Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

长期培养的干扰素γ酶联免疫检测方法的评估效应和记忆T细胞应答的牛应用

Published: July 11, 2015 doi: 10.3791/52833

Summary

长期培养的干扰素γ酶联免疫斑点法被用作中央记忆应答的量度并且与保护性抗分枝杆菌疫苗的反应。用该测定中,外周血单核细胞刺激与分枝杆菌抗原和IL-2 14天,使分化和扩展中央记忆T细胞。

Abstract

通过幼稚细胞的以下抗原识别发育编程产生效应和记忆T细胞。如果感染被控制到95%的过程中的膨胀阶段中产生的T细胞被消除( ,收缩相位)和记忆T细胞保持,有时一生。在人类中,两个功能不同的记忆性T细胞的亚群基于淋巴结归巢受体的表达已被描述。中央记忆T细胞表达CC趋化因子受体7和CD45RO和主要位于次级淋巴器官的T细胞区域。效应记忆T细胞表达CD45RO,缺乏与淋巴细胞归巢相关的外设或发炎组织CCR7和显示受体。效应T细胞不表达任一CCR7或CD45RO但是当与抗原产生效应细胞因子,如干扰素γ相遇。干扰素γ释放分析被用于牛和人类结核的诊断和检测主要效应和效应记忆T细胞应答。由CD4 + T细胞接种中央记忆T细胞应答,在另一方面,可用于预测疫苗功效,其表现与猴免疫缺陷病毒感染的非人类灵长类动物,肺结核在小鼠和疟疾在人类。与小鼠和人类以及对牛未公布的数据的一些研究,已经表明,干扰素γELISPOT分析测量中央记忆T细胞应答。用该测定中,外周血单核细胞是在降低抗原浓度为10〜14天(长期培养物),从而允许执行器响应达到峰值,然后减弱培养;促进中央记忆T细胞分化和扩大文化中。

Introduction

通过幼稚CD4 + T细胞的抗原识别后发育编程产生效应和记忆T细胞。幼稚的CD4 + T细胞分化成细胞因子产生细胞的分化,需要由先天免疫细胞,抗原呈递至T细胞,共刺激和产生偏振光的细胞因子产生的转录变化病原体识别。例如:抗原提呈细胞产生白细胞介素(IL)-12响应于细胞内的病原体,其中,连同抗原识别,通过信号转导和活化剂信令促进T细胞分化成T辅助细胞(Th1)细胞1,2-转录4(STAT4)和T-盒中的T细胞(T-bet的)表达,从而导致细胞活化,产生IL-2,克隆扩增和干扰素(IFN)-γ生产3,4-。如果感染被控制,高达95%的在膨胀阶段产生的T细胞被消除( ,收缩相)和记忆性T细胞依然存在,有时一生5。 Sallusto 等人 6,揭示了两个功能不同的记忆性T细胞的亚群在人类基于淋巴结归巢受体的表达。中央记忆T细胞(TCM)表达CC趋化因子受体(CCR)-7和CD45RO和主要位于次级淋巴器官的T细胞区域。中医具有有限的效应子功能,低激活阈值和保持高的IL-2产生和增殖能力。效应记忆T细胞(TEM)表达CD45RO,缺乏CCR7和显示受体归巢到外设或发炎的组织。效应细胞不表达任何CCR7或CD45RO但及时产生效应细胞因子,如IFN-γ,在抗原识别。

IFN-γ释放测定(IGRA)用于牛和人7结核病的诊断。 分枝杆菌是牛结核病(BTB)的主要代理,而人类CA结核病SES,主要是由结核杆菌引起的。用这些试验中,全血或外周血单核细胞(PBMC)的刺激是通过ELISA或通过检测细胞生产使用ELISPOT技术的IFN-γ测定分枝杆菌抗原为16至24小时,将上清液内IFN-γ的生产。作为短暂刺激期的结果( ,16至24小时),并快速的细胞因子生成, 离体测定法检测主要效应器和TEM响应。这已被证实通过细胞群中这些培养8-10流式细胞分析。

离体 IFN-γ的应答例行包括在结核病疫苗,包括那些用于评估由牛应答的免疫应答面板的评价。最有效的牛结核病疫苗诱导特异性IFN-γ的反应,而不是诱导IFN-γ应答所有的疫苗都protectiv即此外,IFN-γ通过接种疫苗引起,如感染前测定的水平,并不一定关联与保护。例如,不同的BCG菌株可以具有不同的能力,以诱导体外 IFN-γ应答,尽管类似的保护水平11。因此, 体外 IGRAs是结核病的诊断和疫苗的访问有价值的免疫原性;然而,它们作为疫苗功效的预测的使用是有限的。中医响应疫苗接种,在另一方面,可用于预测疫苗功效,如在非人灵长类12,13,结核小鼠14和疟疾在人类15,16证实猴免疫缺陷病毒(SIV)感染。

