Introduction
До недавнего времени, послеродовой поколение новых кровеносных сосудов считалось происходить исключительно через процесс, известный как ангиогенез, определяется как прорастание новых сосудов из эндотелиальных клеток уже существующих сосудов. 1 Этот процесс контрастирует с васкулогенеза или де Ново образование кровеносных сосудов из эндотелиальных клеток-предшественников, которые, как считалось, происходит исключительно в процессе эмбриогенеза. 2 Тем не менее, более поздние исследования идентифицировали и выделили циркулирующие эндотелиальные клетки-предшественники (ЕРС) в периферической крови взрослых. Эти клетки обладают способностью дифференцироваться в зрелые эндотелиальные клетки в культуре и, как полагают, участвуют в послеродовой васкулогенеза. 3,4
Протоколы для изоляции и расширения этих ЕРС обычно включают культуру мононуклеарных клеток периферической крови (PBMNCs) в среде, содержащей эндотелиальные факторы роста, в том числе vasculAR-эндотелиальный фактор роста (VEGF) и фактор роста фибробластов-2. 5-8 культуры EPC производить различные резко различных типов клеток. Исходные культуры (<7 дней) преобладают моноцитов типа клеток, известной в литературе как "ранних" ЕРС. Несмотря на свое название, эти клетки выразить моноцитов маркер CD14, отрицательные для маркера предшественников CD34 и выразить только минимальные уровни классической маркеров эндотелиальной CD31 и VEGF рецептора 2 (VEGFR2). 5 Продолжение культура порождает вторичный популяции клеток, известный как вырост конце ЕРС или вырост крови эндотелиальных клеток (BOECs), которые появляются, как сдержанный колонии эндотелиальных клеток, как. В отличие от ранних моноцитарных ЕРС, BOECs, которые также называют эндотелиальные колониеобразующих клеток (ECFCs), эндотелиальные клетки вырост или поздно вырост эндотелиальные клетки, проявляют морфологию булыжника, что характерно для эндотелиальных клеток монослоя и очень похожи на поверхности маркера5 и экспрессия генов 9, чтобы созреть эндотелиальные клетки.
Генерирование эндотелиальных-подобных клеток из периферической крови имеет ряд преимуществ, в частности, для изучения дисфункции эндотелиальных клеток, связанного с сосудистыми расстройствами, такими как легочной артериальной гипертензии (ЛАГ) 10 или болезнью Виллебранда. 11 До наличия BOECs, эндотелиальной клетки могут быть получены только из эксплантированных органов на момент смерти или трансплантации органов или изолированные от пупочной вены при рождении. Это снижение доступности представляет собой серьезное ограничение с пониманием биологии эндотелиальных клеток у пациентов с сердечно-сосудистыми расстройствами, а также взаимодействия между эндотелиальными клетками и клетками крови либо или настенной клеток. Кроме того, выделение и культивирование чистую популяцию клеток эндотелия из этих источников является технически сложным и клетки, полученные с помощью этих методов обладают лишь Limiteд пролиферативный потенциал. Поэтому BOECs предложить ценный суррогат для изоляции и культуры первичных клеток пациента эндотелиальных происхождение.
В дополнение к их применения в пробирке, BOECs также являются потенциально полезными в аутологичных клеток трансплантации терапии. Эти приложения включают в себя как трансплантация клеток эндотелия для продвижения новых сосудов (см 12 и ссылки в нем), а также генерацию индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК). 13 BOEC-полученные иПСК могут быть использованы для моделирования заболеваний и предлагают огромный потенциал в качестве исходного Материал для аутологичных клеток терапии. BOECs перепрограммировать быстрее и с большей эффективностью, чем фибробластов кожи. Кроме того, BOECs также позволит для генерации ИПСК, которые свободны от КАРИОТИПИЧЕСКУЮ аномалий, который является неотъемлемой чертой любой технологии, которая подойдет для трансляционных приложений. Способность генерировать ИПСК из образца крови пациента аLSO устраняет необходимость в биопсии кожи и образование фибробластов кожи, тем самым облегчая генерацию клеток от пациентов с заживлением ран расстройств, или очень молодые.
