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Bioengineering

磁気共鳴画像誘導による感熱リポソームからのシスプラチンのトリガリリースのためのカスタム設計されたレーザーベースの加熱装置

doi: 10.3791/53055 Published: December 13, 2015

Summary

MRI互換カスタム設計レーザーベースの加熱装置は、具体的には、腫瘍領域で感熱性リポソームからの薬剤の放出を活性化するために、皮下腫瘍の局所加熱を提供するために開発されてきました。

Abstract

リポソームは、強化された透過性および全身毒性の有意な減少をもたらし保持(EPR)効果の利用を通じて固形腫瘍を標的とするために、薬物送達システムとして使用されてきました。それにもかかわらず、リポソームからの封入された薬物の不十分なリリースでは、その臨床的有効性が限定されています。温度感受性リポソームは、限定された腫瘍薬物のバイオアベイラビリティの問題を克服するために薬物の部位特異的放出を提供するように設計されています。私たちの研究室では、設計および固形腫瘍におけるCDDPのトリガされた放出を提供するために、HTLCとして知られるシスプラチンの熱活性化感熱リポソーム製剤(CDDP)を開発しました。 in vivoでの熱活性化送達は、MR温度測定(MRT)によって確認されるように、腫瘍部位でのコンフォーマル加熱パターンを提供する特注のレーザベースの加熱装置を用いて、マウスモデルにおいて達成されました。光ファイバ温度監視装置は、リアルタイムで温度を測定するために使用されましたレーザー出力を交互にすることによって、熱供給のオンライン調整を有する全加熱期間中。薬物送達は、加熱プロトコルを検証するために、腫瘍の蓄積を評価するための手段として、感熱性リポソームにCDDPと共にMR造影剤( すなわち、ガドテリドール)の共カプセル化することにより、磁気共鳴(MR)画像ガイダンスの下で最適化しました。加熱プロトコルは、前のHTLCの投与20分の加熱後の注射5分の予熱期間からなりました。この加熱プロトコルは、非加熱腫瘍と筋肉と比較して、加熱された腫瘍で観察された最も高いMR信号変化にカプセル化された薬剤の有効放出をもたらしました。この研究は、前臨床感熱性リポソームの開発のためのレーザーベースの加熱装置と薬物送達の最適化のための加熱プロトコルのMR誘導検証の重要性の成功した適用を実証しました。

Introduction

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ナノスケールシステムの強化された透過性および保持(EPR)で固形腫瘍の結果の病態生理。これは、全身性の副作用1を最小限にしながら 、腫瘍組織を標的とするために、この効果を利用する多くの薬物送達システムの開発につながりました。リポソーム送達技術が広く、薬物又はイメージングプローブ2ために研究されてきました。リポソームは大幅に従来の化学療法に比べて全身毒性が低下しているものの、臨床的有効性の3,4にいくつかの改良がなされています。研究は、限られた有効性は、キャリア4,5からの薬物放出の欠如によるものであることを示しています。結果として、外部刺激に応答して封入された薬剤を放出するように活性化されたリポソームの開発が注目を集めています。温熱療法は、癌患者6比較的安全な治療法として、何十年も使用されています。そこで開発外部トリガとして、熱で感熱性リポソームのメンターは、臨床翻訳のための大きな可能性を持つ論理的な組み合わせとなっています。実際、LTSL-DOXとして知られるドキソルビシンのリゾ脂質含有感熱リポソーム製剤は、現在臨床評価7に達しています

LTSL-DOXとの最近の臨床データは、熱の配信のためのプロトコルは重く患者の転帰8に影響を与えることができる重要な要因であることが示されています。ヒトでは、無線周波数、マイクロ波、レーザー、超音波トランスデューサは、腫瘍部位9で局所的温熱療法を適用するために使用されます。皮下腫瘍の加熱を必要とする前臨床試験では、加熱カテーテル10,11とウォーターバス12,13は、最も頻繁に使用されます。本稿では、我々は、腫瘍体積のよりコンフォーマルな加熱を可能にカスタム設計されたレーザーベースの暖房の設定を使用して、皮下腫瘍を加熱するための新しい方法を紹介します。 MR互換性のMAを使用してterials、セットアップは、レーザー加熱中に組織温度の変化のリアルタイムモニタリングを可能にすること、小動物MRイメージャの孔内に収まるほど小さいです。

