Introduction
סרטן שחלות אפיתל (EOC) הוא הגורם השכיח ביותר למוות ממאיר גינקולוגיות, עם אבחנות חדשות 21,290 המשוער בארה"ב בשנת 2015 ו 1 14,180 מקרי מוות. הרוב המכריע (> 75%) של נשים מאובחנים עם מחלה בשלב מאוחר (שלב III או IV) מאופיין גרורות תוך הצפק מפוזרות פרוגנוזה גרועה. ישנות מחל חלל הצפק בעקבות כימותרפיה כקו הראשון הן גם נפוצות ומייצג אחד גורמים עיקריים של 2,3 תמותה. EOC גרורה ידי מנגנון ייחודי המעורבים הוא המשך ישיר מן הגידול הראשוני לאיברים הצפק שכנות כמו גם על ידי ניתוק או שפיכת התאים מפני שטח גידול הראשוני כמו תאים בודדים או אגרגטים רבים תאיים. תאים הם לשפוך לתוך חלל הצפק, שבה הם להתנגד הנגרמת ניתוק אפופטוזיס 4. הצטברות של מיימת הצפק שכיחה, כפי תאים סרטניים לשפוך לחסום ניקוז לימפטי הצפק tumors לייצר גורמי גדילה אשר משנים חדירות כלי הדם. חלק של תאים סרטניים לשפוך לצרף אל פני השטח של איברים הצפק ומבנים כולל המעי, הכבד, omentum ו לפדר, ואז הם לעגן מתרבים כדי לייצר נגעים משניים מרובים לתפוצה רחבה 3,5. גרורות Hematogenous הן נדירות. לפיכך, ניהול קליני מורכב בדרך של ניתוח cytoreductive כולל "debulking אופטימלי", המוגדר כריתה של כל הגידול גלוי (לא משנה כמה קטן). Cytoreduction השלם קשור לעלייה משמעותית בהישרדות הכוללת 6,7 והיא קשורה עם האתגר של זיהוי והסרה של נגעים <0.5 סנטימטר.
במודלים של בעלי חיים קטנים הוכיחו שירות במחקר סרטן השחלות בשיפור ההבנה שלנו של התקדמות מחלה וכן יש להציג תעודת מזהה של סמנים פרוגנוסטיים ובדיקה של תרופות רומן או גישות טיפול משולב. ככל העיקריהאתר של שכיחות סרטן השחלות גרורות הוא חלל הצפק, מודלים orthotopic של גרורות EOC כרוך בניתוח ואפיון של המחלה intraperitoneal. למרות חלו שיפורים אחרונים ביכולת תאים סרטני תמונה, אפילו ברמה של התא הבודד, עדיין קיימים קשיים משמעותיים בכימות ניטל גידול גרורתי של EOC. אתגרים אלה נובעים בשל מספר, גודל ומיקום אנטומי של גרורות. יתר על כן קיים צורך לתאי סרטן התווית כדי להבדילם תאי מארחים נורמלים. מחקרים קודמים מנוצלים פרוטוקולי תיוג מבוסס נוגדן או transfection של תאים סרטניים עם 8,9 בלוציפראז. תיוג פלורסנט ישיר של תאים סרטניים דווח לראשונה על ידי Chishima ועמיתים לעבודה בשנת 1997 10. תוויות פלורסנט אינן דורשות תוספת של מצע אקסוגניים ולספק סגולי תאים סרטניים מעודן, מתן אמצעים יעילים יותר כדי לעקוב אחר גרורות סרטן 11,12
בזאת אנו מתארים שיטת הדמיה אופטית ניתוח כמותי של מחלה גרורתית באמצעות מודל xenograft orthotopic syngeneic המורכב חלבון פלואורסצנטי אדום (RFP) -tagged בתאי סרטן שחלות murine ID8 13 ועכברים חיסוני המוסמכות C57 / BL6. אנו מדגימים שיטה חדשה של כימות נטל הגידול היחסי שילוב in vivo לשעבר vivo הדמיה עם הסרת פלואורסצנציה אוטומטי רקמות. לגישה הזאת יש פוטנציאל השירות במחקרים שנועדו להעריך את ההשפעה של שינויים ספציפיים גנטיים, אפיגנטיים או מיקרו-סביבתיים ו / או שיטות טיפול על גרורות איבר ספציפי של סרטן השחלות.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
כל המחקרים vivo ב אושרו על ידי האוניברסיטה של טיפול בבעלי חיים נוטרדאם ועדת שימוש והשתמשו עכברות C57 / BL6J.
