Introduction
Üç farklı mikro ölçekli ısı ölçüm teknikleri bu makalede sunulmuştur. mikroakışkan cihazlar üç farklı konfigürasyonu ısı parçacık algılama (TPD), ısı karakterizasyon (termal iletkenlik ve özgül ısı) ve kimyasal reaksiyonlar ve etkileşimleri kolorimetrik tespiti için kullanılır.
Termal Parçacık Algılama
Tespit etmek ve mikroakışkan cihazlar parçacıkların sayımı yaygın çevresel sanayi ve biyolojik uygulamalar 1 kullanılır. TPD mikroakışkan cihazlar 2 termik ölçümlerin yeni uygulamalardan biridir. Tespit ve partikül büyüklüğüne göre partiküllerin sayılması için ısı transferini kullanarak sistemin karmaşıklığı, maliyet ve büyüklüğünü azaltır. Diğer yöntemler, karmaşık optik veya kompleks elektrik ölçümler ve gelişmiş sinyal işleme yazılımında parçacıkların saptanması için kullanılır.
Termal CharaMikro-kalorimetre kullanarak sıvı maddelerin cterization
Sıvı örnek termal karakterizasyonu mikroakışkan cihazlarda ısı ölçüm ikinci uygulamasıdır. Mikro ölçekli kalorimetre Sahne örnek tüketimini azaltmak ve konvansiyonel dökme kalorimetre yöntemlerine göre daha yüksek tekrarlanabilirlik sunarak hassasiyetini artırır. çip üzerinde mikro kalorimetre cihazı kullanılarak ısı iletkenliği ve özgül ısı ölçümü için prosedürler başka 3 sunulmaktadır. ısıl iletkenlik ölçümü için ısı penetrasyon süresi tekniği ve mikroakışkan cihazlarda özgül ısı ölçümleri için termal dalga analizi (TWA) detayları protokol bölümünde açıklanmıştır.
Kalorimetrik Bio-Kimyasal Algılama Kağıt Tabanlı mikroakışkan Aygıt
Termal ölçüm başka bir uygulama kağıt tabanlı Mikroakiskan biyokimyasal algılama olduğunu. kılcal eylemiKağıdın gözenekli yapısı sıvıyı taşıyan ve mikro kanallarda kabarcık başlatma sorunlarını önler. kağıt tabanlı mikroakışkan cihazlarda en yaygın algılama mekanizmaları, optik veya elektrokimyasal teknikler bulunmaktadır. Optik algılama yüksek karmaşıklık muzdarip ve gelişmiş görüntü işleme yazılımı gerekliliği tespit sinyalini nicemlemek için. Sadece, aktif yan ürünler üreten reaksiyonları uygulanabilir, çünkü elektrokimyasal bulgulama da sınırlıdır. Son zamanlarda tanıtılan Kalorimetre kağıt tabanlı biyokimyasal sensör platformu 4 kağıt tabanlı mikroakışkan sistemi ve etiket içermeyen termal algılama mekanizmasının yararlanır. Bir kağıt tabanlı mikroakışkan platformda glikoz oksidaz (GOD) enzimini kullanarak, glikoz kolorimetrik tespit prosedürleri protokolü bölümünde sunulmaktadır.
Bu yazının amacı, mikroakışkan cihazlarda ısı ölçüm teknikleri yeteneklerini göstermek için. Cihaz ilaçlan, sıvı numune alma ve direnç sıcaklık dedektörü (RTD) sensör uyarma ve ölçüm sonraki bölümlerde sunulmuştur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Termal Parçacık Algılama (TPD)
- Standart yarıiletken işleme teknolojisi kullanarak 2, mikroişleme bir ince film silisyum nitrür membran ve entegre sıcaklık sensörü ile mikro fabrikasyon silikon cihazını hazırlayın. Iyonu giderilmiş (Di) su ile imal cihazı durulayın.
Not: Termal parçacık detektörü mikroakışkan cihaz için fabrikasyon yöntemi yayınlanmadan önce 2 açıklanmıştır. - Mikro-kanallı polidimetilsiloksan (PDMS) alt tabakaları üretmek için, 5 süreçleri standart litografi kullanarak SU8 kalıp oluşturmak.
Not: Kanal boyutu her özel parçacığın boyut için tasarlanmıştır.- Baz 1 oranında, (30 mi) ve ajan (3 mi) kurutma: 10 karıştırılmasıyla PDMS sağlayın. Kalıp üzerine PDMS dökün ve kısaca bir vakum (5-10 dk) maruz kaldığında kabarcıkları.
Vakum seviyesi gazdan arındırma için kritik bir değer değil ve gaz Bubb kadar devam etmelidir: Notles tamamen karışık PDMS kaldırılır. - PDMS tedavisi için 2 saat için bir sıcak plaka (~ 70 ° C) kalıp yerleştirin. Kalıp zarar vermemek için daha sonra çok dikkatli PDMS soyulabilir.
Not: Vakum seviyesi kritik bir değer değil.
- Baz 1 oranında, (30 mi) ve ajan (3 mi) kurutma: 10 karıştırılmasıyla PDMS sağlayın. Kalıp üzerine PDMS dökün ve kısaca bir vakum (5-10 dk) maruz kaldığında kabarcıkları.
- Manuel bir zımba kullanılarak, bir ucunda PTFE tüp için sıkı bir delik (1 mm) zımba. PDMS bir rezervuar yapmak için diğer ucunda büyük bir yumruk (2 mm) kullanın. Mikroskop altında cihazın üstündeki delikli mikro-kanal yerleştirin ve mikro kanaldan (Şekil 1A) merkezinde RTD hizalayın.
- Elektrik arayüzde, iletişim ped pozisyonlarda elektrik işaretçilerine bağlamak ve kilitleme vidaları sıkıştırın. Yüksekliği ayarlanabilir pimleri (Pogo pin) cihaza doğru elektrot pedleri oturup emin olun.
- 1.5 ml bir tüp içinde DI su, 100 ul konsantre PS boncuk 10 ul seyreltilir.
- (Gliserol 2.7 ul ekleyin, 1.26 boncuk nötr batmaz kalır PS sağlamak içing / cm3), DI suyuna karşı polistiren (PS), boncuk yoğunluğuna sıvı yoğunluğu (uygun olarak 1,05 g / cm3).
- Bir ucunda kanal ve bir 1 ml'lik bir cam şırıngaya diğer ucuna PTFE tüp bağlayın. Dİ su, 0.5 ml bir cam şırınga doldurun.
Not: tüplerde sızıntısını önlemek olacaktır sağ yumruk boyutu seçerek yapılan Sıkı uydurma. - Bilgisayar kontrollü şırınga pompası şırınga dolu distile su koyun. Sıvı ile rezervuara tüm yol, tüm kanal doldurmak için kanalın içine su (5-20 ul / dak) itin.
- Rezervuara dengeli bir kordon 10 ul eriyik Yük ve şırınga pompası akış yönünü değiştirerek mikro kanal için boncuk çözeltisi getirmektedir.
- (Şekil 2) kaynak / metre ile direnç ölçerken bilgisayar kontrollü kaynak / metre üzerinden DC akım 1 mA kutuplama ve ölçülen verileri sıralayarak RTD açın.
Not: Deneme sırasında, sensör önyargılı olduğunu; Bu nedenle, sıcaklık sürekli olarak sayma deneyin sonuna kadar ölçülür. RTD sensörü elektriksel olarak sürekli sayma deneyin sonuna kadar sıcaklık ölçmek için 100 uA 1 mA aralığında bir DC akımı uygulanması ile gerilidir. Bu gürültü seviyesi ve algılanan sinyal genliği arasında bir trade-off olmadığından, doğru akım seviyesini seçmek için kritik öneme sahiptir. Şırınga pompası mikro-kanal akışını oluşturmak için kullanılır. TPD deneyi gerçekleştirmek için uygun bir akış hızı seçilmesi ölçüm hızı ile sınırlıdır. Bu hız cihazı ve elektrikli ölçüm hızı termal zaman sabitinin bir fonksiyonudur. Termal partikül tespit Deneyin sonuçları Şekil 3'te gösterilmiştir. - Callendar-Van Dusen denklemi 6 kullanarak sıcaklık ölçülen direnç verileri dönüştürmek için geliştirilen veri işleme yazılımı (LabVIEW) kullanın.
Termal 2.Mikro-kalorimetresi kullanılarak sıvı maddelerin karakterizasyonu
- Bu işlemde, termal yayılma ve numunelerin özgül ısı ölçmek için çip üzerinde kalorimetre cihazı (Şekil 4A) 3 kullanın.
Not: her kalıp üzerinde, 2 mikro kalorimetre odalar (Şekil 4B) vardır. Her bir odacık 2 giriş ve bir çıkışa sahiptir. Ve her bölme, bir ısıtıcı ve entegre bir ATG sensöre sahiptir. - Cihaz sahibinin (Şekil 4C) mikro-kalorimetre cihazı yerleştirin. Tutucu parçaları ile mikroakışkan girişi ve çıkışları cihazı aynı hizaya getirin. Cihazın üst kısmındaki PDMS conta katmanı yerleştirin.
- Cihaz tutucu elektrik bağlantısı işaretçilerine takın ve tutucu vidaları kilitleyin.
Not: Yüksekliği ayarlanabilir Pogo iğneler elektrik kontak ile uyumlu olduğundan emin olun. - Cihaz sahibinin (Şekil 4D) manyetik mandallı mikroakışkan arayüz katmanı yükleyin. PT geçFE koylar ve çıkış hem de tüpler. Numune yüklü şırınga pompası bir giriş bağlayın ve entalpisi, bu durumda ölçülen değil gibi, diğerini kapatın.
- Mikro-kanal ve odalarına örnek yüklemek için geliştirilmiş bilgisayar kontrollü programı kullanın.
Not: Program ince-film askıya odasının aşırı basınç serbest bırakmak için durdurulan akışını kullanır.- Cam şırınga içine 300 ul örneği yükleyin ve şırınga pompası üzerine yerleştirin. Yüksek viskozite örneklerinde (örneğin, gliserol ve iyonik sıvılar) için çok yavaş (0.25 ul / dak) sabit akış oranlarını kullanın. Özgül ısı ölçümleri için ısıl yayınım ölçümleri ve iyonik sıvılar için gliserol örneği kullanın.
- Ölçümler
- Isıl yayınım ölçümleri
- Şekil 5A'da gösterildiği gibi ölçümler setup bağlayın. Mikro-kalorimetre odasına gliserol örneği yükleyin. Hea için modifiye bilgisayar kontrollü programını çalıştırın t penetrasyon süresi ölçümü.
- Ölçülen ısı penetrasyon zaman 7 termal yayılma hesaplamak için kalibre ısı penetrasyon denklemini kullanın:
α termik yayıcılığıdır, L odasının kalınlığı, s nedeniyle üretim süreci varyasyonuna kalınlığı kalibrasyon faktörü olduğunu, ve t, 0, ısı penetrasyonu zamandır.
- Özgül ısı ölçümleri
- Şekil 5B gösterildiği gibi TWA ölçüm kurulum kullanın. Aynı numune yükleme programı kullanın ve odanın içinde iyonik sıvı yükleyin. AC sıcaklık dalgalanmaları (∂ T AC) genliğini almak için TWA programını çalıştırın ve hesaplamak için özgül ısı denklemini kullanan belirli, c p, her iyonik sıvı numunesi 8 ısı:
28eq2.jpg "width =" 117 "/>
Cı 0 giriş güç kalibrasyon faktörü olduğu, giriş gücü P, ω çalıştırma sinyalinin frekansı ve m, sıvı numune ağırlığıdır.
- Şekil 5B gösterildiği gibi TWA ölçüm kurulum kullanın. Aynı numune yükleme programı kullanın ve odanın içinde iyonik sıvı yükleyin. AC sıcaklık dalgalanmaları (∂ T AC) genliğini almak için TWA programını çalıştırın ve hesaplamak için özgül ısı denklemini kullanan belirli, c p, her iyonik sıvı numunesi 8 ısı:
- Isıl yayınım ölçümleri
Paper-based mikroakışkan Aygıt 3. Kalorimetrik Biyokimyasal Algılama
- Microfabricated ince film (40-50 nm nikel) RTD sensörünü kullanın. RTD sensörü için fabrikasyon aşamaları önceki eserlerinde 4 açıklanmıştır.
- Kağıt tabanlı kanal imalat 4 için kağıt tasarlanmış desen (L-şekil) ile mikroakışkan kanalları kesmek için bir bıçak plotter kullanın. Kesme mat üstünde kağıt yerleştirin kağıt ve bıçak çizici kesme mat yükleyin ve mikroakışkan kağıt kanalları 4 kesmek için uygun tarifi kullanabilirsiniz.
- Cihaz ve kanal entegrasyonu için RTD sensörü Kağıdı entegre akrilik yapışkan tabaka (5 mikron) kullanın. Temiz bir b kullanınlade cihaza kağıdı itin ve hava kabarcıklar (Şekil 6A) kaldırın. akrilik filmi RTD sensörü üzerinde kağıt tutmak için bir yapışkan tabakasıdır.
- Enzim aktivasyon için, GOD enzimi etkinleştirmek için 50 mM sodyum asetat tamponu kullanılır. 1 mg / ml çözelti yapmak için sodyum asetat tamponunun 1 ml'lik GOD enzim, 1 mg ekleyin. 5.1 çözeltinin pH ayarlayın.
Not: çözeltinin 5.1 pH'ının muhafaza edilmesi için sodyum asetat tampon maddesi içinde, asetik asit miktarını ayarlayın. - Önyargı 1 mA DC akım ile RTD RTD etkinleştirmek ve direnç deney (~ 4 dk) sonra yerleşir ise sürekli direnç kaynağı / metre ölçüm başlatın.
Not: Şekil 6B kağıt bazlı kalorimetrik testi için ölçüm kurulumunu göstermektedir. - Pipet aracılığıyla kağıt mikro kanaldan (hareketsizlik sitesi) merkezine hazırlanan ALLAH solüsyonu 2 ul tanıtın. tespit edilen sıcaklık (Şekil 7A) t başlamalıdıro azaltın.
Not: Bu soğutma etkisi birlikte numune daha yüksek bir işletim RTD sıcaklık ve buharlaştırarak kaynaklanmaktadır. - Glikoz konsantrasyonunu ölçmek için, kanal girişine standart glukoz kontrol çözümü 9 tanıtmak ve reaksiyonun neden direnç değişimi ölçmek. Tüm (yüksek, normal ve düşük konsantrasyonlarda) farklı glukoz kontrol çözümleri ile bu denemeyi tekrarlayın ve direnç verileri kaydetmek.
- Nikel RTD ve Callendar-Van Dusen denklemi direnci (TCR) sıcaklık katsayısı kullanarak, sıcaklık direnç değişikliği dönüştürün. Glikoz, reaksiyon toplu ısısına ve GOD enzim (Δ H = -80 kJ / mol) dikkate alınarak ve konsantrasyon denklem 10 kullanılarak her bir numunedeki glikoz konsantrasyonu hesaplanır:
n, p mol konsantrasyonu, Cı tespit edilir burada
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Şekil 3 ölçülen termal sinyal grafiğini göstermektedir. karşılık gelen optik görüntüler ile boncuk varlığında üretilen sinyaller mikro kanal mikrosfer PS boncuk başarılı bir algılama göstermektedir. Mikro kanal boyunca geçen sıvının termal iletkenliği PS boncuk varlığına bağlı olarak değişiyor. Kanalın ısı iletkenliği bu değişiklik, mikro-kanal ısı transferi etkiliyor. Mikro kanal ısı transferi değişim direnci dalgalanması (Şekil 3A ve B) şeklinde RTD tarafından tespit edilir.
tespit edilen sinyal, aynı zamanda kanal ısı transferini etkiler yerel akış alanı (Şekil 3C ve D) değişikliği, etkilenebilir. ısı iletkenliği değişim sıcaklığını artıracak. Ayrıca, mikro-kanal lokal hız değişimleri görekanal büyüklüğü PS boncuk karşılaştırılabilir ölçüleri, yerel ısı transferinde bir artışa neden olur. Algılanan direncindeki azalma olarak görünür Bu durumda, ısı transferi değişimin etkisi baskındır. Bu nedenle, partikül büyüklüğüne sahip kanal büyüklüğü yazışma TPD deney gereklidir. Mevcut sonuçlar saymak ve partiküllerin boyutunu tespit etmek için TPD tekniği özelliğini göstermelidir.
gliserol termal yayılma gücü ölçülen değer, teorik değerin% 8 içinde 9.94 x 10 -8 m 2 / sn olduğunu. Tablo 1 tanıtılan yöntem ile farklı iyonik sıvı örneklerinin ölçüm değerlerini gösterir. Ölçüm doğruluğunu doğrulamak için, suyun özgül ısı% 5'ten daha az hata ile aynı koşullar altında ölçülmüştür.
glikoz ve GOD Şekil 7A'da gösterilmiştir egzotermik reaksiyona bağlı olarak saptanan sıcaklık sinyali. Ttasarlanan mikro kanalda o reaksiyon alanı toplam alanın% 45 olduğunu. Konsantrasyonunu hesaplamak için, glikoz yalnızca bu bölümü olarak kabul edilecektir. glukoz oksidasyon reaksiyonunun sonlu oranı da bir reaksiyon kinetiği faktör olarak kabul edilmektedir. Mevcut ticari glikoz metre sonuçları ile tespit konsantrasyonu karşılaştırılması (Şekil 7B) imal cihazın yüksek hassasiyet (<% 30) görülmektedir.
Termal parçacık tespiti için 1. mikroakışkan cihazı Şekil. (A) Cihaz şematik. (B) Termik ölçüm yöntemi kullanılarak parçacık algılama kesitsel görünümü. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 2. Termal parçacık algılama (TPD) için deney düzeneği. Bir bilgisayar kontrollü kaynak / metre önyargı RTD için kullanılan ve direnç ölçümü edilir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil ısı parçacık algılama 3. Sonuçlar (A). 90 um PS kordon 5 ul / dak akış oranı ile RTD sensörü geçtiği tespit direnç değişimi. ısı iletkenliği açıklandığı değiştirme ısı derecesini artırmak ve RTD direnç ölçümü direnç değişikliği şeklinde görünür. (B), optik görüntüsensör geçen Şekil 3A'da aynı boncuklar. (C), 200 um PS boncuk, 5 ul / dakika akış oranı ile RTD sensörü geçtiği tespit direnç değişimi. (d) Şekil 3C geçen aynı boncuk optik görüntü sensörü. [2]. Bu rakam izni ile modifiye edilmiş bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 4. yonga üzerinde mikro-kalorimetre ve cihaz tutucu imal. (A) mikromakinede 3 boyutlu on-chip asılı mikro kalorimetre cihazının bir fotoğrafı. çip iki aynı odaları, iki giriş ve bir çıkışı vardır, her biri yer alır. (B) Schematmikromakinede mikro kalorimetre odasının ic. mikromakinede RTD fabrikasyon cihazın üst yüzeyinde gösterilir. (C), mikro-kalorimetre cihazı cihaz tutucu üzerine yerleştirilir. (D) Elektrik ve mikroakışkan bağlantıları ile mikro kalorimetre son kurulum. TWA sonucu ısı kapasitesi hesaplama için kullanılır. [3]. Bu rakam izni ile modifiye edilmiş bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 5. mikro kalorimetre cihazı ile termal ölçüm kurulumunun elektrik bağlantıları. (A) ısı penetrasyon süresi analizi için ölçüm düzeneği. ölçülen ısı penetrasyon süresi kullanımı ısı iletkenliği hesaplama d. (B) Termik dalga analizi için ölçüm kurulum. TWA sonucu ısı kapasitesi hesaplama için kullanılır. [3]. Bu rakam izni ile modifiye edilmiş bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 6. (A) kağıt bazlı cihazın şematik. (B) glikoz kağıt tabanlı Kalorimetre tespiti için ölçüm düzeneği. Bu ayarda, bir LabVIEW kontrollü kaynak / metre (Keithley 2600) önyargı RTD için kullanılan ve aynı zamanda sıcaklık ölçmek olduğunu. ölçülen sıcaklık ve zaman kök ölçülen süre kaydedilir. Bu deneyde, Keithley 2600 hızlı ölçümü için kullanılır.https://www.jove.com/files/ftp_upload/52828/52828fig6large.jpg "target =" _ blank "> bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 7. kağıt tabanlı kalorimetrik sensörü ile glikoz algılama sonuçları. Glikoz ve ALLAH enzim reaksiyonunun (A) çıkış sinyali. (B) ticari glikoz metre sonuçları ile karşılaştırıldığında kağıt tabanlı cihaz ile glikoz kontrol numunelerinin Final algılama sonuçları. Bu rakam [4] izni ile yeniden olmuştur. "Verilen veriler" algılama deneylerde glikoz konsantrasyonu hesaplanır.
| Örnek | Ölçülen Özgül Isı (J / g K) | |
| 1 | [EMIM] [Tf2N] | 2.75 |
| 2 | [BMIM] [PF6] | 2.83 |
| 3 | [HMIM] [PF6] | 0.86 |
| 4 | [OMIM] [PF6] | 2.55 |
Tablo 1. çip üzerinde mikro-kalorimetre ile TWA tekniği kullanılarak iyonik sıvılar ölçülen özgül ısı. Bu tablo yayımlanmış verilere izni ile modifiye edilmiş [3].
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Çıkar çatışması ilan etti.
Acknowledgments
Bu iş için kısmi maddi destek Su Ekipmanları & Wisconsin-Milwaukee (IIP-0968887) ve Marquette Üniversitesi (IIP-0968844) Üniversitesi'nde bulunan Politikası Sanayi / Üniversite Kooperatif Araştırma Merkezi aracılığıyla ABD Ulusal Bilim Vakfı tarafından sağlandı. Biz yararlı tartışmalar için Glenn M. Walker, Woo-Jin Chang ve Shankar Radhakrishnan teşekkür ederiz.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Polydimethylsiloxane (PDMS) | Dow Corning | Sylgard 184 | |
| PS beads - 90 μm | Corpuscular | 100265 | |
| PS beads - 200 μm | Corpuscular | 100271 | |
| Glycerol | SigmaAldrich | G5516 | |
| GOD enzyme | SigmaAldrich | G7141 | |
| Glucose Control Solution - Low | Bayer contour | Low Control | |
| Glucose Control Solution - Normal | Bayer contour | Normal Control | |
| Glucose Control Solution - High | Bayer contour | High Control | |
| Chromatography filter paper | Whatman | 3001-845 | |
| Glass | VWR | 48393-106 | |
| Acrylic Film | Nitto Denko | 5600 | |
| Glass syringe (1 ml) | Hamilton | 1001 | |
| Syringe pump | New Era | NE-500 | |
| knife plotter | Silhouette | portrait | |
| Current Preamplifier | Stanford Research | SR-570 | |
| Ocilloscope | Agilent | DSO 2420A | |
| Signal Generator | HP | HP3324A | |
| Lock-in Amplifire | Stanford Research | SRS-830 | |
| Source/meter 2400 | Keithley | 2400 | |
| Source/meter 2600 | Keithley | 2436A |
References
- Zhang, H., Chon, C., Pan, X., Li, D. Methods for counting particles in microfluidic applications. Microfluid Nanofluid. 7 (6), 739-749 (2009).
- Vutha, A. K., Davaji, B., Lee, C. H., Walker, G. M. A microfluidic device for thermal particle detection. Microfluid Nanofluid. 17 (5), 871-878 (2014).
- Davaji, B., Bak, H. J., Chang, W. J., Lee, C. H. A Novel On-chip Three-dimensional Micromachined Calorimeter with Fully Enclosed and Suspended Thin-film Chamber for Thermal Characterization of Liquid Samples. Biomicrofluidics. 8 (3), 034101-034113 (2014).
- Davaji, B., Lee, C. H. A paper-based calorimetric microfluidics platform for bio-chemical sensing. Biosens. Bioelectron. 59, 120-126 (2014).
- Liu, J., et al. Process research of high aspect ratio microstructure using SU-8 resist. Microsystem Technologies. 10, 265-268 (2004).
- Dusen, M. S. V. Platinum-resistance thermometry at low temperatures. J. Am. Chem. Soc. 47 (2), 326-332 (1925).
- Arpaci, V. S. Conduction Heat Transfer. , Addison-Wesley Pub. Co. Reading, MA. (1966).
- Garden, J. L., Chteau, E., Chaussy, J. Highly sensitive ac nanocalorimeter for microliter-scale liquids or biological samples. Appl. Phys. Lett. 84, 3597-3599 (2004).
- Kilo, C., et al. Evaluation of a New Blood Glucose Monitoring System with Auto-Calibration. Diabetes Technol. Ther. 7 (2), 283-294 (2005).
- Scheper, T. Thermal Biosensors Bioactivity Bioaffinity (Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology). , Springer-Verlag. (1999).
