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Medicine

Modelos cirúrgicos de refluxo gastroesofágico com Ratos

Published: August 25, 2015 doi: 10.3791/53012

Protocol

Todas as experiências com animais foram aprovados pelo Comitê de Cuidado e Uso do animal Institucional.

1. Preparação do rato

  1. Use camundongos mais ~ 20 g no peso corporal ou superiores a 6 semanas de idade para a cirurgia.
  2. Antes da cirurgia, dar camundongos um laboratório de comida e água ad libitum e manter em um ciclo claro-escuro de 00:12 h.
  3. Raspar a área cirúrgica com uma máquina de cortar cabelo. Anestesiar ratos por injecção intraperitoneal de 80 mg / kg de cetamina e 12 mg / kg de xilazina. Esta dose coloca ratos no sono em poucos minutos e fornece anestesia suficiente para os seguintes procedimentos cirúrgicos.
  4. Confirme anesthetization adequada com base na ausência do reflexo corneal e retração membro quando a pata é comprimido. Aplicar lubrificante pomada oftálmica nos olhos para evitar o ressecamento.
  5. Esterilizar a pele com solução de betadine.

2. Modelo refluxo gástrico (Figura 1B)

  1. Realizar uma superiorincisão na linha média de ~ 2 cm a partir da xifóide apontando para o ânus.
  2. Abra-se a cavidade abdominal através da linha média. Remova o xifóide para aumentar a exposição com um par de tesouras.
  3. Separa-se e cortar os tecidos conjuntivos entre o fígado e o estômago. Ligadura e cortar o feixe vascular entre o baço e do fundo, a fim de completamente livre até o fundo.
  4. Ligue o fundo ligeiramente para a esquerda e expor o lado esquerdo da junção gastro-esofágico no campo. Adicione uma incisão longitudinal de 5 mm no músculo distai ao longo do esófago utilizando um par de tesouras para expor o epitélio.
  5. Corte aberto do epitélio ao longo da mesma direcção (incisão 1, Figura 1B). Adicione três incisões na pança de incisão (2, 3 e 4, Figura 1B) para eliminar a maioria da pança com uma tesoura afiada operacionais. Se o estômago não está vazio, remova cuidadosamente o conteúdo gástrico.
  6. Coloque um Sutu prolene 8-0re (com um ponto de afunilamento agulha) através de um ponto (no esôfago) e ponto A '(na pança) com uma precisão de mucosa da mucosa oposição. De igual modo lugar suturas através do ponto b e Ponto b ', e outros pares de pontos, respectivamente. Uniformemente espaço estas suturas 3-4 mm uns dos outros.
  7. Lava-se a cavidade abdominal com solução salina normal para limpar o sangue e o conteúdo gástrico. Feche a parede abdominal com fio de seda e pele com grampos metálicos.

3. Modelo de Refluxo mistos (Figura 1C)

  1. Siga os passos 2.1 a 2.4 para expor a junção gastroesofágico.
  2. Suavemente separar o lado dorsal do esófago a partir dos vasos sanguíneos por trás do esófago. Passe uma ponta de algodão pequena entre os vasos sanguíneos e esôfago.
    Nota: O algodão pode ser parcialmente removida a partir da ponta para reduzir o seu tamanho. Esta dica de algodão serve a dois propósitos, levantando o esôfago e proteger os vasos sanguíneos.
  3. Faça inc dois cinco milímetros longitudinalisions cada na junção gastro-esofágico e a extremidade proximal do duodeno adjacente ao piloro com uma tesoura afiada operacionais. Para a incisão no duodeno, evitar vasos sanguíneos e coloque na fronteira anti-mesentérica.
  4. Anastomosar as incisões com mucosa com precisão de mucosas oposição interrompidas 8-0 suturas de Prolene. Normalmente coloque 3-4 suturas na face dorsal e 2-3 suturas na parte da frente.
  5. Retire a ponta de algodão. Lava-se a cavidade abdominal com solução salina normal e fechar a parede abdominal e a pele.

4. Modelo Duodenal refluxo (Figura 1D)

  1. Siga o passo 3.1 a 3.4 para gerar misto de refluxo.
  2. Com cuidado, levante o estômago para expor a sua parte de trás. Um lobo do fígado podem ser abrangidos pelo tecido conjuntivo entre o fígado e parte de trás do estômago. Corte cuidadosamente os tecidos conjuntivos, corretamente proteger o fígado, e expor os vasos sanguíneos no lado dorsal do esôfago.
  3. Ligadura ecortar os vasos sanguíneos. Ligadura e cortado o esófago na junção gastroesofágico.
  4. Ligar o duodeno no piloro. Ligadura e cortar o mesentério. Remover todo o estômago.
  5. Lava-se a cavidade abdominal com solução salina normal. Fechar a parede abdominal e a pele.