1. תרבית תאים Murine סרטן השחלות
- הפוך את מדיום תרבית תאי סרטן שחלות murine ID8 כדלקמן: 1 ליטר של בינוני הנשר השונה של Dulbecco (DMEM) השלים עם 4% עובריים שור סרום (FBS), 1% פניצילין / סטרפטומיצין, 5 מיקרוגרם / אינסולין מיליליטר, 5 מיקרוגרם / מיליליטר transferrin ו 5 ng / ml נתרן סלניט.
- Transduce תאים סרטניים בשחלות murine ID8 13 לבטא חלבון פלואורסצנטי אדום (RFP) באמצעות חלקיקי lentiviral רכש מסחרי מבטאי RFP ועם סמן בחירה (blasticidin גן). שים לב חלבון פלואורסצנטי ירוק ניתן להשתמש, אבל מספק אותות הקרינה חלשה.
- בסמוך לפני התמרה, תרבות תאים 50 - 70% מפגש ולהוסיף בינוני טרי (ללא פניצילין / סטרפטומיצין) הכולל 1 מיליליטר polybrene (5 מיקרוגרם / מיליליטר סופיריכוז).
- בעדינות פיפטה RFP-lentivirus (20 μl) dropwise לתוך צלחת לדגור על 37 מעלות צלסיוס למשך 72 שעות. הסר בינוני דגירה עם מדיום חדש למשך 24 שעות. להתחיל לבחור תאים transduced ידי הוספת blasticidin עד בינוני התרבות (5 מיקרוגרם / מ"ל), ויעקוב אחרי התאים האדומים באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי (figure1).
- תרבות התאים מתויג RFP במדיום ID8 ידי זריעה כ 10 6 תאים לתוך צלחת בתרבית רקמה באופן חזותי באמצעות ימי מיקרוסקופ אור עד monolayer התא הוא ומחוברות.
- כאשר ומחוברות, למסוק את התאים באמצעות טריפסין (0.25%, 3 דקות) ולחזור הבקבוק אל האינקובטור 37 מעלות צלסיוס עד שהתאים מנותקים.
- לנטרל את טריפסין עם 6 מ"ל של מדיום תרבות ID8 המכילה סרום. פיפטה מעלה ומטה כנגד בתחתית הצלחת, ולאחר מכן להעביר צינור חרוטי 15 מ"ל. צנטריפוגה ב 1200 סל"ד במשך 2 דקות, ולאחר מכן לשאוב את המדיום באמצעות GLפיפטה תחת.
- שוטפים את התאים עם בופר פוספט (PBS) על ידי resuspending בעדינות 6 מ"ל PBS חם צנטריפוגה כמו 1.5 לעיל. Re- להשעות ב PBS לריכוז סופי של 5 x 10 6 תאים / מ"ל. שמור את התאים חמים (37 מעלות צלסיוס) עד הזרקה.
2. תוך הצפק הזרקה של תאים ID8 בתחום ההדמיה vivo
- להזריק כל עכבר עם 2 מ"ל של הפתרון ID8-PBS חם עבור סכום כולל של 10 מיליון תאים באמצעות הזרקה תוך הצפק (IP). אפשר תאים סרטניים לגדול in vivo במשך כ -10 שבועות עם הדמיה חייה מדי שבוע.
- מיד לאחר ההזרקה ובכל שבוע לאחר מכן, לשקול את העכברים ואז להרדים כל העכבר באמצעות isofluorane (קצב הזרימה של 2.5% ב 0.5 L / min O 2 זרימה). הערה: עכברים נשקלו, ולא כמדד כמותי של נטל הגידול, אלא מדד כללי יותר של התקדמות פיזית עכבר הפרט לאורך כל תקופת המחקר. עכברים לשקולts הושוו עם ערכים למשקל הקודם שלהם.
- להרדים עכברים על ידי הנחת בתא isofluorane. לשמור על הרדמה קבועה בזמן סריקה על ידי מיצוב ראש העכבר בחרוט האף לחשיפה isofluorane קצב זרימה 2.5% לאורך כל ההליך.
- השתמש קרם מקריח כדי להסיר את השיער על הגוף והבטן של כל עכבר, כמו השיער השחור יגרום הנחתה של אות הקרינה. עכברים שטופים במים חמים לאחר היישום של קרם המקריח מיובש עם מגבות נייר RT.
