenHydrogele auf 32 ° C.
- Erhalten Sie ein Bild des Janus microhydrogel bei 32 ° C nochmals um ein aufrechtes Lichtmikroskop mit einem 5fach Objektivlinse verwendet wird.
- Wiederholen Sie die Schritte 5,2-5,4 24-mal, wobei darauf geachtet, eine andere Janus microhydrogel für die statistische Analyse zu wählen.
- Von den 25 Bildern verschiedener Janus microhydrogels bei 24 und 32 ° C, messen Sie den Radius der PN-rich und PN-armen Teile der Janus microhydrogels Bildanalyse-Software gemäß den Anweisungen des Herstellers.
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Representative Results
Figur 3a zeigt eine schematische Darstellung des Versuchsaufbaus verwendet Janus microhydrogels über die HFMD zu synthetisieren. Die N-reiche und N-arme Phasen wurden präzise in die HFMD als Kernflüssigkeiten eingespritzt 1 und 2 und dann zusammengefügt und zerlegt in Janus Mikrotröpfchen an der Öffnung durch die Mantelflüssigkeit Mineralöl wegen der kapillaren Instabilität Rayleigh. Folglich besteht Janus Mikrotröpfchen von N-reiche und N-arme Phasen wurden erfolgreich erzeugt , wie in 3b gezeigt. Der Durchmesser der Mikrotröpfchen betrug 190 & mgr; m mit Variationskoeffizienten (CV) von weniger als 2%. Die klar compartmentalized innere Morphologie der Janus-Mikrotröpfchen beobachtet wurde, da beide Phasen stabil getrennt sind. Es sollte beachtet werden, dass jede Phase in der anderen nicht mischbar ist und die Diffusion zwischen den Phasen ist nahezu vernachlässigbar. Das Volumenverhältnis der N-reiche und N-arme Phasen innerhalb eines Mikrotröpfchens war controlled indem die Strömungsrate jeder Monomerlösung durch die Spritzenpumpe zu verändern, wie in 3c gezeigt. Der Photoinitiator zugesetzt in der N-reiche und arme N-Monomerlösungen wurde dann durch Belichten mit UV-Licht ausgelöst wird, dadurch Induzieren der Polymerisation der N-reiche und arme N-Phasen PN-reichen und PN-armen, respectively.
Abbildung 3: Erzeugung von Janus Mikrotröpfchen die HFMD mit (a) Schematische Darstellung des HFMD zur Erzeugung von Janus Mikrotröpfchen.. (B) Lichtmikroskopische Aufnahme der Janus - Mikrotröpfchen aus N-reichen und N-armen Phasen. (C) Janus Mikrotröpfchen , die mit unterschiedlichen Volumenverhältnisse der N-reichen und N-armen Phasen (1: 3, 1: 1, 3: 1). Bitte klicken Sie hier um ein , um zu vergrößernVersion dieser Figur.
Abbildung 4 zeigt die anisotrope Thermos-responsive Verhalten der microhydrogels durch Unterschiede in NIPAAm Monomerkonzentration zwischen den PN-reichen und PN-armen Teilen der Janus microhydrogel verursacht. Janus microhydrogels mit verschiedenen Vernetzers Konzentrationen von 2 und 40 mg ml -1 wurden hergestellt , um die Wirkung der Vernetzungskonzentration auf die Temperatur reagierendes Verhalten der resultierenden Hydrogele zu untersuchen. Wie in Figur 4 gezeigt ist , erhöht sich in Vernetzerkonzentration ergab Abnahmen der reversible Volumenänderung der microhydrogels oberhalb und unterhalb der LCST.