Протокол подробно ниже, утвержденным и проводится в соответствии с руководящими принципами Национального комитета по этике научных исследований службе (Восточная Англия), обеспечивает простой и надежный способ для генерации BOECs с более чем 90% эффективности от относительно небольшого объема (60 мл) периферической крови. Эти клетки обладают высокой пролиферативной и может быть повторно пересевают, позволяя для генерации сотни миллионов клеток из одной пробы крови.
Protocol
Схема протокола BOEC поколения показана на рисунке 1.
1. Кровь Сбор и центрифугирования в градиенте плотности
- Для каждого донора, добавить 3 мл раствора цитрата натрия к каждому из двух конических 50 мл центрифужные пробирки. Сбор 60 мл крови из вены и добавить 30 мл в каждую пробирку. Обратить мягко 2-3 раза перемешать. Используйте как 40 мл крови в протоколе, с объемами цитрат соответствующим образом скорректированы.
Примечание: Очень важно, чтобы образцы крови обрабатываются в течение 2 ч сбора. Задержка обработки результатов крови в существенному сокращению в вырост выход колоний. - Подготовка новых конические пробирки, содержащие центрифугирования в градиенте плотности среды сначала перевернув бутыль несколько раз перемешать. В стерильных капот, добавьте 15 мл центрифугированием в градиенте плотности среды в 50 мл коническую пробирку (трубку 1 на каждые 10 мл крови, 6 труб в донора).
- Развести крови 1: 1 с фосфатом Дульбекко-Buffered Соленая (DPBS). Наклоните пробирку, содержащую центрифугирования в градиенте плотности среды до угла 20 ° с рабочей поверхности. Использование помощи пипетки и 25 мл серологической пипеткой медленно слой 21 мл разбавленной крови в верхней части среды, постепенно добавляя кровь вниз к стенке трубки наклонной.
Примечание: Это позволит свести к минимуму перемешивание крови с градиентом плотности слоя и будет производить более плотное поглощающее покрытие, а также улучшенную выход. - Центрифуга образцов при 400 мкг в течение 35 мин при комнатной температуре с ускорителем и вынул.
- В течение этого периода центрифугирования, начать коллагена покрытие, описанную в шагах 2.1 - 2.4. Убедитесь, эти шаги были завершены, прежде чем приступить к шагу 3.1.
2. Коллаген Покрытие Т-75 колбу и подготовки питательной среды
ПРИМЕЧАНИЕ: Выполните следующие шаги в капот культуре клеток.
- Подготовка 50 мкг / мл раствора коллагена путем разбавления акции Tyре коллагена в 10 мл 0,02М уксусной кислоты. Пример: для коллагена складе в концентрации 4,05 мг / мл, добавляют 123,5 мкл коллагена 10 мл 0,02 М уксусной кислоты. Стерильный фильтр коллагена подвески перед использованием.
- Использование серологических пипетки, добавьте 7,5 мл раствора коллагена в культуре клеток колбу Т-75. Этот объем дает 5 мкг коллагена / см 2 (или 375 мкг / колбу). Шерсть колбу в течение 1 часа при комнатной температуре.
- Подготовка эндотелиальных среду роста, используемый для BOEC поколения, дополняя эндотелия базальной среды дополнений фактора роста, предоставляемых производителем. Добавить все добавки, но не добавлять сыворотку. Для приготовления 15 мл среды BOEC поколения, добавить 2,5 мл определенного фетальной бычьей сыворотки (FBS) до 12,5 мл эндотелиальных среды роста, содержащей добавки фактора роста.
- Продолжайте действия, описанные в разделе 3. После периода покрытия 1 час, аспирации раствора коллагена и смыть остаточных уксусной кислоты с помощью пипеткив 10 мл DPBS. Аспирируйте от DPBS и повторить этот шаг мыть еще раз. Если полученной клеточной суспензии во время этапа 3.3 не готов для посева в это время, добавьте 5 мл среды BOEC поколения в колбу, чтобы сохранить коллагена покрытие от высыхания.