- בעוד מורדם, לסרוק את כל הגוף של כל עכבר באמצעות מערכת דימות אופטי חיה קטנה. סרוק את כל העכברים במדגם בכל נקודת זמן. השתמש בפרוטוקול השני בשלב הבא (איור 2 א):
- בשלב 1, להתבונן שכותרתו fluorescently (RFP) תאים סרטניים, לבצע רכישה multispectral לגבות סך של 5 תמונות באמצעות מסננים עירור של 440 ננומטר, 460 ננומטר, 480 ננומטר, 520 ננומטר ו -540 ננומטר, ואת מסנן פליטה של 600 ננומטר. השתמש פרמטרי רכישת הבאים: חשיפה רמה 15 שניות, 2 x 2 binning, FOV של 160 מ"מ, f stop של 1.1.
- בשלב 2, להתבונן על חית כולה, לרכוש תמונת החזרה באמצעות מסנן עירור פתוח (אור לבן), מסנן פליטה פתוח, חשיפה סטנדרטית של 0.2 שניות עם binning 2 x 2 ו FOV של 16 סנטימטר. שים לב: בפעם הדמיה בפועל הוא ~ 1 דק '.
3. עכבר Dissection ו Image Acquisition
- כאשר הדמיה לחיות מראת הנוכחות של הצטברות תערוכה תוך הצפק מחלה או חיות נרחבות של מיימת (כפי שמעידים נפיחות בטנית), פסד או רווח של משקל גוף יותר מ -20%, עייפות או סימנים אחרים של מצוקה, להרדים כל עכבר באמצעות CO 2 הרדמה ואחריו נקע בצוואר הרחם.
- חותכים את העור anteriorly לאורך קו האמצע הגחון של העכבר, באמצעות dissectio מחודדn מספרי, מהחלק העליון של הירכיים לתחתיות כלוב הצלעות. קח בזהירות רבה כדי לחתוך רק את שכבת העור (איור 2Bi). בעדינות להפריד את העור מרקמת הצפק, להיות בטוח שלא לנקב את קיר הבטן.
- בעזרת מספריים לנתיחה מחודדים, לחתוך רוחבי הוא בחלק התחתון של כלוב הצלעות והחלק העליון של הירכיים ליצור שני קפלי העור (איור 2 ב II, III).
- מניח כל עכבר בצד הגחון שלו (חלל הצפק פונה כלפי מטה) עם שולי העור ופתח ולסרוק כל עכבר עם מוסדותיה באתרו באמצעות מערכת דימות אופטי חיה הקטנה (איור 3 א ', ב').
- השתמש באותו הפרמטרים רכישת תמונה כמתואר-2.4.2 2.4.1..
- המשך ביתור את העכבר על ידי לחילוץ איברים הצפק בודדים כולל כבד, omentum / לבלב, קיבה, סרעפת, מעי דק, מעי גס, שמאלה הצפק תקינים, שחלות, kidneys, לפדר ואת כרית השומן.
- שים לב, למנות, ולהקליט גידולים גלויים על כל איבר. השתמש קליפר למדוד את הקוטר של כל גידול.
- לייעד גידולים פחות מ -2 מ"מ קוטר קטנים, בין 2 ו -5 מ"מ כבינוני ו יותר מ -5 מ"מימ כמו גדולים.
- מניח את האיברים על תבנית סריקת איבר (איור 4) שמזהה במיקום קבוע מראש עבור כל איבר. השתמש PBS לשמור על האיברים לחים.
- סרוק כל גיליון של איברים באמצעות מערכת דימות אופטי חיה הקטנה (איור 3 ג, ד).
- השתמש באותו הפרמטרים רכישת תמונה כמתואר בשלב 2.4.
- לאחר סריקה, איברי המקום בפורמלין 10% כדי לאפשר עיבוד עוקב עבור היסטולוגיה.
כימות 4. נטל הגידול ב התמונות דואר קרינה
- על מנת להפחית את כמות קרינה אוטומטית בכל סריקת multispectral, ראשון unmix את הקבצים באמצעות תוכנה זמינה עם מערכת הדמית חיה הקטנה.
- טען תחילה RFP: בקובץ ספקטרלי Vivo, ואחריו Autofluor: בתיק האדום Vivo בחלון תמונות צרוף ובחר Unmix.
