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测量除草剂代谢的双子叶杂草价格与切下的叶片分析

Published: September 7, 2015 doi: 10.3791/53236

Introduction

在杂草除草剂抗性提出了一个严重的威胁到粮食和纤维1,2全球生产。目前,成千上万的抗性种群和生物型,从百余种杂草世界范围内已被记录在案并研究3。赋予植物除莠剂抗性的主要机制是除草剂靶位点的基因和蛋白质,包括影响除草剂-蛋白结合动力学或目标站点基因2的扩增的基因突变的改变。通过细胞色素P450单加氧酶(P450)或谷胱甘肽 S-转移酶(GST)酶升高活性代谢排毒赋予杂草除草剂抗性,这是明显的从目标网站为基础的机制2几种方式另一种机制。代谢型电阻具有显著后果为是否植物适合度代价又名健身处罚),可能会导致从除草剂抗性机制及米,以及关于用于单个解毒机制赋予在杂草种群1,2,4交叉或多除草剂抗性的潜力。通常,在植物的除草剂代谢可分为三个不同的阶段5。第一阶段涉及除草剂转化或活化如芳环或烷基的P450介导的羟基化,或 N -或O-脱烷基化反应,从而增加极性和部分除草剂解毒5,6。新引入的官能团的第一阶段通过的GSTs提供连接位点结合,以还原型谷胱甘肽或UDP相关的糖基转移酶在二5,7阶段为葡萄糖。例如,氟嘧磺隆-甲酯,在玉米中主要初始代谢物是羟基氟嘧磺隆-甲酯8,它可以被进一步代谢成羟基氟嘧磺隆-葡糖苷(第二阶段),然后输送到液泡长期贮存或进一步代谢亲cessing 5,6(第三期)。

Waterhemp( 苋tuberculatus)是一种难以控制的,双子叶一年生杂草,阻碍生产玉米( 玉米 ), 大豆 (Glycine max),棉花( 陆地棉 )在美国物种。 waterhemp遗传多样性的高度是由它的雌雄异株的生物学和长途风授粉便利,和一个女waterhemp厂月产能可达一百万种子9。这些种子很小,很容易传播,这自然赋予waterhemp一个有效的分散机制。 Waterhemp显示在整个生长季节9连续发芽,而它的种子可以经过几年的休眠发芽。 Waterhemp是C 4植物具有较高的增长速度比耕地种植系统10个最阔叶杂草。此外,众多waterhemp种群抗多种FAM除草剂3 ilies。

从伊利诺伊waterhemp(指定MCR)的人口是耐4-羟基苯丙酮酸双加氧酶(HPPD)的除草剂-inhibiting 11,如甲基磺草酮,以及莠去津和乙酰乳酸合酶(ALS)-inhibiting除草剂,包括氟嘧磺隆-甲基由于非目标站点为基础的机制12,13。一种不同的人口waterhemp的指定的ACR 14,其是氟嘧磺隆甲基抗性(由于在ALS基因中的突变)和阿特拉津抗性但对硝磺草酮敏感,并指定WCS 14 waterhemp人口是敏感的氟嘧磺隆-甲基,硝磺草酮,莠去津和分别在我们以前的研究12和当前实验的MCR用于比较(总结于表1)。最初的研究未检测到的改变在所述 HPPD基因序列或表达水平,或降低的硝磺草酮的摄取,在MCR人口与硝磺草酮敏感的人群相比,12时。然而,随着整个植物代谢研究证明了亲硝磺草酮除草剂显著较低水平在MCR与ACR和WCS,这与以前的表型应答相关的硝磺草酮11,12相比。

Waterhemp人口 缩写 表型硝磺草酮 硝磺草酮耐药机制 表型氟嘧磺隆 氟嘧磺隆抗性机制
麦克莱恩县耐 MCR 代谢* 代谢
亚当斯县,耐 ACR SENSIT香港专业教育学院 - 在ALS 14靶位点突变
韦恩县敏感 WCS 灵敏的 - 灵敏的 -