Abbildung 4: Temperaturverhalten der Janus Microhydrogels anisotroper Volumenänderungen in den Janus microhydrogels als Reaktion auf.Temperaturvariation durch Unterschiede in NIPAAm Monomerkonzentration zwischen den PN-reichen und PN-armen Teilen induziert wurden. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Figur 5a zeigt schematische Diagramme und optische Mikrographien der Janus Mikrotröpfchen / microhydrogels in Reaktion auf Umwelt- und Temperaturänderungen: 24 ° C in Öl, 24 ° C in Wasser, und 32 ° C in Wasser. Um Thermoempfindlichkeit quantifizieren, messen wir den Radius der Janus - Mikrotröpfchen / microhydrogels, wie in 5b gezeigt. Die Fehlerbalken in 5b stellt die Standardabweichung des gemessenen Radius in 25 Janus microhydrogels. Der Radius der einzelnen Teile der Janus microhydrogels wurde aus den aufgenommenen Bildern unter Verwendung von Bildanalysesoftware bestimmt. Im Monomertröpfchengröße Zustand(a1 in Figur 5a und 5b), der Radius der N-reiche und arme N-Phasen war nahezu identisch. Ein geringfügiger Unterschied im Radius zwischen den PN-reichen und PN-armen Teile der Janus microhydrogels wurde nach der Polymerisation (a2 in 5a und Figur b) aufgrund des geringeren NIPAAm Monomerkonzentration in der N-armen Phase beobachtet im Vergleich zu dem in der N-reiche Phase. Beide PN-reichen und PN-armen Teile der Janus microhydrogels waren in DI-Wasser bei Raumtemperatur vollständig gequollen. In der Quellstufe war die Schwellung des PN-reichen Teil größer ist als der des PN-armen Teil; Konsequenterweise Schnee-Mann - förmigen Janus microhydrogels erhalten (a3 in 5a und Figur b). Interessanterweise war der Radius der microhydrogels nach bei 32 ° C schrumpft ähnlich dem Radius der in der HFMD erzeugten Mikrotröpfchen (a4 in Figur 5a und 5b).
Abbildung 5:. Janus Microhydrogels mit anisotroper Thermo-Responsiveness (a) Schematische Darstellung und lichtmikroskopische Aufnahmen von Janus Mikrotröpfchen / microhydrogels (Maßstabsbalken sind 100 & mgr; m). (B) Radius Änderung der Janus - Mikrotröpfchen / microhydrogels als Reaktion auf Umwelt- und Temperaturänderung: 24 ° C in Öl, 24 ° C in Wasser, und 32 ° C in Wasser. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Figur 6a zeigt die Auflösungseigenschaften der N-reiche und arme N-Monomerlösungen. Fettlösliche Farbstoff (Öl rot O und Öl blau N) und wasserlösliche Farbstoff (gelbe und grüne Lebensmittelfarbstoffe) bevorzugen stark in die N-ric aufzulösenh und N-armen Monomerlösungen sind. Auf der Grundlage dieser Auflösungseigenschaften, enthaltend Mikrotröpfchen Janus NIPAAm Monomer fett- und wasserlösliche Farbstoffe ohne Quervermischung wurden unter Verwendung des vorgeschlagenen Protokolls erzeugt. Öl rot O und grüne Lebensmittelfarbe wurden jeweils ausgewählt als repräsentativ organophile und hydrophile Materialien, wie in 6b gezeigt. Nach der UV - Polymerisation wurden Janus microhydrogels beide Farbstoffe enthalten erfolgreich synthetisiert, in Figur 6c gezeigt. Diese Ergebnisse zeigen , daß die Janus microhydrogel als organophile / hydrophilen dual Materialträger aufgebracht werden konnte.
Abbildung 6: Janus Microhydrogels mit organophilen / Hydrophilie Loading - Fähigkeit (a) Auflösungseigenschaften von N-reichen und N-armen Monomerlösungen.. Fett- und wasserlösliche Farbstoffe stark preferred in den N-reiche und arme N-Monomerlösungen aufzulösen, respectively. (B) Erzeugung von Janus Mikrotröpfchen enthält , fett- und wasserlösliche Farbstoffe , ohne Quervermischung. (C) polymerisieren Janus microhydrogels fett- und wasserlösliche Farbstoffe enthalten. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
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Discussion
Zwei nicht mischbare Basismaterialien werden in der Regel verwendet, um die Janus microhydrogels zu synthetisieren. Bis vor kurzem bestehend Janus microhydrogels aus dem gleichen Grundmaterial wurden selten beobachtet , und die berichteten Janus microhydrogels keine klare interne Morphologie aufgrund der Störung durch die Mischbarkeit der Komponenten - Materialien verursacht. 35, 36 In diesem Protokoll zeigen wir ein Verfahren Janus microhydrogels bestehen vollständig aus dem einzigen Grundmaterial, PNIPAAm, mit einer klar compartmentalized Struktur zu synthetisieren.