- לייצא את הקבצים .bip כמו 16 ביט .tiff (ללא שינוי) הפורמט.
- השתמש בתוכנת ImageJ (לשעבר vivo איברים ואז גוף העכבר המלא עם איברים באתרו).
- השתמש באפשרות קובץ> פתיחה כדי לפתוח את קבצי .tiff 16 ביט של קבצי תבנית סריקת איבר ImageJ.
- תחת תמונה> התאם> הבהירות / ניגודיות, לבחור להגדיר את המינימום מוצג ערך ל -0 ואת המקסימום הוצג ערך 35,353 ולאחר מכן, תחתשולחנות תמונה> בדיקה, בחרו רד הוט. הערה: מודלים של בעלי חיים שונים ידרשו רמות בהירות שונות, אך חשוב לשמור על הבהירות העקבית לאורך מחקר נתון.
- בעזרת כלי הבחירה Freehand, לצייר באזור צורה חופשית של מבחר עניין (ROI) סביב כל איבר ולהשתמש בכלי מדידה (CTRL + M) כדי לחשב את שטח הפנים של כל איבר; להקליט את שטח הפנים של כל איבר בגיליון אלקטרוני.
- עם ROI נמשך סביב כל איבר, קליק ימני בתוך ROI ובחר שכפלו לכלול רק האיבר.
- בעוד אני מסתכל על האיבר היחיד, תחת תמונה> התאם> סף, לבחור כדי לקבוע את הסף של התמונה לרמת סף תחתונה של + 1200 רמת סף עליונה של + 1700 בחר only האזורים הכי בהיר קורנים ולבדוק כדי לבחור רקע כהה; ובחר אישור. הערה: התמונות עשויות לדרוש מניפולציה ידנית של מחווני סף ImageJ כך שהאזורים הבהירים בעבר נבחרו לשלב ניתוח, כפי שפורטה לעיל. מודלי מחלה שונים ידרשו מגבלות סף שונות, אך חשוב לשמור על רמות הסף אחידות בכל מחקר נתון.
- תחת לנתח> לנתח חלקיקים, לשנות את גודל (פיקסלים ^ 2) עד 10-אינפיניטי, לבחור התכנית: מתאר, לבדוק כדי לבחור רק "הצג תוצאות" ולחץ על אישור כדי למדוד גם את תחומי וצפיפות משולבת הגלם של אזורים בהירים אלה, גידולים ייחשבו.
- רשום את הערכים של שטח פנים ואת הצפיפות המשולבת גלם של כל מבחר גידול המוצגים
- תחת לנתח> כלים> בר כיול, להוסיף סרגל מידת כיול לתמונות של האיברים. הערה: בדוגמה זו, זה נעשה על ידי שינוי מיקום עליון מימין, צבע המילוי השחור, צבע לייבל ווייט, מספר התוויות עד 5, עשרוני מקומות 0, גודל גופן 12 ואת זום פקטור ל -4.0 ולאפשר טקסט מודגש.
- תחת קובץ> שמירה בשם ..., שמור את מונטאז בתור .TIFF וכן JPEG.
- השתמש באפשרות קובץ> פתיחה כדי לפתוח את הקובץ בפורמט JPEG של האברים ולאחר מכן, תחת הוספה <תיבת טקסט
- השתמש באפשרות קובץ> פתיחה כדי לפתוח את כל 16 קבצי .tiff קצת סריקות הגוף המלאות ב ImageJ לפי סדר מספר עכבר.
- תחת תמונה> התאם> הבהירות / ניגודיות, לבחור להגדיר את המינימום מוצג ערך ל -0 ואת המקסימום הוצג ערך + 35,353 ולאחר מכן, תחת 'תמונה'> שולחנות בדיקה, בחרו רד הוט.
- תחת קובץ> שמירה בשם ..., שמור את מונטאז 'בתור. Tiff וכן JPEG.
ניתוח 5. נתונים
- מוסיף את אזורי בחירת גידול צפיפויות משולבות גלם, בהתאמה, עבור כל איבר של כל עכבר ולהקליט את אזור גידול איבר הכולל עבור כל עכבר.
- לנרמל באזור הקליט integrat גלםערכי צפיפות ed עבור הגודל של כל איבר על ידי חלוקת שטח הגידול הכולל וערכי צפיפות משולבים הכוללים גלם על ידי שטח פן איבר המתאים (טבלת 1).