3. Сбор и покрытие из PBMNCs
- После центрифугирования в градиенте плотности указано в пункте 1.4, тщательно собрать Баффи пальто слой, используя стерильный пластиковый пипетки передачи. Сбор и светлый сгусток должен давать примерно 20 мл суспензии клеток и плазмы из каждой пробирки. Избегайте передачи градиента плотности среды.
- Развести подвеску мононуклеарных клеток 1: 1 в DPBS и инвертировать перемешать. Центрифуга при комнатной температуре в течение 20 мин при 300 х г с тормозом и ускорителем на максимум.
- После центрифугирования, аспирация супернатант и ресуспендирования клеток путем добавления 1 мл среды BOEC поколения на каждую гранулу и пипетки вверх и вниз несколько раз. Бассейн клеточные суспензиид долить общий объем до 10 мл с оставшейся среде.
- Чтобы получить оценку общего числа клеток, образец 10 мкл клеточной суспензии и разбавленной 50x с 490 мкл раствора Турка, которые будут лизировать красные кровяные клетки. Граф 10 мкл образца разведенной суспензии клеток с использованием гемоцитометра.
ПРИМЕЧАНИЕ: 60 мл крови должно дать около 100-150 х 10 6 белых кровяных клеток для обшивки. - Пластина подвески все клетки в единую коллагена покрытием Т-75 колбу, пополнить объем среды 15 мл, чтобы / колбу и культуры при 37 ° С в увлажненной атмосфере, содержащей 5% CO 2. Клетки высевали в это время представляют проход 0.
ПРИМЕЧАНИЕ: Можно заморозить изолированных PBMNCs до BOEC изоляции для того, чтобы вывести на BOECs на более позднее время или для того, чтобы транспортировать PBMNCs в другой лаборатории, где BOECs могут быть сформированы. Тем не менее, важно отметить, что замораживание может PBMNCs снижают эффективность изоляции BOEC. SEE раздел 8 ниже способом.
4. Долгосрочное Культура клеток
- Изменение средней каждые 2 дня, добавив 15 мл свежей среды BOEC поколения (5: 1 смеси эндотелиальной среде для роста клеток и определили FBS). Для выходных, средние изменения может быть отложено на каждые 3 дня.
ПРИМЕЧАНИЕ: вырост колонии должны появиться между 7 и 14 дней культуры. - Монитор BOEC культуральной колбы на 7-14 дней для появления вырост колоний. Определить колонии в виде круговых групп клеток, проявляющих классический эндотелия булыжника морфологию.
- После того, как колонии или несколько колонии идентифицировали в колбе, продолжают со средними изменений и позволить расти колонии примерно 1000 до 2000 клеток на колонии, прежде чем пассирования. Определить количество клеток на колонию через грубой визуальной оценки.
ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве руководства, это общепринято, чтобы прохода начальных колоний вырост одну неделю после идентификации первого вырост колонии. <Li> смешанные клетки путем промывки колбы дважды 10 мл DPBS. Добавляют 5 мл 1X трипсина-ЭДТА и инкубировать в 37 ° C инкубаторе в течение 5 мин. Через 5 мин, нейтрализуют трипсин с 10 мл среды (содержащей FBS) и довести клеток в суспензии с повторным пипетированием. - Центрифуга суспензии при 300 мкг в течение 5 мин, ресуспендируют в 15 мл свежей среды BOEC поколения и пластины весь клеточной суспензии в новый Т-75 колбу (представляющего прохода 1, P1). Нет коллагена покрытие не требуется.
- Продолжить среднего изменения, как описано выше, пока клетки не сливающихся (примерно 3-5 × 10 6 клеток на колбу). После сли ни, клетки проход, как описано в шаге 4.3.