后导致病原体清除有效的免疫应答,TCM保持和用相同的试剂提供保护,以最终第二感染。一个值得注意的例外情况是M.肺结核 INFE人类ction其中接收治疗的抗分枝杆菌治疗的患者易受再感染17,18。此外,在慢性感染治免疫记忆的事件,其中所述抗原刺激仍然存在,都不能很好地理解19。在慢性感染,例如人类免疫缺陷病毒(HIV)和结核病,一个显著华健康响应与一个有利的结果( 例如 ,等待时间以结核病和亚临床疾病与HIV)20,21相关联。几项研究与小鼠和人已经表明,长期培养的IFN-γ的ELISPOT分析测量华健康响应16,20-22。用该测定中,外周血是在降低抗原为10至14天的浓度,使效应器响应达到峰值,然后减弱培养;促进华健康分化和扩大文化中。

长期培养的IFN-γ的ELISPOT分析也已在兽医使用研究,但应答细胞的表型已经难以评估由于缺乏关键的试剂,尤其是抗体对CCR7的。有效的牛结核病疫苗[ 。使用M的单剂量卡介苗(BCG),BCG其次是病毒抗原向量85A亚单位疫苗或减毒牛分枝杆菌 ΔRD1]引起接种后的长期培养的IFN-γELISPOT反应与保护的相关( 更低的分枝杆菌负担和降低TB-相关的病理)对随后的挑战与毒力M.牛 23,24。此外,抗原特异性IFN-γ分泌细胞的长期PBMC培养物中的数字是在12个月高,但减少在新生儿小牛接种卡介苗后24个月内,以保护检测交分枝程度相关挑战25。在这种情况下,将培养的IFN-γELISPOT是一个预测疫苗的有效性,提供优先候选疫苗的成本高,药效试验一指N重要工具。此外,培养的ELISPOT技术可以通过改变抗原或抗体为多种目的在不同的研究领域适于各种宿主,病原体和细胞因子。

Protocol

1.准备了以下解决方案

  1. 完全RPMI(cRMPI)加入胎牛血清(FBS)中至浓度为10%(体积/体积),谷氨酰胺(2μM),丙酮酸钠(1μM),非必需氨基酸(0.1μM),青霉素制备-streptomycin(100单位/ ml青霉素和0.1mg / ml链霉素)和2-巯基乙醇(50毫摩尔)进RPMI 1640中。
  2. 制备2×柠檬酸葡萄糖,通过混合柠檬酸钠(77μM),柠檬酸(38μM),和右旋糖(122μM),在蒸馏水中。
  3. 制备的Ca 2+离子的磷酸盐缓冲盐水(PBS)pH 7.2的:氯化钠(137毫米),氯化钾(2.7毫摩尔),的Na 2 HPO 4(二元,10毫摩尔),KH 2 PO 4(一元,2毫摩尔)在蒸馏水中;将pH调节至7.2。
  4. 通过加入牛血清白蛋白的PBS(体积/重量,1G / 100毫升的PBS)制备PBS中的1%(PBS中的1%BSA)中。
  5. 制备PBS + 0.05%吐温20(PBST)中加入0.05%吐温20的PBS(体积/体积,500微升吐温20℃/ 1升PBS中)。
  6. 制备100毫摩尔Tris HCL pH值为8.2的缓冲通过在蒸馏水中混合三(100毫米),盐酸(0.50毫摩尔)。
  7. 通过在蒸馏水中稀释的乙醇(纯度≥99.5%)(体积/体积,34毫升甲酸乙酯乙醇/ 100毫升蒸馏水)制备35%的乙醇溶液。
  8. 过滤消毒cRPMI,2×酸柠檬酸葡萄糖,PBS,PBS使用0.22微米的过滤器1%BSA。

2.长期培养细胞(14日协议)

(第一天)

  1. 制备抗原溶液在cRPMI中的最终浓度的两倍。抗原的选择是至关重要的,应根据研究的目的。
  2. 淡化重组M.结核抗原TB10.4和抗原Ag85A双至2微克/毫升(每抗原;终浓度为1微克/毫升)。
  3. M.牛纯蛋白衍生物(PPD-B,Prionics公司),以10微克/毫升(最终浓度为5微克/毫升)。
  4. 稀释重组早期分泌抗原靶6(ESAT-6)和培养滤液蛋白10(CFP-10)的融合蛋白(雷沙特-6:CFP10的)至2微克/毫升(1微克/毫升的最终浓度)。
    注意:这些抗原是免疫的IFN-γ诱导结核分枝杆菌的抗原和可被包括,以刺激的PBMC从M.牛感染的动物。卡介苗或M.牛 ΔRD1接种动物不响应雷沙特-6:CFP10,如在这些菌株被删除该区域编码这些抗原(即,RD1)。雷沙特-6:在这些研究中所用CFP10是从C爪牙博士,美国爱荷华州立大学的一种恩赐。 TB10.4和抗原Ag85A双是剧毒和疫苗M.目前免疫抗原 37株。 PPDB,作为纯化的蛋白衍生物,是数种抗原包括与非结核性分枝杆菌共享的抗原的复合物。 Infec泰德动物将有可能回应所有抗原(即:TB10.4,银85A,雷沙特-6:CFP10和PPDB),而接种疫苗的动物应不雷沙特-6回应:CFP10 11。
  5. 板500微升/在一式四份抗原溶液在24孔板每个动物福利。对于这个协议,使用抗原作为池;因此,使用所有的孔包含所有的抗原和不管制(如空或有丝分裂原)这一步。在39°C / 5%的CO 2孵育板。牛的正常体温是39℃;因此,一些研究者利用39℃的牛细胞培养。此外,在与人体细胞某些情况下,在39℃的细胞培养提供了额外的好处26,30。
  6. 再加上16或18G的注射针头用6ml的2×酸 - 柠檬酸盐 - 葡萄糖预负荷注射器;并收集将60ml牛血静脉穿刺颈。
  7. 隔离的PBMC通过外周血血沉棕黄层组分的标准密度梯度离心所描述的毛厄调节细胞浓度至4×10 6个细胞/ ml。27
  8. 添加细胞(500微升/孔)到抗原预装24孔板,一式四份每只动物(步骤2.5)。在39°C / 5%的CO 2孵育板。