- לחשב ולתכנן את הממוצע של שני אזורי משטח גידול המנורמלים ואת ערכי צפיפות המנורמלים גלם המשולב (איור 5 א ', ב').
- השוואת ערכים ממוצעים אלה לאלה שהושגו על ידי חזותית לספור את הגידולים שהיו גלויים לעין בלתי מזוינת במהלך הבדיקה של כל איבר עבור גרורות.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
המנגנון גרורתי של סרטן השחלות מאופיין גרורות תוך הצפק מפוזרים מאוד מורכבות נגעים רבים בגדלים שונים, כולל מספר קטן (<2 מ"מ) נגעים. לפיכך, השימוש של תאים סרטניים שכותרתו RFP (איור 1) ו דימות אופטי מספק שיטה חלופית כדי ספירה ידנית ומדידה של גודל הנגע. התפתחות נטל הגידול לאורך זמן ניתן לקבוע על ידי שקילה שבועית של עכברים ומדידה של ההקף הבטן כדי לאמוד הימצאות אפשרית של מיימת. דימות אופטי בשנת vivo מספק גישה משלימה להעריך נטל הגידול (איור 2). סרטן השחלות גרור לאתרים מרובים החלל הצפק ונהגים מולקולריים של גרורות באתר ספציפי כרגע לא ידועים. בנוסף קביעת ניטל גידול כולל, דיסקציה הזהירה הקרב הבא ניתן לבצע כדי להעריך ולכמת pa אתר ספציפי tterns של גרורות. לפיכך, דימות אופטי של איברים הצפק באתרם (איור 3 א ', ב') בשילוב עם הערכה vivo לשעבר של איברים בודדים (איור 3 ג, ד) יכול לספק מידע שימושי על הכולל לעומת נטל הגידול איבר ספציפי. הסריקות מוצגות באיור 3 מייצגות את תוצאות סריקת חללי הבטן ואיברי פרט של עכברים עם בדרגות שונות של ניטל גידול. לדוגמה, איור 3 ג מציג את נטל הגידול ביותר omentum / הלבלב, השחלות לפדר של א מאוס כשמשווים לאיברים אותם עכבר B, הבדל משמעותי האות נתפסת (איור 3D). השימוש בתבנית סריקת איבר (איור 4) מסייע זיהוי של ניטל גידול איבר ספציפי. תצפית של נטל הגידול ההפרש הוא אישר הן כמותית מבחינת שטח הפנים הגידול ואת עוצמת האות הגידול (טבלה 1, איור 5).
ss = "jove_content" FO: keep-together.within-page = "1"> התוצאות מוצגות דמויים אלה והשולחן נותחו באמצעות תצוגת מינימום ומקסימום בטווח שבין 0 ל + 35,353 כדי למנוע כל אותות חיוביים שגויים הקרינה אוטומטית ניתנה הנחה על ידי הרקמות. התארים המשתנים של אות שניתן לראות באיור 2 ו -3 להמחיש את המגוון הגדול של ניטל גידול כי ניתן הדמיה לכמת באמצעות שיטה זו. הנתונים בטבלה 1 מדגימים מגוון רחב זה של תחולה בכימות היא מבחינת שטח ואת עוצמת אות משטח גידול של הגידול. לדוגמא, כאשר מסתכלים על omentum / לבלב של עכבר בהשוואה לזו של העכבר B, שטח פן גידול המנורמל הוא 26 פעמים יותר מאשר עכבר העכבר ב יתר על כן, המגוון הרחב של עוצמת אות גם מודגם ב omentum / בלבלב של עכברים ו- B; הצפיפות המשולבת הגלם המנורמלת של עכבר גדולה 56 פעמים מזה של העכבר B. תוצאות אלו מראות את תוקפו של comparing בנטל גידול של בדיקה כמה נושאים ביחס אחד לשני, הן מבחינת שטח הפנים הגידול ואת עוצמת האות גידול, באמצעות שיטה מהירה זו שאינה דורשת ניתוח היסטולוגית נוספת.
