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Bioengineering

Alta velocidad Espectrómetro Sub-GHz para el Análisis de Dispersión de Brillouin

Published: December 22, 2015 doi: 10.3791/53468

Summary

Aquí se presenta un protocolo para construir un espectrómetro de Brillouin rápida. Cascading gama fase prácticamente fotografiado (VIPA) etalones alcanzar una velocidad de medición de más de 1.000 veces más rápido que el escaneo tradicional espectrómetros de Fabry-Perot. Esta mejora proporciona los medios para el análisis de Brillouin de biomateriales de tejido y a bajas niveles de potencia in vivo.

Abstract

El objetivo de este protocolo es construir una gran extinción paralelo y de alta resolución de Brillouin óptica espectrómetro. Espectroscopia de Brillouin es un método de medición sin contacto que se puede utilizar para obtener lecturas directas de las propiedades del material viscoelástico. Ha sido una herramienta útil en la caracterización de materiales, monitoreo estructural y detección del medio ambiente. En el pasado, la espectroscopia de Brillouin ha empleado generalmente de escaneo etalones Fabry-Perot para realizar el análisis espectral. Este proceso requiere alta potencia de iluminación y largos tiempos de adquisición, por lo que la técnica inadecuada para aplicaciones biomédicas. Un espectrómetro de novela recientemente introducida supera este desafío mediante el empleo de dos VIPAs en una configuración de eje transversal. Esta innovación permite el análisis espectral sub-Gigahertz (GHz) de resolución con el tiempo de adquisición de menos de un segundo y el poder de iluminación dentro de los límites de seguridad de tejido biológico. Las múltiples nuevas aplicaciones facilitados por esta mejora son currently están estudiando en la investigación biológica y la aplicación clínica.

Introduction

Dispersión de Brillouin, descrita por primera vez por Leon Brillouin 1 en 1922, es la dispersión inelástica de la luz de los modos acústicos térmicas en un sólido y de las fluctuaciones de densidad térmicas en un líquido o gas. El desplazamiento espectral de la luz dispersa, por lo general en la sub-GHz gama, proporciona información acerca de la interacción entre la luz incidente y los fonones acústicos en la muestra. Como resultado, puede proporcionar información útil sobre las propiedades viscoelásticas del material examinado.

En su versión espontánea, dispersión de Brillouin generalmente tiene secciones transversales en el orden de dispersión Raman, lo que resulta en una señal muy débil. Además, los cambios de frecuencia Brillouin son órdenes de magnitud más pequeña que los cambios Raman. Como consecuencia, elásticamente dispersa la luz (de Rayleigh o dispersión de Mie), la luz difusa, y back-reflexiones fuera de la muestra puede eclipsar fácilmente la firma espectral Brillouin. Por lo tanto, Un espectrómetro de Brillouin tiene que lograr no sólo sub-GHz resolución espectral, sino también un alto contraste espectral o la extinción.

En espectrómetros Brillouin tradicionales estos requisitos se cumplen por monocromadores escaneo-rejilla, métodos de batido ópticos y, más popularmente, el escaneo de paso múltiple Fabry-Perot interferómetros 2. Estos métodos miden secuencialmente cada componente espectral. Este enfoque conduce a tiempos de adquisición para un solo espectro de Brillouin van desde unos pocos minutos a varias horas, dependiendo del instrumento y en la muestra. El espectrómetro de VIPA en dos etapas, construido usando este protocolo, tiene la capacidad de recoger todos los componentes espectrales en menos de un segundo al tiempo que proporciona la extinción suficiente (> 60 dB) para reprimir eficazmente otras señales espurias 2.

La integración de los etalones VIPA es el elemento clave de este espectrómetro. Un VIPA es un etalón sólida, con tres c diferenteáreas flotante: en la superficie frontal, una tira de revestimiento antirreflectante estrecha permite que la luz entre en el VIPA, mientras que el resto de la superficie cuenta con un recubrimiento (HR) altamente reflectante; en la superficie posterior, un revestimiento parcialmente reflectante permite que una pequeña porción (~ 5%) de la luz a transmitir. Cuando se centró en la estrecha entrada del VIPA ligeramente inclinada, el haz de luz se refleja en sub-componentes con diferencia de fase fija dentro del VIPA 2. La interferencia entre los componentes sub logra la alta dispersión espectral aspirado. Alineación de dos VIPAs secuencialmente en la configuración del eje transversal introduce dispersión espectral en direcciones ortogonales 3. La dispersión espectral en direcciones ortogonales separa espacialmente los picos de Brillouin de la diafonía no deseada, lo que hace posible recoger sólo la señal de Brillouin. La Figura 1 muestra un esquema del espectrómetro de VIPA dos etapas. Las flechas debajo de los elementos ópticos indican los gradosree de la libertad en el que las etapas de traslación deben orientarse.

Figura 1
Figura 1. Configuración instrumental. Una fibra óptica proporciona la dispersión de Brillouin en el espectrómetro. Una lente cilíndrica C1 (f = 200 mm) enfoca la luz en la entrada de la primera VIPA (VIPA1). Otra lente cilíndrica C2 (f = 200 mm) mapea la dispersión angular espectral en una separación espacial en el plano focal de C2. En este plano, una máscara vertical se utiliza para seleccionar la parte deseada del espectro. Una configuración análoga sigue, inclinado a 90 grados. El haz pasa a través de una lente esférica S1 (f = 200 mm) y se centra en la ranura de entrada de la segunda VIPA (VIPA2). Una lente esférica S2 (f = 200 mm) crea el patrón espectralmente separadas en dos dimensiones en su plano focal, donde se coloca otra máscara horizontal. El hormáscara hori- se forma la imagen en la cámara EMCCD usando un par de lentes acromático. Por favor haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Un estudiante universitario con algunos cursos de óptica y la experiencia básica de alineación debe ser capaz de construir y utilizar este espectrómetro de dos etapas. El espectrómetro se ha demostrado recientemente para ser compatible con una variedad de sondas ópticas estándar 3,4,5 (por ejemplo, un microscopio confocal, endoscopio, oftalmoscopio con lámpara de hendidura). Aquí, el espectrómetro está conectado a un microscopio confocal. La luz láser se alinea en una investigación microscopio invertido sistema estándar después de la integración de un divisor de haz de 90:10. La luz de retrodispersión de la muestra está acoplado a una fibra monomodo, haciendo que el confocal microscopio.

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Protocol

Nota: el análisis espectral Brillouin requiere un láser de un solo modo longitudinal (~ 10 mW en la muestra). Para propósitos de alineación, usar una porción fuertemente atenuada de este haz de láser (<0,1 mW).

1. Configuración inicial de la fibra y el EMCCD (Electron Multiplied Charge Coupled Device) Cámara

  1. Identificar unos 1.600 mm de espacio libre para alinear el espectrómetro en una mesa óptica.
  2. Monte la cámara EMCCD al final del espacio libre de alineación.
    1. Utilice tornillos de fijación para sujetar la cámara a los puestos. Apriete los puestos de titulares de los puestos a la altura del eje óptico deseado. Apriete los titulares de los puestos en la mesa óptica utilizando pinzas de mesa.
  3. Encienda la cámara EMCCD. Tenga en cuenta para evitar la saturación de la cámara.
    1. Instalar software de la cámara en el ordenador de laboratorio y conectar la cámara al ordenador.
    2. Desactivar la ganancia y ajuste de bajo tiempo de integración (~ 0,01 seg). Iniciar la adquisición de imágenes EMCCD. Observe la imagen de la cámaras en la pantalla de ordenador.
  4. Monte el colimador de fibra sobre 1.600 mm delante de la cámara.
    1. Coloque el colimador de fibra en el adaptador de fibra colimador.
    2. Monte el adaptador en un poste. Apriete el poste en un titular del puesto a la altura aproximada del eje óptico (altura de la cámara). Apriete titular del puesto en la mesa óptica utilizando pinzas de mesa.
  5. Alinear el haz de salida a lo largo del eje óptico.
    1. Utilice un tornillo de fijación para conectar un iris estándar a un poste. Apriete el poste en un titular del puesto.
    2. Coloque el iris delante del colimador de fibra (<50 mm). Ajuste la altura del iris a la viga. Mueva el iris a lo largo del eje óptico deseado, que deben apuntar directamente a la cámara.
    3. Inserte un filtro de densidad óptica directamente después de la salida del láser si se satura la cámara. Utilice los tornillos de ajuste del colimador de fibra de montaje para alinear el haz a lo largo del eje óptico. Una vez logrado esto, laviga limpiamente pasar a través del iris a lo largo de la trayectoria del rayo entero.
  6. Montar un par coincidente de la lente acromática (f = 30 mm) delante de la cámara.

2. Etapa horizontal del Espectrómetro

  1. Monte la máscara horizontal.
    1. Utilice tornillos de fijación para sujetar la máscara horizontal en un poste. Apriete el poste en un titular del puesto. Montar el soporte de poste en una etapa de traslación, permitiendo la máscara para deslizarse horizontalmente dentro y fuera de la trayectoria del haz. (Figura 1)
    2. Utilice tornillos para apretar la etapa de traslación sobre la mesa óptico tal que la máscara se forma la imagen bruscamente sobre la cámara CCD a la distancia focal (f = 30 mm) del par lente acromática.
  2. Montar y alinear la lente esférica S1 (f = 200 mm) 600 mm por delante de la máscara horizontal.
    1. Utilice tornillos de fijación para montar S1 en un titular del puesto. Apriete el poste en un titular del puesto.
    2. Montar dos iris como se describe en 1.5.1. Antes placing S1 en la trayectoria del haz, inserte uno de iris antes y un iris después de la posición deseada S1 (600 mm delante de la máscara horizontal). Ajustar la altura de los iris de tal manera que el haz limpiamente pasa a través de ambos.
    3. Coloque S1 600 mm por delante de la máscara horizontal (Figura 1). Ajuste la altura y el ángulo de S1 hasta que ambos, el reflejo de marcha atrás de la lente y el haz de salir, pasar limpiamente a través de los iris. Apriete el soporte posterior celebración S1 sobre la mesa óptica utilizando pinzas de mesa.
  3. Monte VIPA2 en el plano focal de la lente esférica (200 mm por delante del S1).
    1. Monte el soporte de VIPA en un post con los tornillos suministrados con el soporte. Apriete el poste en un titular del puesto. Apriete el titular del puesto en una etapa de traslación horizontal. (Figura 1)
    2. Coloque VIPA2 cuidadosamente en el soporte de VIPA con la rendija de entrada orientada verticalmente. (Figura 1)
    3. Fino-ajustar la posición of montar el VIPA que ser exactamente en el plano focal de S1. (Marque trazando la cintura del haz con una tarjeta blanca.)
    4. Utilice tornillos para apretar la etapa de traslación sobre la mesa y se deslizan VIPA2 salida óptica de la viga con el grado de libertad de la etapa de traslación.
  4. Montar y alinear la lente esférica S2 (f = 200 mm) 200 mm después de la VIPA y 200 mm delante de la máscara horizontal. Siga el procedimiento descrito en 2.2.1-2.2.3. En lugar de colocación del soporte del poste sobre la mesa óptica, montarlo sobre una etapa de traslación con su grado de orientada a lo largo del eje óptico libertad. (Figura 1) Utilice los tornillos para apretar la etapa de traslación sobre la mesa óptica.
  5. Utilice la etapa de traslación horizontal (2.3.4) para deslizar la entrada VIPA2 en la trayectoria del haz. Observe las líneas verticales en la imagen de la cámara.
    1. Ajuste con precisión S2 usando la etapa de traslación montada en 2.4 hasta que aparezcan las líneas verticales en la imagen de la cámaraagudo.
  6. Ajuste el espectro con el grado de inclinación horizontal de la libertad en el soporte de VIPA y la etapa de traslación. Utilice el grado-traslación horizontal de la libertad para ajustar la posición de entrada del haz en el etalón. Utilice el grado de inclinación horizontal de la libertad para ajustar el ángulo de entrada de la viga en el etalón.
  7. Mida finura y rendimiento.
    1. Tome una imagen pulsando F5 o bien haciendo clic en "Configuración de adquisición" en la esquina superior izquierda y seleccionando la opción "tomar una imagen" en el software de la cámara.
    2. Haz clic derecho sobre la imagen y selecciona la opción "trama". Arrastre el cursor horizontalmente a través de la imagen para generar un gráfico de línea. Suelte el cursor para observar el esquema lineal generada.
    3. Utilice el diagrama de puntos para medir la finura. Divida la distancia entre dos picos por su anchura a media altura (FWHM). Trate de> 30.
    4. Determinar el rendimiento por measuring el poder con un medidor de potencia inmediatamente antes y después VIPA2. Trate de> 50%.
    5. Sintonice el ángulo de entrada de la viga en el elemento de ajuste con el grado de libertad en el soporte de VIPA (2.6) y observar el equilibrio entre elegancia y rendimiento.
  8. Si finura y el rendimiento no es satisfactorio volver y poner a ajustar la alineación. Asegúrese de VIPA2 está en el plano focal de S1. Repita los pasos 2.3.3 -2.7.

3. Etapa vertical del Espectrómetro

  1. Deslice el VIPA (VIPA2), alineados en la parte 2, de la viga usando la etapa de traslación (2.3.4). La etapa horizontal del espectrómetro ahora se comportará como una 1: sistema de imagen 1.
  2. Monte la máscara vertical.
    1. Utilice tornillos de fijación para sujetar la máscara vertical sobre un poste. Apriete un post en un adaptador de pinza posterior ángulo recto. Apretar un segundo puesto en el adaptador de ángulo recto y ponerlo en un titular del puesto. Monte el titular del puesto en vertical traslacional etapa, allowing de la máscara se deslice verticalmente dentro y fuera de la trayectoria del haz. (Figura 1)
    2. Utilice tornillos de tapa para apretar la etapa de traslación vertical sobre la mesa óptica de tal manera que la máscara vertical es fotografiada fuertemente en la cámara EMCCD 200 mm por delante del S1.
  3. Montar y alinear la lente cilíndrica C1 (f = 200 mm) 600 mm por delante de la máscara vertical.
    1. Atornille el soporte de la lente cilíndrica en un poste. Apriete el poste en un titular del puesto. Coloque cuidadosamente C1 en el soporte de la lente y apriete los tornillos para fijarla en su lugar.
    2. Montar dos iris como se describe en 1.5.1. Antes de colocar C1 en la trayectoria del haz, insertar uno iris antes y un iris después de la posición S1 deseada (600 mm por delante de la máscara vertical). Ajustar la altura de los iris de tal manera que el haz limpiamente pasa a través de ambos.
    3. Place C1 600 mm delante de la máscara vertical (Figura 1). Ajuste cuidadosamente la altura, inclinación y posición lateral de C1 hastatanto, el reflejo de marcha atrás de la lente y el haz de salir, se centran en el iris. Apriete el titular del puesto de retención C1 sobre la mesa óptica utilizando pinzas de mesa.
  4. Monte VIPA1 en el plano focal de la lente cilíndrica (200 mm por delante del C1).
    1. Monte el soporte de VIPA en un post con el tornillo suministrado con el soporte. Apriete el poste en un titular del puesto. Apriete el titular del puesto en una etapa de traslación vertical. (Figura 1)
    2. Coloque VIPA1 cuidadosamente en el soporte de VIPA con la rendija de entrada orientado horizontalmente. (Figura 1)
    3. Fino-ajustar la posición de la VIPA montaje para colocar VIPA1 exactamente en el plano focal de C1. (Marque trazando la cintura del haz con una tarjeta blanca.)
    4. Utilice tornillos de tapa para apretar la etapa de traslación vertical sobre la mesa óptica y deslice VIPA1 fuera del haz con el grado de libertad de la etapa de traslación.
  5. Monte y alinee elC2 lente cilíndrica (f = 200 mm) 200 mm después de VIPA1 y 200 mm por delante de la máscara vertical, siguiendo el procedimiento descrito en 3.3.1-3.3.3. En lugar de colocación del soporte del poste sobre la mesa óptica, montarlo sobre una etapa de traslación con su grado de orientada a lo largo del eje óptico libertad. (Figura 1) Utilice los tornillos para apretar la etapa de traslación sobre la mesa óptica.
  6. Utilice la etapa de traducción (3.4.4) para deslizar la entrada VIPA1 en la trayectoria del haz. Observe las líneas horizontales en la imagen de la cámara.
    1. Ajuste con precisión C2 utilizando la etapa de traslación montada en 3.5 hasta que las líneas horizontales en la imagen de la cámara aparecen agudo.
  7. Ajuste el espectro con el grado de inclinación vertical de la libertad en el soporte de VIPA y la etapa de traslación. Utilice el grado-traslación vertical de la libertad para ajustar la posición de entrada del haz en el etalón. Utilice el grado de inclinación vertical de la libertad para ajustar el ángulo de entrada del haz en la colen.
  8. Mida finura y rendimiento.
    1. Siga los pasos 2.7.1 -2.7.2 para generar una trama de línea vertical a través de una imagen de la pantalla de la cámara.
    2. Utilice el diagrama de puntos para medir la finura dividiendo la distancia entre dos líneas horizontales por su anchura a media altura (FWHM). Trate de> 40.
    3. Mida el rendimiento mediante la medición de la potencia con un medidor de potencia inmediatamente antes y después VIPA1. Trate de> 30%.
    4. Sintonice el ángulo de entrada vertical de la viga en el elemento de ajuste con el grado de inclinación vertical de la libertad en el soporte de VIPA (3,7). Observe el equilibrio entre elegancia y rendimiento.
  9. Si finura y el rendimiento no es satisfactorio volver y poner a ajustar la alineación. Asegúrese de VIPA1 está en el plano focal de C1. Repita el paso 3.4.3-3.8.

4. La combinación de las dos etapas y la alineación final

  1. Deslice en VIPA2. Observe puntos horizontal y verticalmente espaciados. Estos puntos unare la firma espectral del láser de una sola frecuencia. Ajuste las etapas de traslación de los VIPAs hasta que los puntos están en un enfoque nítido.
  2. Mida la delicadeza y el rendimiento del espectrómetro.
    1. Siga los pasos 2.7.1.-2.7.2 para generar una trama de línea diagonal a través de dos de los puntos láser.
    2. Utilice el diagrama de puntos para medir la finura dividiendo la distancia diagonal entre dos puntos por su anchura a media altura (FWHM). Trate de> 30.
  3. Construir una caja de negro para encerrar el espectrómetro.
    1. Utilice carriles de construcción para construir el esqueleto de caja, que debe encerrar todo el espectrómetro desde el colimador de fibra a la cámara CCD (63 x 9 en en x 15 in).
    2. Cubra el esqueleto caja con Blackout Tela y cinta con fuerza en las esquinas. Asegúrese de que las máscaras y los VIPAs son fácilmente accesibles.
  4. Conectar la fibra a una sonda óptica estándar, tal como un microscopio confocal de reflectancia 4. P óptica Standardtúnicas utilizadas para recoger la luz retrodispersada llevarán una señal de Brillouin.

5. La medición del desplazamiento Brillouin

  1. Cerrar tanto la vertical y la horizontal máscaras, hasta la firma de láser desaparece. Mueva las etapas de traducción en consecuencia.
  2. Activar la ganancia y aumentar el tiempo de integración de la cámara tanto como sea posible sin saturar la cámara EMCCD.
  3. Observe el cambio de Brillouin de una muestra.
    1. Coloque una muestra en el foco de un microscopio confocal (u otra sonda óptica). La resolución espacial dependerá de la lente del objetivo utilizado en el microscopio confocal. Use un plato de plástico o una cubeta para líquidos. Utilice Metanol para la primera medición.
  4. Para optimizar el rendimiento del espectrómetro, abra una máscara a la vez y escanear a través de las órdenes del espectrómetro por la inclinación del VIPA y el ajuste de su etapa de traducción. Encuentra el orden en que aparece la señal más fuerte. Cerrar máscara de nuevo hasta THseñal de láser e desaparece. Repita con la otra máscara y VIPA (descrito en 2.6 y 3.7).
  5. Tomar una medición de la muestra.
    1. Tome una imagen del espectro siguiente paso 2.7.1.
    2. Obtener mediciones de calibración mediante la adopción de una imagen del espectro de agua y de vidrio (u otra muestra conocida con desplazamiento de Brillouin). Guarda la imagen haciendo clic en "Archivo" en la esquina superior izquierda y seleccionando la opción "Guardar como". Guarda la imagen en formato ".sif" si el análisis de los datos se lleva a cabo en el software de la cámara. Guarda la imagen en formato ".tif" si el análisis de los datos se realiza en otro programa de software computacional.

6. Calibración y Análisis de Brillouin Spectrum

  1. Determinar el rango espectral libre (FSR) y el píxel EMCCD ratio de conversión de frecuencia óptica (PR) en el espectrómetro de Brillouin.
    1. Cargue los datos en el software de la cámara u otro Computaprograma de software cional.
    2. Siga el paso 2.7.2 para generar un diagrama de puntos en todo el espectro de la imagen de calibración de agua.
    3. Montar los dos picos del espectro con curvas lorentzianos para determinar posiciones de los picos en términos de posición de píxel (P Agua-S, P Agua-AS). Alternativamente, dio lectura a las posiciones de los picos manualmente tomando el punto más alto de los picos.
    4. Repita el paso 6.1.2-6.1.3 con el espectro de la imagen de calibración de vidrio.
    5. Como alternativa a 6.1.1-6.1.4, agregue ambos marcos EMCCD y colocar los cuatro picos a la vez. (Figura 2)
    6. Calcular la PR utilizando la ecuación 1. Conecte los valores de P de agua-AS y P-cristal como se determina en 6.1.3 y 6.1.4. Ω Glass-AS es conocido por ser 29,3 GHz. En este caso, puesto que el rango espectral libre está a sólo 20 GHz que aparecerá alias con el desplazamiento de frecuencia de 9,3 GHz. Para simplificar utilizar 9,3 GHz para Ω Glass-AS. Utilice 7.46 GHz para ΩAgua-AS.
      Ecuación 1
    7. Calcular el FSR usando la ecuación 2. Conecte los valores de P Glass-S, P Glass-AS y PR, calculado en 6,16. Utilice 9,3 GHz para Ω Glass-AS.
      Ecuación 2

Figura 2

Figura 2. calibración del espectrómetro. Marco (A) de la cámara EMCCD obtiene a partir de la muestra de calibración. (B) ajuste de curva de Lorentz (rojo) para los datos medidos (Azules). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Determinar el cambio de Brillouinun ejemplo.
    1. Siga el paso 2.7.2 para generar un barrido de línea en todo el espectro de la muestra.
    2. Montar los dos picos del espectro con curvas lorentzianos para determinar posiciones de los picos en términos de posición de píxeles. Alternativamente, dio lectura a las posiciones de los picos manualmente tomando el punto más alto de los picos.
    3. Use las siguientes ecuaciones 4 y 5 y los valores calculados previamente para FSR y PR para calcular el cambio de Brillouin de la muestra.
      Ecuación 3

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Representative Results

La Figura 3 muestra los espectros de Brillouin representativa y sus ajustes para diferentes materiales. Los VIPAs ambos tienen un espesor de 5 mm que resulta en una FSR de aproximadamente 20 GHz. El tiempo de integración para estas mediciones fue de 100 mseg. 100 mediciones se tomaron y se promediaron. Una medición de calibración se tomó antes de la adquisición de los espectros.

figura 3
Figura 3. Espectros de Brillouin de diferentes materiales. Ajuste de la curva de Lorentz (rojo) para los datos medidos (Azules). (A) espectro de Brillouin de metanol. El cambio de Brillouin medida es 5,59 GHz. (B) espectro de Brillouin de etanol. El cambio de Brillouin medida es 5,85 GHz. (C) espectro de Brillouin de poliestireno. El cambio de Brillouin medida es 14.12 GHz.ad / 53468 / 53468fig3large.jpg "target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Los desplazamientos de Brillouin obtenidos están de acuerdo con los datos publicados anteriormente 3,6,7. Para determinar si la alineación del espectrómetro es óptimo, muchas mediciones espectrales del mismo material se pueden tomar de forma secuencial, y la desviación estándar de las posiciones de los picos se puede calcular. La Figura 4A muestra un tiempo de traza de 250 mediciones de Brillouin de metanol tomado secuencialmente ; un histograma de los turnos de Brillouin evaluados se muestra en la Figura 4B. Un espectrómetro bien alineada con 5 mW de la luz en la muestra y un tiempo de integración de 100 ms tendrán una desviación estándar de σ ~ 10 MHz. Los cambios en el desplazamiento Brillouin dentro de la córnea y el tejido de la lente se han medido a ser del orden de 1 GHz 9,10,11. Por lo tanto, las lecturas de desplazamiento Brillouin con variabilidad de ≤10 MHz permitirán la medición de relevanciavariaciones mecánicas en el tejido.

Figura 4
Figura 4. Desviación de desplazamiento Brillouin más de 250 mediciones de metanol. (A) Fecha rastro de 250 mediciones de Brillouin de metanol. (B) histograma de la desviación de desplazamiento Brillouin más de 250 mediciones. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Discussion

Una característica clave del diseño de esta configuración es que espectrómetro de las dos etapas se pueden alinear de forma independiente. Cuando un etalón VIPA se desliza fuera de la trayectoria óptica, las lentes restantes de la etapa de formar un espectrómetro de 1: sistema de imagen 1, de modo que el patrón espectral de cada etapa se forma la imagen sobre la cámara CCD. Por lo tanto, es sencillo volver a cualquiera de las etapas para mejorar su rendimiento sin afectar a la alineación de la otra etapa. El conjunto de etapas de traslación y grados de libertad que se sugieren en el protocolo sigue esta filosofía de mantener la capacidad de optimizar de manera independiente ambas etapas del espectrómetro.

Es difícil montar los etalones VIPA tal que el grado de inclinación de la libertad gira alrededor del eje ventana de entrada. Posteriormente, cuando se opera con componentes opto-mecánico disponibles en el mercado, la inclinación del etalón inevitablemente introduce una pequeña traducción de la ventana de entrada. El translation largo del eje de haz óptico no debe inducir efectos negativos debido a la gran gama de Rayleigh de la lente de entrada (~ 3 mm). Por otra parte, la traslación sobre el eje ortogonal a la propagación del haz puede disminuir significativamente el rendimiento del espectrómetro. Esta es la razón por la traducción y los grados de inclinación de la libertad sobre el titular VIPA tienen que ser operado en conjunto para maximizar la finura y el rendimiento. Se sugiere para iniciar el procedimiento de alineación con relativamente alto ángulo de inclinación (~ 3-5 grados), de modo que la luz de acoplamiento en el etalón VIPA es casi sin pérdidas. Como mejora la alineación, el ángulo de inclinación se puede disminuir para mejorar la finura. La optimización de la finura y el rendimiento es una parte importante del protocolo de alineación, especialmente para aplicaciones en materiales biológicos, donde el tiempo de integración y la potencia del láser debe mantenerse lo más bajo posible.

En el protocolo, se ha sugerido para extraer el desplazamiento de Brillouin de tque el análisis de los dos picos espectrales, es decir, los picos de Stokes y anti-Stokes de dos órdenes de difracción adyacentes. Este es un procedimiento intrínsecamente robusta que minimiza artefactos debido a las derivas de frecuencia del láser, o los cambios de temperatura etalón. Sin embargo, la medición de los picos con el significativamente diferente desplazamiento espectral puede tener inconvenientes. De hecho, el procedimiento previsto para la calibración espectral se basa en el supuesto de la dispersión espectral constante a través del patrón espectral. En realidad, la dispersión espectral aumenta en las órdenes inferiores de difracción. Como resultado, las regiones del espectro que se analizan (es decir, los picos de Stokes y anti-Stokes de dos órdenes de difracción adyacentes) pueden tener diferentes dispersiones espectrales. En este caso, el procedimiento de calibración espectral escrito aquí proporcionará turnos de Brillouin inexactas. Se sugiere que más materiales de cambio conocido Brillouin se deben utilizar en esta situación para construir una curva de calibración espectral con ajuste polinómico. Esto es particularmente importante si el valor absoluto del desplazamiento de Brillouin tiene que ser comparado en vez de el cambio relativo en cambio Brillouin entre dos condiciones.

Típicamente, la delicadeza de etalones en el espacio libre, incluyendo el VIPA describe aquí, no supera ~ 50. Como consecuencia, habrá una compensación a considerar entre la alta resolución espectral y el rango espectral libre. En este protocolo se sugiere una gama espectral libre de 20 GHz para el verde (532 nm) el funcionamiento del láser ya que la mayoría biomateriales tienen turnos de Brillouin de menos de 10 GHz. Sólo la mitad de la FSR está disponible para el análisis de Brillouin porque el Stokes y anti-Stokes frecuencia desplaza más grande que media FSR aparecerá un alias en el espectro.

Si se encuentran dificultades en la observación de la señal de Brillouin, es importante reconocer si los problemas están relacionados con una cantidad excesiva de luz parásita, oa un bajo número de fotones Brillouin. L perdida excesivavuelo deben ser eliminados con eficacia. Asegúrese de que la carcasa de la caja negro es hermética a la luz. Sin muestra, encender luces de la habitación o apagar el láser no debe cambiar significativamente la cámara EMCCD recuento de fondo de fotones. Para eliminar la luz láser reflejada por la superficie de la muestra, ligeramente incline la muestra, y comenzar la observación con máscaras espaciales cerrada tanto como sea posible sin bloquear la señal. Estos dos procedimientos permitirán aumentar el tiempo de integración para permitir la observación de una señal de Brillouin muy tenue. Si todavía no hay señal, es probable que la señal de Brillouin es demasiado débil. Utilice una muestra diferente con una fuerte señal de Brillouin tales como metanol, o comprobar la alineación de la óptica de recogida en el microscopio confocal. Después de observar con éxito una señal, optimizarlo aún más siguiendo el paso 5.4 se describe en el protocolo.

La pérdida de la luz incidente debido a la absorción o dispersión aumentará el tiempo de adquisición rEQUERIDO para el análisis de la muestra. Como resultado, los mejores resultados se obtienen normalmente en materiales transparentes o delgadas. Un espectrómetro bien alineada debería ser capaz de obtener un alto conteo de fotones (> 1000 en el pico) con 5 mW de luz en la muestra y 100 ms de tiempo de integración para materiales líquidos o muestras de plástico transparente. Esto es significativamente más rápido que los espectrómetros de escaneo tradicionales. Debido a su baja potencia tiempo de adquisición y la iluminación, un espectrómetro tal ha permitido el uso de la espectroscopía Brillouin en vivo de imágenes -aparatos mecánicos 3,10,11,12. El uso de este tipo de espectrómetro, varios grupos han demostrado una variedad de aplicaciones tales como la medición de las propiedades reológicas de la lente del ojo 13, la detección de la meningitis bacteriana en el líquido cefalorraquídeo 4, y analizar el módulo elástico de la córnea 14.

Se esperan nuevas mejoras en el espectrómetro en el futuro cercano, especialmente si baja pérdida banda ultra estrechopasar y / o filtro de corte puede ser incorporado a relajar los requisitos de extinción en la dispersión espectral VIPA. Desde el espectrómetro se puede utilizar en combinación con una variedad de sondas ópticas estándar, por ejemplo microscopios confocales 3,4,5, endoscopios, y con lámpara de hendidura oftalmoscopios, el espectrómetro VIPA podría ser un componente decisivo en varias aplicaciones biomédicas.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
OPTICS
VIPA (virtual image phase array) LIGH MACHINERY Quantity: 2
Bundle of Three 423 Linear Stages with SM-25 Micrometers NEWPORT 423-MIC  Quantity: 1
SS Crossed-Roller Bearing Translation Stage, 0.5 in., 8-32, 1/4-20 NEWPORT 9066-X Quantity: 1
Vernier Micrometer, 13 mm Travel, 9 lb Load Capacity, 50.8 TPI NEWPORT SM-13 Quantity: 1
Adjustable Width Slit NEWPORT SV-0.5 Quantity: 2
Compact Dovetail Linear Stage, 0.20 in. Z Travel, 1.57x1.57x1.38 in. NEWPORT DS40-Z Quantity: 2
Slotted Base Plate, 25 or 40 mm to 65 mm Stage, 1.1 in. Range NEWPORT B-2B Quantity: 2
Ø1/2" Optical Post, 8-32 Setscrew, 1/4"-20 Tap, L = 2", 5 Pack THORLABS TR2-P5 Quantity: 2
Ø1/2" Post Holders, Spring-Loaded Hex-Locking Thumbscrews, L = 2", 5 Pack THORLABS PH2-P5 Quantity: 1
Ø1/2" Post Holders, Spring-Loaded Hex-Locking Thumbscrew, L = 3", 5 Pack THORLABS PH3-P5 Quantity: 1
Imperial Lens Mount For 2" Optics, 8-32 Tap THORLABS LMR2 Quantity: 2
f=200.0 mm, Ø2" Achromatic Doublet, ARC: 400-700 nm THORLABS AC254-200-A Quantity: 2
Kinematic Mount for up to 1.3" (33 mm) Tall Rectangular Optics, Right Handed THORLABS KM100C Quantity: 2
Fixed Cylindrical Lens Mount, Max Optic Height: 1.60" (40.6 mm) THORLABS CH1A Quantity: 2
f=200.00 mm, H=30.00 mm, L=32.0 mm, N-BK7 Plano-Convex Cylindrical Lens, Antireflection Coating: 350-700 nm THORLABS L1653L1-A Quantity: 2
Right-Angle Post Clamp, Fixed 90° Adapter THORLABS RA90 Quantity: 1
Adapter with External C-Mount Threads and Internal SM1 Threads THORLABS SM1A9 Quantity: 1
Studded Pedestal Base Adapter, 1/4"-20 Thread THORLABS PB4 Quantity: 2
Spacer, 2" x 3", 1.000" Thick THORLABS Ba2S7 Quantity: 2
543 nm, f=15.01 mm, NA=0.17 FC/APC Fiber Collimation Pkg. THORLABS F260APC-A Quantity: 1
SM1-Threaded Adapter for Ø11 mm collimators THORLABS Ad11F Quantity: 1
Translating Lens Mount for Ø1" Optics, 1 Retaining Ring Included THORLABS LM1XY Quantity: 1
Single Mode Patch Cable, 450 - 600 nm, FC/APC, 2 m Long THORLABS P3-460B-FC-2 Quantity: 1
1:1 Matched Achr. Pair, f1=30 mm, f2=30 mm, BBAR 400-700 nm THORLABS MAP103030-A Quantity: 1
SM1 Lens Tube…length to adjust depend on CCD, we have 3.5 inches THORLABS SM1LXX Quantity: 1
Base Adapters for Ø1/2" Post Holders and Ø1" Posts THORLABS BE1 Quantity: 8
Clamping Forks for  Ø1/2" Post Holders and Ø1" Posts THORLABS CF125 Quantity: 8
HW-KIT5 - 4-40 Cap Screw and Hardware Kit for Mini-Series  THORLABS HW-KIT5 Quantity: 1
D20S - Standard Iris, Ø20.0 mm Max Aperture  THORLABS D20S Quantity: 2
FOR ENCLOSURE
25 mm Construction Rail, L = 21" THORLABS XE25L21 Quantity: 6
1" Construction Cube with Three 1/4" (M6) Counterbored Holes THORLABS RM1G Quantity: 8
Right-Angle Bracket for 25 mm Rails THORLABS XE25A90 Quantity: 12
25 mm Construction Rail, L = 15" THORLABS XE25L15 Quantity: 4 
25 mm Construction Rail, L = 9" THORLABS XE25L09 Quantity: 8
High Performance Black Masking Tape, 2" x 60 yds. (50 mm x 55 m) Roll THORLABS T743-2.0 Quantity: 1
Low-Profile T-Nut, 1/4"-20 Tapped Hole, Qty: 10 THORLABS XE25T3 Quantity: 1
1/4"-20 Low-Profile Channel Screws (100 Screws/Box) THORLABS SH25LP38 Quantity: 1
60" (W) x 3 yds. (L) x 0.005" (T) (1.5 m x 2.7 m x 0.12 mm) Blackout Fabric THORLABS BK5 Quantity: 1
CAMERA, LASER and MICROSCOPE
EMCCD camera ANDOR iXon Ultra 897 Quantity: 1
400 mW single mode green laser LASER QUANTUM torus 532 Quantity: 1
Research Inverted System Microscope  OLYMPUS IX71 Quantity: 1

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References

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  3. Scarcelli, G. Confocal Brillouin microscopy for three-dimensional mechanical imaging. Nat. Phot. 2 (1), 39-43 (2008).
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Bioingeniería Número 106 espectrómetros Dispersión Brillouin Biomateriales Confocal Microscopios Imaging Mecánica
Alta velocidad Espectrómetro Sub-GHz para el Análisis de Dispersión de Brillouin
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Berghaus, K. V., Yun, S. H.,More

Berghaus, K. V., Yun, S. H., Scarcelli, G. High Speed Sub-GHz Spectrometer for Brillouin Scattering Analysis. J. Vis. Exp. (106), e53468, doi:10.3791/53468 (2015).

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