*非目标抗性的机制,比加强新陈代谢等,也可以赋予硝磺草酮阻力在MCR人口12。

表1:从伊利诺伊waterhemp种群在该研究中使用的描述。

除了 ​​确定在完整waterhemp幼苗除草剂代谢速率,不同的实验方法,开发并在我们以前的研究采用通过使用切waterhemp叶测定法12,以及各种细胞色素P450 抑制剂 (如,tetcyclacis和马拉硫磷)调查代谢。这种方法特别适用于waterhemp从PREVI在切下玉米氟嘧磺隆-甲基代谢的OU调查叶15中,由于切下的叶片检测尚未被报道用于进行除草剂代谢研究在双子叶植物。所述organophophosate杀虫剂马拉硫磷已经经常用于体内体外除草剂代谢研究,以指示参与的P450 16。例如,宽容和硝磺草酮的玉米快速代谢是由于P450催化环羟化,当马拉硫磷增加玉米的敏感性硝磺草酮17进行了验证。同样,马拉硫磷抑制的ALS抑制剂氟嘧磺隆,甲在切玉米叶片15新陈代谢。该切下的叶片技术的一个主要的优点是,所产生的数据是独立的全株易位图案,一个重要的因素,以评估全身,芽后除草剂代谢在植物时考虑。因此,这种方法允许定量和定性的代谢分析集中于单个处理过的叶子12。

甲植物克隆策略,与切下的叶片协议组合,先前在waterhemp用来进行代谢研究12。由于waterhemp(单独的男性和女性的植物),和大程度雌雄异株物种 9内的遗传多样性的异交性质,该协议确保了经过基因相同waterhemp秧苗的时程实验中进行分析。本文演示了切叶法测定双子叶杂草(waterhemp)除草剂代谢率的效用。母体除草剂的量剩余在每个时间点图1)通过非线性最小二乘回归分析确定,并适合用一个简单的一阶曲线,以估计为吸收除草剂的50%降解的时间( DT 50)。典型从反相高效液相色谱法(RP-HPLC)色谱图的显示为ALS抗性及敏感waterhemp人群,其中一个时间过程研究中表明父除草剂伴随生成极性代谢产物的消失( 图2)。我们的本文的重点是描述和演示的切下的叶片的试验中组合的效用与植物人克隆方法,用于确定在双子叶植物的除草剂代谢的精确和可重复的速率,使用均匀环标记(URL- 14℃)除草剂在3 waterhemp种群的不同在其全植物对HPPD-和ALS抑制除草剂( 表1)。