איור 1. ID8 Murine השחלות תאים סרטניים אקספרס RFP. (א) תמונת שלב של תאי ID8. (ב) תמונה פלואורסצנטי של תאי ID8. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 2. דימות אופטי חיה של C56 / BL6 עכבר עם נטל הגידול תוך הצפק. (א) קרם מקריח שימש להסיר hai r מפני שטח הגחון של העכבר לפני הסריקה. (ב) תרשים המציג קו אמצע גחון ראשוני חתכים לרוחב. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 3. Endpoint סריקה של תוך הצפק גידול ברדן. (A, B) עכברים הם צילמו הראשון עם איברים באתרו (בצד הגחון למטה) לאחר פתיחת משטח הגחון של העכבר. (C, D) הדמיה של איברים בודדים. כל איבר הוא גזור, ניטל גידול חזותי מוקלט, והניח על תבנית סריקת איבר לניתוח.Target = "_ blank"> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 4. תבנית סריקת איברים. איברים גזורים מונחים על תבנית סריקת האיבר לשמור זיהוי מיקומית של איברים בודדים במהלך סריקה.
.. איור 5. מידע כמותי מנורמל עבור omentum / לבלב, שחלות לפדר הנתונים נותחו כמתואר בפרוטוקול וכפי שניתן לראות בטבלה 1 עכבר מתייחס העכבר שנסרק 3A לוח; עכבר B מתייחס העכבר שנסרק 3B לוח. (א) אזור הגידול מנורמל. ניתוח וכימות אותות הקרינה של שלושה גופים אלה נערך לכמת במונחים של יחסשל שטח פן גידול שטח פן איבר שלמים עבור שני העכברים. (ב) משולבת בצפיפות גלם מנורמלת. ניתוח וכימות אותות הקרינה של שלושה גופים אלה נערך לכמת במונחים של היחס בין צפיפות משולב גלם לאזור איבר משטח שלם עבור שני עכברים.
| Omentum / לבלב | |||
| אזור גידול מנורמל | צפיפות מנורמלת משולבת גלם | ||
| עכבר | .5346 | 5.11E + 07 | |
| עכבר B | .0203 | 8.97E + 05 | |
| שחלות | |||
| אזור גידול מנורמל | צפיפות מנורמלת משולבת גלם | ||
| עכבר | 4.79E + 07 | ||
| עכבר B | .0123 | ||
| לפדר | |||
| אזור גידול מנורמל | צפיפות מנורמלת משולבת גלם | ||
| עכבר | .2951 | 2.22E + 07 | |
| עכבר B | .0098 | 4.15E + 05 | |
אזור גידול בטבלה 1. מנורמל מנורמל גלםערכי צפיפות משולבים ב- omentum / הלבלב, שחל לפדר של שניהם עכבר ועכבר ב הודעה לנתיחה וסריקה, כל איבר היה מפולחים הקרינה שלה לכמת כדי לקבוע את שיעור גידול באזור שטח פן איבר הכולל ואת העוצמות של קרינה באזורי גידול אלה. Omentum / הלבלב, השחלות לפדר נבחרו כפי שעשו אותות הקרינה החזקה בתוך שתי קבוצות הביקורת חיוביות ושליליות.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
בניגוד למחקרים באמצעות תאי סרטן שחלות אדם חייב להתנהל בעכברי immunocompromised, הפרוטוקול המתואר לעיל מנצל מערכת חיסון תקין עכברי C57 / BL6 ותאי סרטן שחלות murine syngeneic. אמנם זה מאפשר הערכה של פוטנציאל התפקיד של מחלחל חיסוני התקדמות גידול וגרור, הנוכחות של שיער כהה על פני שטח הבטן הופכת הדמיה פחות רגישה. שימוש מקריח להסיר שיער לפני ההדמיה משפרת רכישת תמונה, אבל היא גוזלת זמן, במיוחד עבור ניסויים הדורשים הדמיה אורכת. 'עירום' עכברים חסרי שיער ניתן להשתמש בפרוטוקול זה ואינו דורשים הסרת שיער מקריחה מבוסס. יתר על כן, עכברים בעירום אין מערכת חיסון מתפקדת, כך יכולים גם להיות מנוצל כדי להעריך את הצמיחה של תאים סרטניים אנושיים השחלות בניסויים שבה התרומה של המערכת החיסונית היא לא תחת ניתוח.