ПРИМЕЧАНИЕ: Из прохода 2 года, клетки больше не требуется среду BOEC поколения и может культивироваться в эндотелиальных клеток ростовой среды и 10% стандартной инактивированной нагреванием FBS. Коллаген покрытие может быть использован в качестве необязательный шаг идти вперед, так как есть основания полагать, что наличие коллагена может повысить BOEC proliferAtion ставки. - Для дальнейшего пассирования, плиты не менее чем 750000 клеток на Т-75 колбу, как плотность низкая клеток могут привести к BOECs, чтобы остановить пролиферирующих.
5. Замораживание и оттаивание BOEC Культуры
- Trypsinize клетки, как описано в разделе 4.3 и центрифуге при 300 мкг в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и ресуспендируют в 10 мл среды. Это не требует эндотелиальных клеток ростовой среды; DMEM с 10% FBS стандартных будет достаточно. Сбор 10 мкл образца суспензии клеток, чтобы выполнить вручную количества клеток с помощью гемоцитометра.
- Центрифуга снова ресуспендируют в и 2х10 6 клеток / мл в охлажденном льдом криоконсервации среды (40% DMEM с 50% FBS и 10% ДМСО). Добавить 0,5 мл (10 6 клеток) в каждом флаконе, место флаконы в ледяной холод изопропанол криоконсервации судна и места в -80 ° C морозильник по крайней мере 2 часа прежде, чем перейти к жидким азотом. Не оставить клетки при -80 ° С в течение более 24 часов. Для таять клетки, добавить 10 мл подогретого среды в 15 мл коническую центрифужную пробирку.
ПРИМЕЧАНИЕ: При оттаивать Прохождение 1 клеток, оттепель в эндотелиальных клеток ростовой среды, дополненной 20% FBS, определенной в течение первых 2 дней после оттаивания. Это приводит к изоляции более стабильной клеточной идти вперед. - Удалите клетки от жидкого азота и оттепели в 37 ° C бане воды с перемешиванием до тех пор, нежной лишь небольшое кристаллов льда осталось во флаконе. Добавить содержимое флакона по каплям к конической центрифужную пробирку и спин вниз в 300 мкг в течение 5 мин.
- Аспирируйте супернатант и осадок ресуспендируют клеток в 10 мл EGM-2 мВ + 10% FBS. Добавить в Т-75 колбу и пополнить среды до 15 мл.
6. Характеристика BOECs с помощью проточной цитометрии
- После того, как BOEC колонии, описанные в разделе 4 было разрешено расширить, Trypsinize клетки, как описано в разделе 4.4 и ресуспендируют при концентрации 10 6 клеток на мл в буфере окрашивания (DPBS остроумиеч 2% FBS и 2 мМ ЭДТА).
- Комбинат 10 5 клеток флуорохромом конъюгированного антител, направленных против CD45, CD14, CD34, CD31 (использовать все в 1:20 разбавления) или VEGFR2 (разбавить 1:10) (см таблицу 1 для получения подробной информации). Инкубировать в течение 30 мин при 4 ° С в темноте.
- Промыть клетки с 1 мл окрашивающего буфера и центрифуге при 300 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и ресуспендируют в 400 мкл буфера для окрашивания для анализа. Сохранить клетки при 4 ° С в защищенном от света перед анализом.
- Выполнение цитометрии анализ на цитометр возможности для выявления флуоресцентно конъюгированных антител, используемых в анализе.
- Использование неокрашенной BOEC образец для идентификации клеточной популяции на цитометр, регулируя вперед и боковое рассеивание напряжений, а также напряжения для каналов FITC и APC.
- Определить стробирования пороги, используя изотипа окрашенных клеток для каждого флуорохромом. Оценка позитивности для каждого маркера клеточной поверхности на основе presencе пиковой сдвига в интенсивности флуоресценции по сравнению с контролем изотипа для флуорохромом анализируются.
7. Характеристика BOECs по иммунофлуоресцентных микроскопии
- Пластинчатые BOECs в 24-а, плоским дном планшета для культуры ткани без покровных при плотности 5 х 10 4 клеток в 500 мкл эндотелия среде роста клеток + 10% тепла инактивированной ФБС на лунку и оставить придерживаться и расти при 37 ° С, 5% СО 2 до клеток охватывать по крайней мере 70-80% площади поверхности каждой лунки (оценка слияния путем визуального осмотра под световым microsope).
- Вымойте клеток в каждой лунке в течение 5 мин с 1 мл DPBS.
- Исправление клетки O / N при 4 ° С с 500 мкл 4% -ного раствора параформальдегида в DPBS.
- Промыть клетки в течение 3 х 5 мин с 1 мл на лунку DPBS. Добавить и удалить DPBS помощью пипетки и аспиратор, соответственно.
- Проницаемыми клеток для 3 х 10 мин с 0,2% полисорбата 20 в DPBS. Инкубируйте клетки в течение 1 часа при комнатной температуре в блокирующем буфере, содержащем 10% FBS в DPBS.
- Пятно клетки при 4 ° CO / N в 300 мкл буфера для разведения антител (0,1% бычьим сывороточным альбумином в DPBS), содержащей первичные антитела, направленные против CD34 (10 мкг / мл), CD144 (1: 300) или фактора Виллебранда (1: 250) , В таблице 1 для получения полной информации.
- Смыть несвязанных первичных антител в течение 5 х 10 мин с DPBS.
- Инкубируйте клетки в течение 1 часа при комнатной температуре с соответствующим флуоресцентно-меченного вторичного антитела, как указано в таблице 1 (все в 1: 200).
- Смыть несвязанных вторичных антител в течение 5 х 10 мин с DPBS.
- Инкубируйте клетки с 1 мкг / мл 4 ', 6-диамидино-2-фенилиндол (DAPI) в DPBS в течение 10 мин при комнатной температуре.
- Промыть клетки с DPBS в течение еще 3 мин х 5.
- Клетки изображение в 100-кратном увеличении, используя инвертированный микроскоп оснащен внешним источником света для возбуждения флуоресценции, и захват изображения с помощью приложитьред цифровая камера для последующего анализа в автономном режиме.
8. замораживание и оттаивание PBMNCs
- В конце стадии 3.2, После центрифугирования аспирата среды и вручную разрушить осадок клеток с повторным пипетированием вверх и вниз с помощью пипетки P1000 наконечник. Добавить 1 мл замораживания среды, 90% сыворотки и 10% ДМСО, убедившись, что аккуратно перемешать, чтобы произвести клеточной суспензии. Передача клеточной суспензии криопробирку и размораживать, как описано в разделе 5.
Representative Results
Выделение охристыми пальто мононуклеарных клеток из 60 мл крови, как правило, дает 100-150x10 6 Всего белых кровяных клеток. При покрытием в один Т-75 колбу, большое количество клеток в клеточной суспензии unlysed делает его трудно решить отдельные прилипшие клетки с помощью микроскопии светлого. Повторные средние изменения приводят в оформлении неадгезивных клеток и позволяют визуализации клейкой населения моноцитарно "ранних" ЕРС. На 7 день, Т-75 будет содержать примерно 7х10 6 из этих удлиненных адгезивных клеток. С 7 день до 14, колонии BOECs должен появиться в колбе (рис 2А). Колонии сначала появляются в 3 до 5 смежных клеток. Вырост номер колония может варьироваться от 1 до 10 колоний на 60 мл крови. Как правило, молодые доноры (т.е. 20-25 лет), как правило, для получения большего числа колоний выроста, которые также появляются в начале культуры.BOECs пролиферируют из этой центральной группы клеток образовывать колонии, состоящие круговые нескольких сотен клеток. Клетки в этих колониях демонстрируют классический эндотелия булыжника морфологию.
Желательно, чтобы прохода исходных колоний, когда они содержат около 1000 клеток на колонии. Вырост колонии обычно достигают этого размера через 7 дней после их первоначального вида в культуре. После того, как первоначальные колонии пересаживали в новую Т-75 колбу, они должны распространяться, чтобы сформировать сливающийся монослой на (3-5x10 6 клеток на колбу) в течение 5 дней или меньше (Рис 2B). В небольшой процент выделений (<10%), вырост колонии не появляются, или не размножаются достаточно после этого первого шага пассирования. BOECs, которые обладают низкой пролиферации после первого пассирования редко идут дальше, чтобы стать стабильными BOEC изоляция и часто останавливаются пролиферирующих в течение двух-трех проходов. МоноцитарныхРанние ЕРС, содержащиеся в BOEC культур непролиферативная и, как правило, очищается от культур в течение 1-2 пассажей. Оформление этих ранних клеток-за гибели клеток, отказ начале клеток повторно придерживаться после пересева и разбавление не-пролиферативных начале ЕРС повторного пассирования с.
Прохождение 1-клетки могут быть либо пассируют далее в культуре или замораживали для дальнейшего использования. После того, как выделение стабильно генерируется, клетки не могут быть пассировать в размере 1 сливной колбу на 3-5 новых Т-75 колбы вплоть до прохода 8 или 9, прежде чем стать покоя. Опять же, плотность клеток является критическим всей культуры. По нашему опыту, не менее чем 750000 клеток следует высевали в Т-75 колбу, как снижение плотности клеток может привести к аресту роста. Несмотря на высокую пролиферативный потенциал BOECs клетки также не следует допускать того, чтобы overconfluent (т.е..,> 5x10 6 клеток на колбу), так как это может привести к чаты ион BOECs к непролиферативной фенотипа.
Мы полагаем, что любая клетка быть помечены как BOEC должен отображать соответствующую поверхность клеток и внутриклеточного окрашивания эндотелиальных маркеров. Характеристика BOECs может быть достигнуто с помощью проточной цитометрии (рис 3) или флуоресцентной микроскопии (рис 4), с последующим окрашиванием для типичных маркеров эндотелиальных клеток. BOECs положительны для CD31 эндотелиальные маркеры и поверхностные VEGFR2 и отрицательные для моноцитов CD14 маркера и пан-лейкоцитов маркера CD45. BOECs также принадлежать Вейбел-Паладе органы и таким образом выразить фактор Виллебранда (ФВ), как дискретной, точечной окрашивание цитоплазмы. В отличие от других развитых эндотелиальных типов клеток, таких как легочной артерии или аорты эндотелиальных клеток, BOECs также выразить прародителя и активации маркера CD34 на их поверхности.
ftp_upload / 53384 / 53384fig1.jpg "/>
Рисунок 1. Схема протокола BOEC поколения. Мононуклеарные клетки периферической крови выделяют из венозной крови центрифугированием в градиенте плотности и культивировали на коллагеновых пластинок, покрытых в эндотелиальных среды роста, содержащей FBS определен. BOEC колонии появляются в течение 7-14 дней культуры. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2. Светлое изображения представительных BOEC культур. (А) вырост колонии появляются в культурах между 7 дней и 14. колоний, присутствующих в коллекциях эндотелиальных клеток, как, которые расположены в булыжной монослоя и размножаются в радиальном направлении от центральной точки. Ближайшие вырост колонии приверженцем моноcytic клетки, которые составляют подавляющее большинство клеток в начале культур. Эти клетки, описанные ранее в "начале" эндотелиальных клеток-предшественников, имеют веретенообразную морфологию и выразить моноцитарных маркер CD14. (Б) После пассирования, высоко пролиферативные BOECs взять на культурах, как не-пролиферативных клеток моноцитов либо отмирают или не повторно прикрепить после