(天三套和七)

  1. 使用无菌技术,小心地从每个孔中取出500μl的上清液,而不会干扰细胞层。
  2. 通过加入500微升/孔的cRPMI含IL-2补充孔体积(30U /微升, ,15单位/孔;重组人IL-2西格玛I7908)。在39°C / 5%的CO 2孵育板。

(天数10和12)

  1. 使用无菌技术,从每个孔取出750微升上清液。补充750微升/ cRPMI的孔的体积(无IL-2)。在39°C / 5%的CO 2孵育板。

(第一天(长期协议,培养 12天))

  1. 正确标注的ELISPOT板为每个组样品,电镀细胞时,为了避免错误:长期细胞加抗原呈递细胞(APC),长期细胞无APC和离体 /短期细胞( 图1)。复制为每个治疗(即抗原刺激)应该至少一式两份进行。
  2. 通过稀释的小鼠抗牛IFN-γ抗体(MCA2112,克隆CC330)的PBS(8微克/毫升)制备的捕获抗体溶液。
  3. 使用多通道移液器预湿ELISPOT板的孔用15微升/孔的35%乙醇1分钟。为防止膜破损,不要触摸井用吸头的底部在任何时候在试验过程中。
  4. 洗涤板6次,用PBS以300μl/孔。洗涤液应在板反转丢弃。洗涤应迅速进行,而不是让板孔干燥。
  5. 捕获的抗IFN-γ抗体(来自上述步骤1)的吸移管100μl/孔。孵育在4°CO / N(保持板内的拉链储物袋)。

(二日(长期培养协议的 13天))

  1. 制备抗原溶液在最终浓度的两倍。理疗:无刺激(cRPMI)的PPD-B(20微克/毫升,终浓度:10微克/毫升),TB10.4蛋白鸡尾酒和Ag85A双(每种蛋白的2微克/毫升,最终浓度:1微克/ ml的每种蛋白),雷沙特-6:CFP10的(对于牛枝原体感染,2微克/毫升,最终浓度:1微克/毫升),和阳性对照,如美洲商陆抗(20微克/毫升,终浓度:10微克/毫升)。可以用来代替PWM( 伴刀豆球蛋白A)其它有丝分裂原。
    注:此步骤组成的抗原四种不同的治疗方法,是n使用催产素作为池(如在步骤2.5)。这四个理疗:NS,PPDB,蛋白质鸡尾酒(TB10.4 Ag85A双构成一个处理)和PWM。

4.短期细胞培养和细胞粘附(装甲运兵车)隔离

  1. 收集60毫升血液从采血月1日(下:长期培养14日实验方案)相同的动物,像以前孤立的PBMC。
  2. 调节细胞浓度至2×10 6个细胞/ ml。标签管显然是防止错配电镀细胞时。这些细胞将被用于的APC隔离,也可以作为短期细胞培养(步骤6.5)。标签管与两个动物数目和文化的类型(在这种情况下: 体外 ,短期或新鲜细胞)。
  3. 通过板块反转从酶联免疫斑点去除多余的捕获抗体。洗板6次用300μlPBST。
  4. 除去尽可能多的PBST越好。吸管将50μl细胞悬浮液,以标记为长期细胞加的APC的孔中。阻止其他WEL的ls与cRPMI的200μl/孔。孵育90分钟或39°C。前期预热cRPMI或39°C(必要的后续步骤)。不用于贴壁细胞(APC细胞)分离新鲜的PBMC,将需要在后续步骤中,并应被存储。

5.培养细胞

  1. 在90分钟温育(步骤4.4,短期培养和贴壁细胞分离步骤)中,收获的长期培养的细胞。
  2. 用5或10微升的移液管,与细胞上下吸管媒体分离细胞,结合一式四份复制来自每个动物成一个单一的15ml试管中。离心管5分钟,400g。
  3. 离心后,弃去上清液通过管倒置。去除细胞沉淀。加入5毫升的PBS中,轻轻重新悬浮沉淀,如果需要的话。重复离心。重复洗涤步骤两次。由管倒置弃上清,轻轻地重新悬浮细胞1毫升cRPMI。调整细胞浓度到2×10 5个细胞/ ml。

