Summary
MRI 호환 주문 설계된 레이저 기반의 가열 장치는 특히 종양 영역에서 감온 리포좀 제제로부터의 방출을 활성화하기 위해 피하 종양 국소 가열을 제공하기 위해 개발되었다.
Abstract
리포좀 향상된 통기성 및 전신 독성의 현저한 감소의 결과 체류 (EPR) 효과의 착취를 통해 고형 종양을 표적으로하는 약물 전달 체계로서 사용되어왔다. 그럼에도 불구하고, 리포좀에서 캡슐화 된 약물의 불충분 한 자료는 임상 효능을 제한하고있다. 온도에 민감한 리포좀은 한정된 종양 약물의 생체 이용률 문제를 극복하기 위해 약물의 부위 특이 적 방출을 제공하도록 설계되었다. 우리의 실험실 설계 및 고형 종양에서 CDDP의 트리거 릴리스를 제공하기 위해, HTLC로 알려진 시스플라틴의 열 활성화 온도 감응성 리포좀 제형 (CDDP)를 개발했다. 생체 내에서의 열 전달은 활성화 MR 체온계 (MRT)에 의해 확인 된 종양 부위에 균일 한 가열 패턴을 제공 맞춤형 레이저 기반의 가열 장치를 사용하여 뮤린 모델에서 달성되었다. 광섬유 온도 감시 장치는, 실시간으로 온도를 측정하는 데 사용 된레이저 파워를 번갈아 열 전달의 온라인 조정과 전체 가열 구간 동안. 약물 전달은 가열 프로토콜을 검증하는 종양 축적을 평가하는 수단으로서 감온 리포좀 내로 CDDP 함께 MR 조영제 (예 gadoteridol)의 공동 캡슐화하여 자기 공명 (MR) 화상의지도하에 최적화 하였다. 가열 프로토콜은 종래 HTLC 투여하고 20 분 가열 후 분사 5 분 예열 기간으로 구성되었다. 이 가열 프로토콜 밖 종양 및 근육에 비해 가열 종양에서 관찰 된 최고 MR 신호 변화 캡슐 제의 효과적인 방출 결과. 이 연구는 임상 전 열성 리포솜 개발 레이저 기반의 가열 장치 및 약물 전달의 최적화를위한 가열 프로토콜 MR 유도 검증의 중요성 성공적인 적용을 설명했다.
Introduction
나노 스케일 시스템의 향상된 통기성 및 체류 (EPR)의 고형 종양 결과의 병태 생리. 이는 전신 부작용을 최소화하면서 1 종양 조직을 대상으로이 효과를 활용 많은 약물 전달 시스템의 개발을 유도 하였다. 리포좀 전달 기술이 널리 약물 또는 이미징 프로브 (2)에 대해 조사되었다. 리포좀은 상당히 종래 화학 요법에 비해 독성이 감소하였으나, 임상 적 효능에 3,4- 약간 개선이 있었다. 연구는 제한된 효능 캐리어 4,5-로부터 약물 방출의 부족에 기인 한 것으로 나타났다. 그 결과, 외부 자극에 응답하여 캡슐화 약물을 방출하기 위해 활성화되고 리포좀 개발 상당한 관심을 끌고있다. 온열 요법은 암 환자 6 비교적 안전한 치료 방법으로 수십 년 동안 사용되어왔다. 따라서 개발외부 트리거로 열을 온도 감응성 리포좀의, 표준 임상 번역에 대한 상당한 잠재력을 가진 논리 조합하고있다. 실제로, LTSL-DOX로 알려진 독소루비신의 lysolipid 함유 온도 감응성 리포좀 제형은 현재 임상 평가 (7)에 도달했습니다.
LTSL-DOX에 대한 최근 임상 데이터는 열 전달을위한 프로토콜은 크게 환자 결과 (8)에 영향을 미칠 수있는 중요한 요소 인 것으로 나타났습니다. 인간에서, 고주파, 마이크로파, 레이저와 초음파 트랜스 듀서는 종양 부위 (9)에 로컬로 고열을 적용하는 데 사용됩니다. 피하 종양의 난방을 필요로하는 임상 연구에서, 가열 카테터 (10, 11)와 수조 (12, 13)은 가장 자주 사용된다. 이 논문에서는, 종양 체적의 더 균일 한 가열을 가능하게하는 주문 설계 레이저 기반 가열 설정을 사용하여 피하 종양을 가열하기위한 새로운 방법을 소개한다. MR 호환 엄마를 사용하여terials, 설치, 레이저 가열시 조직의 온도 변화를 실시간으로 모니터링 할 수 있도록, 작은 동물 MR 메이져의 보어 내에 맞도록 충분히 작다.
MR 조영제, gadoteridol (GD-HP-DO3A)은, GD-HTLC라고도 CDDP (HTLC)의 감온 리포솜 제형에 CDDP와 공동으로 캡슐화하고, 실시간 미스터 열 모니터링 및 평가를 영상 유도 부활 약물 방출 가열 프로토콜의 검증. 우리의 결과는 MR 이미징을 통해 감시하면서, 레이저 기반의 가열 장치를 효율적 GD-HTLC 제제에서 캡슐화 된 제제의 방출을 활성화 함을 입증.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. 리포좀 준비
- (카보 닐 - 지질 1,2-Dipalmitoyl- SN -glycero -3- 포스 포 콜린 (DPPC), 1- 스테아로 일 -2- 히드 록시 -3- SN -glycero 포스파티딜콜린 (또는 S-MSPC 리소-PC)를 용해하고 N , 메 톡시 2000) 클로로포름 -1,2- 디 distearoyl- SN -glycero-3-phosphoethanolamine (MPEG 2000 -DSPE). 예를 들어, HTLC 10 ㎖의 준비를 위해, 호박 유리 병 속으로 314.4 mg을 DPPC, 39.4 mg을 MSPC 및 83.9 mg의 된 mPEG 2000 -DSPE 무게. 그런 다음, 2 mL의 클로로포름에 용해하고 지질을 60 ℃ 수조에 30 초 동안 바이알을 가열.
- 회전 증발기를 사용하여 클로로포름을 제거한다. 고압 진공 O / N에서 생성 된 지질 필름을 놓습니다.
- HTLC 10ml를 들어, 1 시간 동안 5 ㎖ 0.1N 트리스 완충액 (pH 7.4)와 지질 막을 수화. 동시에, 달아 162.4 mg을 1,2- dipalmitoyl- SN -glycero -3- phosphoglycerol (DPPG) 지질 및 100 mg을 CDDP 분말 및 수화물 wi 번째 5 ㎖의 0.1N 1 시간 동안 30 % 에탄올 (PH 7.4)을 함유하는 트리스 완충액.
- GD-HTLC 제형, DPPG 지질 및 10 mg을 CDDP 분말의 동일한 양을 계량 한 다음 (2.5 mL의 GD-HP-DO3A 용액 (279.3 ㎎ / ㎖)에 30 %의 에탄올을 함유하는 2.5 ml의 0.1 N 트리스 완충액으로 수화 1 시간 동안의 pH 7.4). 수분 동안 혼합물 호박색 유리 병에 보관해야 일정한 교반하고 10 분마다 볼 텍싱을 70 ℃에서 핫 플레이트 상에 두었다.
- 지질 혼합물과 지질 약물 혼합물을 조합하고, 다시 1 시간 동안 수화. 소용돌이 매 15 ~ 20 분.
- 200 nm의 폴리 카보네이트 필터의 두 스택과 함께 10 ml의 압출기를 조립합니다. 70 ° C에서 순환 수조에 압출기의 thermobarrel을 연결하고, 압축 된 질소 탱크에 압출기를 연결합니다.
- 즉시 수화 한 후, 압출기 챔버에 혼합물을 전송. 세포막을 통해 리포좀을 돌출 할 수있는 질소 흐름 (200 PSI에 설정 압력)를 엽니 다. liposom를 수집50 ML 튜브에 말이지. 압출 공정 동안에 항상 온수 욕 (70 ℃)에서 튜브를 유지한다. 이 과정을 5 번 반복합니다.
- 압출기를 분해하여 100 nm의 폴리 카보네이트 필터의 두 스택으로 변경합니다. 압출기를 재 조립하고 400 PSI에 압력을 설정합니다. 리포좀 10 번 돌출 제외하고 5 단계를 반복합니다. 15 ML 튜브로 최종 압출에서 샘플을 수집합니다.
- 3 분 불용성 CDDP 침전 1,000 XG에서 RT에 리포좀, 원심 분리기를 냉각.
- 멸균 조건에서 15,000 분자량 컷오프 (MWCO)과 투석 튜브에 0.9 % 식염수에 대한 리포좀 O / N을 투석.
- 증류수 990 μL의 리포좀의 10 μl를 희석. HTLC 및 GD-HTLC의 크기 분포를 측정하기 위해 동적 광 산란을 사용한다. 10 실행하는 각 3 측정을 수행합니다.
- 증류수 3,960 μL의 리포좀의 40 μl를 희석. 백금과 가돌리늄의 5-6 표준 용액 만들기0.1 내지 20 μg의 / ㎖의 농도 범위이다. 3 개의 다른 파장에서 유도 결합 플라즈마 - 원자 방출 분광기 (ICP-AES)을 사용하여 백금 및 가돌리늄의 농도를 측정한다. 평균 결과에 대한 각 파장에서 3 측정을 수행합니다.
- 시차 주사 열량계 (DSC)를 사용 HTLC 리포좀 제형의 액정 상 전이 온도 (T m)로 겔을 결정한다. 로드 5-10 DSC 팬에 HTLC mg의와는 참고로 빈 팬을 사용합니다. 60 ° C 0 ° C에서 온도를 진입로 5 ℃ / min의 스캔 속도를 사용합니다.
- 4 ° C에서 빛 노출 및 저장을 방지하기 위해 알루미늄 호일에 리포좀을 감싸.
리포좀에서 체외 릴리스 2.
- 스핀 열을 준비합니다.
- 3-4 시간 동안 실온에서 400 mL의 0.9 % 식염수에 50g 겔 여과 비즈 부화. 0.9 %의 식염수에 젖은 유리 섬유 조각, 최대 롤과 1 ML의 주사기의 끝 부분에 배치. 약 0.05-0.1 ml의 주사기를 채우기 위해 유리 섬유를 누릅니다. 점차적으로 주사기에 약 1 ml의 겔 여과 매체를 추가 할 유리 피펫을 사용합니다.
- 3 분 동안 1,000 XG에 15 ML 튜브와 원심 분리기에 주사기를 놓습니다. 스핀 열을 제거하고 15 ML 튜브에 넣습니다.
- 샘플 400 8 1 - DRAM 유리 병에 HTLC 또는 GD-HTLC의 μL, 37 ° C 또는 42 ° C 중 하나에 온도 조절 수조에서 부화. 각 시점에 한 병 (즉, 5, 15, 30, 60 분)을 꺼내 즉시 얼음에 놓습니다.
- 다음 배양 (제어) 전에 HTLC 또는 GD-HTLC의 100 μl를 추가하거나 스핀 열에 수조에서 배양 한 후, 준비된 스핀 컬럼에 0.9 %의 식염수 100 μl를 추가합니다. 3 분 동안 1,000 XG에 원심 분리기. 튜브로부터 주사기를 제거하고 ICP-AES 분석 튜브 용액을 희석.
자궁 경부의 피하 이종 이식 3. 주입종양
- 모든 동물 실험은 대학 건강 네트워크의 동물 관리위원회 (UHN)의 승인을 동물 사용 프로토콜에 따라 수행되었다.
- 바이오 안전성 캐비닛 (BSC)의 모든 동물 연구를 수행합니다. 어떤 수술 전에 수술 도구를 압력솥. 각각의 수술 후, 70 % 에탄올과 수술 도구를 닦아 다시 뜨거운 비드 살균기를 사용하여 소독.
- 안락사를 들어, 다음 경추 탈구를 수행, 절연 CO 2 챔버에서 동물을 배치합니다.
- 100 % 산소를 사용하여 전신 마취를 들어, 유도 5 % 이소 플루오 란 및 유지 보수를 위해 2 %를 사용한다. 마취의 깊이를 확인하기 위해 동물의 반응을 관찰하는 발바닥의 손바닥 표면에 집게로 압력을 적용합니다. 마취 동안 건조를 방지하기 위해 눈 윤활제를 적용합니다.
- 수술을 한 동물은 다른 동물의 회사없이 깨끗한 케이지에 동물을 배치합니다. 충분한 의식이 회복 될 때까지 모니터링합니다.
- 문화알파 - 최소 필수 배지, 10 % 소 태아 혈청 (FBS) 및 항생제가 보충 된 (α-MEM)에서 ME-180 세포.
- 세포를 수확하고 접종 전에 완료 미디어의 세포를 유지. 혈구를 사용하여 세포를 카운트.
- 근육 (IM) ME-180 (인간의 자궁 경부암 세포) 종양을 부담하기 위해 각 기증자 마우스를 접종한다.
주 : IM 사이트 성장은 물론 종양의 혈관 발달을 보장하기 위해 선택되었다. 구매 여성 SCID 마우스 (세 6-8주, 약 20 g)를 사내 사육 시설에서.- 암컷 SCID 마우스를 마취하고 27 G 바늘을 이용하여 뒷다리의 비복근 근육에 1 × 106 세포 ME-180를 주입.
- 종양이 가장 긴 차원에서 9-12mm에 도달 할 때까지 캘리퍼스를 이용하여 종양의 크기를 측정한다. 종양이 12mm를 초과 한 경우에 연구를 종료, 또는 종양 덩어리 정상적인 동작, 보행, 음식과 물을 섭취 타협 경우.
- 받는 사람 쥐에 기증자 마우스에서 임플란트 종양 조각.
- 5 % 이소 플루오 란을 사용하여 도너 마우스를 마취. 마취하에 경추 탈구를 사용하여 마우스를 안락사. 기증자 마우스에서 기증자 종양을 제거합니다. 2-3mm 3 차 조각으로 종양을 잘라.
- 5 % 이소 플루오 란을 사용하여 수신자 마우스를 마취. 멜 록시 캄 ml의 피하 수술 전 / 0.5 mg을 100 ㎕를 주입한다. 면도 피부에 요오드 수술 후 스크럽 솔루션, 70 % 에탄올, 그리고 마지막으로 요오드 용액을 적용합니다. 받는 사람 마우스의 왼쪽 뒷다리를 면도. 피부의 수준에서 절개를합니다. 절개를 통해 한 기증자 종양 조각의 피하에 삽입합니다. 1-2 상처 클립 (들)을 사용하여 절개를 닫습니다.
- 이식 후 클립 3-5 일 제거합니다. 피하 종양은 레이저 기반의 난방 설정을 사용하여 필요합니다.
- 종양이 가열 처리 전에 2~3주에 대한 성장하도록 허용합니다.
4. 디자인, ASSEM생체 난방을위한 포멀 레이저 배달 조명기의 BLY 및 교정
- 광섬유를 사용하여 컨 포멀 일루미네이터 결합 763 nm의 다이오드 레이저를 사용하여 조직 가열을 달성한다.
- 조명은 이종 이식 종양의 균일 한 표면 레이저 조명을 제공합니다. 그것은 중간에 하나의 챔버 (직경 16mm) 2 작은 챔버 양쪽에 (길이 16mm와 5mm를 챔버 분야를 통합하는 세 개의 인접 빛을 포함하는 고 반사 물질의 30 X 20 X 17mm 블록으로 구성된다 직경) (그림 1).
- 위해서 빛이 다른 하나의 챔버로 전달하는, 두 개의 작은 5mm 직경 구멍 작은 외측 챔버와 챔버 사이에 큰 중간 절단 하였다. 빛은 600 ㎛의 직경의 구멍을 통하여 챔버로 전달되는 레이저에 연결된 400 μm의 절단 단 섬유를 이용하여 챔버 외부로 레이저로부터 전달된다.
- 때문에 빛 INT의 특성챔버 벽 eraction은 작은 챔버 중 하나에 전달되는 광은 공간적으로 균질화는 상기 공간적으로 균질이고 큰 챔버 내로 내부 포트를 통과한다. 광은 중간 챔버에 10mm 직경의 포트를 종료한다.
- NIST를 이용하여 레이저 파워의 설정에 대해 일루미네이터 광의 전달을 교정은 전송 전력을 측정하는 적분 구를 보정 50mm.
- 종양의 간략화 된 구조에 기초한 몬테 칼로 시뮬레이션을 이용하여 종양에서의 광 분포를 계산한다. 자크 등. (14)의 다층 조직에서 빛 전송의 몬테 카를로 모델링의 표준 코드에 상용 전산 소프트웨어 패키지와베이스로 작성된 사용자 정의 알고리즘에 몬테카를로 코드를 생성합니다.
- 그 반구가 피부 표면에서 7mm의 평균 종양 크기를 일치 직경 평면 피부 라인에 누워 같이 종양 모델5mm의 ight. 임의로 구의 중심에 직접 노출 반구 걸쳐 광자를 실행하여 표면의 균일 한 조명 모델.
- 흡수 포함한 광학 특성을 사용하면 = 0.025 mm -1, 산란 μ, μ들 10mm -1, 이방성 계수, g = 0.9 및 굴절률 N = 1.4 =. 계산에 백만 광자를 사용합니다.
- 초기 교정 후 더 이상의 수정을 어떤 생체 가열 실험 전에 이러한 측정을 수행합니다.
맞춤 디자인 레이저 회의소 설정을 사용하여 종양의 5 포멀 난방
- 레이저 소자 및 조명 장치에 반대쪽 레이저 섬유의 한쪽 끝을 연결한다.
- 5 % 이소 플루오 란을 사용하여 동물을 마취. 마우스의 측면 꼬리 정맥에 27 G 주입 카테터를 삽입합니다. 종양의 중심에 22 G 카테터를 삽입합니다. 광섬유의 온도를 배치 PR중공 카테터에 OBE는 온도 변화를 모니터링 할 수 있습니다.
- 조명 (그림 2)와 종양 전체를 커버. 먼저 레이저의 전원을 켜고 온도가 상승 할 때까지 기다립니다 W. 0.8-1의 전원을 설정합니다. 수동 W. 0.1-0.8 사이의 레이저 파워를 조정함으로써 42 ℃에서의 종양의 온도를 유지
MR 온도 측정을 통해 평가되는 6 온도 분포 (MRT)
- 광섬유 온도 센서 측정치와 함께 7 테슬라 전임상 MR 촬상 시스템 (15)에 양성자 공명 주파수 시프트 (PRF 시프트) MRT 통해 레이저 기반 가열 설정을 이용하여 가열 된 종양의 온도 분포를 측정한다.
- 2D-FLASH 펄스 시퀀스를 사용하여 10 초 간격 (에코 시간 4.5 밀리 초, 반복 시간 156.25 밀리 초)에서 체온계 이미지를 획득 312 X 312 μm의 면내 해상도와 광섬유의 레벨에서 단일 슬라이스에 2mm 슬라이스 두께 온도 프로있다.
에이전트 릴리스 7. MR 모니터링
- T 1 -weighted 이미징 이전과 GD-HTLC의 투여 후 20 분을 수행합니다.
- 이식 3 절에 상술 된 방법을 사용하여 암컷 SCID 마우스 이식 종양 두, 뒷다리에 각각 하나. 66.3 ㎎ / ㎏ GD-HP-DO3A 및 1.4 ㎎ / ㎏ CDDP의 용량 GD-HTLC 주입하기 전에 42 ℃에서 5 분 동안 왼쪽 뒷다리에서 종양을 예열하고 추가 20 종양을 가열 분 후 분사. 가열 처리시 주입을 수행합니다. 난방 제어로 오른쪽 뒷다리에 종양을 사용합니다.
- 동적 자기 공명 영상 획득 (36 X 20mm 시야, 200 X 200 μm의에서 평면 해상도, 2mm 슬라이스 두께, MR 시퀀스 프로토콜)은 전체 20 분 12 초 간격으로 하나님-HP-DO3A 자료를 모니터링 GD-HTLC의 사후 관리, 주입하기 전에 30 초를 시작.
- (가열 및 비가 열) 종양과 근육의 볼륨을 컨투어입니다.각각의 윤곽 볼륨 내의 모든 복셀의 평균 MR 신호를 계산합니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
HTLC 리포좀은 지질 성막, 수화, 압출 및 투석을 포함하여 일반적인 방법을 사용하여 제조된다. CDDP 검은 침전물의 형성을 통해 비활성화되는 바와 CDDP 관련된 단계 동안주의 임의 알루미늄 재 CDDP에 노출되지 않도록주의하여야한다. HTLC의 그림은 그림 3에 표시됩니다. HTLC의 물리 화학적 특성은 최근 서방 (16)의 저널에 발표 된 논문에 요약 하였다. GD-HTLC 제형의 가돌리늄 백금 농도는 1.87 ± 0.28 ㎎ / ㎖ 및 0.10 ± 0.02 ㎎ / ㎖, 각각.
레이저 기반의 난방 설치의 조명은 10mm 직경의 출력 포트에서 균일 한 광 분포 (± 15 %)을 제공하는 세 개의 작은, 연결 챔버를 사용합니다. 레이저의 전력 설정에 따라 전력 측정 값으로, 1.7 W / cm 2로 0.5의 범위 내에서 전달된다D 보정 적분 구를 사용하여. 결과는 종양 취한 단면도로서도 4에 나타낸다. 1 W의 총 전력을 가정 할 때, 종양의 어느 지점에서 최대 플루 언스 율은 70 mW의 / ㎠이다. 레이저 파워는 종양 표면 아래 피크 플루 언스에 비해 피부 레벨의 2 배만큼 감소한다.
PRF-변화 MRT (그림 5)에 의해 확인 된 레이저 기반의 난방 설치를 사용하여 난방, 비교적 균일 한 온도 분포지도를 생성합니다. PRF 시프트 MRT는 점 광원 (즉, 광섬유 온도 센서)에 의해 가열되기 전에 취득한 절대 기준 측정에서 상대적인 온도 변화를 추적한다.
MR 신호 분석 (도 6C)에서 가열 된 종양이 끝날 때까지 유지된다 GD-HTLC, 투여 후 종양 밖 근육에 비해 상대적으로 높은 신호가 증가를 표시가열 기간.
조명 1. 디자인 그림. 조명의 () 치수. (B) 내부 챔버의 크기. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
도 온도 제어 장치와 함께 레이저 기반 가열 설치 2. 그림. 레이저 광 (블루 라인)은 일루미네이터에 광을 전달한다. 광섬유 온도 프로브 (황색 선)은 온도 변화를 모니터링하기 위해 22 G 카테터를 통해 종양의 중심에 배치 하였다. 실시간 조질ature 수치는 컴퓨터 화면에 표시된다. 제어 릴리스 2014 년 178 논문집, 69-78. 16에서 수정 된 것은 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
HTLC 제제 (축척되지 않은) 그림 3. 개략도. 지질 조성, HTLC 리포좀의 CDDP 농도와 크기가 도시되어있다. 제어 릴리스 2014 년 178 논문집, 69-78. 16에서 수정 된 것은 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4. Modelin작은 적분 구를 사용하여 종양에 빛을 전달 G. (A) 정상 기본 조직 위에 제기 종양을 보여주는 모델의 개략도. 빨간색 화살표는 범위와 계산의 초기 광자의 방향을 나타냅니다. 조명이 제기 종양의 전체 표면 영역을 다루고 있습니다. (B) 종양의 빛 플루 언스 분포를 나타내는 계산의 결과. (C) 깊이 대 빛 플루 언스의 횡단면 플롯을, 흰색은 (B)에 표시된 점선을 따라. 피부 깊이에서 종양의 플루 언스 속도가 최대 플루 언스 요금의 50 %입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5. 온도 분포는 MR의 온도 측정을 통해 평가 하였다. &# 160;. 레이저 기반 가열 설정을 사용하여 C 42 °에 왼쪽 종양을 가열로부터 생성 된 두 개의 양자 이식 된 종양의 해부학 적 위치를 표시 () T 2 -weighted 이미지 (B) 온도 분포지도, 오른쪽 종양 동안 난방 남아 있었다. 데이터는 69-78, 제어 릴리스 2014 년 178의 저널에서 다시 분석 하였다. (16)는 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
열 활성화시 GD-HTLC 리포좀에서 gadoteridol 자료 그림 6. MR 모니터링. T 1은 뒷다리에 각각 한 두 개의 피하 ME-180 종양 베어링 마우스 (같은 창 수준 적용) 자기 공명 영상을 -weighted ( A) GD-HTLC의 사전 주입(전체 가열 구간 이후에, 즉) (B) GD-HTLC 20 분 후 분사. (C) 상대 MR 신호는 동적 자기 공명에 도시 된 마우스의 취득 (A) 및 제 시점 (정규화 변경 B). 데이터는 평균 ± SD를 나타냅니다. 데이터는 69-78, 제어 릴리스 2014 년 178의 저널에서 다시 분석 하였다. (16)는 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
리포좀은 먼저 그들의 지질 이중층 (2) 내에는 내부 수성 부피 친수성 소수성 약물과 약물 전달 약물 전달 비히클로서 1960 년에 개발되었다. 방사성 핵종으로 표지 또는 촬상 조영제 17로 로딩 될 때 치료 용도로 사용할뿐만 아니라, 리포솜의 진단 애플리케이션에 탐구되어왔다. 최근 몇 년 동안, theranostics 및 치료 진단 쌍에서 영상 유도 환자 계층화 및 약물 전달 (17, 18)의 기회를 제공하기 위해 추진되고있다. 본 연구는 MR의지도하에 맞춤 디자인 레이저 기반 가열 설정을 사용하여 온도 감응성 리포좀에서 트리거 된 약물 방출을 평가하기위한 영상 유도 약물 전달의 개념을 구축합니다.
상술 한 바와 같이, 수조 또는 히팅 카테터 일반적 피하 종양을 가열하는데 사용되어왔다. 수욕 방법은 고온에서 w 전체 사지의 침지를 필요의 ater는 또한 사지 통하여 비특이적 약물 방출을 초래하는 종양 부위에서 방출한다. 가열 카테터의 사용은 종양의 중심에서 18 G 카테터의 배치를 필요로하고, 열적 안정 상태 (11)에 도달하기 위하여 시간 (15 분)의 비교적 긴 시간 동안의 가열을 필요로하는 것으로 나타났다.
본 연구에서는 새롭게 디자인 된 레이저 기반 난방 설정 온도 분포지도 (그림 5)의 MR 기반의 평가에 의해 입증 된 바와 같이 종양 체적에 열을 전달하는 균일 한 방법을 제공합니다. 도 5 밖 오른쪽 뒷다리와 우측 상지 종양에서 PRF 시프트 맵 이질, 감수성 아티팩트와 약간 생리적 또는 가열 - 유도 운동 근방 낮은 신호 - 대 - 잡음의 조합을 반영하는 타협 직접 수도 난방 및 기본 이미지 등록뿐만 아니라 주위에 유도 분야에서 약간의 차이를 소개합니다오프셋 자화율 지역. 또한, 열적 안정 상태는 가열을 개시 1-2 분 이내에 달성 될 수 있다는 것을 발견 하였다. 또한, 포인트 - 기반 광섬유 온도 센서가 42 ℃로 온도를 유지하고 온도 변화를 최소화하기 위해, 레이저 파워의 실시간 조정을 허용했다. 그러나, 종양 내에서 상대적으로 중심 위치에서 광섬유 온도 센서를 배치하는 것이 중요하다. MR 이미징 센서 절개 지점 유효성을 확인하기 위해 사용될 수있다. 가열시, 레이저 파워가 0.8 신중 W.의 초기 전력으로 42 ℃에서 온도를 유지하도록 조절되어야
가열 프로토콜 약물 CDDP 대한 대리 GD-HP-DO3A 방출의 실시간 모니터링을 통하여 최적화 하였다. 가열 HTLC 그룹이 상당한 치료 ADVAN 결과와 개선 효과로 번역 HTLC 리포좀에서 캡슐 제의 효과적인 릴리스다른 처리 군과 대조군 (16)를 통해 다케.
가열 장치의 일루미네이터는 최대 치수 5-7 mm 인 종양을 가열하도록 설계되었다. 일루미네이터의 설계는 큰 종양 복수 광섬유 온도 센서 전류 단일 포인트 기반 측정에 비해 온도를 모니터링하기 위해, 종양 부피에 걸쳐 삽입 될 수를 가열하기 위해 수정 될 수있다. 휴대용 장치가 호환 MR 재료로부터 제조되기 때문에, 또한 3 차원 MR 체온계 전체 종양 체적에 걸쳐 온도 분포를 평가하기 위해 수행 될 수있다.
결론적으로, 레이저 기반의 가열 장치는, 감열 리포솜 제형의 임상 개발을위한 가치있는 도구를 제공한다. 이러한 본 연구에 사용 된 것과 같은 영상 유도 약물 전달 방식은, 실제 팀을 포함한 임상 의학 번역 및 개인화의 구현을위한 상당한 잠재력을 가지고치료 치료의 전자 감시.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Rotary evaporator | Heidolph Instruments GmbH & Co.KG | Laborota 4000 | |
| High pressure extruder | Northern Lipids Inc. | T.001 | 10 ml thermobarrel |
| Heating circulator | VWR International LLC. | 11305 | Connected to extruder |
| Polycarbonate membrane filter | Whatman | 110605;110606 | |
| Differential scanning calorimeter (DSC) | TA Instruments | Q100 | |
| Inductively coupled plasma-atomic emission spectrometer (ICP-AES) | PerkinElmer | Optima 7300DV | |
| Zetasizer | Malvern Instruments Ltd. | Nano-ZS | |
| Cell incubator | NuAire Inc. | NU-5800 | |
| Autoclip wound clip applier | Becton Dickinson | 427630 | |
| Autoclip wound clip remover | Becton Dickinson | 427637 | |
| Wound clips | Becton Dickinson | 427631 | 9 mm |
| 763 nm Laser device | Biolitec | Ceralas CD 403 laser | |
| Laser probe | Thorlabs Inc. | FT400EMT | With SMA and flat cleave connectors |
| Spectralon (illuminator) | Labsphere Inc. | FAST-SL-5CMX5CM | |
| CSTM-SL-5CMX5CM | |||
| 7 Tesla prelinical magnetic resonance (MR) imaging system | Bruker Corporation | Biospec 70/30 | |
| Fiber optic temperature sensor | LumaSense Technologies Inc. | Luxtron FOT Lab Kit | |
| Integrating sphere | Newport Corporation | 819C | |
| Optical power meter | Newport Corporation | 1830-R |
References
- Maeda, H., Wu, J., Sawa, T., Matsumura, Y., Hori, K. Tumor vascular permeability and the EPR effect in macromolecular therapeutics: a review. J Control Releas. 65 (1-2), 271-284 (2000).
- Simard, P., Leroux, J. C., Allen, C., Meyer, O. Liposomes for Drug Delivery. Nanoparticles for Pharmaceutical Application. , American Scientific Publishers. (2007).
- O'Brien, M. E. R., et al. Reduced cardiotoxicity and comparable efficacy in a phase III trial of pegylated liposomal doxorubicin HCl (CAELYX (TM)/Doxil (R)) versus conventional doxorubicin for first-line treatment of metastatic breast cancer. Ann Onco. 15 (3), 440-449 (2004).
- White, S. C., et al. Phase II study of SPI-77 (sterically stabilised liposomal cisplatin) in advanced non-small-cell lung cancer. Br J Cancer. 95 (7), 822-828 (2006).
- Laginha, K. M., Verwoert, S., Charrois, G. J. R., Allen, T. M. Determination of doxorubicin levels in whole tumor and tumor nuclei in murine breast cancer tumors. Clin Cancer Res. 11 (19), 6944-6949 (2005).
- Baronzio, G. F., Hager, E. D. Hyperthermia in cancer treatment: a primer. , Springer Science. (2006).
- Landon, C. D., Park, J. Y., Needham, D., Dewhirst, M. W. Nanoscale Drug Delivery and Hyperthermia: The Materials Design and Preclinical and Clinical Testing of Low Temperature-Sensitive Liposomes Used in Combination with Mild Hyperthermia in the Treatment of Local Cancer. Open Nanomed. 3, 38-64 (2011).
- Celsion Corporation. , Celsion Announces Updated Overall Survival Data from HEAT Study of ThermoDox http://investor.celsion.com/releasedetail.cfm?ReleaseID=862248 (2014).
- Koning, G. A., Eggermont, A. M., Lindner, L. H., ten Hagen, T. L. Hyperthermia and thermosensitive liposomes for improved delivery of chemotherapeutic drugs to solid tumors. Pharm Res. 27 (8), 1750-1754 (2010).
- Viglianti, B. L., et al. In vivo monitoring of tissue pharmacokinetics of liposome/drug using MRI: illustration of targeted delivery. Magn Reson Me. 51 (6), 1153-1162 (2004).
- Ponce, A. M., et al. Magnetic resonance imaging of temperature-sensitive liposome release: drug dose painting and antitumor effects. J Natl Cancer Ins. 99 (1), 53-63 (2007).
- Kong, G., et al. Efficacy of liposomes and hyperthermia in a human tumor xenograft model: importance of triggered drug release. Cancer Res. 60 (24), 6950-6957 (2000).
- Yarmolenko, P. S., et al. Comparative effects of thermosensitive doxorubicin-containing liposomes and hyperthermia in human and murine tumours. Int J Hyperthermia. 26 (5), 485-498 (2010).
- Wang, L. H., Jacques, S. L., Zheng, L. Q. MCML-Monte Carlo modeling of photon transport in multi-layered tissues. Comput Meth Prog Bio. 47, 131-146 (1995).
- Rieke, V., Butts Pauly, K. MR thermometry. J Magn Reson Imaging. 27 (2), 376-390 (2008).
- Dou, Y. N., et al. Heat-activated thermosensitive liposomal cisplatin (HTLC) results in effective growth delay of cervical carcinoma in mice. J Control Release. 178, 69-78 (2014).
- Lammers, T., Kiessling, F., Hennink, W. E., Storm, G. Nanotheranostics and image-guided drug delivery: current concepts and future directions. Mol Pharm. 7 (6), 1899-1912 (2010).
- Lee, H., et al. A novel 64Cu-liposomal PET agent (MM-DX-929) predicts response to liposomal chemotherapeutics in preclinical breast cancer models. Thirty-Fifth Annual CTRC-AACR San Antonio Breast Cancer Symposium. , (2012).