пассирования. Масштабная линейка 250 мкм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3. Характеристика BOECs с помощью проточной цитометрии. BOECs трипсинизировали и окрашивали флуоресцентно-сопряженных антител изотипа контроля (серый заполненный пик) или антител, направленных против конкретных поверхностных маркеров (красная линия). Поверхностные маркеры для цитометрического характеристикивключают гемопоэтические маркеры CD45 и CD14, эндотелиальные маркеры CD31 и VEGFR2 и progentior и эндотелиальной маркер CD34 активации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4. Иммунофлуоресцентное окрашивание BOECs эндотелиальных маркеров клеток. Представительства иммунофлуоресцентные изображения BOECs иммуноокрашиванию с антителами, направленными против поверхности клеток эндотелия маркера CD144 (VE-кадгерин, верхняя правая панель) и гликопротеин крови фактора фон Виллебранда (ФВ, нижняя правая панель) , Соответствующие панели, показывающие окрашивание DAPI ядерной показаны слева. Масштабная линейка 50 мкм. для CD144. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большеВерсия этой фигуры.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| For blood collection | |||
| 60 ml syringe with luer-lok tip | BD | 309653 | |
| 19G Surflo Winged Infusion Set | Terumo | SV-19BL | |
| 50 ml conical centrifuge tube | StarLab | E1450 | 2 per donor |
| Sodium Citrate | Martindale Pharmaceuticals | 270541 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| For buffy coat isolation | |||
| Ficoll-Paque Plus | GE Healthcare | 17-1440-03 | |
| Dulbecco’s PBS (without Ca2+ and Mg2+) | Sigma-Aldrich | D8537 | |
| Sterile wrapped plastic transfer pipettes | Appleton Woods | KC231 | |
| Turk’s Solution | Millipore | 1.093E+09 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| For cell culture, passaging and freezing cells | |||
| Type 1 Collagen (derived from rat tail) | BD Biosciences | 35-4236 | |
| Dulbecco’s PBS (without Ca2+ and Mg2+) | Sigma-Aldrich | D8537 | |
| 0.02M Acetic Acid | Sigma-Aldrich | A6283 | prepared in reagent grade water |
| Endothelial Growth Medium-2MV (containing Bullet Kit, but not serum) |
Lonza | CC-3202 | Note: It is essential that the medium does not contain heparin. Do not use EGM-2. |
| Fetal Bovine Serum (U.S.), Defined | Hyclone | SH30070 | |
| 10x Trypsin EDTA | Gibco | T4174 | Dilute to 1x in PBS prior to use |
| Heat Inactivated FBS | Gibco | 10500-064 | |
| DMEM | Gibco | 41965-039 | |
| DMSO | Sigma-Aldrich | 276855 | |
| Nalgene Mr. Frosty Freezing Container | Sigma-Aldrich | C1562 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| For flow cytometric characterization | |||
| FITC-conjugated mouse anti-human CD14 | BD Biosciences | 555397 | Mouse IgG1k, Clone: WM59 Dilution: 1:20 |
| FITC-conjugated mouse anti-human CD31 | BD Biosciences | 555445 | Mouse IgG1k, Clone: WM59 Dilution: 1:20 |
| APC-conjugated mouse anti-human CD34 | BD Biosciences | 555824 | Mouse IgG1k, Clone: 581/CD34 Dilution: 1:20 |
| FITC-conjugated mouse anti-human CD45 | BD Biosciences | 560976 | Mouse IgG1k, Clone: HI30 Dilution: 1:20 |
| APC-conjugated mouse anti-human VEGFR2 | R&D Systems | FAB357A | Mouse IgG1, Clone: 89106 Dilution: 1:10 |
| FITC-conjugated mouse IgG1k isotype control | BD Biosciences | 555748 | Clone: MOPC-21 Dilution: 1:20 |
| APC-conjugated mouse IgG1k isotype control | BD Biosciences | 555751 | Clone: MOPC-21 Dilution: 1:20 |
| APC-conjugated mouse IgG1k isotype control | R&D Systems | IC002A Dilution: 1:10 |
Clone: 11711 |
| EDTA, 0.5M solution | Sigma-Aldrich | E7889 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| For immunofluorescent microscopy | |||
| Corning Costar 24-well tissue culture plate | Sigma-Aldrich | CLS3527 | |
| Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 158127 | |
| BSA | Sigma-Aldrich | A7906 | |
| Polysorbate 20 | Sigma-Aldrich | P2287 | |
| Monoclonal mouse anti-human CD34 antibody | R&D Systems | MAB72271 | Clone 756510, IgG1, use at 10 μg/ml |
| Polyclonal goat anti-human VE-cadherin (CD144) | R&D Systems | AF938 | Antigen affinity- purified IgG, use at 1:300 |
| Monoclonal rabbit anti-human Von Willebrand Factor (vWF) | Abcam | ab154193 | Clone EPSISR15, use at 1:250 |
| Donkey anti-mouse IgG (H+L) secondary antibody, Alexa Fluor 488 conjugate | Life Technologies | A-21202 | Polyclonal, 2 mg/ml, use at 1:200 |
| Donkey anti-goat IgG (H+L) secondary antibody, Alexa Fluor 488 conjugate | Life Technologies | A-11055 | Polyclonal, 2 mg/ml, 1:200 |
| Donkey anti-rabbit IgG (H+L) secondary antibody, Alexa Fluor 568 conjugate | Life Technologies | A-10042 | Polyclonal, 2 mg/ml, 1:200 |
| DAPI (4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride) | Sigma-Aldrich | D9542 | use at 1 μg/ml |
References
- Yancopoulos, G. D., Klagsbrun, M., Folkman, J. Vasculogenesis, angiogenesis, and growth factors: ephrins enter the fray at the border. Cell. 93, 661-664 (1998).
- Flamme, I., Frölich, T., Risau, W. Molecular mechanisms of vasculogenesis and embryonic angiogenesis. J Cell Physiol. 173, 206-210 (1997).
- Asahara, T., et al. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. Science. 275, 964-967 (1997).
- Shi, Q., et al. Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells. Blood. 92, 362-367 (1998).
- Ormiston, M. L., Deng, Y., Stewart, D. J., Courtman, D. W. Innate immunity in the therapeutic actions of endothelial progenitor cells in pulmonary hypertension. Am J Respir Cell Mol Biol. 43, 546-554 (2010).
- Hur, J., et al. Characterization of two types of endothelial progenitor cells and their different contributions to neovasculogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24, 288-293 (2004).
- Lin, Y., Weisdorf, D. J., Solovey, A., Hebbel, R. P. Origins of circulating endothelial cells and endothelial outgrowth from blood. J Clin Invest. 105, 71-77 (2000).
- Yoder, M. C., et al. Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals. Blood. 109, 1801-1809 (2007).
- Toshner, M., et al. Transcript analysis reveals a specific HOX signature associated with positional identity of human endothelial cells. PLOS ONE. 9, e91334 (2014).
- Toshner, M., et al. Evidence of dysfunction of endothelial progenitors in pulmonary arterial hypertension. Am J Respir Crit Care Med. 180, 780-787 (2009).
- Wang, J. W., et al. Analysis of the storage and secretion of von Willebrand factor in blood outgrowth endothelial cells derived from patients with von Willebrand disease. Blood. 121, 2762-2772 (2013).
- O'Neill, C. L., et al. Therapeutic revascularisation of ischaemic tissue: the opportunities and challenges for therapy using vascular stem/progenitor cells. Stem Cell Res & Ther. 3, 31 (2012).
- Geti, I., et al. A Practical and Efficient Cellular Substrate for the Generation of Induced Pluripotent Stem Cells from Adults: Blood-Derived Endothelial Progenitor Cells. Stem Cells TM. 1, 855-865 (2012).
- Prasain, N., Meador, J. L., Yoder, M. C. Phenotypic and functional characterization of endothelial colony forming cells derived from human umbilical cord blood. Journal of Vis Exp: JoVE. , (2012).
- Martin-Ramirez, J., Hofman, M., van den Biggelaar, M., Hebbel, R. P., Voorberg, J. Establishment of outgrowth endothelial cells from peripheral blood. Nat Prot. 7, 1709-1715 (2012).
- Hofmann, N. A., Reinisch, A., Strunk, D. Isolation and large scale expansion of adult human endothelial colony forming progenitor cells. Journal of Vis Exp: JoVE. , (2009).