6.电镀新鲜外周血单个核细胞培养

  1. 在90分钟温育后,摇上板振荡器平板30秒。由板倒置除去非粘附细胞。吸管150微升/暖cRPMI的井(从步骤4中,下:短期细胞和贴壁细胞(APC细胞)分离步骤)。
  2. 摇板和丢弃洗涤液。重复洗涤3次。添加100μl/孔的每种抗原到合适的孔(预标记的)。
  3. 板块细胞,吸移管100微升/孔的长期培养的细胞悬浮液(2×10 5个细胞/ ml)到标记为长期细胞加的APC的孔中。确保在此步骤中加入的长期细胞来自同一动物的APC是已经在井内。不要从不同动物的混合APC的和长期培养的细胞。
  4. 长期培养的细胞悬浮液的吸移管100μl/孔(2×10 5个细胞/ ml)成孔未经APCS代表评估APC要求的长期培养的反应。
  5. 添加100μl/孔的短期细胞(新鲜分离并调节至2×10 6个细胞/ ml)用于离体反应评估。孵育板O / N在39°C / 5% 二氧化碳培养箱。确保板平放,而不要堆放板。
    注意:如果细胞表型的分析是需要的,流式细胞仪可以作为辅助测定来进行。将细胞接种在96如对于ELISPOT测定孔U底板(代替ELISPOT平板)。捕获抗体吸附(步骤3.4至3.5)应该被跳过。然后将细胞温育O / N在39℃/ 5%CO 2,并进行了标准细胞染色协议。细胞染色试剂都包括在试剂表。

第三天(长期培养协议的 14天)

  1. 稀释的检测抗体(小鼠抗牛IFN-γ,克隆CC302)至5微克/毫升在PBS中的1%BSA中。丢弃来自井流体和冲洗板:用PBST 6次(300微升/孔),每次放置在摇床上10秒之前和在中间洗涤,一旦与卫生署2 O(300微升/孔),一个附加的6倍用PBST(300微升/孔),并两次用PBS(300微升/孔)。后细胞从板中除去,并且如果没有生物安全的担忧申请,程序可以被生物安全柜外进行。
  2. 弃洗涤液。通过在纸巾轻敲板除去尽可能多的洗涤液成为可能。添加检测抗体(100μl/孔)。
  3. 孵育板在120分钟或39°C。在该温育步骤中,准备按照制造商的说明书碱性磷酸酶溶液。使用前30分钟(即,除了检测抗体井后90分钟)稀释在PBST试剂。反转管轻轻混合试剂和在室温下孵育。
  4. 12后0分钟孵育,通过反演板块超额丢弃检测抗体。洗涤板6次用PBST(300微升/孔)。通过在纸巾轻敲板除去尽可能多的洗涤液成为可能。
  5. 添加100μl/孔的碱性磷酸酶溶液(来自上述步骤3)。孵育板在室温45分钟。丢弃流体和用PBST洗涤各板6倍(300微升/孔)。
  6. 制备下列制造商的说明(向量蓝AP底Ⅲ)底物溶液:稀释在100mM的Tris HCL pH值为8.2的缓冲试剂。吸管50微升/底物溶液很好。
  7. 在室温下孵育直到蓝色开始发展(约30分钟)。丢弃液体和与卫生署2 O的丰富金额洗板除去底板以暴露膜,洗回水井,并允许板风干。
  8. 阅读关于免疫斑点图像分析仪或ELISPOT读数器(表1),或手动板,使用立体显微镜。另外,保持板在黑暗中室温,直到读。由于反应基质的稳定性高,质量是保存了好几年。
    注:细胞与抗原的浓度进行了优化,以避免井不可数点23,24,27,37。这是可能的不可数斑形成发生在不同的设置,或由于生物变异。如果是这样的话,细胞浓度应优化,以便获得一个可读斑点计数响应。

7.板读取和数据分析

  1. 执行分析具体根据蜂窝科技有限公司(CTL)的ELISPOT平板读取器引导件(表1)。后的斑点计数每个孔中得到的,计算重复间的平均值。每个抗原刺激的特异性免疫应答通过减去在从该抗原刺激孔的非刺激孔的斑点的平均数目进行计算。

Representative Results

大约一个月后气溶胶感染分枝牛枝原体 (10 4菌落形成单位),PBMC中从感染的(N = 8)和对照组动物(每组8)分别在抗原和IL-2的13天的存在下进行培养。华健康反应发展感染后,用IFN-γ的ELISPOT测定法测定。代表TCM(在APC细胞的存在或不存在)和离体 IFN-γ从感染的动物(三只动物)和非感染的动物(一只动物)示于图1中的ELISPOT反应。成功的长期IFN-γ的ELISPOT测定的结果的细胞中产生IFN-γ(斑点形成细胞,SFC)下刺激条件和几乎没有来自未感染的动物的响应的和非刺激的条件下进行。此外,强烈的T细胞反应应该发生在响应PWM。以M.具体回应CFP10抗原刺激: 被PPD-B或雷沙特-6进行评估。 如图1,强大的中医体外反应PPD-B和雷沙特-6:CFP10从三个检测M.牛感染的动物。最少没有传统中医和体外的反应是从控制动物检测。此外,被要求由受感染的动物最佳华健康响应的APC的存在下,这表现在大大减少的响应由在不存在自体的APC的培养长期细胞。通过从分枝的PBMC的IFN-γ反应杆菌感染和未感染的动物都在图2中呈现。SFC的来自每个动物的数目计算为SFC的平均数目两份样品中响应于PPD-B减到单独的培养基的各自的响应。响应被估计为10 6个细胞。反应差异(P <0.05)根据感染情况,有无装甲运兵车和培养持续时间( ,长期培养与体外培养)的。