MR造影剤、ガドテリドール(GD-HP-DO3A)は、Gdの-HTLCとして知らCDDP(HTLC)の感熱性リポソーム製剤にCDDPと同時カプセル化された、リアルタイムのためのMR熱のモニタリング及び評価を画像誘導 - 活性化薬物放出と加熱プロトコルの検証。我々の結果は、MRイメージングによって監視されながらレーザーベースの加熱装置を効率的のGd-HTLC製剤からカプセル化された物質の放出を活性化することを実証しています。

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Protocol

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1.リポソームの調製

  1. (カルボニル- 1,2- Dipalmitoyl- SN -glycero -3-ホスホコリン(DPPC)、1-ステアロイル-2-ヒドロキシSN -glycero -3-ホスファチジルコリン(MSPCまたはS-リゾPC)およびN、脂質を溶解しますクロロホルム中メトキシ2000)-1,2- distearoyl- SN -glycero -3-ホスホエタノールアミン(MPEG 2000 -DSPE)。例えば、HTLCの10ミリリットルの調製のために、アンバーガラスバイアルに314.4 mgのDPPC、39.4ミリグラムのMSPC、および83.9 mgののmPEG 2000 -DSPEを量ります。その後、2mlのクロロホルム中の脂質を溶解し、60℃の水浴中で30秒間バイアルを加熱します。
  2. ロータリーエバポレーターを用いてクロロホルムを除去します。高圧真空O / Nの下で得られた脂質フィルムを配置します。
  3. HTLC 10mlのために、1時間、5 mlの0.1Nトリス緩衝液(pH7.4)で脂質膜を水和。同時に、162.4 mgの1,2- dipalmitoyl- SN -glycero -3-ホスホグリセロール(DPPG)、脂質および100mg CDDP粉末と水和物ワットを量りますi番目の5mLの0.1N 1時間30%エタノール液(pH7.4)を含有するTris緩衝液。
  4. Gd-HTLC製剤については、DPPG脂質及び10mgのCDDP粉末の同量を秤量し、(2.5ミリリットルのGd-HP-DO3A溶液(279.3 mg / mlの)プラス30%のエタノールを含有する2.5 mlの0.1Nトリス緩衝液で水和し1時間pHは7.4)。水和の際に、混合物は、琥珀色のバイアル中に維持しなければならないし、絶えず撹拌しながら70℃でホットプレート上に置き、10分ごとにボルテックスします。
  5. 脂質混合物および脂質薬物混合物を組み合わせて、再び1時間水和。ボルテックスごとに15〜20分。
  6. 200 nmのポリカーボネートフィルターの2つのスタックで10-mlの押出機を組み立てます。 70℃の循環水浴に押出機のサーモを接続し、圧縮窒素タンクに押出機を接続してください。
  7. すぐに水分補給した後、押出機室に混合物を移します。膜を通してリポソームを押し出すために窒素流(200 PSIに設定圧力)を開きます。 liposomを収集50 mlチューブ中エス。押出プロセス中にすべての回で熱水浴(70℃)でチューブを保管してください。このプロセスを5回繰り返します。
  8. 押出機を分解し、100 nmのポリカーボネートフィルターの2つのスタックに変更されます。押出機を再構築し、400 psiのに圧力を設定します。リポソームを10回押し出しを除き、ステップ5を繰り返し、。 15ミリリットルチューブに最終押出からサンプルを採取します。
  9. RTにリポソームを冷却し、不溶性のCDDPを沈殿させ、3分間1,000×gで遠心します。
  10. 無菌条件下での15,000分子量カットオフ(MWCO)を有する透析チューブ中の0.9%生理食塩水に対してリポソームO / Nを透析します。
  11. 蒸留水を990μlの中のリポソームの10μLを希釈します。 HTLC及びGd-HTLCのサイズ分布を測定するために、動的光散乱を使用してください。 10回それぞれに3回の測定を行います。
  12. 蒸留水を3960μlの中のリポソームの40μLを希釈します。プラチナとガドリニウムの5-6標準溶液を作ります0.1から20μg/ mlの濃度範囲です。 3つの異なる波長で誘導結合プラズマ原子発光分析装置(ICP-AES)を用いて、白金およびガドリニウム濃度を測定します。平均の結果は、各波長での3回の測定を行います。
  13. 示差走査熱量計(DSC)を用いて、HTLCのリポソーム製剤の液晶相転移温度 (T m)にゲルを決定します。 HTLCの負荷5〜10mgのDSCパンに基準と空パンを使用しています。 0℃から60℃まで温度をランプアップ5℃/分のスキャン速度を使用してください。
  14. 4°Cで露光し、店舗を防止するためにアルミホイルでリポソームを包みます。

リポソームからのインビトロ放出2.

  1. スピンカラムを準備します。
    1. 3~4時間室温で400 mlの0.9%生理食塩水で50 gでゲル濾過ビーズをインキュベートします。 0.9%生理食塩水で濡れたグラスウールの一部を、ロールアップし、1 mlシリンジの先端に配置します。約0.05〜0.1ミリリットル注射器のを埋めるためにガラスウールを押します。徐々にシリンジに約1mlゲルろ過メディアを追加するガラスピペットを使用してください。
    2. 3分1,000×gで15ミリリットルチューブと遠心分離機に注射器を置きます。スピンカラムを削除し、15mlチューブにそれを置きます。
  2. 8 1ドラムのガラスバイアルにサンプルHTLCまたはGdの-HTLCの400μLを、37℃または42℃のいずれかで温度制御された水浴中でインキュベートします。各時点で( すなわち、5、15、30、60分)を1バイアルを取り出し、すぐに氷の上に置きます。
  3. その後、インキュベーション(コントロール)の前HTLCまたはGdの-HTLCの100μlを添加するか、スピンカラムへの水浴中でインキュベートした後、準備されたスピンカラムに0.9%生理食塩水100μlのを追加します。 3分1,000×gで遠心分離します。チューブからシリンジを取り外し、ICP-AES分析のためのチューブ内の溶液を希釈します。

子宮頸部の皮下異種移植片の3注入腫瘍

  1. すべての動物実験は、大学健康ネットワーク(UHN)の動物管理委員会によって承認された動物使用プロトコルに従って実施しました。
  2. 安全キャビネット(BSC)内のすべての動物実験を行います。いずれの手術の前に、すべての手術器具をオートクレーブ。各手術後、70%エタノールで手術器具を拭くとホットビーズ滅菌器を使用して再度滅菌します。
  3. 安楽死のために、頸椎脱臼を行い、その後、絶縁CO 2チャンバー内に動物を配置します。
  4. 100%の酸素を使用して全身麻酔のために、誘導および維持のために、2%、5%イソフルランを使用しています。麻酔の深さを確保するために、動物の反応を観察するためにフットパッドの掌表面にピンセットで圧力をかけます。麻酔下ながら乾燥を防ぐために、眼の潤滑剤を塗布します。
  5. 手術を受けた動物は、他の動物の会社のない清浄なケージに動物を配置します。十分な意識が回復されるまで監視します。
  6. 培養アルファ最小必須培地(α-MEM)中のME-180細胞を、10%ウシ胎児血清(FBS)および抗生物質を補充しました。
  7. 細胞を採取し、接種前に完全培地中で細胞を維持します。血球計数器を用いて細胞を数えます。
  8. 筋肉内(IM)ME-180(ヒト子宮頸癌細胞)腫瘍を負担する各ドナーマウスを接種します。
    注:IM部位での成長は、十分に血管新生化腫瘍の発達を確保するために選択されています。社内の飼育施設からの雌SCIDマウス(6〜8歳の週、約20 g)を購入。
    1. 雌SCIDマウスを麻酔し、27 Gの針を用いて後肢の腓腹筋に1×10 6 ME-180細胞を注入します。
    2. 腫瘍がその最長寸法で9〜12ミリメートルに達するまでキャリパーを用いて腫瘍サイズを測定します。腫瘍が12ミリメートルを超えた場合、または腫瘍塊が正常な動作、歩行、食品や水の摂取量を損なう場合は調査を終了します。
  9. レシピエントマウスにドナーマウスからインプラント腫瘍断片。
    1. 5%のイソフルランを使用して、ドナーマウスを麻酔。麻酔下で頸椎脱臼を使用して、マウスを安楽死させます。ドナーマウスからドナー腫瘍を除去します。 2〜3ミリメートル3の立方体の断片に腫瘍をカット。
    2. 5%のイソフルランを使用して、レシピエントマウスを麻酔。手術前にmlのメロキシカムを皮下に0.5mg /100μlのを注入します。剃毛した皮膚へのヨウ素の外科その後スクラブ液、70%エタノール、最後にヨウ素溶液を適用します。レシピエントマウスの左後肢を剃ります。皮膚のレベルで切開を行います。切開を通して一人のドナーの腫瘍片を皮下に挿入します。 1-2創傷クリップ(複数可)を使用して切開を閉じます。
    3. 3〜5日、移植後のクリップを削除します。皮下腫瘍は​​、レーザーベースの加熱設定を使用するために必要とされます。
    4. 腫瘍が加熱処理前に2〜3週間成長できるようにします。

4.デザイン、ASSEMBLYとインビボ暖房等角レーザー配達照明器の校正

  1. 光ファイバを用いた共形照明装置に結合された763ナノメートルのダイオードレーザーを用いて組織の加熱を達成します。
    1. 照明装置は、異種移植腫瘍の均一な表面的なレーザー照明を提供します。これは、30×20×17ミリメートルの真ん中(直径16mm)に1室と室の積分球3隣接光を含む高反射材料のブロックと両側に2小室(長さ16ミリメートルと5ミリメートルで構成されています直径)( 図1)。
    2. 他に1室から合格する光ためには、二つの小さな直径5mmの穴が小さい外室と、大きい中間室との間に切断しました。光は、600μmの直径の穴を通ってチャンバに渡され、レーザに接続された400μmのカット端の繊維を使用して、外側チャンバにレーザから送出されます。
    3. 光intの性質上チャンバ壁とeractionは、小室の一つに供給される光が空間的に均質化し、それがさらに空間的に均質化する大きな室に内部ポートを通過します。光はその後、中間室に直径10mmポートを終了します。
  2. NISTを使用して、レーザパワー設定値に対する照明光の供給を較正供給される電力を測定するために積分球50 mmの較正。
    1. 腫瘍の単純化された幾何学に基づいてモンテカルロシミュレーションを用いて腫瘍の光分布を計算します。ジャックの多層組織における光輸送のモンテカルロ・モデリングの標準コードの商用計算ソフトウェアパッケージとベースで記述されたカスタムアルゴリズムにおけるモンテカルロコードを生成します。14。
    2. 皮膚表面での7ミリメートルの平均腫瘍寸法に一致する直径を有するフラットスキンラインと、彼の上に横たわっている半球として腫瘍をモデル化5mmのIGHT。ランダムに球体の中心に露出した半球と直接を通じて光子を起動して、表面のモデル均質照明。
    3. 吸収などの光学特性を使用して、μS = 10ミリメートル-1、異方性因子、G = 0.9、屈折率はn = 1.4を散乱、= 0.025ミリメートル-1μ。計算に百万光子を使用してください。
    4. 初期校正後、それ以上の修正を加えた任意のin vivoでの加熱実験の前に、これらの測定を行います。

カスタムデザインのレーザー室のセットアップを使用して腫瘍の5コンフォーマル暖房

  1. レーザ装置や照明装置にもう一方の端にレーザーファイバーの一方の端を接続します。
  2. 5%のイソフルランを用いて動物を麻酔。マウスの外側尾静脈に27 Gの注入カテーテルを挿入します。腫瘍の中心部に22 Gカテーテルを挿入します。光ファイバー温度PRを配置します温度変化を監視するための中空カテーテルにOBE。
  3. 照明装置( 図2)で腫瘍全体をカバーしています。まずレーザーをオンにして、温度が上昇するのを待つW. 0.8から1に電源を設定します。手動で0.1〜0.8 Wとの間のレーザパワーを調整することにより、42°Cでの腫瘍の温度を維持します

MR温度測定によって評価6.温度分布(MRT)

  1. 光ファイバ温度プローブの測定値と一緒に7テスラの前臨床MRイメージング・システム15上のプロトン共鳴周波数シフト(PRFシフト)MRTを介してレーザベースの加熱設定を使用して加熱された腫瘍の温度分布を測定します。
  2. 2D-FLASHのパルスシーケンスを用いて、10秒間隔で温度測定画像を取得(エコー時間4.5ミリ秒、繰り返し時間156.25ミリ秒)312 X 312ミクロンの面内分解能と光ファイバのレベルで単一のスライスで2mmのスライス厚で温度プロこと。

エージェントリリースの7 MRモニタリング

  1. T 1強調画像前及びGd-HTLCの投与後20分を実行します。
  2. 移植のために第3節では、上記の方法を使用しての雌SCIDマウスのインプラント2の腫瘍、後肢のそれぞれに1つずつ、。 66.3ミリグラム/キログラムのGd-HP-DO3Aおよび1.4ミリグラム/ kgのCDDPの投与量でのGd-HTLCの注入前に42℃で5分間放置後肢上の腫瘍を予熱し、さらに20のために腫瘍を加熱ポスト噴射分。加熱処理時に注入を実行します。非加熱コントロールとして右後肢の腫瘍を使用してください。
  3. 動的MR画像を取得する(36×20 mmの視野、200×200μmの面内分解能、2mmのスライス厚、MRシーケンスプロトコル)は全体の20分12秒間隔でのGd-HP-DO3Aの放出を監視しますGd-HTLCの投与後、注射前に30秒を開始します。
  4. (加熱、非加熱)腫瘍と筋肉のボリュームを輪郭。各輪郭ボリューム内のすべてのボクセルの平均MR信号を計算します。

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Representative Results

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HTLCのリポソームは脂質膜形成、水和、押出成形および透析を含む一般的な方法を用いて製造されています。 CDDPは黒い堆積物の形成を介して非アクティブ化されるようにCDDPを含むステップの間に、注意は、任意のアルミ材にCDDPを公開しないように注意してください。 HTLCの図は、 図3に示されている。HTLCの物理化学的特性は、最近、 制御盤 16 のジャーナルに掲載された原稿にまとめました。 Gd-HTLC製剤のガドリニウムと白金濃度は、1.87±0.28 mg / mlで0.10±0.02 mg / mlで、それぞれ。

レーザーベースの加熱設定の照明器は、直径10mmの出口で、均一な配光(±15%)を提供する3つの小、接続チャンバーを使用しています。レーザーのパワー設定に応じて、電力が対策として、0.5〜1.7 W / cm 2の範囲内に送達されますDキャリブレーション積分球を用いました。結果は、腫瘍を通る断面として図4に示されています。 1 Wの総電力を仮定すると、腫瘍内の任意の点における最大フルエンス率が70ミリワット/ cm 2です。レーザー出力は、単に腫瘍表面下のピークフルエンスと比較して、皮膚レベルで2倍に減少します。

PRFシフトMRT( 図5)によって確認されるように、レーザーベースの加熱設定を使用して加熱は、比較的均一な温度分布マップを生成します。 PRFシフトMRTは、点光源( すなわち、光ファイバ温度センサ)によって取得された絶対的な加熱前のベースライン測定からの相対的な温度変化を追跡します。

MR信号の解析( 図6C)から、加熱された腫瘍が終了するまで維持されたGd-HTLC、投与後の非加熱腫瘍と筋肉と比較して最も高い相対的な信号の増加を表示します加熱時間の。

図1
照明の1.設計図。照明装置の(A)の寸法です。(B)内部チャンバーの寸法。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図2
温度監視装置と一緒にレーザーベースの加熱のセットアップ図2.イラスト。レーザーファイバー(青線)は、照明装置に光を提供します。光ファイバ温度プローブ(黄色のライン)は、温度変化を監視するために、22 Gカテーテルを介して腫瘍の中心に入れました。リアルタイム気性ature測定値は、コンピュータ画面上に示されています。 放出制御 2014 のジャーナル 、178、69-78。16から変更されたこの図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図3
HTLC製剤の図3概略図(正確な縮尺ではない)。HTLCリポソームの脂質組成物は、CDDPの濃度とサイズが示されています。 放出制御 2014 のジャーナル 、178、69-78。16から変更されたこの図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図4
図4. Modelin小さ ​​な積分球を用いて腫瘍への光配信のグラム。(A)は、通常の下にある組織の上に隆起した腫瘍を示すモデルの概略図。赤矢印は、カバレッジと計算における初期光子の方向を表します。イルミネーションが発生した腫瘍の全表面領域をカバーしています。(B)は、腫瘍の光フルエンス分布を示す計算の結果。(C)深さに対する光フルエンスの断面図を、白は(B)に示す点線に沿って。表皮深さでの腫瘍におけるフルエンス率が最大フルエンス率の50%である。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図5
図5の温度分布は、MR温度測定を通じて評価しました。 。右腫瘍ながら、レーザーベースの暖房の設定を使用して42℃に左腫瘍を加熱から生成された2つの左右対称に移植された腫瘍の解剖学的位置を示す(A)T 2強調画像(B)温度分布マップ非加熱のままでした。データ制御放出 2014年の雑誌 、178、69-78。16から再分析した。この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図6
熱活性化時のGd-HTLCのリポソームからガドテリドールリリースの図6. MR監視。T 1は、後肢のそれぞれに1つと、2皮下ME-180腫瘍を有するマウスの(同じウィンドウレベルが適用される)MR画像を-重み付けA)のGd-HTLCのプレ噴射と(B)のGd-HTLCの20分後に注射( すなわち、全体の加熱期間の後)。(C)相対 MR信号は、((A)に示したマウスの動的MR収集の最初の時点に正規化変化するとB)。データは、平均±SDを表します。データ制御放出 2014年の雑誌 、178、69-78。16から再分析した。この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

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Discussion

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リポソームは、最初に、脂質二重層2以内にその内部の水性体積の親水性薬物及び疎水性薬物を運ぶ薬物送達媒体として1960年代に開発されました。放射性核種で標識された又はイメージング造影剤17が装填されたときに治療的適用における使用に加えて、リポソームは診断用途のために検討されています。近年では、セラノスティクスと治療・診断のペアは、画像誘導患者の層別化および薬物送達17,18の機会を提供するために追求されました。現在の研究は、MRガイド下でカスタム設計レーザーベースの暖房の設定を使用して、感熱リポソームから、トリガー薬物放出を評価するために、画像誘導薬物送達の概念に基づいています。

上記のように、水浴または加熱カテーテルは、一般的に皮下腫瘍を加熱するために使用されてきました。水浴の方法は、ホットワットで肢全体の浸漬を必要とします腫瘍部位での放出に加えて、四肢全体に非特異的な薬物放出をもたらすATER、。加熱カテーテルの使用は、腫瘍の中心で18 Gカテーテルの配置を必要とし、熱安定状態11に到達するために比較的長い時間(15分間)の加熱を必要とすることが示されています。