ראוי גם לציין כי עומק intraperגידולי itoneal גם מציגים אתגרים טכניים, כמו דימות פלואורסצנטי אופטית לא בדרך כלל לגילוי גידולים בעומקים של יותר מ -5 מ"מ. יתר על כן, השכיחות של נוזל מיימת ואת הנוכחות של תאים סרטניים ascitic ליצור סיבוכים נוספים. ראינו השתנות העכבר אל העכבר משמעותי להיווצרות של נוזל מיימת, אפילו כאשר הוא מוזרק עם הקו הסלולרי אותו. כך בנוכחות מיימת, שיטה זו עדיפה לניתוח נקודת סיום של ניטל גידול איבר ספציפי ולא הדמיה אורכת שיגרתית של התקדמות. במקרה הנוכחי, שינויים דרמטיים נטל הגידול צוינו בין עכברים למשל, כאלה שליגיונותיו של ארבעה עד חמישה עכברים בדרך כלל יהיה מספיק לניתוח סטטיסטי. במקרה של הבדלים דרמטיים פחות ניטל גידול, שנבדקים בניסוי נוספים יהיו צורך להגיע כוח סטטיסטי. בעוד הדוגמאות המוצגות במסמך זה שונה באופן משמעותי נפח הגידול, דימות פלואורסצנטי אופטי ניתן להשתמש כדילזהות הבדלים הרבה יותר קטנים נטל גידול איבר ספציפי, במיוחד כשמשווה משקולות או מדידות מבוססות קליפר על נגעים קטנים (לא מוצגות) .Resolution והרגישות תשתנה בהתאם לקו תא ומערכת הדמיה. במקרה הנוכחי, שתלים גרורתי קטנים כמו 400 מיקרומטר בקוטר ניתן לפתור לכמת. שיטות חלופיות כוללים טומוגרפיה ממוחשבת משופרת ניגודיות (CT), תהודה מגנטית (MR) הדמיה, טומוגרפיית פליטת פוזיטרונים (PET) תוארו עבור הדמיה אורכת 14,15. Modalities כולל הדמיה אנטומית ופונקציונלית משולבת גם בפיתוח 16.
בשנת לגבי השיטה המוצעת זה כימות של נטל הגידול, יש לציין כי קביעת ספי הקרינה [שלב 4.3.5.] מבוסס על עוצמת הקרינה לראות את התמונות איבר [שלב 4.3.2.] והוא נבחר על ידי המשתמש לכלול רק את האזורים פלורסנט ביותר relative לשאר האיבר. ערכי סף שונים שימשו בניתוח לפני קביעת ערכי סף הסופי נעשה שימוש במחקר זה. לאחר שנקבע, ספי אותם שימשו כל איבר נותחו על מנת להבטיח עקביות כימות של מה נחשב רקמת גרורתי ידי ניתוח ויזואלי הראשוני נעשה על ידי החוקר. קביעת ערכי סף אלו הוא שלב קריטי בהליך ועלול להשתנות מפרויקט אחד למשנהו כפי שנקבע על ידי החוקר הפרט. במקרה זה, רף נמוך יותר גדול שימש כדי ללכוד רק את אותות הקרינה בעוצמה הגבוהה ביותר. באמצעות סף אותו עבור כל איבר המנותח, ניתוח התוצאות להציע תוצאות כמותיות השוואתיות בהקשר של קבוצה זו של עכברים. למרות ששיטה זו היא מוגבלת כימות של הערכים המוחלטים של שטח הפנים הגידול, זה מאפשר לחוקרים את היכולת להשוות נטל הגידול מנורמל ביחס בין א אותוnd איברים שונים בתוך קבוצות של עכברים. יצוין כי גישה זו כוללת כימות של גידולים שאינם גלויים לעין בלתי מזוינת.