Als kritischer Schritt, um die Janus microhydrogels zu synthetisieren, haben wir das Phasentrennungsphänomen der übersättigten NIPAAm Monomerlösung. Die N-reiche und N-armen Phase Lösungen aus dem Phasentrennungsphänomen gesammelt nicht mischbar sind und die Störung zwischen der N-reiche und N-arme Phase ist nahezu vernachlässigbar. Diese Unmischbarkeit der N-reiche und N-armen Phasen in den Janus-Mikrotröpfchen war maintained im HFMD und die Morphologie der Janus microhydrogels wurde auch nach der Polymerisation erhalten.
Wir wendeten die HFMD als Methode der Janus microhydrogels zu synthetisieren , weil das Protokoll die einfache Herstellung von monodispersen Janus microhydrogels mit einer Rate von 10 5 Janus microhydrogels pro Stunde ermöglicht. Der neu gestaltete HFMD in dieser Arbeit wurde für die Herstellung von Janus microhydrogels mit Größen in der Größenordnung von hundert Mikrometern richtig hergestellt ist; zukünftigen Designs HFMD können möglicherweise Janus microhydrogels einer kleineren Größe zu erzeugen.
Eine weitere Untersuchung der Janus microhydrogels zeigte zwei verschiedene Merkmale stammen aus verschiedenen NIPAAm-Konzentrationen in den N-reich und N-armen Phasen. Zunächst bestehen die Janus microhydrogels verschiedener NIPAAm Konzentrationen zeigten anisotropen temperaturempfindliche Verhalten in Reaktion auf Temperaturschwankungen. Das Monomer zu Vernetzer-Verhältnis gut bekannt direbeeinflussen ctly den Pegel eines Hydrogels quellen 37 , um die Menge von NIPAAm Moleküle in der N-reiche Phase ist in der Regel deutlich höher als die in der N-armen Phase. Somit wird die Monomer-Verhältnis in der N-reiche Phase zu Vernetzer größer als die in der N-armen Phase, wenn eine identische Konzentration des Vernetzers für beide Phasen verwendet. Folglich erfährt der PN-reichen Teil des Janus-Hydrogel eine größere Volumenänderung im Vergleich mit dem PN-armen Teil als Reaktion auf Temperaturänderung. Zweitens zeigten die Janus microhydrogels organophilen / hydrophilen Belastbarkeit ohne Quervermischung. Die fettlöslichen Farbstoff wurde gut gelöst in der N-reiche Monomerlösung während der wasserlösliche Farbstoff in der N-armen Monomerlösung gut gelöst wurde. Die kontrastierAuflösungsEigenschaften der N-reiche und N-armen Monomerlösungen werden aus Unterschieden in der Verfügbarkeit von freien Wassermolekülen abgeleitet übrig bleiben, nachdem in jeder Monomerlösung mit NIPAAm-Molekülen interagieren. Weil es möglEsses eine vergleichsweise höhere Anzahl von übrig gebliebenen freien Wassermoleküle als die N-reiche Monomerlösung kann die N-armen Monomerlösung leicht hydrophile polare Moleküle innerhalb der wasserlösliche Farbstoff aufzulösen. Dagegen wasserlösliche Farbstoff eine schlechte Löslichkeit in der N-reiche Monomerlösung zeigte, die nur mit einigen freien Wassermolekülen in Wechselwirkung treten können. Folglich zeigten die N-reich und N-armen Monomerlösungen entgegengesetzte Ergebnisse, wenn sie mit fettlöslichen Farbstoff gemischt. Die synthetisierten Janus microhydrogels kann als organophile / hydrophilen Dual Materialträger mit einer compartmentalized interne Morphologie ohne Quervermischung verwendet werden.