采集板的图像
1。 打开机
2。 打开“免疫捕获”6.3版软件。
3。 第1步:选择板型。
4。 第2步:负载板。
5。 第3步:选择扫描选项。
6。 第4步:开始扫描。
7。 获得板全貌图像。
8。 排出板。
9。 退出“免疫捕捉”软件。
计数斑点形成单位
1。 打开“免疫点捕捉”5.0版软件。
2。 选择objec T类:正常。
3。 选择计数模块:智能计数。
4。 第1步:载重板。
5。 第2步:定义计数参数:现货识别测试精度上井的不同点。
6。 开始自动计数。
质量控制
1。 打开“免疫斑点捕捉”5.0版软件。
2。 选择计数模块:质量控制。
3。 第1步:载重板。
4。 第2步:单独分析高亮井。
5。 完成质量控制。

表1 - AutoImmun Diagnostika ELISPOT读取器图像采集和细胞计数的过程。

ove_content“FO:保持together.within页=”总是“> 图1
从长期培养的IFN-γELISPOT测定孔的图1的图像。培养的IFN-γ的ELISPOT测定法approximatelyone一个月毒性分枝挑战之后执行 (三只动物)。非感染的动物作为对照(一个动物)通过刺激的PBMC用重组Ag85A双(1微克/毫升),TB10.4(1微克/毫升)的鸡尾酒生成长期细胞系,雷沙特-6: CFP10(1微克/毫升)和PPD-B(5微克/毫升)13天,然后转移到ELISPOT板中的自体的APC的存在下或不存在。短期细胞组成的分离外周血单个核细胞在第13天,直接铺在ELISPOT板。长期和短期的细胞用PPD-B(10微克/毫升),雷沙特-6:CFP10的(1微克/毫升),单独培养基或美洲商陆有丝分裂原(5&#956;微克/毫升)处理24小时。

图2
从长期培养的IFN-γ的ELISPOT反应至M.图2代表性的结果牛分枝杆菌纯化的蛋白衍生物(PPD-B)培养的IFN-γELISPOT测定法用有毒力的分枝挑战后approximatelyone月进行牛枝原体 (8只动物)。非感染的动物作为对照(通过刺激的PBMC用重组Ag85A双的鸡尾酒(1微克/毫升),TB10.4(1微克/毫升),分别生成8个动物的长期细胞雷沙特-6:CFP10(1微克/毫升)和PPD-B(5微克/毫升)13天,然后转移到ELISPOT板中的自体的APC的存在下或不存在。短期细胞包括外周血单个核细胞的分离第13天,并直接镀到ELISPOT板。长期与笑室温长期刺激细胞使用PPD-B(10微克/毫升)或单独的培养基24小时。从每只动物(SFC / 10 6个细胞)特异性应答表示为响应于PPD-B(平均一式两份样品的)减去响应于单独的培养基。

Discussion

IFN-γ的生产中的长期培养的ELISPOT分析一般是由于华健康在人类中,但这种反应在培养如何发展却知之甚少。是否华健康存在于循环和扩大在体外 ,或者如果来自分化的效应和TEM细胞进入医药文化期间华健康反应导致不得而知。然而,随着从人类样本的研究发现,从体外和长期培养的IFN-γ的ELISPOT分析CD4 + T细胞具有无关表位特异性,这意味着华健康响应不脱离效应细胞28发展。显然,响应的持续时间可以改变,但是如果病原体间隙来实现,最终都离体和TCM响应下降。此外,长期培养物的反应抗原引发后早期和长期测量(当效应器响应是低级)被示出为相关,这表明抗后早期和长循环华健康种群基因启动保持体内相关在另一方面,在体外反应的程度似乎没有进行相关的记忆应答29的幅度。这些结果表明,长期培养的IFN-γELISPOT反应从体外扩增医药和效应响应的样品中的相关联的减弱,而不是效应细胞分化成华健康表型结果。

与牛,效应物和存储器的子集,以响应由长期的IFN-γELISPOT分析检测的相对贡献是未知的。最近的研究表明疫苗之间的相关性引起的长期培养的IFN-γ的ELISPOT反应和保护,防止随后的实验感染分枝牛 23-24。据报道,弱长期IFN-γ的ELISPOT反应接种与没有保护30的关联。无论生活和杀ED疫苗诱发类似的体外 IFN-γELISPOT反应,但接种卡介苗活强引起的长期培养的IFN-γ酶联免疫斑点比灭活疫苗制剂反应。有趣的是,活疫苗是保护而被杀的配方不能提供保护,防止挑战,有毒结核分枝杆菌31-32,33。

华健康反应的评估也是由PBMC整理这些细胞是可行的。华健康从PBMC直接富集,但是,需要昂贵的设备,训练有素的个人,是困难的,因为这些细胞不大量在血流中。 PBMC的长期培养提供中医富集在TEM和效应细胞,无需昂贵的设备;然而,因为这些T细胞群在体外扩展它们可以在体内记忆应答的代表以下。它可以访问的IFN-γ记忆应答(使用长期培养或TCM排序荷兰国际集团的策略)通过分析比ELISPOT其他如:细胞因子ELISA中34,细胞因子珠子阵列(CBA),细胞内染色(ICS),或细胞因子蛋白质阵列(CPA)。这些方法;然而,一般都是较不敏感的比ELISPOT分析35。