本研究では、新たに設計されたレーザーベースの加熱設定温度分布マップのMR-基づく評価( 図5)によって示されるように、腫瘍体積に熱を供給するのコンフォーマルな方法を提供します。 図5の非加熱右後肢と右肢の腫瘍におけるPRF-シフトマップにおける不均一性はどのも直接妥協、感受性アーティファクトとわずかな生理学的または加熱によって誘発される運動の近くに低い信号対雑音の組み合わせを反映している可能性があります加熱及び基準画像の登録だけでなく、周りに誘導されたフィールドにわずかな変化を導入オフセット磁化率の地域。加えて、熱安定状態に加熱を開始する1~2分以内に達成され得ることが見出されました。また、ポイントベースの光ファイバ温度センサは、42℃の温度を維持するために、温度の変動を最小限にするために、レーザパワーのリアルタイム調整を可能にしました。しかし、腫瘍内の比較的中央の位置に光ファイバ温度センサを配置することが重要です。 MRイメージングは​​、センサのための切開点を検証するために使用することができます。加熱の間、レーザーパワーが入念に0.8 Wの初期電力で42℃の温度を維持するように調整されるべきです

加熱プロトコルは、薬物CDDPの代理としてのGd-HP-DO3Aリリースをリアルタイムで監視して最適化されました。有意な治療ADVANその結果、加熱HTLC群と有効性の改善に翻訳HTLCリポソームからカプセル化された薬剤の効果的な放出、他の治療群と対照群16を超える田下。

加熱装置の照明装置は、最大寸法で5-7ミリメートルの腫瘍を加熱するように設計されました。照明装置の設計は、より大きな腫瘍を加熱するように変更することができ、複数の光ファイバ温度センサは、現在のシングルポイントベースの測定と比較して、温度を監視するために、腫瘍容積を通して挿入することができます。携帯機器は、MR適合性材料から作られているためだけでなく、3次元MR温度測定は、全腫瘍体積全体にわたって温度分布を評価するために実施することができます。

結論として、レーザーベースの加熱装置は、感熱リポソーム製剤の前臨床開発のための貴重なツールを提供します。このような本研究で使用したものと画像誘導薬物送達アプローチは、実ティム含む臨床翻訳とオーダーメイド医療を実現するための重要な可能性を有します治療処置の電子監視。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Rotary evaporator Heidolph Instruments GmbH & Co.KG Laborota 4000
High pressure extruder Northern Lipids Inc. T.001 10 ml thermobarrel
Heating circulator VWR International LLC. 11305 Connected to extruder
Polycarbonate membrane filter Whatman 110605;110606
Differential scanning calorimeter (DSC) TA Instruments Q100
Inductively coupled plasma-atomic emission spectrometer (ICP-AES) PerkinElmer Optima 7300DV
Zetasizer Malvern Instruments Ltd. Nano-ZS
Cell incubator NuAire Inc. NU-5800
Autoclip wound clip applier Becton Dickinson 427630
Autoclip wound clip remover Becton Dickinson 427637
Wound clips Becton Dickinson 427631 9 mm
763 nm Laser device Biolitec Ceralas CD 403 laser
Laser probe Thorlabs Inc. FT400EMT With SMA and flat cleave connectors
Spectralon (illuminator) Labsphere Inc. FAST-SL-5CMX5CM
CSTM-SL-5CMX5CM
7 Tesla prelinical magnetic resonance (MR) imaging system Bruker Corporation Biospec 70/30
Fiber optic temperature sensor LumaSense Technologies Inc. Luxtron FOT Lab Kit
Integrating sphere Newport Corporation 819C
Optical power meter Newport Corporation 1830-R

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References

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磁気共鳴画像誘導による感熱リポソームからのシスプラチンのトリガリリースのためのカスタム設計されたレーザーベースの加熱装置
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Dou, Y. N., Weersink, R. A., Foltz, W. D., Zheng, J., Chaudary, N., Jaffray, D. A., Allen, C. Custom-designed Laser-based Heating Apparatus for Triggered Release of Cisplatin from Thermosensitive Liposomes with Magnetic Resonance Image Guidance. J. Vis. Exp. (106), e53055, doi:10.3791/53055 (2015).More

Dou, Y. N., Weersink, R. A., Foltz, W. D., Zheng, J., Chaudary, N., Jaffray, D. A., Allen, C. Custom-designed Laser-based Heating Apparatus for Triggered Release of Cisplatin from Thermosensitive Liposomes with Magnetic Resonance Image Guidance. J. Vis. Exp. (106), e53055, doi:10.3791/53055 (2015).

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