Die künftige Anwendung
Die neuen Eigenschaften des Janus microhydrogels kann genutzt werden, um funktionelle Mikropartikel zu entwickeln und mit mehreren Wirkstoffverkapselung erreichen. Wir glauben, dass das Syntheseprotokoll für diese microhydrogels Janus basierend auf Phasentrennung der übersättigten NIPAAm eine neuartige Materia einführtl-Plattform mit dem Potential für fortgeschrittene Synthese von multifunktionalen Janus microhydrogels.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Silicon wafer | LG Siltron | 4", Test grade | Wafer for master mold fabrication |
| Acetone | Samchun Pure Chemical | A0097 | Cleaning silicon wafer |
| Isopropyl alcohol (IPA) | Daejung Chemicals & Metals | 5035-4404 | Cleaning silicon wafer |
| Water purification system | Merck Millipore | EMD Millipore RIOs Essential 5 | Prepering deionized water |
| O2 plasma machine | Femto Science | VITA-A | Cleaning silicon wafer |
| SU-8 2150 negative photoresist | MicroChem | Y111077 0500L1GL | Photoresist for master mold fabrication |
| Hot plate | Misung Scientific | HP330D, HP150D | Baking SU-8 |
| SU-8 developer | Microchem | Y020100 4000L1PE | Developing SU-8 |
| Mask aligner system for photolithograpy | Shinu Mst Co. | CA-6M | Photolithography |
| Sylgard 184 silicone elastomer kit | Dow Corning | 1064891 | PDMS casting |
| Laboratory Corona Treater | Electro-technic Products Inc. | Model BD-20AC | PDMS air plasma treatment |
| N-isopropylacrylamide (NIPAAm) | Sigma-Aldrich | 415324-50G | Monomer |
| N,N'-methylenebisacrylamide (MBAAm) | Sigma-Aldrich | 146072-100G | Crosslinker of NIPAAm |
| 4-(2-hydroxyethoxy)phenyl-(2-hydroxy-2-propyl)ketone, Irgacure 2959 | BASF | 55047962 | Photoinitiator of NIPAAm |
| ABIL EM 90 | Evonik Industries | 201109 | Sufactant for oil |
| Vortex mixer | Scientific Industries Inc. | Vortex-Genie 2 | Mixing |
| Tygon tubing | Saint-Gobain | I.D. 1/32", O.D. 3/32", Wall 1/32" | Connecting tube between syringes and HFMD |
| UV light source | Hamamatsu | Spot light source LC8 | Polymerization from NIPAAm to PNIPAAm |
| Syringes, NORM-JECT (3 ml) | Henke-Sass Wolf GmbH | 22767 | Loading of materials |
| Syringe pump | KD Scientific | KDS model 200 | Perfusion of materials |
| Tegitol Type NP-10 | Sigma-Aldrich | NP10-500ML | Surfactant for water |
| Oil red O | Sigma-Aldrich | O0625-25G | Dye for N-rich phase |
| Oil Blue N | Sigma-Aldrich | 391557-5G | Dye for N-rich phase |
| Yellow food dye | Edentown F&B | NA | Dye for N-poor phase |
| Green food dye | Edentown F&B | NA | Dye for N-poor phase |
| Power supply | Agilent | E3649A | Power source for thermoelectric module |
| Thermoelectric module | Peltier | FALC1-12710T125 | Temparature control |
| Centrifuge machine | Labogene | 1248R | Settling down microhydrogels |
| 24-well plate | SPL Life Sciences | 32024 | Reservoir for observation |
| Optical microscope | Nikon | ECLIPSE 80i | Optical observation |
| Image analysis software | IMT i-Solution Inc. | iSolutions DT | Measurement of radius |
References
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