ELISPOT的一个优点是它的后不久其释放防止稀释在上清液和降解通过酶裂解或细胞因子的摄取通过其它细胞,以检测细胞因子的直接捕获能力。酶联免疫斑点试验检测单个细胞的细胞因子生产提供精确的结果,即使在低信噪比的情况下( 低特异性应答)35。另外,使用ICS,检测释放前的细胞因子,可能会导致细胞产生细胞因子的误识别( 例如 ,由于之前或期间分泌过程翻译后调制)34。使用ICS测定以最小化细胞因子的分泌所用的转运抑制剂在抗原刺激(称为高尔基停止蛋白质)限制细胞刺激的持续时间,由于这些蛋白质最终影响细胞因子的产生器35的细胞毒性。

随着中说- CBA,CPA和ICS是用于同时测量多种细胞因子和/或用于确定细胞表面标记的表达有用的技术( ,使用ICS)。因此,这些方法可结合使用的IFN-γELISPOT测定36。虽然以前的牛结核病疫苗的有效性研究通过酶联免疫斑点法检测华健康响应,TCM反应通过其他技术检测可能会产生类似的结果。重要的是,酶联免疫斑点法是更便宜,更简单的CBA相比,CPA和ICS分析技术34来执行。 SFC的人工计数是替代自动计数,和ELISPOT板可以存储在RT长时间持续具有最小质量损失,之前或现货℃后ounting 37。

长期培养的IFN-γ的ELISPOT反应已应用于评估结核疫苗的反应时,以评估人的记忆应答,和牛14-16,31-32,33。中医响应也假定为在宿主发挥响应显著角色牛几个其它感染剂,如: 丝状支原体亚种丝状 42, 无形体 38和牛呼吸道合胞病毒39。潜在地,长期ELISPOT测定可以适于对其他动物物种,细胞因子和感染。这些更广泛的应用将是兽医免疫学应用特别有用由于目前有限的特定试剂的可用性。

中医的反应是防止感染的几个关键的,但感染/免疫接种后的早期测量它们(疾病结果的预测或疫苗的有效性)马y为繁琐。下离体和短抗原刺激条件的免疫应答的分析会更经常代表效应的反应,由于记忆和效应的响应的重叠,特别是在免疫学记忆形成的开始。在慢性疾病的情况下,其中的抗原负载是持续, 离体的反应将评估效应器细胞应答或记忆和效应细胞应答的组合。长期培养的IFN-γELISPOT测定,这里描述的,有可能使华健康响应而不是效应T细胞或组合的CD4 + T细胞应答的测定。总之,长期培养的IFN-γELISPOT试验提供了一个有价值的方法,用于估计的T细胞记忆应答,并已采用成功评估几个物种的存储器响应于各种感染剂12-16,20-25,29 ,31,33,34,38,39。

Disclosures

作者宣称,他们有没有竞争的财务权益。

Acknowledgments

3625-32000-104农业和食品研究计划竞争性赠款号:研究是由美国农业部ARS克里斯支持。 2011-67015-30736来自粮食和农业的美国农业部研 ​​究所。我们感谢杰西卡·波洛克,艾玛Frimml -摩根,雪莱齐默尔曼,克里斯汀低音,布鲁斯·佩施,莫莉Stafne,艾伦詹森和特雷西·波特的出色的技术援助以及丽贝卡麦迪逊,道格·尤因,凯蒂Pille先生,周杰伦斯特芬,大卫·吕贝尔斯,罗宾Zeisness,和大卫Panthen动物的良好的护理和处理。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Sodium citrate (dihydrate) Various
Citric acid (monohydrate) Various
Dextrose Various
ELISPOT PVDF plate Various
Vectastain ABC – AP KIT Standard Vector Laboratories AK-5000
Vector Blue Alkaline Phosphatase Substrate Kit Vector Laboratories SK-5300
Ag85A Lionex LRP-0004.3 23, 24, 25, 37
TB 10.4 Lionex LRP-0061.6 23, 24, 25, 37
PPDb Prionics AG 7600055
rESAT-6:CFP10 Kind gift Dr. Minion, Iastate 23, 24, 25, 27,  37
Mouse anti-bovine IFN-γ Clone CC302 Serotec MCA1783B 23, 24, 25, 27,  37
Mouse anti-bovine IFN-γ Biotinylated Clone CC330 Serotec MCA2112 23, 24, 25, 27,  37
Mouse anti-bovine CD4 Clone CC8 Serotec MCA1653GA
Mouse anti-bovine CD45RO Clone IL116A Serotec MCA2434GA
Rat anti-human CCR7 Clone 3D12 Abcam ab95665
Mouse anti-bovine IFN-γ-Pe Clone CC302 Serotec MCA1783PE
Goat anti- mouse IgG2a- Alexa Fluor 350 Invitrogen A-21130
Goat anti-mouse IgG3 APC-CY7 SouthernBiotechnology 1080-193
Goat anti-rat IgG-APC Invitrogen A10540
BD Cytofix/Cytoperm™ BD Biosciences 554714
BrefeldinA Sigma-Aldrich B7651
Pokeweed Mitogen Sigma-Aldrich L8777
Recombinat human Interleukin 2 Sigma-Aldrich I7908