המנגנון גרורתי הייחודי של תוצאות EOC ב carcinomatosis intraperitoneal לתפוצה רחבה המעורבות מספר רקמות ואיברים, טיוח ניתוח cytoreductive אופטימלי מאתגרת מבחינה טכנית. כפי cytoreduction המלא בקורלציה חיובית עם הישרדות כוללת, המסקנה היא כי פיתוח של אסטרטגיות טיפוליות חדשות כדי להילחם גרורות תוך הצפק היא מוצדקת. הערכת היעילות הטיפולית, לעומת זאת, היא תלויה quantitation מדויק של נטל הגידול, כולל הערכה של גרורות איבר ספציפי. באמצעות דימות אופטי של תאים סרטניים מתויג RFP באתרו תיקן autofluorescence איבר, בשילוב עם הדמיה איבר vivo לשעבר זהיר, פיתחנו גישה לכמת נטל הגידול איבר ספציפי intraperitoneal. מעניין לציין, כי הניתוחים שלנו מראיםהאתרים המועדפים של גרורות במודל זה, כפי שהוגדר על ידי אזור נטל הגידול / משטח, הם דומים לאלה שנמצאו אצל נשים עם סרטן שחלות (omentum, השחלה, המעי, לפדר) 2,4,5. לכן גישה זו צריכה להיות כלי בעתיד בהערכה רפויה הניסיונות שנועד למקד מחלה גרורתית.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
מאמר זה הוא חלק של גיליון מיוחד בנושא מולטימודליות טרום קליני הדמיה, בחסות Bruker Biospin.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dulbecco's Modified Eagle Medium | Corning | 10-014-CM | |
| Fetal bovine serum | Gibco | 10437-028 | |
| penicillin/streptomycin | |||
| Insulin-transferrin-sodium selenite media supplement | Sigma | I-1884 | |
| Bruker Xtreme small animal imaging system | Bruker Corp. | ||
| Bruker Multispectral software | Bruker Corp | ||
| lentiviral particles with Red fluorescent protein | GenTarget, Inc. | LVP023 | |
| trypsin for cell culture | Corning | 25-053-CI | |
| PBS | Corning | 21-040-CM | |
| depilatory cream (such as Nair Hair Remover Lotion) | purchases from drugstore | n/a | |
| ImageJ software | http://imagej.nih.gov/ij/ | free download | |
| dissecting tools (forceps) | Roboz Surgical Instrument | RS 5130 | |
| dissecting tools (Scissors) | Roboz Surgical Instrument | RS 5910 |
References
- American Cancer Society. , Available from: http://www.cancer.org/cancer/ovariancancer/overviewguide/ovarian-cancer-overview-key-statistics (2015).
- Lengyel, E. Ovarian cancer development and metastasis. American Journal of Pathology. 177 (3), 1053-1064 (2010).
- Halkia, E., Spiliotis, J., Sugarbaker, P. Diagnosis and management of peritoneal metastases from ovarian cancer. Gastroenterology Research and Practice. 2012, 541842-541854 (2012).
- Barbolina, M. V., et al. Microenvironmental regulation of ovarian cancer metastasis. Cancer Treatment and Research. 149, 319-334 (2009).
- Lengyel, E., et al. Epithelial ovarian cancer experimental models. Oncogene. 33 (28), 3619-3633 (2014).
- Harter, P., duBois, A. The role of surgery in ovarian cancer with special emphasis on cytoreductive surgery for recurrence. Current Opinion in Oncology. 17 (5), 505-514 (2005).
- Bristow, R. E., Puri, I., Chi, D. S. Cytoreductive surgery for recurrent ovarian cancer: a meta-analysis. Gynecologic Oncology. 112 (1), 265-274 (2009).
- Hoffman, R. M. In vivo imaging of metastatic cancer with fluorescent proteins. Cell Death and Differentiation. 9, 786-789 (2002).
- Sweeney, T. J., et al. Visualizing the kinetics of tumor-cell clearance in living animals. Proceedings of the National Academy of Science USA. 96, 12044-12049 (1999).
- Chishima, T., et al. Cancer invasion and micrometastasis visualized in live tissue by green fluorescent protein expression. Cancer Research. 57, 2042-2047 (1997).
- Bouvet, M., et al. Real-time optical imaging of primary tumor growth and multiple metastatic events in a pancreatic cancer orthotopic model. Cancer Research. 62, 1534-1540 (2002).
- Hoffman, R. M. The Multiples Uses of Fluorescent Proteins to Visualize Cancer in vivo. Nature Reviews. 5, 796-806 (2005).
- Roby, K. F., et al. Development of a syngeneic mouse model for events related to ovarian cancer. Carcinogenesis. 21 (4), 585-591 (2000).
- Rampurwala, M., Ravoori, M. K., Wei, W., Johnson, V. E., Vikram, R., Kundra, V. Visualization and quantification of intraperitoneal tumors by in vivo computed tomography using negative contrast enhancement strategy in a mouse model of ovarian cancer. Translational Oncology. 2 (2), 96-106 (2009).
- Kim, T. J., et al. Antitumor and antivascular effects of AVE8062 in ovarian carcinoma. Cancer Research. 67, 9337-9345 (2007).
- Picchio, M., et al. Advanced ovarian carcinoma: usefulness of [(18)F]FDG-PET in combination with CT for lesion detection after primary treatment. Quarterly Journal of Nuclear Medicine. 47, 77-84 (2003).