5. O tratamento pós-cirúrgico

  1. Após a cirurgia manter a temperatura corporal com uma almofada de aquecimento. Só depois de recuperar decúbito esternal, coloque os ratos de volta com outros animais.
  2. Dar antibióticos e analgésicos para prevenir a infecção e aliviar a dor. Injectar Baytril (10 mg / kg, ip, qd, durante 3 dias) para prevenir a infecção, e cloridrato de buprenorfina (0,05 mg / kg, sc, bid. Dois dias) como analgésico. O jejum não é necessário após a cirurgia.
    A dieta líquida ou mole pode ser dada.
  3. Avaliar o estado de saúde geral sobre basis.If diários os ratos mostram os seguintes sinais (dramática perda de peso> 15%, a falta de appetite, vocalização, descarregar a partir da boca, nariz ou olhos, gesto curvado, inatividade, atividade aliciamento anormal), sacrificar os ratos.

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Representative Results

A maioria dos ratinhos (> 95%) pode sobreviver à cirurgia. Durante o período perioperatório, as principais causas de morte incluem overdose de anestésicos, sangramento e razões desconhecidas.

Quatro semanas após a cirurgia,> 90% de ratinhos com refluxo gástrico ou misto de refluxo e> 80% de ratinhos com refluxo duodenal podem sobreviver. Durante este período, os ratos morrem principalmente de estenose esofágica e incapacidade para comer. Estes ratos mostram sinais de estresse grave (postura arqueada, a inatividade, vômitos, olhos encovados, vocalização, etc.) e precisam ser sacrificados. O tratamento médico com antibióticos e infusão geralmente não pode salvar estes ratos de morrer. Ratos geralmente perdem seu peso corporal por um par de gramas após a cirurgia, especialmente aqueles com refluxo duodenal. Não obstante o peso corporal vai se recuperar e aumentar mais tarde.

Quarenta dias após a cirurgia,> 80% de ratinhos com refluxo gástrico e misturado e> 70% de ratinhos com refluxo duodenal podem sobreviver. During este período, alguns ratos podem morrer de desnutrição ou razões desconhecidas. Mantivemos ratos durante 80 semanas após a cirurgia. Em geral, eles ainda são muito ativos e saudáveis ​​9.

Às quatro semanas após a cirurgia, a arquitetura do epitélio esofágico será danificado mais ou menos por refluxo. Sob o microscópio, o epitélio torna-se mais espessa e a papila alonga. Hiperproliferação das células epiteliais e infiltração de células inflamatórias (por exemplo, neutrófilos, eosinófilos e mastócitos) são sinais óbvios de esofagite (Figura 2). As citocinas em epitélio esofágico (por exemplo, IL1β, IL6 e IL8) são particularmente elevados, na presença de refluxo duodenal 11. Sob microscopia eletrônica de transmissão, espaço intercelular dilatado reflete o comprometimento da função barreira epitelial 12. Função-sábio, resistência eléctrica trans-epitelial é drasticamente diminuída, especialmente na presença de duodenrefluxo ai.

Figura 1
Figura 1: (A) Anatomia do trato digestivo superior em ratinhos (vista frontal e lateral); (B) refluxo gástrico (vista lateral); (C) refluxo Misto (vista frontal); (D) refluxo Duodenal (vista de frente).

Figura 2
Figura 2: Histologia de rato sem epitélio esofágica de refluxo (A), ou com refluxo gástrico (B), misto de refluxo (C), refluxo duodeno (D). Barra de escala = 50 mm.

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Discussion

Vários modelos cirúrgicos foram criados para imitar gástrica, duodenal e misto de refluxo em roedores. Estes três procedimentos aqui descritos são adequados para experimentos de longo prazo com taxas razoáveis ​​de sobrevivência pós-operatória. Um pesquisador com experiência cirúrgica deve ser capaz de compreender a técnica, após um curto período de prática.

A hemorragia pode resultar de injecção intraperitoneal de anestésicos antes da cirurgia, laceração do fígado durante a separação dos tecidos conjuntivos entre o fígado e do estômago, e danos inadvertidos dos vasos sanguíneos. Isso deve ser evitado tanto quanto possível. Operado por bateria mini-cautério pode ser utilizado para parar o sangramento, se apropriado. Alongamento excessivo deve ser evitado, tanto quanto possível quando os órgãos e tecidos são manipulados. As pontas das pinças pode ser envolto com algodão, ou pontas de algodão podem ser utilizados para substituir pauzinhos como pinças. O esôfago do rato tem duas camadas ou duas & #8220; tubos ", avermelhado exterior" tubo muscular "e esbranquiçada interior" tubo epitélio ". Quando é feita uma incisão no esófago, ambas as camadas devem ser cortado e aberto. Suturas devem ser uniformemente espaçados com precisão de mucosa da mucosa oposição. O vazamento pode resultar de uma ampla distância entre as suturas, enquanto estenose pode desenvolver-se devido a uma distância estreita entre as suturas. No entanto, a crítica pode bloquear a passagem dos alimentos e causar a morte de pós-operatório, ao passo que um pequeno derrame pode ser fixado por adesão local e reação fibrótica e, portanto, geralmente não é fatal.

Existem vários princípios criticamente gerais a serem seguidas no âmbito do protocolo. A duração da cirurgia deve ser encurtado se possível (cerca de 20-30 minutos no laboratório). Jejum antes e após a cirurgia é desnecessária. Na verdade, jejum prolongado (> 1 dia) pode ser prejudicial. A cirurgia é melhor executada por um único cirurgião. Um assistente pode ajudar a anestesiar os ratos e fornecer surgmateriais iCal. Um microscópio não é necessário a menos que o cirurgião tenha sido devidamente treinado em microcirurgia. Caso contrário, a duração da cirurgia tende a ser maior do que o necessário e, portanto, a sobrevivência pós-operatória pode ser potencialmente pior.

Estes procedimentos foram utilizados em publicações anteriores e geraram resultados satisfatórios. Usando de tipo selvagem e camundongos geneticamente modificados, demonstramos que NFkB e Nrf2 vias regulada a função de barreira do epitélio do esôfago durante o refluxo gastro-esofágico 11,12. No entanto, não foram capazes de produzir esôfago ou adenocarcinoma full-blown de Barrett nesses camundongos, em vez disso, as células espalhadas mucinoso e carcinoma de células escamosas foram induzidos 9. Diferenças histológicas entre esôfago do rato e do esôfago humano podem ser as limitações inerentes a esses modelos cirúrgicos na pesquisa sobre adenocarcinoma de esôfago e esôfago de Barrett.

Nós acreditamos que estes surgical modelos são úteis para estudos sobre DRGE. Funções de genes e vias moleculares pode ser elucidada para compreender os mecanismos moleculares de RGE e desenvolver a terapia baseada em mecanismo. Quando usado para a produção de adenocarcinoma do esófago de Barrett e esofágica, serão necessárias modificações genéticas em combinação com a cirurgia de refluxo.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Dumont #1 Forceps Dumostar Tip  Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Micro Clip Applying Forceps 5.5" Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Bonn Scissors 3.5" Straight 15 mm Sharp/Sharp Tungsten Carbide Blades Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Operating Scissors 5.5" Straight Sharp/Sharp SureCut Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
4-0 Silk Black Braid 100 Yard Spool Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Surgeon's Needle 1/2 Circle Cutting Edge Size 12 (25 mm Chord Length) Pack 12 Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Halsey Needle Holder 5" Smooth Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Micro Needle Holder 5.125" Curved Lock .6 mm Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Reflex 9 mm Wound Clip Applier Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
Reflex 9 mm Wound Clips Box Of 100 Roboz Surgical Instrument Co. (Gaithersburg, MD)
PRONOVA Poly (hexafluoropropylene-VDF) Suture 8-0 Ethicon US, LLC
Ringer's solution Henry Schein, Inc.
ketamine Henry Schein, Inc.
xylazine Henry Schein, Inc.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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  6. Garman, K. S., Orlando, R. C., Chen, X. Review: Experimental models for Barrett's esophagus and esophageal adenocarcinoma. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 302 (11), G1231-G1243 (2012).
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  12. Chen, H., et al. Nrf2 deficiency impairs the barrier function of mouse oesophageal epithelium. Gut. 63 (5), 711-719 (2014).

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He, J., Fang, Y., Chen, X. SurgicalMore

He, J., Fang, Y., Chen, X. Surgical Models of Gastroesophageal Reflux with Mice. J. Vis. Exp. (102), e53012, doi:10.3791/53012 (2015).

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