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Szabo, S. J., Kim, S. T., Costa, G. L., Zhang, X., Fathman, C. G., et al. Novel transcription factor, T-bet, directs Th1 lineage commitment. Cell. 100 (6), 655-669 (2000).
  2. Mullen, A. C., High, F. A., Hutchins, A. S., Lee, H. W., Villarino, A. V., et al. Role of T-bet in commitment of Th1 cells before IL-12-dependent selection. Science Signaling. 292 (5523), 1907 (2001).
  3. Mosmann, T. R., Cherwinski, H., Bond, M. W., Giedlin, M. A., Coffman, R. L. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. Journal of immunology. 136 (7), 2348-2357 (1986).
  4. Lighvani, A. A., Frucht, D. M., Jankovic, D., Yamane, H., Aliberti, J., et al. T-bet is rapidly induced by interferon-gamma in lymphoid and myeloid cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (26), 15137-15142 (2001).
  5. Masopust, D., Picker, L. J. Hidden memories: frontline memory T cells and early pathogen interception. Journal of immunology. 188 (12), 5811-5817 (2012).
  6. Sallusto, F., Lenig, D., Förster, R., Lipp, M., Lanzavecchia, A. Two subsets of memory T lymphocytes with distinct homing potentials and effector functions. Nature. 401 (6754), 708-712 (1999).
  7. Waters, W. R., Palmer, M. V., Thacker, T. C., Davis, W. C., Sreevatsan, S., et al. Tuberculosis immunity: Opportunities from studies with Cattle. Clinical and Developmental Immunology. 2011 (1), 1-11 (2011).
  8. Whelan, A. O., Villarreal-Ramos, B., Vordermeier, H. M., Hogarth, P. J. Development of an antibody to bovine IL-2 reveals multifunctional CD4 T(EM) cells in cattle naturally infected with bovine tuberculosis. PLoS ONE. 6 (12), e29194 (2011).
  9. Streitz, M., Tesfa, L., Yildirim, V., Yahyazadeh, A., Ulrichs, T., et al. Loss of receptor on tuberculin-reactive T-cells marks active pulmonary tuberculosis. PLoS ONE. 2 (8), e735 (2007).
  10. Soares, A. P., Scriba, T. J., Joseph, S., Harbacheuski, R., Murray, R. A., et al. Bacillus Calmette-Guérin vaccination of human newborns induces T cells with complex cytokine and phenotypic profiles. Journal of immunology. 180, 3569-3577 (2008).
  11. Waters, W. R., Palmer, M. V., Buddle, B. M., Vordermeier, H. M. Bovine tuberculosis vaccine research: historical perspectives and recent advances. Vaccine. 30 (16), 2611-2622 (2012).
  12. Letvin, N. L., Mascola, J. R., Sun, Y., Gorgone, D. A., Buzby, A. P., et al. Preserved CD4+ central memory T cells and survival in vaccinated SIV-challenged monkeys. Science. 312 (5779), 1530-1533 (2006).
  13. Mattapallil, J. J., Douek, D. C., Buckler-White, A., Montefiori, D., Letvin, N. L., et al. Vaccination preserves CD4 memory T cells during acute simian immunodeficiency virus challenge. The Journal of experimental medicine. 203 (6), 1533-1541 (2006).
  14. Lindenstrom, T., Knudsen, N. P. H., Agger, E. M., Andersen, P. Control of Chronic Mycobacterium tuberculosis .infection by CD4 KLRG1- IL-2-secreting central memory cells. The Journal of Immunology. 190 (12), 6311-6319 (2013).
  15. Todryk, S. M., Bejon, P., Mwangi, T., Plebanski, M., Urban, B., et al. Correlation of memory T cell responses against TRAP with protection from clinical malaria, and CD4 CD25 high T cells with susceptibility in Kenyans. PLoS ONE. 3 (4), e2027 (2008).
  16. Webster, D. P., Dunachie, S., Vuola, J. M., Berthoud, T., Keating, S., et al. Enhanced T cell-mediated protection against malaria in human challenges by using the recombinant poxviruses FP9 and modified vaccinia virus Ankara. Proceedings of the National Academy of Sciences. 102 (13), 4836-4841 (2005).
  17. Rie, A., Warren, R., Richardson, M., Victor, T. C., Gie, R. P., et al. Exogenous reinfection as a cause of recurrent tuberculosis after curative treatment. New England Journal of Medicine. 341 (16), 1174-1179 (1999).
  18. Caminero, J. A., Pena, M. J., Campos-Herrero, M. I., Rodríguez, J. C., Afonso, O., et al. Exogenous reinfection with tuberculosis on a European Island with a moderate incidence of disease. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (3), 717-720 (2001).
  19. Sallusto, F., Lanzavecchia, A., Araki, K., Ahmed, R. From vaccines to memory and back. Immunity. 33 (4), 451-463 (2010).
  20. Millington, K. A., Gooding, S., Hinks, T. S. C., Reynolds, D. J. M., Lalvani, A. Mycobacterium tuberculosis.-specific cellular immune profiles suggest bacillary persistence decades after spontaneous cure in untreated tuberculosis. The Journal of infectious diseases. 202 (11), 1685-1689 (2010).
  21. Su, L. F., Kidd, B. A., Han, A., Kotzin, J. J., Davis, M. M. Virus-specific CD4(+) memory-phenotype T cells are abundant in unexposed adults. Immunity. 38 (2), 373-383 (2013).