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Protocol

1.植物材料,生长条件和营养克隆

注:三个waterhemp种群进行了调查,本研究:MCR(由McLean县,IL),ACR(从亚当斯县,IL),和WCS(从韦恩县,IL),(表1)。

  1. 收集并暂停waterhemp种子0.1克L- -1琼脂:水的溶液在4℃下至少30天以促进种子发芽。注意:有些waterhemp人口都处于休眠状态,但是这一步有助于克服休眠,使种子发芽更均匀。
  2. 发芽每个waterhemp人口的种子( 1)在12×12含在温室灌封介质厘米盘。
    1. 保持在二十二分之二十八℃,昼/夜中的16/8小时光照期12温室的温度条件。
    2. 补充自然光与光汞卤化物灯温室提供了至少500微摩尔 -2 秒 -1光子通量。
  3. 移植出现苗时,他们是2厘米高为80厘米3盆在温室中。
  4. 移苗进950厘米3盆含3:1:1:盆栽组合的混合物:土:草炭:砂子时,苗4厘米高。加入5克缓释肥料颗粒,以每盆以及与此土壤混合物混合。
  5. 剪切和删除拍摄含7厘米高的植物三个最年轻的叶子顶端分生组织,消除顶端优势。
    注:此步骤可确保每个工厂将生产足够3厘米腋芽克隆。
  6. 消费5腋生芽(3厘米长)时苗约14厘米高的从每个waterhemp人口如表1)。去除大部分这些芽腋叶,以减少水分流失经进一步处理,但保留了两个最小的叶子,让移植后的进一步增长。
  7. 移植腋生芽到80厘米3盆 (每盆一株幼苗)插入灌封介质,它是用于萌发的相同培养基。灌封介质最初应饱和直到在生长室根形式,然后维持在生长室恒定湿度和地点盆7天以建立根。
    注意:植物是在这一点上是非常敏感的,并且不应加以强调。
    1. 保增长室条件22分之28℃,昼/夜中的16/8小时光照12下。
    2. 白炽灯和荧光灯泡的组合可用于提供光生长室,并应提供至少550微摩尔 -2在植物冠层12-1光子通量。
  8. 再次移植到950厘米3罐 (每罐一株幼苗)Containing一个3:1:1:1混合灌封搭配:土:草炭:砂(也包括5克缓释肥料颗粒)时,克隆植物4厘米高,然后传回温室。
  9. 通过使用上述相同的方法克隆植物的第二时间 (即重复步骤1.5至1.8,然后继续到步骤2.1)。对于一个典型的时间过程的研究,产生克隆从每个waterhemp人口至少有六个独立的植物,并将其记录为线MCR 1-6 ACR 1-6和1-6 WCS。
    1. 为了重复实验和充分地代表每个waterhemp种群内的遗传变异建立至少六个不同“父”无性系。
    2. 取决于有多少时间点进行分析,产生足够的亚克隆从每个“母”克隆系进行时间过程研究。

2,开展与离体Waterhem一个代谢研究p叶

  1. 切除第三年轻叶(长度在2到3厘米;包括0.5厘米附叶柄)当克隆waterhemp植物10至12厘米高为除草剂代谢和DT 50分析。
  2. 切叶叶柄每个waterhemp厂第二次(确保0.3厘米叶柄仍然)在水中,然后将这些切割端进入1.5毫升塑料瓶(每瓶一片叶子)15。
    注意:切割下的水的第二时间可以防止形成气泡和堵塞木质部导管。
    1. 首先,部分1小时浸泡离体叶片与叶柄切在0.1米的Tris-HCl(pH值为6)预孵育缓冲液(200微升)。
    2. 其次,移动每个叶含有的孵育缓冲液(200微升)的0.1M的Tris-盐酸(pH值为6)加上150μM的[URL- 14 C〕除草剂一个新的1.5 ml的小瓶中,并孵育在28℃下1小时,以允许除草剂吸收到树叶。
      注意:两个14 C-硝磺草酮和-1。通过木质部蒸腾流扩散和摄取促进除草剂的每片叶子吸收的量。
      注意:代谢抑制剂的除草剂代谢的影响可以通过修改步骤2.2.1和2.2.2以上来确定。添加100μM的抑制剂预温育缓冲液中,让孵育2小时,然后转移到培养缓冲液用除草剂和再次添加100μM的抑制剂。例如,马拉硫磷和tetcyclacis抑制植物中15-17某些细胞色素P450活性。
    3. 洗切叶用离子交换水的浸入部分和切叶转移到四分之一强度Murashige和Skoog(MS)盐溶液(500微升)适用于0小时,5小时,11小时,23小时,或35小时,分别在生长室中的时间过程代谢研究。
  3. 嘉实除去休假使用的聚丙烯管(15毫升)和玻璃杵从在适当的时间点孵育溶液并手动小号研磨在液氮中的每个叶组织。
  4. 提取放射性标记的除草剂,并且从每个叶用7ml 90%丙酮的用实验室组织匀浆器在与上述相同的聚丙烯管及其​​代谢产物。冲洗组织匀浆用另外7 ml的90%丙酮中,并继续均质化,直至组织被完全粉碎(通常约2分钟)。注:90%丙酮可用于大多数除草剂的从植物组织中提取。然而,如果这种方法是无法提取超过90%吸收的放射性标记化合物,然后90%甲醇或90%乙腈,可被取代的作为萃取溶剂。
  5. 标签90%丙酮提取物(14 ml的总),并存储在-4℃下16小时,以允许额外的提取发生。
    注:在此之后的提取处理的叶片,提取弧度量ioactivity通常为至少98%的处理过的叶子吸收放射性标记化合物。在我们以前的研究12不可萃取的放射活性(结合残基)中切下叶平均只有0.3在所有时间点%,但该量可根据所使用的除草剂和时间点检查而变化。
  6. 在5000×g离心10分钟,离心的样品和在40℃下用旋转蒸发器浓缩上清液直至0.5 ml的终体积中获得。此卷转移到2.0毫升的塑料管。
  7. 添加乙腈:水(1:1,体积比)以调节植物的最终体积中提取到1.25 ml和重新离心机以10,000rpm离心10分钟,以除去任何颗粒。
  8. 测量总放射性(DPM微升-1)通过液体闪烁光谱法(LSS)12从每个样品中取等分试样并正常化的量[14 C标记]注射进行HPLC分析(例如化合物,10,000总DPM /样品/运行),因此y轴将结果作图时要样品中都采用统一。

除草剂代谢的切下的叶片3高效液相色谱分析

注:解决共提取到的放射性使用下面的RP-HPLC条件12父除草剂和除草剂的代谢物。

  1. 与C 18柱(4.6×250毫米,5微米颗粒尺寸为分析型HPLC)以1ml min的流速进行反相高效液相色谱法-1为大多数非极性除草剂。
    注意:C 4或C 12 RP-HPLC柱也可以被用来优化从它的代谢产物母体除草剂的分离。预柱过滤器和/或保护柱也可用于保护和延长RP柱的寿命。
    1. 使用下面的流动相为RP-​​HPLC:洗脱液A,在水中的0.1%甲酸(体积/体积),和洗脱液B 100%HPLC级乙腈。
      注意:HPLC级甲醇也可以用来作为埃尔为解决更多的极性化合物和代谢物uent B,但要注意保留时间也可能会更改。
      注:用于解决硝磺草酮或氟嘧磺隆,甲从极性代谢物在我们的研究12洗脱图:第1步,A:B(4:1,V / V)为A:B(3:2,V / V )中的线性梯度(12分钟);步骤2中,A:B(3:2,体积/体积),以A:B(3:7,V / V)中的线性梯度(5分钟);步骤3,A:B(3:7,V / V),以A:B(1:9,V / V)在2分钟的线性梯度(包括共19分钟)。
      注意:渐变和恒溶剂步骤可能需要基于该母材,以便优化分辨率的物理性质来进行调节。
    2. 遵循与甲上述线性梯度步骤:B(1:9,V / V),以A:B(4:1,体积/体积)中的线性梯度(3分钟)和A:B(4:1,V / v)的至少2分钟等度步骤()来注入下一个提取12之前重新平衡RP柱。
  2. 检测和可视化放射性标记的化合物与流Scintillation分析。记录母体除草剂其余各样品为总放射性的每一个样品中的百分比中的量(被检测,并根据制造商的说明由流动闪烁分析仪定量)的时间过程中,以确定在每个waterhemp人口除草剂代谢的速率。

4.统计程序

  1. 安排在一个完全随机设计(或用于统计分析其它合适的布置)的治疗方法。
  2. 执行两个独立的实验,每个治疗,由三个生物学重复每个实验。两个独立的实验,包括共有6个生物学重复。如果实验效果是非显著(α= 0.05),从每个独立的实验结合和分析数据。如果实验效果显著,然后分别分析每个实验。
    注:包括前三个生物学重复我ñ实验1和实验2接下来的三个生物复制每个生物复制代表一个独特的“家长”,从每个群体衍生的(MCR 1-6 ACR 1-6和WCS 1-6)无性系,使每个时间当然,分析利用经过基因相同的植物。在两个独立的实验包括六个生物复制总数,其允许的中值DT 50为每个waterhemp群体的遗传变异性和测定的足够的代表性。
  3. 分析具有非线性最小二乘回归分析的数据,并用一个简单的一阶曲线拟合它们以估计的DT 50秒。下面的公式描述模型:
    式(1)
  4. 其中在该模型中,y表示母体除草剂残留时间t的百分比,μi是对DT 50为每个waterhemp人口i和参数C 0是母体除草剂本在t = 0 12所估计的量。

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Representative Results

要么WCS或ACR和MCR(图1)之间进行检测大的差异在硝磺草酮的代谢速率。在每个时间点,MCR已经比二甲基磺草酮敏感的人群中,WCS和ACR,这与以前的全植物表型反应11更迅速代谢硝磺草酮。通过从每个群体一个亲本植物克隆足够的植物,除草剂代谢的时间过程的分析是一致的和可重复的,由于每次课程12内部缺乏遗传变异性。例如,该时间过程中克隆系5 12硝磺草酮代谢显示在图1中 ,总共有六个不同的无性系,从六个单独的亲本植物获得,从每个群体见表1)进行了分析,以确定总位数DT 50值,这表明,硝磺草酮代谢的MCR是显著快( 50值 ),比ACR或WCS 12。此外,我们先前的研究与切叶表明,细胞色素P450抑制剂在MCR和玉米显著降低硝磺草酮的代谢,但不是在ACR和在MCR检测到的主要代谢物最初被鉴定为4-羟基硝磺草酮,表明P450-增强率介导的代谢与阻力MCR 12相关联。

除了研究为在MCR硝磺草酮抗性机制,一个相关的目的是要确定在MCR ALS抑制剂的机制阻力。以前的研究表明,一亚群从MCR衍生为ALS抗性但不具备在ALS的目标部位基因中的突变,这表明一个非目标站点基于机构 13。这与ACR,其是ALS的耐对比度由于目标部位突变赋予一个不太敏感的ALS酶14。为了工商业污水附加费牛逼这个假设中,切下的叶片检测与[URL- 14 C]氟嘧磺隆,甲,磺酰脲类家族的ALS抑制性除草剂进行。的14 C-氟嘧磺隆-甲基中的代表性HPLC色谱图的峰面积(约21.6分钟的保留时间)为显著小在MCR比ACR和WCS在12 HAT( 图2)。此外,两个极代谢物具有较短的保留时间比氟嘧磺隆-甲酯,来自所有三个种群图2)切下的叶片提取物进行检测。虽然这两个极性代谢物的结构在本研究中没有确定的,他们的迅速形成与氟嘧磺隆-甲基8(第一阶段代谢),然后加入葡萄糖偶联5(第二阶段代谢)的环羟基化是一致的。

在与在MCR,ACR和WCS氟嘧磺隆代谢的定性分析结合图2),所述量父的除草剂残留在每个时间点进行定量,并用于确定在MCR(13.6小时),ACR(> 24小时)对DT 50值氟嘧磺隆-甲基和WCS(> 24小时)(图3)。在MCR的显著较短的DT 50值是增加新陈代谢的主要机制在这一人群中ALS性,符合之前的全植物研究13一致。然而有趣的是,对DT 50值氟嘧磺隆在ACR和WCS相似但显著长于MCR(图3),尽管两者的MCR和ACR显示ALS抑制剂耐药表型( 表1)。相对长的DT 50中的ACR是可能是因为这是没有必要迅速代谢氟嘧磺隆,因为ACR具有较少敏感的ALS酶作为它的主要阻力机构 14。总之,在我们的研究中使用的切waterhemp叶测定法得到有价值之四litative和定量数据,并提供新的见解代谢为基础的耐药机制朝着MCR,ACR和WCS两种不同的除草剂。

图1
图1:硝磺草酮代谢的切除waterhemp时间过程叶从无性克隆群体切下的叶子(第三年轻叶;长度在2到3厘米)从waterhemp秧苗(10到12厘米)的无性克隆,使得每个时间-过程研究每行包括基因,相同的植物。切下叶子置于在0.1M Tris-盐酸缓冲液(pH 6)中1小时,接着的0.1M的Tris-HCl(pH值为6)加上150μM的放射性标记的硝磺草酮1小时(“脉冲”),那么四分之一强度Murashige和斯库格(MS)盐溶液('追')为0小时,5小时,11小时,23小时,35小时,使新陈代谢发生。大た通过非线性最小二乘回归分析,适合用一个简单的一阶曲线分别估算一个DT 50为每个克隆waterhemp人口12 .The MCR克隆系迅速代谢硝磺草酮,而ACR和WCS无性系代谢硝磺草酮更慢。显示的数据来自只克隆5号线的每个waterhemp人口,这已经被修改我们先前的纸12(版权所有植物生物学家的美国社会)全日制课程。

图2
图2:在MCR,ACR和WCS(12 HAT)氟嘧磺隆-甲基代谢代表性的反相HPLC色谱图与从150μM的放射性标记的氟嘧磺隆-甲基(作为协议中描述)提供的切waterhemp叶提取物(12 HAT)麦克莱恩县(MCR,A),亚当斯县(ACR,B),一第二韦恩县除草剂敏感(WCS,C)的人口表1)。 21.6分钟的保留时间放射性峰含有氟嘧磺隆,甲,通过与一个真实的分析标准比较确定。峰具有较短保留时间氟嘧磺隆-甲酯的可能极性,更少的植物毒性代谢物,如羟基氟嘧磺隆-甲酯8或羟基化代谢物5,6-的糖基化形式。在MCR人口显示在父氟嘧磺隆-甲基相对于ACR和WCS,被量化为低级DT 50MCR(图3)的量的显著减少。

图3
图3:对氟嘧磺隆-甲基代谢的时间过程中切除waterhemp叶切下的waterhemp叶(锡尔D-最年轻的叶; 2至3厘米),如图1和我们以前的研究与硝磺草酮12中所述进行处理,不同的是150微米的放射性标记的氟嘧磺隆被包括作为“脉冲”和叶温育在MS盐溶液('追')为0小时,3小时和11小时。数据通过非线性最小二乘回归分析如前对硝磺草酮代谢1)12中所述进行分析。在MCR人口快速代谢氟嘧磺隆-甲基(DT 50 = 13.6小时),而ACR和WCS代谢氟嘧磺隆-甲基更慢(DT 50> 24小时)。

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Discussion

本文描述的切叶方法已在研究氟嘧磺隆代谢的玉米叶片15以前使用过,但我们的研究结果表明,该协议也是有效的,准确的,和可重复的测量除草剂代谢双子叶杂草12。与全株研究相比在切下的叶片技术的一个主要的优点是,一个切下的叶片是独立的芽后的全株易位型态,全身性除草剂或植物或人群中除草剂的吸收差异。此外,环境的变化被减小,因为切下的叶片测定法在生长室中进行,以单叶置于管中,以研究在温室条件下生长的整个植物进行比较。植物人克隆策略也包括在我们的方法来研究硝磺草酮耐药机制MCR 12,以尽量减少内很大程度的遗传变异,并吐温人口9。 杂草种群内遗传多样性是由变异记录在全植物对几户人家苗后除草剂18的数量说明。当进行时间过程研究以确定准确的DT 50秒和用于检测显著差异waterhemp群体12之间进行比较的DT 50值时,这些步骤(如在我们的切下的叶片和无性克隆协议所概述)是用于消除或减少遗传和环境临界变化性。

在植物中存在赋予抗除草剂1,2不同的机制。例如,为了ALS抑制除草剂waterhemp电阻可以是目标站点基于14或者非目标站点13基于。氟嘧磺隆-甲基图3)的代谢率清楚地显示在两个ALS抗性waterh这些差异EMP人群,MCR和ACR( 表1)。在用PCR扩增和除草剂靶位点的基因序列分析相结合,切叶测定法将大大有助于朝着识别waterhemp或其他双子叶杂草除草剂抗性是否通过目标网站或者非目标站点的机制2被赋予的。

我们切下的叶片方法的限制包括无法想象或测量整个工厂除草剂转方式,或者确定是否细胞或亚细胞封存机制存在赋予杂草2非目标站点基础性。如前面提到的,这方面也被认为是在硝磺草酮抗性杂草种群12确定精确除草剂代谢率时的优点,但反过来可以研究在植物中未显著代谢性除草剂时被认为是一个缺点非选择性草本植物icides)如草甘膦2,或接触的除草剂是非选择性自然杂草种群,如百草枯或草铵膦19。除草剂代谢然而,如果目标网站的机制没有初步揭示了再提高利率通常是考察明年1,4,特别是学习杂草抗性HPPD抑制除草剂比如硝磺草酮12时,ALS抑制除草剂如氟嘧磺隆,甲13 ,光系统II抑制除草剂如莠去津1,12,或乙酰-CoA抑制除草剂4。

色素P450已经患有ALS抗性在人口20,杂草草种,以及与硝磺草酮和ALS抗性MCR 12,13相关联。雌雄异株,双子叶杂草与waterhemp,芒苋(A. palmeri),也容易发展抗除草剂通过几种不同的机制1-3。随着越来越多的抗除草剂杂草种群和物种都记录在世界各地3,需要迅速检查除草剂代谢作为潜在的抗性机制将继续增加。将切下叶子的方法,这是明显的,但涉及到全株研究通常用于调查除草剂抗性的机制,是一个准确的和有价值的工具来评估和量化除草剂代谢的植物。其结果是,有能力以精确的,可重复的方法,包括切除的叶测定法将大大有助于研究人员在确定两个草4和双子叶杂草12非目标站点抗性机制进行这些分析。

这种方法的未来的应用还可以包括确定在双子叶作物如大豆和棉花除草剂代谢的速率。正在进行的研究在我们的实验室是抗除草剂大豆品种也利用了切除升电炉的方法。然而,由于大豆是豆类作物枳叶,一个“切叶柄'技术已经进行了调整和发展,使每个复叶可以通过主叶柄(斯凯尔顿,Lygin和Riechers,未发表的数据),通过摄取吸收放射性标记的除草剂。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Agar Sigma-Aldrich A1296 for pre-germinating seeds
Potting medium Sun Gro Horticulture 49040233 for plant growth
Nutricote Agrivert  TOTAL BLEND 13-13-13 T100 slow-release fertilizer
Growth chamber E15 Controlled Environments Limited 20207 plant culturing
Tris base Fisher Scientific BP152-500 buffer for excised leaves
HCl (concentrated) Fisher Scientific A144500 adjust pH of buffer
Murashige and Skoog (MS) salts  Sigma-Aldrich M0404 incubation of excised leaves
Methanol Fisher Scientific A452-4 leaf washes after incubation
Acetone Sigma-Aldrich 179124 plant extractions
Acetonitrile (HPLC grade) Macron Fine Chemicals MKH07610 HPLC mobile phase
Formic acid  Mallinckrodt Analytical MK259205 acidify mobile phase pH
Micro-centrifuge Eppendorf 5417R 1.5 or 2.0 ml tubes
Centrifuge (temperature controlled) Eppendorf 5810R 15 or 50 ml tubes
Polypropylene centrifuge tube Corning Inc. 430790 15 ml, sterile
Rotary evaporator BÜCHI R200 concentrate plant samples
Liquid scintillation spectrometry (LSS) Packard Instruments 104470 quantify 14C
High-performance liquid chromatography Perkin Elmer N2910401 resolve herbicide metabolites
Flow scintillation analyzer  LabLogic System 1103303 for HPLC analysis of 14C
Hypersil Gold C18 column  Thermo-Scientific 03-050-522  reversed phase
Ultima-Flo M cocktail Perkin Elmer 6013579 for Flow-scintillation analyzer
Scintillation Cocktail (ScintiVerse BD) Fisher Scientific SX18 for LSS; biodegradable
Laboratory homogenizer Kinematica CH-6010  homogenize leaf samples

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References

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测量除草剂代谢的双子叶杂草价格与切下的叶片分析
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Ma, R., Skelton, J. J., Riechers, D. More

Ma, R., Skelton, J. J., Riechers, D. E. Measuring Rates of Herbicide Metabolism in Dicot Weeds with an Excised Leaf Assay. J. Vis. Exp. (103), e53236, doi:10.3791/53236 (2015).

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