  22. Goletti, D., Butera, O., Bizzoni, F., Casetti, R., Girardi, E., Poccia, F. Region of difference 1 antigen-specific CD4+ memory T cells correlate with a favorable outcome of tuberculosis. The Journal of infectious diseases. 194 (7), 984-992 (2006).
  23. Waters, W. R., et al. Efficacy and immunogenicity of Mycobacterium bovis. DeltaRD1 against aerosol M. bovis. infection in neonatal calves. Vaccine. 27 (8), 1201-1209 (2009).
  24. Hope, J. C., et al. Identification of surrogates and correlates of protection in protective immunity against Mycobacterium bovis. infection induced in neonatal calves by vaccination with M. bovis. BCG Pasteur and M. bovis. BCG Danish. Clinical and Vaccine Immunology. 18 (3), 373-379 (2011).
  25. Thom, M. L., et al. Duration of immunity against Mycobacterium bovis. following neonatal vaccination with bacillus Calmette-Guérin Danish: significant protection against infection at 12, but not 24, months. Clinical and Vaccine Immunology. 19 (8), 1254-1260 (2012).
  26. Aabye, M. G., Ravn, P., Johansen, I. S., Eugen-Olsen, J., Ruhwald, M. Incubation of whole blood at 39°C augments gamma interferon (IFN-γ)-induced protein 10 and IFN-γ responses to Mycobacterium tuberculosis .antigens. Clinical and vaccine immunology : CVI. 18 (7), 1150-1156 (2011).
  27. Maue, A. C., Waters, W. R., Davis, W. C., Palmer, M. V., Minion, F. C., Estes, D. M. Analysis of immune responses directed toward a recombinant early secretory antigenic target six-kilodalton protein-culture filtrate protein 10 fusion protein in Mycobacterium bovis.-infected cattle. Infection and Immunity. 73 (10), 6659-6667 (2005).
  28. Godkin, A. J., Thomas, H. C., Openshaw, P. J. Evolution of epitope-specific memory CD4(+) T cells after clearance of hepatitis C virus. Journal of immunology. 169 (4), 2210-2214 (2002).
  29. Todryk, S. M., et al. The relationship between human effector and memory T cells measured by ex vivo and cultured ELISPOT following recent and distal priming. Immunology. 128 (1), 83-91 (2009).
  30. Vordermeier, H. M., et al. Viral booster vaccines improve Mycobacterium bovis. BCG-induced protection against bovine tuberculosis. Infection and Immunity. 77 (8), 3364-3373 (2009).
  31. Orme, I. M. Induction of nonspecific acquired resistance and delayed-type hypersensitivity, but not specific acquired resistance in mice inoculated with killed mycobacterial vaccines. Infect. Immun. 56 (12), 3310-3312 (1988).
  32. Griffin, J. F., Mackintosh, C. G., Slobbe, L., Thomson, A. J., Buchan, G. S. Vaccine protocols to optimise the protective efficacy of BCG. Tubercle and lung disease : the official journal of the International Union against Tuberculosis and Lung Disease. 79 (3), 135-143 (1999).
  33. Buddle, B. M., et al. Protection of cattle from bovine tuberculosis by vaccination with BCG by the respiratory or subcutaneous route, but not by vaccination with killed Mycobacterium vaccae. Research in veterinary science. 59 (1), 10-16 (1995).
  34. Lehmann, P. V., Zhang, W. Unique strengths of ELISPOT for T cell diagnostics. Methods in Molecular Biology. 792 (Chapter 1), 3-23 (2011).
  35. Tincati, C., Iii, A. J. C., Snyder-Cappione, J. E. Distinguishing latent from active Mycobacterium tuberculosis. infection using Elispot assays: looking beyond interferon-gamma). Cells. 1 (2), 99-99 (2012).
  36. Lash, G. E., Pinto, L. A. Multiplex cytokine analysis technologies. Expert review of vaccines. 9 (10), 1231-1237 (2010).
  37. Vordermeier, M., Whelan, A. O. ELISPOT assays to enumerate bovine IFN-γ-secreting cells for the development of novel vaccines against bovine tuberculosis. Methods in molecular biology. 792, 219-227 (2012).
  38. Han, S., Norimine, J., Palmer, G. H., Mwangi, W., Lahmers, K. K., Brown, W. C. Rapid deletion of antigen-specific CD4+ T cells following infection represents a strategy of immune evasion and persistence for Anaplasma marginale. Journal of immunology. 181 (11), 7759a-7769a (2008).
  39. Helden, M. J. G., et al. Pre-existing virus-specific CD8(+) T-cells provide protection against pneumovirus-induced disease in mice. Vaccine. 30 (45), 6382-6388 (2012).

Tags

免疫学,第101,
长期培养的干扰素γ酶联免疫检测方法的评估效应和记忆T细胞应答的牛应用
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Maggioli, M. F., Palmer, M. V.,More

Maggioli, M. F., Palmer, M. V., Vordermeier, H. M., Whelan, A. O., Fosse, J. M., Nonnecke, B. J., Waters, W. R. Application of Long-term cultured Interferon-γ Enzyme-linked Immunospot Assay for Assessing Effector and Memory T Cell Responses in Cattle. J. Vis. Exp. (101), e52833, doi:10.3791/52833 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter